Name: Ex Vivo 신경 생리학을위한 쥐 좌골 신경의 제조 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-07-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: 배우세요 쥐 좌골 신경을 이용한 ex vivo 전기생리학 기법으로 신경생리학 현상을 정밀 관찰하는 방법입니다. 이 프로토콜은 생체 간섭을 최소화하여 반복 가능한 신경 데이터를 제공합니다.

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저자들은 GlaxoSmithKline Pharmaceuticals의 Gerald Hunsberger 박사, King of Prussia, PA, USA, Galvani Bioelectronics (Stevenage, UK)가 원래의 신경 준비 기술을 우리와 공유했음을 인정합니다. 저자들은 Robert Toth가 Dual-Chamber 신경 목욕 디자인을 인정했습니다. 저자들은 EPSRC (Engineering and Physical Sciences Research Council)의 HTCA(Healthcare Technologies Challenge Awards) 보조금의 자금을 인정합니다. 저자들은 Adrien Rapeaux (EP / L016796 / 1)에 자금을 지원하기 위해 Imperial College London의 고성능 임베디드 및 분산 시스템 센터 (HiPEDS CDT)를 인정합니다. Adrien Rapeaux는 현재 영국 치매 연구소, 케어 연구 및 기술 센터에서 자금을 지원하고 있습니다. 저자들은 JoVE 비디오 기사를 제작하는 동안 실험과 동물 조직에 대한 접근에 대한 도움을 얻기 위해 생명 공학과에있는 임페리얼 칼리지의 잭 베일리 (Zack Bailey)를 감사하게 인정합니다.

모든 동물 관리 및 절차는 동물 (과학 절차) 법 (1986)에 따라 영국 내무부에서 발행 한 적절한 라이센스에 따라 수행되었으며 임페리얼 칼리지 런던의 동물 복지 및 윤리 검토위원회의 승인을 받았습니다.
1. 완충액의 제조
참고: 프로토콜의 이 부분은 1x 농도에서 수정된 Krebs-Henseleit Buffer (mKHB)의 제조와 관련된 최종 단계를 제외하고는 나머지 프로토콜에 앞서 잘 수행될 수 있습니다.
<ol><li>1 MCaCl2 원액 준비<ol>
<li>깨끗한 100 mL 비이커에CaCl2 이수화물 14.701 g을 첨가하십시오. ~ 75 mL의 탈이온수를 첨가하고 소금이 완전히 용해 될 때까지 저어줍니다.</li>
		<li>용액을 100 mL 점진적 플라스크로 옮기고 100 mL 부피에 도달할 때까지 탈이온수를 첨가한다. 용액을 병에 옮기고 4 °C의 냉장고에 보관하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>10x 농축 mKHB 재고 준비<ol>
<li>66.03 g의 염화나트륨(NaCl), 3.57 g의 염화칼륨(KCl), 1.63 g의 인산이수소칼륨(KH2PO4) 및 1.44 g의 황산마그네슘을 2 L 비이커에 첨가한다.</li>
		<li>비이커에 ~ 750 mL의 탈이온수를 넣고 염이 용해 될 때까지 저어줍니다 (바닥에 작은 소금 결정이 남아있을 수 있음). 25 mL의 1 MCaCl2 원액을 첨가하고(단계 1.1) 교반하는 단계; 이것이 마지막으로 첨가 된 소금인지 확인하십시오.</li>
		<li>용액을 1 L 눈금 플라스크로 옮기고 탈이온수를 첨가하여 총 부피 1 L에 도달하고 용액을 1 L 병으로 옮긴다. 농축된 10x mKHB를 냉장고에 4°C에서 보관한다. 참고: 집중된 mKHB 재고는 교체하기 전에 약 1개월 동안 보관할 수 있습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>해부 페트리 접시 준비 (코팅)<ol>
<li>깨끗한 유리 페트리 접시 (직경 120 mm)를 조심스럽게 세척하고 건조시켜 코팅을 준비하십시오.</li>
		<li>컨포멀 알콕시 코팅의 사용 및 경화에 대한 제조업체의 지침에 따라 원하는 두께에 도달 할 때까지 등각 코팅 혼합물을 조심스럽게 접시에 부어 페트리 접시의 바닥을 ~ 3-5mm의 코팅으로 코팅하십시오.</li>
		<li>코팅을 터치에 단단해질 때까지 60°C의 오븐에서 경화시킨다. 해부 페트리 요리가 준비되었습니다. 참고 : 각 사용 후 접시를 부드럽게 청소하면 교체가 필요하기 전에 코팅이 수년간 지속되도록합니다. 코팅을 교체 할 때 새 코팅을 적용하기 전에 모든 코팅 물질을 제거해야합니다. 이 프로토콜에 사용된 등각 알콕시 코팅(Table of Materials)은 일년보다 짧은 저장 수명을 갖는다는 점에 유의한다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 해부 전 준비
참고: 이 단계는 실험을 시작합니다. 아래 단계는 같은 날에이 순서로 수행되어야합니다.
<ol><li>1x mKHB 준비<ol>
<li>완충제를 위해 깨끗한 2 L 비이커를 준비하십시오. 200 mL의 10x mKHB 스톡을 2 L 비이커로 옮깁니다. 2.1 g의 탄산나트륨(NaHCO3) 및 0.99 g의 무수 덱스트로스(D-글루코스)를 2 L 비이커에 첨가한다.</li>
		<li>비이커에 약 1L의 탈이온수를 첨가한다. 소금이 완전히 용해 될 때까지 저어줍니다. 용액을 2 L 눈금 플라스크로 옮기고 탈이온수를 첨가하여 총 부피가 2 L에 이른다.</li>
		<li>용액을 37°C로 설정된 온도로 가열 교반기 상에 놓인 2 L 유리 병으로 옮긴다. 참고 : 더 작은 가열 교반기는 종종 물로 가득 찬 큰 용기의 열 관성으로 인해 목표 37 ° C 온도에 도달 할 수 없습니다. 교반하면서 병의 내용물이 37 °C에 도달하도록 온도를 위쪽으로 조정하십시오. 실험 중 온도를 모니터링하고 오버슛 시 설정 온도를 낮춥니다.</li>
		<li>온도계를 2L 병에 넣고 온도를 모니터링하고, 그리퍼를 사용하여 온도계가 교반 벼룩에 의해 영향을 받지 않도록 합니다. 완충액을 최소 30분 동안 카르보겐으로 통기시켜 용액을 산소화시킨다. 이것은 pH를 7.4로 설정한다. pH를 측정기로 측정하여 7.4의 0.1 pH 단위 (37°C에서) 내에 있는지 확인하십시오. 참고: pH를 7.4로 조정하려면 필요할 때 염산 또는 수산화나트륨을 사용하십시오.</li>
		<li>두 개의 15 mL 원심분리 튜브와 100 mL 병을 mKHB로 채우고 얼음 위에 올려 놓고 식히십시오. 참고 : 원심 분리 튜브와 병은 오토 클레이빙없이 각 실험 후에 청소하고 재사용 할 수 있습니다.</li>
		<li>실험의 후기 부분을 위해, 연속 교반으로 37°C에서 카르보겐으로 2 L 병 내의 완충액을 계속 통기시킨다. 주: 카보겐의 감독되지 않은 사용은 누출 시 가스 흐름을 차단하는 자동 시스템이 없는 경우 위험할 수 있습니다. 자동화 된 센서 및 전자 차단 밸브가이를 완화 할 수 있습니다. 그렇지 않으면 해부가 다른 방에서 발생하는 경우 장비를 감독하기 위해 사람을 남겨 두어야합니다. 모든 경우에 산소 센서를 설정 근처에 사용하여 주변 산소 농도가 25% 이상으로 상승할 때 작업자에게 경고해야 합니다. 가능하면 능동적 인 환기가있는 방을 사용하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>신호 수집 장치, 저잡음 전치 증폭기, 라인 노이즈 필터 및 오실로스코프를 켜서 기록 및 자극을 받아 온도 안정화에 충분한 시간을 허용합니다.</li>
	<li>모든 전기 기록 장비가 올바르게 구성되었는지 확인하십시오.<ol>
<li>저잡음 프리앰프를 AC 커플링 입력으로 설정하고, 입력 대역 통과 필터를 10년당 6dB 롤오프로 설정하고, 하이 패스 및 저역 통과 필터의 경우 컷오프 주파수를 각각 30Hz 및 3kHz로 설정합니다.</li>
		<li>저잡음 전치 증폭기의 이득을 100으로 설정합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 동물 마취 및 안락사
주: 250 내지 330 g 사이의 암컷 래트(표 자료)를 연구에 사용하였다.
<ol><li>수술 도구와 소모품 준비 : 12cm 직선 가위 (무딘); 2mm 절삭 에지 각진 스프링 가위; 4cm 미세 가위, 날카 롭거나 반 날카로운; #7 듀몬트 포셉; 45 ° 각도의 미세 포셉과 6-0 봉합 실크 또는 실.</li>
	<li>쥐를 마취 용기 또는 챔버에 넣으십시오. 산소와 마취 디퓨저를 용기에 연결하십시오. 마취제 (이소플루란) 농도를 3.5 %로 설정하고 약 10 분 동안 또는 동물이 우뢰 반사 상실과 같은 마취 징후를 보일 때까지 기다리십시오.</li>
	<li>쥐가 마취의 징후를 보인 후, 발가락 꼬집음 금단 반사 검사로 의식 상실을 확인하십시오. 발가락 철수가없는 경우에만 진행하십시오. 그렇지 않으면 디퓨저의 모든 연결 및 마취 수준을 확인하고 3.2 단계를 반복하십시오.</li>
	<li>동물을 용기에서 꺼내어 자궁 경부 탈구를 진행한 다음 사망 확인을 위해 대퇴골 동맥을 절개하십시오.</li>
</ol>4. 해부 프로토콜
참고 : 배꼽이있는 동물을 해부 테이블 위에 놓습니다. 두 다리에 대해 다음 단계를 반복합니다. 일반적으로 오른쪽 다리가 먼저 해부됩니다.
<ol><li>엄지, 검지 손가락 및 가운데 손가락 사이에 발목을 단단히 잡고 12cm 직선 무딘 가위를 사용하여 종아리 힘줄을 절단하십시오.</li>
	<li>미세한 날카로운 가위로 다리 뒤쪽의 종아리 힘줄에서 척추 바닥까지 피부를 절개하여 아래의 근육 조직을 해부하지 않도록주의하십시오.</li>
	<li>미세한 포셉과 미세한 가위를 사용하여 좌골 신경이 노출 될 때까지 다리 뒤쪽 중간 근처의 근육층을 조심스럽게 절개하십시오. 좌골 신경이 보이 자마자 신경이 건조하지 않도록 얼음처럼 차가운 mKHB를 사용하여 공동에 수분을 공급하십시오.</li>
	<li>지혈제를 사용하여 양쪽의 피부 플랩을 당기고 절개를 열어 두어 더 미세한 해부 작업을 수행하십시오. 종아리 힘줄 절개 위치에서 시작하여 미세한 가위로 다리의 내측 측의 근육을 방해하여 신경을 풀어줍니다. 얼음처럼 차가운 mKHB로 지역의 수분 수준을 계속 유지하십시오.</li>
	<li>다리를 위로 움직이는 동안 신경이 노출되면 위에 놓인 근육 조직을 해부하십시오. 척추에 더 가까운 신경을 결합 조직에서 풀어 척추 구개열에 도달 할 때까지 신경에 꼬임이있는 지점에 도달하십시오. 이 단계에서 속도가 필수적이므로 아직 신경을 청소하려고 시도하지 마십시오.</li>
	<li>미세한 가위로 가능한 한 척추에 가깝게 신경을 절단하십시오. 해부를 쉽게하려면 포셉을 사용하여 발목 근처의 신경 끝을 매우 부드럽게 당깁니다. 중간에 신경을 꼬집지 말고 끝 만 꼬집습니다. 신경 소동을 당기지 마십시오. 선택 사항 :이 시점에서 시간이 허락하면 신경의 양쪽 끝을 봉합하여 생존력을 유지할 수 있습니다. 손상을 방지하기 위해 취급을 최소한으로 유지하십시오. 시간이 충분하지 않은 경우(4.5단계 참조) 이 단계를 건너뛰고 나중에 5.2단계를 수행합니다.</li>
	<li>해부된 신경을 mKHB로 채워진 15 mL 원심분리 튜브에 넣고(단계 2.1.5), 튜브를 닫고, 세척 절차가 시작될 때까지 튜브를 다시 얼음 위에 놓는다.</li>
	<li>다른 다리에 대해 4.1-4.7단계를 반복합니다. 이상적으로, 각 신경은 조직 생존력을 극대화하기 위해 추출하는 데 5-10 분이 걸립니다.</li>
</ol>5. 신경 청소 절차
<ol><li>코팅 된 페트리 접시를 차가운 산소화 된 mKHB로 대략 반쯤 채 웁니다. 해부 된 좌골 신경 중 하나를 접시에 넣고 신경의 양쪽 끝을 접시에 고정하여 신경이 꼬임, 비틀림 또는 비틀림없이 똑바로 보이도록하십시오. 신경을 가능한 한 끝에 가깝게 고정시킵니다.</li>
	<li>6-0 실크 봉합사 또는 미세 실을 사용하여 신경의 양쪽 끝 주위에 이중 매듭을 묶어 시토졸이 버퍼로 누출되는 것을 방지합니다. 매듭을 곤충 핀 바로 옆에 놓으면 신경 중심에 더 가깝게 배치하면 신경 조직에서 버퍼로 누출되는 것을 방지 할 수 있습니다. 신경이 이전에 결찰 된 경우이 단계를 수행하지 마십시오.</li>
	<li>정밀 현미경과 2mm 각도의 스프링 가위를 사용하여 신경에서 지방, 혈관 및 근육 조직을 제거합니다. 자극 및 기록 프로토콜에 사용되지 않을 신경 가지를 가지치십시오.<ol>
<li>청소 5 분마다 버퍼를 신선한 냉장 산소화 mKHB로 교체하십시오. 미세한 포셉을 사용하여 결합 조직, 지방 및 혈관을 당겨 해부를 용이하게하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>신경을 신선한 산소화 냉장 mKHB로 채워진 수송 튜브에 다시 넣고 튜브를 얼음 위에 놓습니다.</li>
</ol>6. 장비 설정
참고: 실험을 수행하는 데 사용되는 장비 설정은 그림 1에 설명되어 있습니다. 간략하게, 그것은 이중 구획 신경 욕조, 가열 교반기에 놓인 2 L 병, 완충 폭기를위한 탄수화물의 공급원, 그리고 완충액이 병에서 욕조로 흐를 수 있도록하는 튜빙, 그리고 연동 펌프를 사용하여 병으로 다시 구성됩니다. 욕조는 플렉시 글라스로 가공하거나 방수 재료로 3D 인쇄 할 수 있습니다. 그것은 약 2cm의 깊이를 가지고 있으며, 욕조의 두 챔버를 분리하는 파티션은 두 챔버 모두에서 말초 신경의 나사 결합을 허용하는 직경 1.5mm 구멍을 특징으로합니다. 하나의 챔버는 크고 길이가 4 또는 5cm 이상이어야하며 버퍼로 채워집니다. 다른 챔버는 길이가 3cm 이상이어야하며 실리콘 또는 미네랄 오일로 채워집니다. 욕조는 관류, 온도 및 pH의 제어를 저하시킬 수 있으므로 너무 크게 만들어서는 안됩니다. 연구되는 신경 조직의 크기에 따라 다른 목욕 크기가 필요할 수 있습니다.
<ol><li>깨끗한 이중 챔버 신경 욕조를 준비하십시오 (설계 사양은 보충 파일 참조). 표준 실험실 보스 헤드와 그리퍼를 사용하여 가열 교반기에 놓인 2L 병 수준 아래에 신경 욕조를 놓습니다. 욕조의 배수구를 연동 펌프 입구에 연결하십시오.</li>
	<li>연동 펌프의 출구를 2 L 버퍼 병으로 이어지는 튜브에 연결하십시오. 욕조 입구를 조절 가능한 유량 밸브가있는 튜브에 연결하고 튜브를 2L 병 안에 넣으십시오. 중간 출구에 연결된 주사기가있는 삼방 밸브를 사용하여 중력 보조 버퍼 유입을위한 사이펀으로 튜브를 프라이밍하는 데 도움을줍니다.</li>
	<li>버퍼가 그 안으로 흐를 때까지 주사기를 그려서 사이펀을 프라임합니다. 욕조에 들어가는 버퍼의 유량이 ~ 5-6 mL·min-1이 되도록 밸브를 구성하십시오. 목욕을 채우기 위해 초기에 흐름을 늘릴 수 있습니다. 목욕 완충 수준이 배수구에 도달하면 신경을 욕조에 넣으십시오.</li>
	<li>곤충 핀을 사용하여 버퍼가 채워진 욕조 챔버의 모서리에 신경의 끝을 고정하십시오. 45 ° 각도의 미세 포셉을 사용하고 끝에서만 신경을 꼬집고 두 목욕 챔버 사이의 파티션에있는 구멍을 통해 자극받을 신경을 조심스럽게 실을 꿰매십시오.</li>
	<li>곤충 핀으로 욕조의 오일 챔버에 신경의 다른 쪽 끝을 고정시켜 신경이 늘어나지 않고 똑바로 펴지고 꼬임과 비틀림이 없도록하십시오. 실리콘 그리스를 사용하여 버퍼 챔버에서 오일 챔버로 버퍼 누출을 방지하기 위해 씰을 만듭니다. 오일 챔버를 실리콘 또는 미네랄 오일로 채 웁니다.</li>
	<li>Ag/AgCl 레코딩 전극 후크를 오일 배스 챔버에 놓고 보스 헤드와 그리퍼를 사용하여 고정합니다. 기름 욕조에서 신경의 일부를 후크 위로 떨어 뜨리지 않고 신경 taut을 당기지 마십시오. 신경을 꼬집지 마십시오; 각진 포셉을 사용하여 꼬집지 않고 신경을 들어 올립니다.</li>
	<li>신경을 이동시킨 후 누출이 관찰되는 경우 실리콘 그리스 씰을 조정하거나 수리하십시오.</li>
	<li>기준 Ag/AgCl 전극을 증폭기 접지에 연결하고 실험실 그리퍼를 사용하여 전극을 고정하여 버퍼가 채워진 욕조 챔버에 배치합니다.</li>
</ol>7. 욕조에서 신경에 전극 이식
<ol><li>기준21에 따라 자극을 위한 클린 신경 커프 전극을 준비한다. 전극을 버퍼 충전된 배스 챔버 내에 놓는다. 무딘 팁이나 각진 팁이있는 포셉 또는 미세한 핀셋을 사용하여 욕조에서 전극을 열어 커프 내부를 적시십시오.</li>
	<li>거품이 남아 있으면 미세한 주사기를 사용하여 욕조에서 버퍼를 뽑아 커프에서 거품을 강제로 꺼냅니다. 신경 아래에 핀셋을 넣고 부드럽게 커프를 열고 신경 아래로 밀어 넣으십시오. 신경 주위의 커프를 닫고 신경의 꼬임이나 비틀림을 피하십시오.</li>
	<li>자극 전극을 자극기에 연결하고 테이프로 자극 전극 리드를 고정하십시오. 전류 복귀 전극을 자극기에 연결하고 리드를 테이프로 고정하십시오. 사각형 백금 시트를 전류 복귀 전극으로 사용하는 경우, 시트를 욕조의 신경에서 멀리 떨어 뜨립니다.</li>
</ol>8. 자극 및 기록
<ol><li>자극기 TTL 신호 출력을 오실로스코프의 채널 4에 연결하면 오실로스코프를 트리거하는 데 사용됩니다. 오실로스코프 화면에서 트리거 채널 탭을 누르고 채널 4를 트리거 채널로 지정합니다. 레벨 노브를 사용하여 트리거 레벨 을 1V로 설정합니다.</li>
	<li>오실로스코프에서 시간 분해능을 1ms/분할로, 전압 분해능을 10mV/분할로 설정합니다. 트리거 참조를 제 시간에 집중시키고 트리거 레벨을 1V로 설정합니다. 참고: 사용자 지정 자극기를 사용하는 경우 8.3~8.6단계를 수행합니다( 자료 표 참조). MATLAB 소프트웨어 및 장치 드라이버가 사용자 지정 신경 자극기(21)를 위해 온라인으로 자유롭게 제공되는 명령을 사용하여 실험실 컴퓨터에 설치되었다고 가정한다. 그렇지 않으면 상업적으로 이용 가능한 자극기를 대안으로 사용하기 위해 제조업체의 지침을 따르십시오.</li>
	<li>자극기를 실험실 컴퓨터에 연결합니다. 배터리 전원 공급 장치를 전원 입력에 연결하여 자극기를 켭니다. 실험실 컴퓨터에서 MATLAB 소프트웨어를 시작합니다.</li>
	<li>사용자 지정 MATLAB 스크립트 인 HFAC_4ch_Stimulator_Initialization.m (재료 테이블)을 실행합니다. 주: 컴퓨터와 자극기 사이의 USB 통신 케이블이 녹색으로 깜박입니다. 그렇지 않으면 구성 오류가 발생하고 전원 공급 장치 및 연결을 확인해야 합니다.</li>
	<li>MATLAB 스크립트를 엽니다: HFAC_4ch_Monophasic_Stimulation.m (재료 테이블). MATLAB 스크립트를 직접 편집하여 다음과 같은 파라미터를 설정합니다: 자극기 펄스 진폭 = -300 μA, 자극기 펄스 폭 = 300 μs, 자극기 펄스 수 = 10 및 펄스 사이의 자극기 시간 = 1 초.</li>
	<li>MATLAB 소프트웨어에서 실행 을 클릭하여 자극 프로토콜을 시작합니다.</li>
</ol>

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이 연구에서, 우리는 생체외 신경 생리학을 위해 쥐 좌골 신경을 준비하기위한 프로토콜을 기술했다. 조직 추출은 동물 취급, 마취, 도태 및 해부를 포함하여 약 30 분이 소요되며, 신경 청소, 욕조 배치 및 전극 이식은 녹음을 시작하기 전에 추가 30 분이 필요합니다. 완충액 준비는 30 분 안에 수행 할 수 있지만 나머지 실험보다 앞서 수행 할 수 있습니다. 이러한 유형의 준비 및 실험은 과거 7,12에서 동일한 조직 유형에 대해 유사한 완충액을 사용하여 사용 및 기술되었습니다. 그러나 저자의 지식에 따르면, 버퍼 준비, 해부, 장비 설정 및 후속 기록에 대한 설명이 동일한 문서에 제공된 것은 이번이 처음입니다.
이 프로토콜은 시험관 내 또는 생체내 맥락에서 가능하지 않을 신경생리학에서 매우 다양한 실험을 가능하게 할 수 있다...

실리코에서 모델링된 바와 같은 근본적인 신경 기능에 대한 현재의 이해는 여러 측면에서, 특히 소마, 축삭돌기 및 덴드라이트의 외부 신경 조직 구획화의 효과와 관련하여 결여되어 있다. 축삭-미엘린 상호작용은 종래의 전기 자극 반응을 적절히 포착하는 MRG1(포유동물 신경에 대한)과 같은 상세한 계산 신경 모델조차도, 고주파 블록 이월오버2 또는 2차 발병 반응3과 같은 다른 실험적으로 관찰된 거동을 포착하지 못한다는 사실에 의해 입증된 바와 같이 여전히 잘 이해되지 않는다.
이 프로토콜은 표준화된 준비 프로토콜을 사용하여 신경을 분리하고, 그 환경을 제어하고, 생체내 맥락에서 생체외 맥락으로 이를 제거하기 위해 표준화된 준비 프로토콜을 사용하여 급성 소형 실험실 동물 모델에서 신경 수준에서 신경 생리학적 과정을 효율적으로 조사하는 방법을 제공한다. 이것은 신경 거동을 변경하고 측정 결과 또는 그들의 해석 4,5을 혼란스럽게하기 위해 생체 내 신경 자극 프로토콜에 의해 사용되는 다른 신체 과정 또는 마취제를 방지 할 것이다. 이를 통해 제대로 이해되지 않는 신경 조직에 특유한 효과에만 초점을 맞추는보다 현실적인 모델을 개발할 수 있습니다. 이 프로토콜은 또한 새로운 신경 자극 및 기록 전극 재료 및 기하학뿐만 아니라 고주파 블록 2,3과 같은 새로운 자극 패러다임을 위한 테스트베드로도 유용하다. 이 기술의 변형은 이전에 엄격하게 조절된 조건6에서 신경 생리학을 연구하기 위해, 예를 들어, 이온 채널 역학 및 특성 또는 국소 마취제의 효과를 측정하기 위해 사용되었다7.
이 기술은 급성 생체내 작은 동물 실험(8)과 같은 대안에 비해 몇 가지 이점을 제공한다. 이 기술은 조직이 신체에서 추출됨에 따라 마취 깊이를 유지할 필요성을 없애고 마취 산광기, 산소 농축기 및 가열 패드와 같은 필요한 장비의 양을 줄입니다. 이를 통해 실험 프로토콜이 단순화되어 실수 위험이 줄어듭니다. 마취제가 잠재적으로 신경 기능4을 변화시킬 수 있기 때문에, 이 기술은 이러한 마취 화합물의 부작용에 의해 측정이 혼동되지 않도록 보장한다. 마지막으로,이 기술은 마비에 의해 마취 된 동물을 죽일 수있는 테트로도톡신과 같은 신경 독성 화합물의 효과를 연구 할 때 급성 생체 내 실험보다 더 적절합니다.
말초 신경 절편은 기록된 신경 신호를 담당하는 섬유가 어떠한 소마도 포함하지 않을 가능성이 높기 때문에 독특한 생체외 시스템이다. 이들은 일반적으로 운동 뉴런, 척추 및 척추 옆의 등쪽 뿌리 신경절의 감각 뉴런에 위치하기 때문에 포유류 신경의 한 부분의 준비는 양쪽 끝에서 열린 이온 채널이있는 관형 막의 집합체로 대략적으로 모델링 될 수 있습니다9. 신진대사는 조직 해부(10)시에 축삭돌기에 위치한 미토콘드리아에 의해 유지된다. axolemma의 열린 끝의 봉합은 추출 후 그들을 닫는 것이 권장되므로 정상적인 신경 기능에 필수적인 멤브레인 전체에 걸쳐 기존의 이온 구배를 유지하는 데 도움이됩니다.
신체 외부의 조직 항상성을 유지하려면 몇 가지 환경 변수를 엄격하게 통제해야합니다. 이들은 온도 11, 산소화12, 삼투압, pH13,14 및 신진 대사를 유지하기 위해 포도당에 대한 접근입니다. 이 프로토콜을 위해, 접근법은 산소와 이산화탄소의 혼합물로 연속적으로 폭기된 변형된 크렙스-헨셀릿 완충액15,16(mKHB)을 사용하는 것이다. mKHB는 예를 들어 생체외 실험에서 신체 외부의 해부된 조직을 보존하는데 사용되는 심흉막 완충액(6,17)의 패밀리에 있다. 이러한 완충제는 헤모글로빈, 항생제 또는 항진균제를 함유하지 않으며, 따라서 제한된 시간 동안 소량의 조직을 포함하는 제제에만 적합하다. pH 조절은 탄산염과 이산화탄소 산화 환원 쌍으로 달성되었으며, pH 평형을 유지하기 위해 이산화탄소로 완충액의 일정한 폭기가 필요했습니다. 이는 신경 세포 기능(18)을 변형시킬 수 있는 HEPES와 같은 다른 일반적인 완충제를 사용하는 것을 피하기 위함이다. 완충제를 산소화하고 pH 조절을 제공하기 위해, 카르보겐(95% O2, 5%CO2)이라고 불리는 산소 중의 5% 이산화탄소의 혼합물이 사용되었다. 완충 용기의 온도 조절을 위해 가열 교반기를 사용하고, 버퍼를 신경 배쓰를 통해 관류시킨 다음, 출발 용기로 재순환시켰다. 전형적인 실험은 신경이 생존력을 잃고 더 이상 건강한 조직을 대표하기위한 자극에 충분히 반응하지 않기 전에 6-8 시간 동안 지속됩니다.
신호-대-잡음비를 최적화하기 위해, 은-염화물 전극이 기록에 사용되었고, 이는 앞서 설명된 방법19에 따라 제조되었다. 자극을 위해, 상용 기성품 백금 커프 전극과 맞춤형 전도성 폴리머 커프 전극의 조합이 사용될 수 있다. 전도성 폴리머 커프 전극은 현저하게 더 높은 전하 용량을 가지며, 이는 높은 진폭 파형(20)을 사용하여 신경을 자극할 때 유용하다.
이 프로토콜에 사용된 자극기는 앞서 설명되었다(20). 이를 사용할 문서, 설계 파일 및 소프트웨어 스크립트는 공개적으로 입수가능하다(21). 이 프로토콜을 실행하기 위해 다른 자극기를 사용할 수 있습니다. 그러나 맞춤형 자극기는 고주파 대체 전류 (HFAC) 블록2,20을 사용할 수있어 더 넓은 범위의 신경 생리학 실험을 가능하게합니다. HFAC 블록을 사용하려면 신경 손상을 피하기 위해 전도성 엘라스토머 커프스를 사용하는 것이 좋습니다. 전도성 엘라스토머 신경 커프는 전도성 성분으로서 전도성 엘라스토머로부터 생산되고 절연체로서 폴리디메틸실록산(22)으로서 부드럽고 완전 폴리머 전극 어레이이다. 장치는 종래의 레이저 미세제조 기술을 사용하여 양극성 구성으로 제조되었다.

<table><tbody><tr><td>1 L 유리병</td><td>VWR International Ltd</td><td>215-1595</td><td>붕규산 유리</td></tr><tr><td>1 L 유리 졸업 플라스크</td><td>VWR International Ltd</td><td>612-3626</td><td>붕규산 유리</td></tr><tr><td>2 L 유리병</td><td>VWR International Ltd</td><td>215-1596</td><td>붕규산 유리</td></tr><tr><td>2 L 유리 졸업 플라스크</td><td>VWR International Ltd</td><td>BRND937254</td><td>붕규산 유리</td></tr><tr><td>어댑터, 공압, 8mm - 1/4 NPT</td><td>RS UK</td><td>536-2599</td><td>산소 호스와 가스 분산 튜브 사이의 푸시-투-핏 직선 어댑터</td></tr><tr><td>알콕시 컨포멀 코팅</td><td>Farnell</td><td>1971829</td><td>ACC15 페트리 접시 해부용 알콕시 컨포멀 코팅</td></tr><tr><td>마취제</td><td>Chanelle</td><td>N/A</td><td>이소플루란 흡입 마취제, 250mL 병</td></tr><tr><td>비커, 2 L</td><td>VWR International Ltd</td><td>213-0469</td><td>붕규산 유리</td></tr><tr><td>양극성 신경 커프</td><td>Cortec GMBH</td><td>N/A</td><td>800 미크론 내경, 수직 리드 아웃, 커넥터 종단 없음</td></tr><tr><td>보스헤드</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>막대에 그리퍼를 부착하기 위한 표준 습식 실험실 보스헤드</td></tr> 염화<tr><td>칼슘 이수화물</td><td>시그마 Aldrich</td><td>C7902-500g</td><td>플라스틱 병에 500g</td></tr><tr><td>카보겐 캐니스터</td><td>BOC</td><td>N/A</td><td>F-크기 캐니스터</td></tr><tr><td>원심분리기 튜브, 15 mL 용량</td><td>VWR International Ltd</td><td>734-0451</td><td>팔콘 튜브</td></tr><tr><td>전도성 엘라스토머 신경 커프</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>자극을 위한 고충전 용량 신경 커프, 제작 참조</td></tr><tr><td>프로토콜 참조 커넥터, Termimate</td><td>Mouser UK</td><td>538-505073-1100-LP</td><td>이들은 악어 클립으로 종단된 와이어에 납땜해야 합니다(참조 항목 11)</td></tr> <tr><td>악어 클립 커넥터</td><td>RS UK</td><td>212-1203</td><td>TermiMate 커넥터로 종단 된 와이어에 납땜해야합니다 (항목 10 참조)</td></tr> <tr><td>탈 이온수</td><td>N / A</td><td>N / A</td><td>탈 이온수 디스펜서에서 얻은</td></tr><tr><td>집게 45도 각도</td><td>InterFocus Ltd</td><td>91110-10</td><td>미세 집게, 학생 범위</td></tr><tr><td>집게 표준 Dumont # 7</td><td>InterFocus Ltd</td><td>91197-00</td><td>학생 범위 집게</td></tr><tr><td>가스 디스person 튜브, 다공성 3</td><td>Merck</td><td>12547866</td><td>N/A</td></tr><tr><td>무수 포도당, 분말</td><td>VWR International Ltd</td><td>101174Y</td><td>플라스틱 병에 500g</td></tr><tr><td>그리퍼</td><td>N/A</td><td>N/</td><td>A 표준 습식 실험실용 막대 장착형 그리퍼</td></tr> 가열 <tr><td>교반기</td><td>RS UK</td><td>768-9672</td><td>Stuart US152</td></tr><tr><td>지혈제</td><td>N/A</td><td>N/</td><td>A 길이 >12cm의 모든 지혈이 적합합니다</td></tr><tr><td>곤충 핀, 스테인리스 스틸, 크기 2</td><td>InterFocus Ltd</td><td>26001-45</td><td>N/A</td></tr><tr><td>노트북 컴퓨터</td><td>N/A</td> N<td>/</td><td>A 사용하지 않는 USB 포트가 2개 이상 있는 실험실 안전 휴대용 컴퓨터가 적합합니다.</td></tr><tr><td>라인 노이즈 필터</td><td>디지타이머</td><td>N/A</td><td>험버그 노이즈 제거기(50Hz 라인 노이즈 필터)</td></tr><tr><td>저소음 프리앰프, SR560</td><td>Stanford Research Systems</td><td>SR560</td><td>저잡음 전압 프리앰프</td></tr><tr><td>마그네슘 황산염 소금</td><td>VWR International Ltd</td><td>291184P</td><td>플라스틱 병에 담긴 500g</td></tr><tr><td>MATLAB 스크립트</td><td>Github</td><td>https://github.com/Next-Generation-Neural-Interfaces/HFAC_Stimulator_4ch</td><td>맞춤형 자극기 MATLAB 소프트웨어의 초기화, 교정 및 자극 스크립트</td></tr><tr><td></td><td>Mathworks</td><td>N/A</td><td>표준 패키지</td></tr><tr><td>현미경 라이트, PL-2000</td><td>Photonic</td><td>N/A</td><td>백조 목이 있는 광원. 제품은 타사 공급업체인</td></tr><tr><td>현미경, SMZ 745</td>, <td>Nikon</td><td>SM745</td><td>입체 현미경</td></tr><tr><td>미네랄 오일, 무독성</td><td>VWR International Ltd</td><td>31911.A1</td><td>신경 목욕 용 오일</td></tr><tr>신경<td>목욕</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Plexiglas 기계 신경 욕조에서 얻을 수 있습니다. 자세한 내용은 프로토콜 참조.</td></tr><tr><td>오실로스코프</td><td>LeCroy</td><td>N/A</td><td>434 Wavesurfer. 제품은 제3자 공급업체로부터 얻을 수 있습니다</td></tr><tr><td>. 산소 호스, 1</td>미터 <td>BOC</td><td>N/A</td><td>1/4" NPT 종결</td></tr><tr><td>산소 레귤레이터</td><td>BOC</td><td>C106X/2B:3.5BAR-BS3-1/4"NPTF 230Bar</td><td>N/A</td></tr><tr><td>연동 펌프 P-1</td><td>Pharmacia Biotech</td><td>N/A</td><td>제품은 제3자 공급업체인</td></tr><tr><td>Petri Dish, Glass</td><td>VWR International Ltd</td><td>391-0580</td>에서 얻을 수 있습니다.<td>해당 사항 없음</td></tr><tr><td>염화칼륨 소금</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5405-250g</td><td>플라스틱 병에 250g</td></tr><tr><td>Potassium Dihydrogen Sulphate salt</td><td>Merck</td><td>1.04873.0250</td><td>플라스틱 병에 250g</td></tr><tr><td>Rat</td><td>Charles River Laboratories</td><td>N/A</td><td>Sprague Dawley, 250-330g, 암</td></tr><tr><td>참조 전극, ET072</td><td>eDaQ(호주)</td><td>ET072-1</td><td>은염화은(은) 참조 전극</td></tr><tr><td>로드</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>스탠드용 피팅이 있는 표준 습식 실험실 막대</td></tr><tr><td>저울</td><td>Sartorius</td><td>N/A</td><td>M-Power 저울, 분말 계량용. 제품은 타사 공급업체로부터 얻을 수 있습니다</td></tr><tr><td>. 가위, 직선 12cm 가장자리</td>, <td>InterFocus Ltd</td><td>, 91400-12</td>, <td>둔기-둔기 종단, 학생 범위</td></tr><tr><td>, 신호 수집 장치,</td><td>Cambridge Electronic Design</td>, <td>Micro3-1401</td>, <td>Micro3-1401, 다채널 ADC</td></tr>, <tr><td>실리콘 그리스, 수</td><td>조 칸막이 밀봉용</td><td>무독성 Farnell</td><td>3821559</td></tr><tr><td>, 실리콘 튜브, 내부 2mm 직경</td><td>N/A</td><td>N/</td><td>A N/A</td></tr><tr><td>실리콘 튜브, 5mm 내경</td><td>N/A</td><td>N/A</td> N<td>/</td></tr><tr><td>A 은선</td><td>Alfa Aesar</td><td>41390</td><td>0.5mm, 어닐링</td></tr><tr><td>중탄산나트륨 소금</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S5761-500g</td><td>플라스틱 병에 500g</td></tr> 염화<tr><td>나트륨 VWR</td><td>International Ltd</td><td>27810.295</td><td>플라스틱 병</td></tr> <tr><td>1kg스프링 가위 각도 2mm 가장자리</td><td>InterFocus Ltd</td><td>15010-09</td><td>N/A</td></tr><tr><td>스탠드</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>막대용 소켓이 있는 표준 습식 실험실 스탠드</td></tr><tr><td>Stimulator</td><td>Digitimer</td><td>DS3</td><td>DS3 또는 맞춤형 자극기 (참조 참조)</td></tr><tr><td>Stirring flea</td><td>VWR International Ltd</td><td>442-0270</td><td>가열 교반기와 함께 사용</td></tr> 주<tr><td>사기 팁, 무딘, 직경 1mm</td><td>N/ A</td><td>N/A</td><td>N/A</td></tr><tr><td>주사기 팁, 무딘, 2mm 직경</td><td>N/A</td><td>N/A</td> N<td>/</td></tr><tr><td>A 주사기, 플라스틱, 10mL 용량</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>주사기에는 루어 잠금 피팅이 있어야 합니다</td></tr><tr><td>테이프, 방수</td><td>N/A</td><td>N/</td><td>A 작업대에 튜브 및 배선을 고정하기 위해</td></tr><tr><td>온도계</td><td>VWR International Ltd</td><td>620-0806</td><td>유리 온도계</td></tr><tr><td>USB 전원 Bank</td><td>RS UK</td><td>135-1000</td><td>맞춤형 자극기 전원 공급 장치, 실험 전에 완전히 충전하십시오. DS3</td></tr><tr><td>밸브, Leuer Lock, 3-Way</td><td>VWR International Ltd</td><td>229-7440</td>을 사용하는 경우 필요하지 않습니다. <td>목욕 공급 튜브에 주사기를 부착하고 사이펀을 프라이밍하기 위해</td></tr></tbody></table>

ex vivo 신경 생리학을위한 쥐 좌골 신경의 제조

Preparation of Rat Sciatic Nerve for Ex Vivo Neurophysiology

생체외 제제는 국소 조직 구조를 보존하면서 신체의 나머지 부분으로부터 격리된 많은 신경생리학적 과정의 연구를 가능하게 한다. 이 연구는 버퍼 준비, 동물 절차, 장비 설정 및 신경 생리 학적 기록을 포함하여 생체 외 신경 생리학을위한 쥐 좌골 신경의 준비를 설명합니다. 이 작업은이 방법으로 가능한 다양한 유형의 실험에 대한 개요를 제공합니다. 개요 된 방법은 결과의 최적 일관성을 위해 엄격하게 통제 된 조건에서 추출 된 말초 신경 조직에 6 시간의 자극 및 기록을 제공하는 것을 목표로합니다. 이 방법을 사용하여 얻은 결과는 실험의 전체 기간 동안 밀리볼트 범위의 피크 대 피크 진폭을 갖는 A-파이버 화합물 작용 전위(CAP)입니다. CAP 진폭과 모양은 일관되고 신뢰할 수 있으므로 새로운 전극을 기존 모델 또는 화학 물질의 사용, 외과 적 변경 또는 신경 조절 자극 기술의 사용과 같은 조직에 대한 개입의 영향을 테스트하고 비교하는 데 유용합니다. 백금-이리듐 접촉부를 갖는 기존의 상업적으로 이용가능한 커프 전극과 맞춤형 전도성 엘라스토머 전극 둘 다를 시험하였고, 신경 자극 강도-지속시간 반응의 관점에서 유사한 결과를 제공하였다.

이 프로토콜로 얻을 수 있는 대표적인 결과는 좌골 신경 내의 A형 신경 섬유로부터의 일관된 복합 작용 전위이다. 이러한 작용 전위는 일반적으로 전극에서 약 1mV의 피크 대 피크 진폭을 가지며 따라서 증폭되면 100mV입니다(그림 2). 유사한 자극 진폭과 펄스 폭은 유사한 CAP 진폭을 산출해야 한다. 전도성 엘라스토머 커프 전극은 일반적으로 상업적으로 이용가능한 백금 커프 전극에 비해 동일한 CAP 진폭을 얻기 위해 약간 더 높은 자극 진폭을 필요로 할 것이다. 이러한 차이는 일반적으로 다른 동물로부터 오는 신경을 자극하는 데 필요한 자극 진폭의 변화와 비교하여 작다. 이는 신경 크기와 커프 핏의 작은 차이가 커프 재료에 관계없이 특정 CAP 진폭을 얻기 위해 필요한 자극 진폭에 큰 영향을 미치기 때문입니다. 이는 상이한 완충액 조성물, 예컨대 상이한 이온 농도 또는 테트로도톡신과 같은 신경 흥분성 또는 억제 물질의 첨가와 같은 효과를 시험하는데 사용될 수 있다. 완충 폐...

이 프로토콜은 생체외 전기생리학적 자극을 위한 래트 전체 좌골 신경 조직의 제조를 기술하고, 환경적으로 조절된, 두 구획, 관류 식염수 욕조에서 기록한다.

Ex Vivo 신경 생리학을위한 쥐 좌골 신경의 제조

Ex vivo preparations enable the study of many neurophysiological processes in isolation from the rest of the body while preserving local tissue structure. ...

이 프로토콜은 생체의 다른 과정으로부터의 간섭을 방지하면서 고주파 / 고 진폭 전류 주입 후 신경 블록 이월과 같이 잘 이해되지 않는 많은 신경 생리 학적 현상을 관찰 할 수있게합니다. 이 기술은 매우 반복 가능하고 강력한 결과를 산출하며 마취 깊이와 같은 복잡한 변수를 제어 할 필요가 없으므로 측정에 영향을 줄 수 없기 때문에 생체 내 전기 생리학보다 실용적입니다. 마취하에 안락사 절차를 마친 후 암컷 쥐를 해부 테이블에 놓고 엄지, 검지 손가락 및 가운데 손가락 사이에 발목을 단단히 잡고 12 센티미터 직선 무딘 가위를 사용하여 종아리 힘줄을 절단하십시오.미세한 포셉과 가위를 사용하여 좌골 신경이 노출 될 때까지 다리 뒤쪽 중간 근처의 근육층을 조심스럽게 절개하십시오. 신경이 보이면 얼음처럼 차가운 변형 Krebs-Henseleit 버퍼 또는 MKHB를 사용하여 신경이 건조하지 않도록 공동에 수분을 공급하십시오. 지혈제를 사용하여 양쪽의 피부 플랩을 당기고 절개를 열어 더 미세한 해부를 유지하십시오.종아리 힘줄 절개 위치에서 시작하여 미세한 가위를 사용하여 다리의 내측 쪽의 근육을 방해하여 신경을 풀어줍니다. 얼음처럼 차가운 MKHB가있는 지역의 수분 수준을 계속 유지하십시오. 다리를 위로 움직이는 동안 신경이 노출되면 위에 놓인 근육 조직을 해부하십시오.척추 구개열에 도달 할 때까지 결합 조직에서 척추에 더 가까운 신경을 풀어 주면 신경에 꼬임이 생깁니다. 이 단계에서 속도가 필수적이므로 아직 신경을 청소하지 마십시오. 해부를 쉽게하려면 포셉을 사용하여 발목 근처의 신경 끝을 부드럽게 당깁니다.그런 다음 미세한 가위를 사용하여 척추에 가까운 신경을 심하게합니다. 해부 된 신경을 MKHB로 채워진 15 밀리리터 원심 분리 튜브에 넣고 세척 절차가 시작될 때까지 튜브를 얼음 위에 다시 놓습니다. 코팅 된 페트리 접시를 차가운 산소화 된 MKHB로 반쯤 채운 다음 해부 된 좌골 신경을 접시에 넣고 신경의 양쪽 끝을 접시에 고정시켜 신경이 꼬임, 비틀림 또는 비틀림없이 똑바로 보이도록하십시오.6-0 실크 봉합사 또는 미세 실을 사용하여 신경의 양쪽 끝 주위에 이중 매듭을 묶어 시토졸이 버퍼로 누출되는 것을 방지합니다. 매듭을 곤충 핀 바로 옆에 놓아 신경 조직에서 버퍼로 누출되는 것을 방지하기 위해 신경 중심에 더 가깝게 놓습니다. 현미경으로 두 밀리미터 각도의 스프링 가위와 미세 포셉을 사용하여 신경에서 지방,

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

우리는 myelin를 공개하고 나머지 축삭 - 풍부한 자료의 추출 다음 비 axonal 구조를 lyse에 hypotonic 매체 신경 fascicles과 부화 해부에 따라 성인 쥐의 좌골 신경에서 axoplasm 절연을위한 프로토콜을 보여줍니다.

쥐 좌골 신경에서 Axoplasm 격리

수술의 단순하고 강력한 행동 결과로 인해 좌골 신경의 만성적인 수축이 neuropathic 고통의 사전 저명한 동물 모델 중 하나입니다. 수술에 따라 24 시간 내에 통증 과민성 설립되고 양적 폰 프라이 aesthesiometer (기계적 시험)과 발바닥 진통제 측정기 (온도 시험)를 사용하여 측정할 수있다.

좌골 신경 및 쥐의 통증 과민성 시험의 만성 수축

이 비디오는 쥐의 C 섬유 신경 전도에 대한 단일 섬유 기록을 보여줍니다. 마취된 쥐는 하지에 감각 및 운동 공급을 제공하는 좌골 신경을 노출시키기 위해 절개됩니다. 그런 다음 개별 C-섬유가 노출됩니다. 발에 이식된 자극 전극을 사용하여 전기 자극이 제공되며, 단일 신경 섬유에서 반응이 기록됩니다.

쥐에서 좌골 신경 C-섬유의 생체 내 단일 섬유 기록

여기에서는 설치류 좌골 신경의 슈반 세포(SC)로 유전자를 전달하는 생체 내 기술을 제시합니다. 이 간단한 기술은 수초성 SC의 발달 및 유지와 관련된 신호 전달 메커니즘을 조사하는 데 유용합니다.

Electroporation에 의해 쥐 좌골 신경의 슈반 세포로 생체 내 유전자 전달에

Axonal 흥분 기법 이상 및 퇴행 성 돌이킬 수 없는 이벤트를 앞 생물 변화를 검사 하는 강력한 도구를 제공 합니다. 이 원고는 마 취 쥐의 척 골 신경에 이러한 기술의 사용을 보여줍니다.

Vivo에서 Axonal 흥분 테스트 쥐 척 골 신경의 electrophysiological 측정

여기에 우리가 현재 고 1-2 µ m 섹션 톨루이 블루 얼룩으로 주변 신경의 미세 구조를 시각화 하는...

톨루이 블루 주변 신경 형태학의 평가 대 한 수 지에 포함 된 섹션의 얼룩

단일 섬유 기록은 중추 및 말초 신경계에 적용할 수 있는 효과적인 전기 생리학적 기술입니다. 부착 된 동골 신경과 함께 손상되지 않은 DRG의 준비와 함께 전도 실패의 메커니즘을 검사합니다. 두 프로토콜 모두 말초 신경계의 통증과의 관계에 대한 이해를 향상시킵니다.

전도 실패의 메커니즘을 검사하기 위해 연결된 Sciatic 신경을 가진 생체 내 단일 섬유 기록 및 손상되지 않은 등철 루트 신경절의 사용

이 프로토콜은 동시 트랜스 척추 직접 전류 자극을 가진 쥐 요추 모토뉴런의 생체 내 세포 내 기록을 설명합니다. 이 방법을 통해 멤브레인 특성을 측정하고 척수의 무음 또는 음극 편광 전, 도중 및 후에 모토뉴런의 리듬 발사를 기록할 수 있습니다.

트랜스 척추 직접 전류 자극 중 유형 식별 쥐 척추 운동 신경의 생체 내 세포 내 기록

자동 걸음걸이 분석은 말초 신경 손상 및 척수 타박상 손상의 설치류 모델에서 기능적 회복을 평가하는 실행 가능한 도구입니다. 다양한 실험 모델에서 운동 기능을 평가하기 위해 단 하나의 설정만 필요하지만, 동물의 세심한 하드 및 소프트 웨어 조정 및 훈련이 매우 중요합니다.

주변 신경 또는 척수 타박상 부상으로 설치류의 기능적 회복을 평가하기 위한 자동 걸음걸이 분석

후근 신경절과 슈반 세포의 공동 배양 시스템에서 말초 신경계의 수초화를 연구 할 수 있습니다. 이 모델은 말초 수초화를 관찰 및 정량화하고 미엘린 외피에 대한 관심 화합물의 효과를 연구할 수 있는 실험적 기회를 제공합니다.

쥐 등쪽 뿌리 신경절 외식편과 슈반 세포의 공동 배양에서 말초 축삭의 시험관 내 수초화

이 연구에서는 설치류 모델에서 신경근 접합부(NMJ) 전달의 생체 내 측정을 가능하게 하는 정교한 단일 섬유 근전도(SFEMG) 프로토콜을 시연합니다. 쥐 비복근의 NMJ 전달 변동성 및 실패를 정량화할 수 있도록 SFEMG 기술에 대한 단계별 접근 방식이 설명되어 있습니다.

설치류 모델에서 신경근 접합 전달을 평가하기 위한 자극 단일 섬유 근전도(SFEMG)

배우세요 쥐 좌골 신경을 이용한 ex vivo 전기생리학 기법으로 신경생리학 현상을 정밀 관찰하는 방법입니다. 이 프로토콜은 생체 간섭을 최소화하여 반복 가능한 신경 데이터를 제공합니다.

Ex Vivo 신경 생리학을위한 쥐 좌골 신경의 제조

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