엑소 세포 사건의 시각화를 위한 전반사 형광 현미경

0 views • 3:54 min • June 17th, 2025

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전반사 형광 또는 TIRF 현미경 단계에서 배아 피질 뉴런이 포함된 유리 바닥 접시로 시작합니다.

이 뉴런은 중성 세포외 pH에서는 형광을 발하지만 산성 소포에서는 비형광을 유지하는 pH에 민감한 녹색 형광 단백질 또는 GFP 태그 소포 마커를 발현합니다.

원형질막과 소포가 융합되면 세포외 pH에 노출되면 형광이 유도되어 엑소사이토시스 사건이 나타납니다.

대물렌즈를 선택하고 뉴런과 일치하도록 굴절률을 설정합니다.

레이저 빔을 유리에 비스듬히 향하게 하면 내부 전반사가 발생하고 소멸파가 생성됩니다. 이 파동은 원형질막 근처의 GFP 마커를 선택적으로 여기시킵니다.

TIRF 침투 깊이를 설정하여 소멸 필드 위의 GFP 마커를 제외합니다.

먼저, 광시야 낙산화형광 조명을 사용하여 GFP 발현 뉴런을 찾습니다.

그런 다음 멤브레인 특이적 여기를 위해 TIRF 조명으로 전환합니다.

소포 융합 사건을 기록하고 엑소 세포 증가증을 시각화하기 위해 타임랩스 이미지를 획득합니다.

TIRF 현미경과 샘플을 설정하고 텍스트 프로토콜에 따라 신경 초점면을 찾은 후 레이저 소프트웨어를 시작하고 레이저 제어 소프트웨어에 연결합니다. 조명을 광시야로 설정하고 대물렌즈를 선택합니다. 그런 다음 샘플의 굴절률을 설정하고 491 레이저의 TTL을 선택 취소하여 레이저 강도를 조정합니다.

이미징 매개변수 최적화는 바닥 온전한 엑소사이틱 소포를 이미징하는 동안 초점 드리프트 및 광독성을 피하는 동시에 분석에 충분한 높은 신호 대 잡음비의 이미지를 생성하는 데 중요합니다.

슬라이더를 100으로 조정한 다음 다시 20에서 40 사이의 값으로 낮춥니다. 그런 다음 TTL을 다시 확인합니다. 다음으로, 투과광 조명에서 샘플에 다시 초점을 맞춥니다.

그런 다음 이미징 소프트웨어에서 491 레이저 조명을 선택하고 셔터를 엽니다. 렌즈가 긁히지 않도록 콘덴서를 광학 벤치에 거꾸로 놓습니다. 천장에 있는 레이저의 초점을 미세 조정하십시오.

그리고 콘덴서를 제거한 상태에서 지점을 폐쇄 필드 다이어프램의 중심에 둡니다. 그런 다음 콘덴서를 교체하십시오. 그리고 TIRF 소프트웨어에서 침투 깊이를 110나노미터로 설정합니다. 그런 다음 이미징을 위해 광시야 조명에서 TIRF 조명 모드로 전환합니다.

이제 광시야 epifluorescence를 사용하여 안구를 통해 VAMP2 플로린 발현 세포를 찾습니다. 그런 다음 광표백 및 광독성을 줄이기 위해 이미징 매개변수를 조정하여 최소 노출 시간과 레이저 강도를 사용하여 신호 대 잡음비 및 동적 범위를 최대화합니다. 셀당 연속 자동 초점을 설정합니다. 그런 다음 5분 동안 0.5초마다 획득이 발생하는 타임랩스 이미지 세트를 획득합니다.

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Last updated: 27 June 2026