September 24th, 2010
우리는 myelin를 공개하고 나머지 축삭 - 풍부한 자료의 추출 다음 비 axonal 구조를 lyse에 hypotonic 매체 신경 fascicles과 부화 해부에 따라 성인 쥐의 좌골 신경에서 axoplasm 절연을위한 프로토콜을 보여줍니다.
이 절차의 전반적인 목표는 말초 신경에서 순수한 축삭 세포질 또는 외부 질을 분리하는 것입니다. 이것은 먼저 좌골 신경을 해부함으로써 이루어집니다. 절차의 두 번째 단계는 신경에서 결합 조직을 제거하고 슬레를 분리하는 것입니다.
절차의 세 번째 단계는 긴장성 배지에서 신경 슬레의 짧은 부분을 배양하는 것입니다. 절차의 마지막 단계는 등장성 용액 원심분리 및 opsm milian에서 배양하는 것입니다. 궁극적으로, 웨스턴 블롯 분석을 통해 축삭 성분에 대한 높은 수준의 농축을 보여주는 결과를 얻을 수 있습니다.
안녕하세요, 제 이름은 저, 엘르 그리고 저는 로젠바움입니다. 우리는 과학 연구소에 기반을 둔 생물 화학과 Mike F 노동부 교수의 실험실에서 왔습니다. 오늘 우리는 Oxy Opat Mesylation의 새로운 기술을 대표 할 것입니다.
이 기술의 주요 장점은 말초 신경의 수동 압착 OIS와 같은 기존 방법보다 우수합니다. 즉, 이 절차는 혈청을 감소시키고 글로스 오염이 축삭 내용물에 도달한다는 것입니다. 우리는 좌골 신경 손상 후 D 기반 역신호 전달을 탐색하기 위해 op PLA 메틸화에 이 새로운 기술을 사용했습니다.
시작하겠습니다. 안락사된 8주에서 10주 된 위스타쥐 두 마리 중 한 마리를 옆으로 눕혀 해부 매트에 올려놓고 좌골 신경의 원위 부분에 직접 접근할 수 있도록 합니다. 허벅지 중간 피부를 면도하고 70% 에탄올로 철저히 교체하십시오.
가위를 사용하여 허벅지 피부를 잘라냅니다. 대퇴 이두근과 표재성 둔근 사이의 지방과 결합 조직을 조심스럽게 잘라냅니다. 집게를 사용하여 좌골 신경의 노출된 부위를 들어 올려 제거합니다.
제거된 섹션의 길이는 약 1.5cm입니다. 마이크로 원심분리 튜브에 프로테아제 억제제가 포함된 얼음처럼 차가운 2X PBS 500마이크로리터로 신경을 전달합니다. 튜브를 얼음 위에 두십시오.
쥐의 반대쪽과 두 번째 쥐의 양쪽에서 해부 절차를 반복합니다. 페트리 접시의 바닥을 페이스트 피펫으로 긁고 실온에서 2ml를 채웁니다. 프로테아제 억제제와 함께 2 X PB를 가리킵니다.
해부 현미경으로 하나의 신경을 접시로 옮깁니다. 가는 집게를 사용하여 신경에서 epi nearium을 당겨서 제거하고 접시에 faciles를 남겨 둡니다. faciles를 서로 조심스럽게 분리하고 접시 바닥을 분리하십시오.
개별 fales는 흐려지고 용액 표면에 떠 있습니다. 분리된 fales를 프로테아제 억제제가 포함된 0.2 X PB s의 500마이크로리터가 들어 있는 마이크로 원심분리 튜브로 즉시 옮깁니다. 슬링을 얼음 위에 보관하십시오.
연습을 통해 튜브에 남아 있는 좌골 신경통에서 슬레를 분리하고 수집합니다. 상피신경(epineurium)의 제거 및 SLES의 분리. 신경당 10분 이상 걸리지 않아야 합니다.
얼음에서 분리된 SLES가 들어 있는 튜브를 제거합니다. 실온에서 2시간 동안 배양하여 미엘린과 이가 아닌 축삭 구조를 방출합니다. 각 세탁에 대해 슬레를 세척하십시오.
겸자를 사용하여 슬레를 부드럽게 들어 올리고 프로테아제 억제제가 포함된 1mL의 2X PB s가 들어 있는 새 튜브로 옮깁니다. 로커의 튜브를 5분 동안 흔듭니다. 세탁 후 이런 식으로 SLES를 세 번 세척하십시오.
SLES를 비어 있는 새 einor 튜브로 옮겨 과도한 액체를 제거한 다음 프로테우스 억제제가 포함된 XPBS 300마이크로리터가 들어 있는 튜브로 옮기고 실온에서 20-30분 동안 배양합니다. opsm을 용리하기 위해 더 높은 염 농도는 추가 단백질체학 절차를 방해합니다. 10, 000 치즈에 근막을 4 섭씨 온도에 10 분 동안 청결한 einor 관으로 상등액 떨어져 피펫 조직과 세포 파편을 펠릿으로 만들기 위하여 원심 분리하십시오.
상등액이 얻어졌습니다. 명확해야 합니다. 분광 광도계를 사용하여 단백질 농도를 측정합니다.
200-250 마이크로그램의 단백질을 얻어야 합니다. op plasm 제제는 섭씨 영하 80도의 부분 표본에 최대 6개월 동안 보관합니다. 해동 및 동결 주기를 피하십시오.
다음은 이 프로토콜에 표시된 대로 수동 압착 방법으로 분리된 op plasm과 분리된 opsm 샘플을 비교하는 western block입니다. 알부민과 GFAP의 감소된 수치는 각각 혈액 단백질과 신경교세포 오염을 나타냅니다. 대조적으로, 축삭 튜불린 베타 3은 이 제제에서 풍부하게 함유되어 있어 높은 수준의 축삭 단백질을 나타냅니다.
이 모든 비디오를 시청한 후에는 사토 신경을 해부하는 방법과 Paco를 적절하게 분리하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 그게 다야. 지켜봐 주셔서 감사드리며 실험에 행운을 빕니다.
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이 기사는 성체 쥐 시아틱 신경에서 축삭질을 분리하는 자세한 프로토콜을 제시합니다. 이 방법은 신경 속맥을 해부하고 저삼투압 매체에서 배양하여 미엘린을 효과적으로 방출하고 비축삭 구조를 용해시켜 축삭 농축 물질을 추출하는 것을 포함합니다.
Isolation of pure axonal cytoplasm enables mechanistic de-risking in target validation for neurodegenerative disease programs. This protocol supports predictive confidence by reducing biological noise from non-axonal contaminants in peripheral nerve models. It provides a disease-relevant system for studying axonal signaling pathways relevant to neurotherapeutic discovery.
The method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to preclinical validation of axonal modulators.