Summary
يوفر هذا البروتوكول طريقة بسيطة وفعالة من حيث التكلفة لعزل الحمض النووي لتحليل تغيرات ميكروبات الأمعاء الفئرانية أثناء تطور أمراض المناعة الذاتية.
Abstract
الميكروبات المعوية لها دور مهم في تثقيف الجهاز المناعي. هذه العلاقة مهمة للغاية لفهم أمراض المناعة الذاتية التي لا تحركها العوامل الوراثية فحسب ، بل أيضا العوامل البيئية التي يمكن أن تؤدي إلى ظهور المرض و / أو تفاقم مسار المرض. أظهرت دراسة نشرت سابقا حول ديناميكيات ميكروبات الأمعاء في الفئران الإناث المعرضة للذئبة MRL / lpr كيف يمكن للتغيرات في ميكروبات الأمعاء أن تغير تطور المرض. هنا ، يتم وصف بروتوكول لاستخراج عينات تمثيلية من ميكروبات الأمعاء لدراسات المناعة الذاتية. يتم جمع عينات الميكروبات من فتحة الشرج ومعالجتها ، والتي يتم استخراج الحمض النووي منها باستخدام طريقة الفينول كلوروفورم وتنقيتها عن طريق هطول الأمطار الكحولية. بعد إجراء تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR)، يتم تسلسل الأمبليونات النقية باستخدام منصة تسلسل الجيل التالي في مختبر أرغون الوطني. أخيرا ، يتم تحليل بيانات تسلسل جين الحمض النووي الريبوسومي الريبوسومي 16S. على سبيل المثال ، يتم عرض البيانات التي تم الحصول عليها من مقارنات ميكروبات الأمعاء لفئران MRL / lpr مع أو بدون CX3CR1. أظهرت النتائج اختلافات كبيرة في الأجناس التي تحتوي على البكتيريا المسببة للأمراض مثل تلك الموجودة في فصيلة البروتيوباكتيريا ، وكذلك جنس Bifidobacterium ، الذي يعتبر جزءا من الميكروبات المصاحبة الصحية. باختصار ، هذه الطريقة البسيطة والفعالة من حيث التكلفة لعزل الحمض النووي موثوقة ويمكن أن تساعد في التحقيق في تغيرات ميكروبات الأمعاء المرتبطة بأمراض المناعة الذاتية.
Introduction
لقد تعايش البشر والبكتيريا لفترة طويلة. لقد أقاموا علاقة اعتماد متبادل مع تأثيرات متبادلة المنفعة تؤثر على الاستجابات المناعية للمضيف بطرق كمية ونوعية1. تشير الدراسات الحديثة إلى وجود ارتباط بين تكوين ميكروبات الأمعاء والتسبب في أمراض المناعة الذاتية التي تشمل التصلب المتعدد 2 ، والتهاب المفاصل الروماتويدي3 ، ومرض السكري من النوع2 4 ، ومرض التهاب الأمعاء5 ، والذئبة الحمامية الجهازية (SLE)6. ومع ذلك ، ما إذا كانت ميكروبات الأمعاء هي السبب الرئيسي أو التأثير الثانوي لهذه الأمراض المناعية الذاتية لا يزال غير واضح7. من المحتمل أن تؤدي ميكروبات الأمعاء إلى تفاقم المرض خلال المرحلة المستجيبة لاضطرابات المناعة الذاتية أو تلعب دورا في تنظيم تحريض هذه الأمراض8.
تم الإبلاغ عن dysbiosis المعوية في الفئران MRL / Mp-Faslpr (MRL / lpr) المعرضة للذئبة ، ولوحظت تغيرات ميكروبات الأمعاء مع استنفاد كبير من العصيات اللبنية9. عندما تم إعطاء خليط من خمس سلالات من Lactobacillus عن طريق الفم ، تم تخفيف الأعراض الشبيهة بالذئبة إلى حد كبير في هذه الفئران ، مما يشير إلى دور أساسي للميكروبات في تنظيم التسبب في مرض الذئبة الحمراء.
تسمح التقنية التالية لاستخراج الحمض النووي بمتابعة تقلبات الميكروبات وتحليلها نوعيا وكميا أثناء الإصابة بمرض يشبه الذئبة الحمراء الفئران في الفئران المعرضة للذئبة. سواء لفحص ميكروبات الأمعاء الصحية أو تعريف dysbiosis ، من المهم أن تدرس بشكل نقدي كيفية جمع البيانات وما إذا كانت دقيقة وقابلة للتكرار10. كل خطوة حاسمة في هذه العملية. يجب استخدام منهجية مناسبة لاستخراج الحمض النووي الميكروبي لأن أي مشكلة محتملة في إدخال تحيزات أثناء عملية استخراج الحمض النووي يمكن أن تؤدي إلى تمثيل ميكروبي غير دقيق. في حين يتم وصف طريقة الفينول كلوروفورم هنا ، هناك مجموعات متاحة تجاريا لاستخراج الحمض النووي من البكتيريا التي تعمل بشكل جيد في حالات معينة11. ومع ذلك ، فإن قابليتها للاستخدام محدودة بالتكلفة وكمية العينة المطلوبة.
البروتوكول المعروض هنا فعال من حيث التكلفة ولا يتطلب سوى كمية صغيرة من العينة. وهو يعمل بشكل جيد مع أي نوع من عينات البراز وهو مفيد في دراسة ديناميكيات ميكروبات الأمعاء بمرور الوقت وكذلك المقارنات بين المجموعات. يتم عزل الحمض النووي بطريقة تنقية الكحول ، والتي تستخدم الفينول والكلوروفورم وكحول الأيزواميل. يساعد الاستخراج القائم على الكحول على تنظيف وإزالة عينة البروتينات والدهون ، حيث يتم ترسيب الحمض النووي في الخطوة النهائية. تتميز الطريقة المقترحة بكفاءة وجودة عالية بشكل كبير وقد ثبت أنها دقيقة في تحديد مجموعات البكتيريا. إحدى الملاحظات الهامة أثناء الإجراء هي أن تلوث الحمض النووي يمكن أن يحدث ، وبالتالي يلزم التعامل مع العينات المناسبة12.
ثم يتم تحليل الحمض النووي بواسطة منصات تسلسل الجيل التالي لجين 16S rRNA ، مثل Illumina MiSeq. على وجه الخصوص ، يتم تحليل منطقة V4 فائقة التغير لتوفير تقدير كمي أفضل للأصناف عالية الرتبة13. يتم الاستعانة بمصادر خارجية لتحليل المعلوماتية الحيوية اللاحق ، يليه تحليل داخلي باستخدام الأساليب الإحصائية القياسية. هناك العديد من برامج المعلوماتية الحيوية مفتوحة المصدر المتاحة للتسلسل النهائي ، ويعتمد نوع التحليلات التي يتم إجراؤها بشكل كبير على المسألة البيولوجية المحددة ذات الأهمية14. يركز هذا البروتوكول بشكل خاص على الخطوات التجريبية قبل التسلسل ويوفر طريقة أكثر تنوعا وفعالية من حيث التكلفة وقابلة للمقارنة وفعالة للحصول على الحمض النووي من عينات البراز.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
تم عبور موضع Cx3cr1 gfp / gfp لفئران B6.129P2 (Cg) - Cx3cr1tm1Litt / J إلى MRL / MpJ-Fas lpr / J (MRL / lpr) لمدة 10 أجيال لإنشاء فئران MRL / lpr-CX3 CR1gfp / gfp. أكد فحص الجينوم باستخدام لوحات تعدد أشكال النيوكليوتيدات المفردة (SNP) أن الخلفية الجينية للفئران المتولدة حديثا كانت أكثر من 97٪ مطابقة لتلك الموجودة في MRL / lpr. بعد ذلك ، تم تربية الفئران وصيانتها في بيئة محددة خالية من مسببات الأمراض وفقا للمتطلبات المحددة للجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها (IACUC) في Virginia Tech. تم جمع العينات عندما كان عمر الفئران 13 و 14 و 15 أسبوعا.
1. جمع عينات الميكروبات من الفئران
- خذ كل فأر على حدة من قفصه. جمع بيليه البراز مباشرة من فتحة الشرج وتخزينها في -80 درجة مئوية حتى تتم معالجتها. قم بمعالجة العينات باستخدام ملقط وأنابيب وقفازات معقمة ونظيفة.
ملاحظة: يمكن استخدام حاوية (على سبيل المثال، دورق) لوضع الماوس أثناء انتظار عينة البراز. تنظيف الحاوية مع الإيثانول قبل وبعد كل ماوس. - أضف حبيبة مجمدة إلى أنبوب غطاء لولبي 2 مل موزون مسبقا. سجل وزن البراز بالجرام ، والذي يجب أن يتراوح بين 0.02-0.05 جم لكل حبيبة برازية.
- أضف إلى الكريات طبقة رقيقة من الخرز الزجاجي 0.1 مم ، و 500 ميكرولتر من المخزن المؤقت للتحلل (50 mM NaCl و 5 mM Tris و 50 mM EDTA) ، و 200 ميكرولتر من 20٪ SDS.
- تغلب الخرزة على الأنبوب لمدة 4 دقائق في مجانس (بأقصى طاقة) ، تليها 3-5 دقائق من الدوامة.
- تدور لفترة قصيرة للقضاء على الفقاعات والرغوة (اضغط على الزر الموجود على جهاز الطرد المركزي حتى يصل إلى 1000-1200 × جم ، ثم حرره).
2. استخراج الحمض النووي
- نقل 350 ميكرولتر من المادة الفائقة التي تم الحصول عليها في الخطوة 1.5 (لضمان عدم حمل أي حطام) إلى أنبوب غطاء مفاجئ جديد سعة 1.5 مل. أضف 500 ميكرولتر من خليط الفينول والكلوروفورم والأيزواميل (PCI ؛ 25: 24: 1 ، v / v) والدوامة لمدة دقيقة واحدة.
ملاحظة: من الآن فصاعدا ، يجب التعامل مع العينات داخل غطاء كيميائي. PCI سامة. - تدور في 6000 × غرام لمدة 3 دقائق عند 4 درجات مئوية. انقل 180 ميكرولتر من الطور المائي (الطبقة العليا) إلى أنبوب غطاء مفاجئ جديد بسعة 1.5 مل. أضف 180 ميكرولتر (1:1) من الكلوروفورم ، وقلبه ، واخلطه.
ملاحظة: تقليل التلوث من الطبقة السفلية عند نقل الطبقة العليا. - تدور عند 18,400 × g لمدة 3 دقائق عند 4 درجات مئوية. انقل 180 ميكرولتر من الطور المائي إلى أنبوب غطاء مفاجئ جديد.
ملاحظة: بعد التخلص من PCI والكلوروفورم ، يمكن تنفيذ الخطوات التالية في خزانة السلامة البيولوجية. - أضف 180 ميكرولتر من الأيزوبروبانول البارد و 36 ميكرولتر من 5M NH4Ac. اقلب عدة مرات للخلط ، وضع الأنبوب على الجليد لمدة 20 دقيقة.
- تدور على حرارة 18,400 × جم لمدة 20 دقيقة عند 4 درجات مئوية. صب للتخلص من supernatant. اغسل الكريات عدة مرات باستخدام 500 ميكرولتر من الإيثانول البارد بنسبة 70٪ أثناء الانعكاس.
ملاحظة: يجب تخفيف الإيثانول بماء معقم مزدوج منزوع الأيونات. - تدور عند 18,400 × g لمدة 3 دقائق عند 4 درجات مئوية. تخلص من المادة الفائقة لإزالة الإيثانول المتبقي.
- جفف الأنبوب رأسا على عقب رأسا على عقب على المناديل الورقية لمدة 20 دقيقة، حتى تصبح الكريات واضحة. تعليق بيليه في 50 ميكرولتر من الماء الجزيئي. سخني السائل على درجة حرارة 37 درجة مئوية لمدة 10 دقائق لإذابة كريات الحمض النووي الكبيرة بالكامل.
- قم بتدوير الأنابيب بعد التسخين لاستعادة قطرات التكثيف على الغطاء (3400 × جم لمدة 1 دقيقة).
- قياس التركيز والحصول على نسبة 260/280 باستخدام مقياس الطيف الضوئي. استخدم الماء الجزيئي كفراغ. يجب أن يحتوي الحمض النووي عالي الجودة على نسب 260/280 تتراوح بين 1.8 و 2.
ملاحظة: العائد المتوقع للحمض النووي لا يقل عن 0.03 غرام لكل حبيبة برازية.
3. إعداد عينة لتسلسل جين 16S rRNA
- أرسل عينات الحمض النووي إلى مختبر أرغون الوطني ، حيث تخضع لإعداد المكتبة ويتم تسلسلها على Illumina Miseq.
- أرسل العينات في ألواح 96 بئرا كاملة التفاف، مع عينات مرتبة في صفوف (A1-A12، B1-B12، إلخ)، ومختومة بأختام ألواح الرقائق المعدنية.
- أرسل حجما نهائيا قدره 20 ميكرولتر لكل عينة لكل بئر ، يتراوح تركيزه من 1-50 نانوغرام / ميكرولتر.
ملاحظة: يجب أن يتم التخفيف بالماء الجزيئي. - بعد تحضير العينات ، تدور عند 600 × g لمدة 1 دقيقة في درجة حرارة الغرفة قبل تجميد العينات عند -80 درجة مئوية لمدة 24 ساعة.
- أرسل بين عشية وضحاها على الثلج الجاف.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
يتم تحليل النتائج من مختبر أرغون الوطني من قبل أخصائي معلوماتية حيوية مؤهل ، يليه تحليل داخلي للبيانات باستخدام الأساليب الإحصائية القياسية. تتضمن تحليلات الميكروبيوم النموذجية تجميع تسلسلات مماثلة في وحدات تصنيفية تشغيلية (OTUs) أو متغيرات تسلسل أمبليكون (ASVs) كبديل للكائنات الحية الدقيقة المختلفة في العينة. يمكن بعد ذلك استخدام تعداد OTUs أو ASVs عبر العينات لاختبار التغيرات في التنوع داخل العينة (ألفا) والتنوع بين العينة (بيتا). ويمكن أيضا استخدامها لاختبار التصنيفات التي تكون وفيرة بشكل تفاضلي عبر فئات البيانات الوصفية ذات الاهتمام.
كما هو موضح في الشكل 1 ، فإن سلالة الفأر التي تفتقر إلى المستقبل CX3CR1 لها تركيبة ميكروبات معوية مختلفة. بالمقارنة مع النوع البري MRL / lpr ، تظهر الفئران MRL / lpr-CX 3 CR1gfp / gfp (التي تعبر عن بروتين الفلورسنت الأخضر بدلامن CX3CR1) اختلافات كبيرة في بعض الأجناس ذات الصلة بالبكتيريا المسببة للأمراض المحتملة مثل تلك الموجودة في البكتيريا البروتينية الفصيلية. بالإضافة إلى ذلك ، لوحظت بعض الاختلافات في البكتيريا المصاحبة "الصحية" مثل Bifidobacterium ، ولكن ليس Lactobacillus.
الشكل 1: مقارنات ميكروبات الأمعاء على مستوى الجنس لفئران MRL / lpr و MRL / lpr-CX3CR1. وفرة الأجناس المختلفة في عمر 13 و 14 و 15 أسبوعا (n = 5 فئران أنثى لكل مجموعة). تم تنفيذ ANOVA ثنائي الاتجاه. لا توجد أهمية ('ns')، * P < 0.05، **P < 0.01. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
يمكن للميكروبات المعوية المتوازنة حماية جسم الإنسان من الأمراض. بمجرد أن يتعطل هذا التوازن بسبب المحفزات الخارجية أو الداخلية ، يمكن أن تكون العواقب مدمرة. تقدم هذه الطريقة طريقة لتحليل ديناميكيات ميكروبات الأمعاء في نماذج الفئران. هذه الطريقة مناسبة ليس فقط للمقارنات بين المجموعات ولكن أيضا لتتبع ميكروبات الأمعاء بمرور الوقت لتحديد العوامل المعتمدة على الوقت بشكل أفضل والتي تعطل ميكروبات الأمعاء.
يجب التعامل مع جميع الفئران في التجربة في نفس البيئة. إحدى الأمور الأساسية التي يجب مراعاتها أثناء جمع عينات البراز هي أن تكون متسقة مع الزمان واليوم والمكان. الفئران هي coprophagic. هذا يعني أنهم يأكلون برازهم أو من حولهم للحصول على العناصر الغذائية الأساسية. لذلك ، لا يمكن جمع البراز من القفص. يجب جمع العينات طازجة ومباشرة من فتحة الشرج. أفضل طريقة هي تدليك الماوس أثناء حمله أو وضع الماوس في حاوية. بالإضافة إلى ذلك ، يوصى بمعالجة العينات في نفس الوقت وتجميدها عند -80 درجة مئوية أثناء انتظار أن تكون جميع العينات جاهزة.
استخراج الحمض النووي حساس للغاية للسحب والمناولة ، لذلك يجب معالجة جميع العينات في نفس الوقت. وثمة اعتبار آخر يتمثل في تجنب التلوث البيئي؛ لذلك ، يجب أن تتم كل خطوة واحدة لا يتم تنفيذها بالضرورة في الغطاء الكيميائي بسبب الكواشف السامة في خزانة السلامة البيولوجية. على الرغم من أن فرص التلوث البيئي منخفضة ولا توجد خطوة للسماح للبكتيريا بالنمو ، إلا أن هذه الطريقة حساسة للغاية ، ويوصى بشدة بتجنب أي تلوث محتمل. بالإضافة إلى ذلك ، سيساعد وزن الكريات على زيادة الاتساق بين العينات. كميزة على المجموعات المتاحة تجاريا ، هذه الطريقة جيدة بشكل خاص لتحقيق تركيزات عالية من الحمض النووي. يتراوح إنتاج الحمض النووي الذي تم الحصول عليه باستخدام هذا البروتوكول بين 0.03 جم و 0.07 جم اعتمادا على وزن حبيبة البراز. وبالمقارنة، يمكن أن تنتج المجموعات التجارية ما بين 0.005 جم إلى 0.05 جم، ولكن مع فرصة أكبر للتشبع محدودة بخطوة الاحتفاظ بالعمود.
خطوة ضرب الخرز مهمة في كسر حبيبات البراز إلى قطع صغيرة حتى يتمكن عامل التحلل من الوصول إلى جميع البكتيريا. إذا لم يتم تنفيذ هذه الخطوة بشكل جيد ، يمكن تفكيك الكريات جزئيا ، ويمكن الوصول إلى عدد أقل من البكتيريا التمثيلية. بالإضافة إلى ذلك ، عند نقل المواد الفائقة ، يكون السحب الصحيح مهما ، لأن حمل جزء من المخزن المؤقت المتبقي من الخطوة السابقة من شأنه أن يغير إنتاجية وجودة الحمض النووي في النهاية.
عند تخفيف العينات لتسلسل جين الحمض النووي الريبوسومي الريبوسومي 16S ، من المهم التصرف بسرعة قبل وضع العينات في الثلاجة. من المهم أيضا خلط العينات جيدا قبل إجراء التخفيفات. تجنب ترك العينات في درجة حرارة الغرفة لفترات طويلة من الزمن. نظرا لأن الأحجام صغيرة ، فإن تجميد العينات في اللوحة قبل شحنها سيساعد على تقليل الخسارة.
يحلل مختبر أرغون الوطني منطقة V4 من جين 16S rRNA. يتم الحفاظ على منطقة V4 بشكل أفضل من المناطق الأخرى ولديها تقدير أفضل للأصناف عالية المستوى13. في حين أن المناطق الأخرى أفضل لتحليل الأنواع سريعة التطور ويمكن أن تساعد في تحديد الجنس أو الأنواع وتمييزها بشكل أفضل ، فإن تلك المناطق تتراكم الطفرات بشكل أسرع من V4.
بمجرد عودة النتائج وتحليلها من قبل أخصائي معلوماتية حيوية مؤهل ، يمكن استخدام البرامج الإحصائية لرسم النتائج ومقارنة المجموعات. من المهم فهم حدود هذه التقنية والنتائج بعد تحليل المعلوماتية الحيوية. كلما انخفض المستوى التصنيفي ، كلما قلت الدقة أو زادت الاختلافات. من الفصيلة إلى العائلة ، وحتى مستوى الجنس يمكن تحليله بموثوقية. ومع ذلك ، فإن التعليقات التوضيحية على مستوى الأنواع ليست دقيقة بهذه الطريقة. تسلسل بندقية ، من ناحية أخرى ، يمكن أن تصل إلى مستوى الأنواع. ومع ذلك ، في حين أنه يمكن أن يوفر المزيد من التبصر في الوظائف البيولوجية للمجتمع ، فإن تسلسل الجينات 16S rRNA لا يزال طريقة دقيقة وفعالة من حيث التكلفة لتحديد التوزيعات التصنيفية للمجتمع الميكروبي15.
باختصار ، تم وصف بروتوكول فعال من حيث التكلفة لتحليل ميكروبات الأمعاء ودراسة ديناميكياتها بأقصى قدر من الدقة التي يمكن أن تساعد في الكشف عن التغيرات الطولية بمرور الوقت وكذلك الاختلافات بين المجموعات.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
ويعلن صاحبا البلاغ أنه لا يوجد تضارب في المصالح.
Acknowledgments
نحن نقدر المساعدة المقدمة من مختبر أرغون الوطني وأخصائيي المعلوماتية الحيوية المتعاونين معنا. يتم دعم هذا العمل من خلال العديد من المعاهد الوطنية للصحة والمنح الداخلية.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.1 mm glass beads | BioSpec Products | 11079101 | |
| 2 mL screw cap tubes | Thermo Fisher Scientific | 3488 | |
| 20% SDS | FisherScientific | BP1311-1 | SDS 20% |
| 96% Ethanol, Molecular Biology Grade | Thermo Fisher Scientific | T032021000CS | |
| Ammonium Acetate (5 M) | Thermo Fisher Scientific | AM9071 | NH4AC 5M |
| B6.129P2(Cg)-Cx3cr1tm1Litt/J | Jackson Laboratory | 005582 | |
| Bullet Blender storm 24 | Next Advance | 4116-BBY24M | Homogenizer |
| Chloroform | FisherScientific | C298-500 | |
| DEPC-Treated Water | Thermo Fisher Scientific | AM9916 | |
| Ethylenediamine Tetraacetic Acid | FisherScientific | BP118-500 | EDTA |
| Foil plate seal | FisherScientific | NC0302491 | |
| Kimwipes-Kimtech 34256 | FisherScientific | 06-666C | |
| MRL/MpJ-Faslpr/J (MRL/lpr) mice | Jackson Laboratory | 000485 | |
| Nanodrop 2000 spectrophotomer | Thermo Fisher Scientific | ND2000CLAPTOP | |
| Phenol: chloroform: isoamylalchohol (25:24:1) | FisherScientific | BP1752I-400 | PCI |
| Scale with 4 decimals | Mettler Toledo | MS205DU | |
| Skirted 96-well plates | Thermo Fisher Scientific | AB-0800 | |
| Sodium chloride | FisherScientific | 15528154 | NaCl |
| Tris Hydrochloride | FisherScientific | BP1757-100 | |
| Vortex | Scientific Industries | SI-0236 |
References
- Lee, Y. K., Mazmanian, S. K. Has the microbiota played a critical role in the evolution of the adaptive immune system. Science. 330 (6012), 1768-1773 (2010).
- Lee, Y. K., Menezes, J. S., Umesaki, Y., Mazmanian, S. K. Proinflammatory T-cell responses to gut microbiota promote experimental autoimmune encephalomyelitis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, Suppl 1 4615-4622 (2011).
- Yeoh, N., Burton, J. P., Suppiah, P., Reid, G., Stebbings, S. The role of the microbiome in rheumatic diseases. Current Rheumatology Reports. 15 (3), 314 (2013).
- Larsen, N., et al. Gut microbiota in human adults with type 2 diabetes differs from non-diabetic adults. PLoS One. 5 (2), 9085 (2010).
- Alam, M. T., et al. Microbial imbalance in inflammatory bowel disease patients at different taxonomic levels. Gut Pathogens. 12 (1), (2020).
- Vieira, S. M., Pagovich, O. E., Kriegel, M. A. Diet, microbiota and autoimmune diseases. Lupus. 23 (6), 518-526 (2014).
- Mu, Q., Zhang, H., Luo, X. M. SLE: another autoimmune disorder influenced by microbes and diet. Frontiers of Immunology. 6, 608 (2015).
- Tektonidou, M. G., Wang, Z., Dasgupta, A., Ward, M. M. Burden of serious infections in adults with systemic lupus erythematosus: a national population-based study. Arthritis Care & Research. 67 (8), 1078-1085 (2015).
- Mu, Q., et al. Control of lupus nephritis by changes of gut microbiota. Microbiome. 5 (1), 73 (2017).
- Panek, M., et al. Methodology challenges in studying human gut microbiota - effects of collection, storage, DNA extraction and next generation sequencing technologies. Scientific Reports. 8 (1), 5143 (2018).
- Fiedorová, K., et al. The impact of dna extraction methods on stool bacterial and fungal microbiota community recovery. Frontiers in Microbiology. 10, 821 (2019).
- Gerasimidis, K., et al. The effect of DNA extraction methodology on gut microbiota research applications. BMC Research Notes. 9, 365 (2016).
- Bukin, Y. S., et al. The effect of 16S rRNA region choice on bacterial community metabarcoding results. Scientific Data. 6 (1), 190007 (2019).
- Galloway-Peña, J., Hanson, B.
- Sharpton, T. J. An introduction to the analysis of shotgun metagenomic data. Frontiers in Plant Science. 5, 209 (2014).
