0 조회수 • 3:44 분 • July 8th, 2025
나타내는 세포 표면 단백질과 함께 표지된 상처 상피를 운반하는 형질전환 초파리 번데기가 포함된 유리 바닥 접시로 시작합니다.
번데기의 면역 세포 또는 혈구는 세포질에서 광전환 가능한 녹색 형광단을 발현하고 핵에서 적색 형광 단백질을 발현하여 세포 추적을 용이하게 합니다.
상처 입은 세포는 화학유인제 또는 염증 분자를 방출하여 혈구를 상처 부위로 끌어당깁니다.
공초점 현미경 검사는 녹색 상피 세포로 둘러싸인 상처 부위를 드러냅니다.
치유되는 동안 상처 근처에 붉은 핵이 있는 녹색 혈구는 막 돌출부인 사상체족부와 라멜리족부를 확장하여 상처 부위를 향해 이동합니다.
시간이 지남에 따라 화학유인제가 확산됨에 따라 멀리 있는 혈구가 상처 쪽으로 이동하여 면역 세포 파동을 생성합니다.
405나노미터 파장으로 이동성 혈구의 하위 집단을 조명합니다. 이것은 혈구의 광전환 형광단을 녹색에서 빨간색으로 돌이킬 수 없게 전환합니다.
이러한 광전환된 혈구는 상처를 입은 상피를 복구하고 상처 부위에서 멀어지면서 광전환된 혈구와 비광전환된 혈구를 구별하고 염증 세포 역학을 밝
힙니다.동공 날개 가장자리에 상처를 입힌 후 유리 바닥 접시를 적절한 현미경으로 빠르게 옮겨 타임랩스 이미징을 수행합니다. 그런 다음 적절한 이미지 캡처 소프트웨어를 엽니다.
소프트웨어에서 적절한 레이저를 켜고 출력과 이득 오프셋을 조정하여 픽셀 포화 없이 충분한 형광 신호를 얻습니다. 일반적으로 5%에서 20% 범위의 가능한 가장 낮은 레이저 출력이 광표백을 최소화하는 데 가장 적합합니다.
저배율에서 동공 날개 전체에 초점을 맞추거나 고배율에서 상처에 초점을 맞춰 상처 복구를 조사합니다. 복구 상피와 염증 세포 동원을 모두 캡처하려면 먼저 제어판의 미세 초점 조정을 사용하여 z-스택을 기록하도록 현미경을 설정합니다. 손상된 상피에서 이동하는 혈구를 포함하는 아래의 세포외 공간까지 스캔합니다.
다음으로, 동공 날개를 통해 3미크론마다 또는 더 좁은 간격으로 z-슬라이스를 기록하도록 소프트웨어를 설정합니다. 타임랩스 이미징의 경우 최소 1시간 동안 최소 30초마다 z-스택을 기록합니다.
이미징 중에 광변환 프로브를 사용하여 세포의 하위 집합을 선택적으로 광변환하고 라벨링하는 경우 이미징 소프트웨어 내에서 적절한 모듈을 열어 광변환을 수행하고 405나노미터 레이저를 활성화합니다. 그런 다음 선택 도구를 사용하여 FRAP 소프트웨어 내에서 사진 변환할 셀을 선택합니다.
그런 다음 사진 변환의 시간 경과를 단일 반복 프레임으로 설정하고 405나노미터 레이저를 20% 레이저 출력으로 설정한 다음 실험 시작을 클릭하여 사진 변환을 수행합니다. 완료되면 FRAP 모듈을 종료하고 원래 이미징 화면으로 돌아갑니다. 거기에서 사용 중인 형광단에 레이저를 조정하고 타임랩스 기록을 사용하여 광변환 및 비광변환 세포를 이미지
화합니다.본 연구는 형질전환 초파리(Drosophila)의 상피 상처 치유 과정 중 면역 세포 이동의 역학을 조사합니다. 공초점 현미경을 사용하여, 상처 입은 세포에서 방출되는 화학 유인 물질에 반응하는 혈구(hemocytes)의 행동을 분석합니다.
이 광전환 기술은 생체 내(in vivo) 면역 세포 역학의 정밀한 추적을 가능하게 하여, 면역 조절 치료제의 표적 검증 과정에서 기전적 위험 감소(de-risking)를 지원합니다. 이동성 세포 집단과 정지성 세포 집단을 구별함으로써, 염증 및 조직 수복의 전임상 모델에서 예측 신뢰도를 높여줍니다. 이 접근 방식은 질병 관련 시스템에서 화합물이 세포 이동에 미치는 영향을 평가하기 위한 확장 가능하고 재현 가능한 방법을 제공합니다.
이 방법은 타겟 검증부터 리드 화합물 발굴까지의 신약 개발 연속 과정에 부합하며, 초기 화합물 스크리닝과 기전 추적 연구에 유용한 정보를 제공하는 동적인 표현형 판독 결과를 제공합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026