Name: 마그네틱 족집게를 사용하여 다중 단일 분자 강제 Proteolysis 측정 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-07-25T11:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 8 s
Description: 배우세요 마그네틱 족집게를 이용한 단일 분자 단백질 분해 측정법입니다. 콜라겐과 MMP-1을 사용하여 기계적 하중이 효소 활성에 미치는 영향을 실시간으로 분석하고 운동학적 매개변수를 도출하는 고효율 생물물리학 기법을 익히세요.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

이 작품은 과학 인터페이스 (ARD), NIH 원장의 새로운 혁신 보너스 프로그램을 통해 국립 보건원 1-DP2-OD007078 (ARD), 윌리엄 Bowes 주니어 스탠포드 대학원 원정대 (ASA에서 버로우즈 Wellcome 경력 수상에 의해 지원되었다 ), 그리고 스탠포드 순환기 학회 젊은 Predoctoral 원정대 (JC). 저자들은 현미경 장비를 빌린 위해 제임스 Spudich 감사드립니다.

1. 흐름 셀 준비 <ol><li> Coverslips은 (# 1.5, 22x22 mm와 22x40 mm, VWR) sonication을 사용하여 청소합니다. <ol><li> coverslips를 개최하고 (단계 2 참조) sonicator에서 피팅 가능한 작은 유리 용기에 coverslips을 추가합니다. </li><li> 이소프로판올과 용기를 기입하고 20 분 동안 목욕 sonicator에 sonicate. </li><li> 이소프로판올을 취소하고 Barnsted MilliQ 장치 또는 이와 유사한 장치에 의해 생산된 탈이온수의 풍부한 수량과 coverslips를 헹굴. 물로 용기를 기입하고 20 분 동안 sonicate. </li><li> sonication 후, 여과, 먼지없는 공기의 흐름에 coverslips을 건조. (예 : 없음 얼룩) 깨끗한에만 표시 coverslips를 사용하십시오. </li><li> 천천히 불꽃이 몇 초간 coverslips는 남아있는 먼지와 습기 그들을 청소하는 방법 : 초과 열로 인해 coverslip을 워프하지 돌보는, 분젠 버너로 생산된 가스 불꽃을 통해 coverslips를 전달합니다. 이 단계는 잔여 표면을 제거오염 물질. </li></ol></li><li> 양면 스카치 테이프를 이용하여 함께 두 coverslips 첨부합니다. 테이프를 자르고 ~ 길이 3cm, 폭 0.3 cm. 중간에 1.6 cm 채널을두고 22x40 밀리미터 coverslip에 테이프를 부착합니다. 부드럽게 테이프가 제대로 준수되었는지 coverslip에 아래로 누르십시오 피펫 팁을 사용합니다. </li></ol> 2. 마그네틱 족집게 설정 및 교정 <ol><li> 마그네틱 핀셋은 이전에 10,12 설명된대로 영구 희토류 자석을 사용하여 설치했다. 알루미늄 L-브래킷은 1 밀리미터 직경 핀홀과 건설과 수직 Z-번역사 (Thorlabs) 족집게의 높이를 조절하기 위해 장착되었다. 두 개의 영구 희토류 자석은 자석 트랩 (그림 1)을 만드는 핀홀의 양쪽에 받침대가 붙어 있었다. </li><li> DNA의 준비 : 그 5 '및 3'에서 분류 람다의 파지의 DNA는 비오틴과 digoxigenin (IDT의 DNA, 샌디에고, CA)와 엔드 탄환을 보정하기 위해 사용되었다netic 핀셋. <ol><li> 10 분 60 복합 oligonucleotide와 열 ° C를 비오틴 40 nm의 2 μL와 4 nm의 λ-DNA의 50 μL를 섞습니다. 일시간 이상 상온에서 다음 천천히 좋아. </li><li> 제조 업체의 사양에 따라의 DNA ligase를 추가하고 3 시간 동안 실온에서 ligate. </li><li> 45 분 동안 상온에서 400 나노미터 digoxigenin 복합 oligonucleotide과 부화 2 μL를 추가합니다. </li><li> 10 밀리미터 ATP의 1.5 μL을 넣고 3 시간 동안 λ-DNA에 dig​​oxigenin 복합 oligonucleotide의 결합을 계속합니다. </li><li> 100 kDa의 스핀 필터 (Microcon Ultracell YM-100)를 사용하여 초과 oligonucleotides 그리고 DNA ligase를 제거합니다. TE 버퍼에 1,000 배 버퍼 교류의 총 초과 oligos를 제거하는 적절한 것입니다. 참고 : DNA의 전단으로 이어질 것이기 때문에 그것은 회전 속도&gt; 500xG을 사용하지 않는 것이 중요합니다. </li><li> 그 DNA는 내가 보장하기 위해 0.7 % 아가로 오스 겔 전기 영동에 관한 통해 DNA 샘플을 검사s의 변성이나 빠졌어 않습니다. </li><li> DNA의 농도를 측정합니다. 사용 가능한 샘플 볼륨이 매우 작은이 될 수 있으므로 Nanodrop UV-VIS 분광계 (써모 과학)의 사용을 권장합니다. </li></ol></li><li> 섹션 1에서 설명한대로 흐름 세포를 준비합니다. </li><li> 흐름 세포로 DNA의 첨부 파일, 안티 digoxigenin 항체를 추가 (양 IgG, 1 μg ML -1; 로슈 Bioscience, Manheim, 독일)와 그것이 15 분 동안 유리 표면에 충실하실 수 있습니다. </li><li> 1X PBS로 200 밀리그램 ML -1 BSA, 0.1 % 십대 초반-20을 추가하여 DNA의 불특정 버티는 것을 막기 위해 흐름 세포의 표면을 Passivate. 45 분 동안 상온에서 품어. </li><li> 단계 2.5 반복합니다. </li><li> λ-DNA fuctionalized 50 PM을 추가하고 15 분 동안 coverslip에 첨부할 수 있습니다. </li><li> 1X PBS로 여분의 DNA를 멀리 씻는다. </li><li> 2.8 μm의 비즈 = 20 μg ML -1, streptavidin - 코팅 superparamagnetic 비즈 (1 μm의 비즈 = 2 μg ML -1 추가 </li><li> 1X PBS로 초과 구슬 멀리 씻는다. </li><li> 마그네틱 족집게 교정 <ol><li> 멀리 시료 표면 (&gt; 15mm)로부터 위치로 영구 자석을 이동합니다. </li><li> 현미경에서 준비한 흐름 전지를 놓습니다. </li><li> 흐름 셀 위에 위치로 영구 자석을 이동합니다. </li><li> 멀리 유리 표면 모두에서 비즈에 초점을 맞춤으로써 λ-DNA가 작용 구슬의 초점 평면을 선택합니다. 정확한 초점 비행기는 원하는 구슬이 밝은 센터를 보유하고있는 것입니다. </li><li> 500 프레임 80 Hz에서 또는 그 이상의 구슬의 운동 비디오를 가져가라. </li><li> 가까이 샘플 표면에 자석을 이동합니다. 5mm 넘어 거리, 1 밀리미터 단위로 이동합니다. 1과 5mm 사이의 거리, 0.5 mm 단위로 이동합니다. 1mm 미만 거리, 0.25 밀리미터 단위로 이동합니다. </li><li> 각각의 새로운 자석 위치에 단계 2.11.5 및 2.11.6를 반복합니다. </li><li> 각 데이터에 대한설정 2D 가우스 발작을 사용하는 구슬의 중심을 추적합니다. </li><li> 사용하는 브라운 변동 통해 힘을 계산 : </li></ol><img alt="방정식 1" src="/files/ftp_upload/3520/3520eq1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="방정식 1"> K B T는 볼츠만 열에너지이고, L은 λ-DNA의 길이이며, &lt;x 2&gt; 중심 위치에 분산이다. <ol start="10"><li> rolloff 주파수를 찾기 위해 파워 스펙트럼 Lorentzian 끼워 맞춤을 통해 힘을 계산을 선택하여 세력의 정확성을 확인합니다. 응용 세력 관계에 의해 rolloff 주파수 관련이 : </li></ol><img alt="방정식 2" src="/files/ftp_upload/3520/3520eq2.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="방정식 2"> ƒ에 0 rolloff 주파수는 어디,이 구슬 반경이며, μ는 유체 점도 12. </li></ol> 3. 흐름 셀로 콜라겐 펩타이드 첨부 우리의 방법론의 적용에 대한 구체적인 예제를 제공하기 위해, 우리는 trimeric 콜라겐 모델 펩티드의 proteolysis를 특징 짓는 저희 연구실의 최근의 작업을 설명합니다. 우리는이 일반적인 접근 방식이 크게 다른 단백질과 polynucleotides에 적용할 수있다는 것을 기대하고 있습니다. <ol><li> 콜라겐 모델 펩티드는 삼중 나선 형성을 집행하는 10 5 배 myc 태그 (GPP), 콜라겐 뒤에 정화를위한 N-터미널 6x 그의 태그로 구성되어 형성 α1 잔류물 772-786 (GPQGIAGQRGVVGL), MMP를 한 인식 사이트 foldon 시퀀스 (GSGYIPEAPRDGQAYVRKDGEWVLLSTFL) 및 C-터미널 KKCK은 비오틴-maleimide으로 레이블링 촉진합니다. Foldon는 T4-파지 단백질 fibritin에서 유래하고, N 중 하나에 융합되면 콜라겐 모델 trimers을 안정화 - 또는 C-말단 13,14. </li><li> 이전 4,15 설명한 것처럼 콜라겐 펩타이드 및 MMP-1 단백질은 표현과 정화되었다. &lt;이/ 리&gt; </li><li> 안티 myc은 흐름 세포의 표면에 부착하도록 안티 - myc (15 μg ML -1) 20 분 동안 상온에서 흐름 전지 및 부화 추가합니다. </li><li> 2.5 단계에서 설명한 것과 같은 방법으로 5 밀리그램 ML -1 BSA를 사용하여 단백질의 불특정 첨부 파일을 방지하기 위해 유동 셀을 Passivate. </li><li> 150시 콜라겐 펩타이드를 추가하고 45 분 동안 myc 태그를 통해 항체에 연결하실 수 있습니다. </li><li> PBS 버퍼를 사용하여 과도한 콜라겐 멀리 씻는다. </li><li> streptavidin 코팅 superparamagnetic 비즈 (1 μm의 비즈 = 2 μg ML -1과 2.8 μm의 구슬 = 20 μg ML -1)들을 45 분 동안 콜라겐 분자에 첨부할 수 있습니다. 추가 1 μm의 비즈는 PBS에서 원하는 농도로 희석해야한다. 3 μm의 비즈 그런 다음 PBS에서 resolubilized 강한 자석을 사용하여 솔루션에서 분리해야합니다. 이 과정은 3 회 반복한다. 우리는이 단계가 GE에 필수적 것으로 나타났습니다t 3 μm의 비즈는 표면 고정화 콜라겐 펩타이드에 바인딩합니다. </li></ol> 4. 강제 Proteolysis 분석 <ol><li> 일단 흐름 세포는 낮은, ~ 1 PN 포스 밑에 자석 트랩의 영상 흐름 세포, 콜라겐 펩타이드 및 자기 구슬과 함께 조립하고 있습니다. 우리의 경험에서, 구슬 subpopulation 때로는 약하게 아닌 특정 방식으로 표면을 준수하고 있습니다. 겸손한 무력 신청이 구슬은 해방임을 보장합니다. </li><li> 흐름 세포에 활성 효소를 추가합니다. 이 경우 MMP-1은 3.5 밀리미터 APMA (4 aminophenylmercuric 아세테이트)를 추가하고 3 시간 동안 37 ° C에서 incubated하여 미리 활성화되었다. 정품 인증은 SDS-PAGE를 사용하여 검증되었다. </li><li> 곧 유동 세포가 자기 족집게 장치에 다시 도입되면로서, 일반적으로 수백 첨부된 구슬을하였으며,보기의 몇 가지 분야를 스팬 동영상을 기록합니다. 이것은 t = 0이 될 것입니다. </li><li> T를 반환하면서 뷰의 여러 분야를 기록하는 것과 같은 과정을 (반복모든 분리 구슬이나 더 이상 proteolysis가 뚜렷한입니다 때까지, 정기적인 시간 지점에서보기의 동일한 필드) O. </li><li> 운동 데이터 분석 <ol><li> 다른 시간 시점에서보기의 다양한 분야에 비즈를 카운트하고 평균. t = 0에서 구슬의 수를 각 시간 지점에서 구슬의 평균 수를 나누어 구슬의 개수를 정상화. 이것은 구슬의 절대 숫자는 실험에서 실험으로 다를 수 있기 때문에 우리는 서로 다른 실험의 proteolysis의 속도를 비교할 수 있도록합니다. </li><li> 시간의 함수로 비율로 잡아. 이 경우, 우리는 부패 지수 플러스 상수에 장착. </li></ol><img alt="방정식 3" src="/files/ftp_upload/3520/3520eq3.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="방정식 3"> ƒ (T)는 (또는 콜라겐 분자가 unproteolyzed) 첨부 구슬의 비율이고, t는 시간이며,이 콜라겐 밧줄로 연결된 구슬의 분율이고, B는 부패 속도가 상수이며, C비 구체적으로 연결된 구슬의 분율입니다. <ol start="3"><li> 같은 실험은 MMP-1에 의해 콜라겐 proteolysis에 대한 무력의 효과를 명료하게하다 강제와 MMP-1 농도 변화에 반복됩니다. </li></ol></li></ol> 5. 대표 결과 위의 프로토콜은 효소 proteolysis에 대한 무력의 효과를 연구를위한 마그네틱 핀셋 (그림 1)의 소설 사용을 설명합니다. 우리는 관찰된 브라운 변동의 크기와 다양한 자석의 위치 (그림 2)에서 롤 - 오프 주파수의 계산 모두를 사용하여 1 μm의 3 μm의 구슬을위한 핀셋을 보정. 힘 proteolysis 실험에서는 설치 프로그램이 DNA가 콜라겐 (그림 3, 4)로 대체되는 제외하고 비슷합니다. 남아있는 구슬의 정규화된 숫자 proteolysis 속도 (그림 5)을 찾을 시간의 함수로 꾸몄다 수 있으며,이 프로세스가 될 수 있습니다효소 농도와 세력 변화를 위해 반복했다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3520/3520fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 자기 트랩 교정 프로세스의 도식 (확장되지 않음). 두 개의 영구 드문 지구 자석이 superparamagnetic 구슬을 끌어 자기장을 만듭니다. 위아래로 자석을 번역하는 것은 적용 력을 조정합니다. 구슬은 두 자석 사이에 핀홀을 통해 빛을 전달과 함께 종래의 밝은-필드 현미경을 사용하여 몇 군데 있습니다 삽입된 페이지 :. 이미지 40x 공기 목적으로 찍은. 날카롭고 둥근 반점이 coverslip 표면에 부착된 비즈 일치합니다. 밖에서 초점 개체는 단독 구슬입니다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3520/3520fig2.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="그림 2"> 그림 2. 1 μm의 (왼쪽)와 2.8 μm의 (오른쪽) 비드를위한 시료 표면의 자석 거리의 함수로 보정 부대의 음모의. 데이터는 경험적 함수에 적합했다 <img alt="방정식4" src="/files/ftp_upload/3520/3520eq4.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="방정식4"> 어디에 x는 자석의 거리입니다. = 31.8, B = 5.61, 및 C 1 μm의 비즈와 용 = 4.39 = 140, B 3 μm의 비즈를위한 = 3.10와 c = 1.86. 이 값은 특정한 악기와 실험적인 기하학에 특정한 있으며, 각각의 악기는 개별적으로 보정해야합니다. 각 지점에 오차 막대는 구슬 크기의 다양성으로 인해 구슬 기준으로 비드에 대한 적용 력에 ~ 10 %의 변화를 나타냅니다. 적용 힘은 구슬의 볼륨에 비례하고, 구슬 볼륨 (제조 업체 사양에 따라) 평균 이상 ~ 9 %를 다릅니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3520/3520fig3.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="그림 3"> 그림 3. 강제 proteolysis 분석 설정 (없음 규모). 콜라겐 모델 trimer는 m 통해 coverslip의 표면에 붙어있다YC / 안티 myc 활용. streptavidin-코팅 superparamagnetic 비즈는 비오틴 - streptavidin 연계를 통해 콜라겐 trimers에 첨부됩니다. 활성 MMP-1 베인 시간이 지남에 따라 콜라겐, 구슬이 표면에서 분리하고 초점 평면에서 멀리 이동하는 원인. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3520/3520fig4.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="그림 4"> 그림 4. 시간의 함수로 proteolysis의 도식 만화. 만화는 proteolysis 같은 시간에 따른보기의 샘플 필드가 발생 보여줍니다. 시간이 지남에 MMP-1 상처 콜라겐과 비즈는 분리와 자기장의 영향하에 초점 평면에서 떨어져 이동합니다. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/3520/3520fig5.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="그림 5"> 그림 5. Proteolysis 요금이 적용된 힘 16 다릅니다. , 6.2 PN (3 μm의 MMP-1, 적색)와 13 PN (0.2 μm의 MMP-1, 마술사, 표시 1.0 PN (블랙 3 μm의 MMP-1)에서 수집된 자료입니다nta). proteolysis의 속도 (적합한 매개 변수)는 다음과 같습니다 0.22 ± 0.02 분 -1 (1 PN), 0.46 ± 0.09 분 -1 (6.2 PN), 그리고 2.08 ± 0.18 분 -1 (13 PN). 오랫동안 포인트 (&gt; 15 분)에서 unproteolyzed 구슬의 분율은 다른 실험을 걸쳐 ~ 0.25의 약 일정하게 유지됩니다. 오차 막대는 각 시점에서 관찰의 수를 반영 Poisson 통계에 대응. N 개의 구슬 각 시점에서 오류가 N 2분의 1입니다. 첨부된 구슬의 분율에 오류가 propagation.1 ​​μm의 비즈가 1.0 PN과 6.2 PN 실험 및 2.8 μm의 비즈 13 PN 실험에 사용되었다 위해 사용되었습니다 오류에 의해 계산되었다.

<ol><li>Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Can+cancer+be+reversed+by+engineering+the+tumor+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Semin.+Cancer+Biol%22%5BJournal%5D)">Can cancer be reversed by engineering the tumor microenvironment.</a> Semin. Cancer Biol. 18, 356-364 (2008).</li>
<li>Hahn, C., Schwartz, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+in+vascular+physiology+and+atherogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction in vascular physiology and atherogenesis.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 53-62 (2009).</li>
<li>Laurens, N., Koolwijk, P., de Maat, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibrin+structure+and+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Thromb.+Haemost%22%5BJournal%5D)">Fibrin structure and wound healing.</a> J. Thromb. Haemost. 4, 932-939 (2006).</li>
<li>Adhikari, A. S., Chai, J., Dunn, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+Load+Induces+a+100-Fold+Increase+in+the+Rate+of+Collagen+Proteolysis+by+MMP-1%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Mechanical Load Induces a 100-Fold Increase in the Rate of Collagen Proteolysis by MMP-1.</a> J. Am. Chem. Soc. 133, (2011).</li>
<li>Zareian, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+collagen%2Fenzyme+mechanochemistry+in+native+tissue+with+dynamic%2C+enzyme-induced+creep%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Probing collagen/enzyme mechanochemistry in native tissue with dynamic, enzyme-induced creep.</a> Langmuir. 26, (2010).</li>
<li>Ellsmere, J. C., Khanna, R. A., Lee, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+loading+of+bovine+pericardium+accelerates+enzymatic+degradation%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Mechanical loading of bovine pericardium accelerates enzymatic degradation.</a> Biomaterials. 20, 1143-1150 (1999).</li>
<li>Jesudason, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+forces+regulate+elastase+activity+and+binding+site+availability+in+lung+elastin%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Mechanical forces regulate elastase activity and binding site availability in lung elastin.</a> Biophys. J. 99, 3076-3083 (2010).</li>
<li>Neuman, K. C., Block, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+trapping%5BTitle%5D)+AND+%22Rev.+Sci.+Instrum%22%5BJournal%5D)">Optical trapping.</a> Rev. Sci. Instrum. 75, 2787-2809 (2004).</li>
<li>Lee, C. K., Wang, Y. M., Huang, L. S., Lin, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atomic+force+microscopy%3A+determination+of+unbinding+force%2C+off+rate+and+energy+barrier+for+protein-ligand+interaction%5BTitle%5D)+AND+%22Micron%22%5BJournal%5D)">Atomic force microscopy: determination of unbinding force, off rate and energy barrier for protein-ligand interaction.</a> Micron. 38, 446-461 (2007).</li>
<li>Smith, S. B., Finzi, L., Bustamante, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+mechanical+measurements+of+the+elasticity+of+single+DNA+molecules+by+using+magnetic+beads%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Direct mechanical measurements of the elasticity of single DNA molecules by using magnetic beads.</a> Science. 258, 1122-1126 (1992).</li>
<li>Tanase, M., Biais, N., Sheetz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+tweezers+in+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Magnetic tweezers in cell biology.</a> Methods Cell Biol. 83, 473-493 (2007).</li>
<li>Neuman, K. C., Nagy, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+force+spectroscopy%3A+optical+tweezers%2C+magnetic+tweezers+and+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Single-molecule force spectroscopy: optical tweezers, magnetic tweezers and atomic force microscopy.</a> Nat. Methods. 5, 491-505 (2008).</li>
<li>Frank, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stabilization+of+short+collagen-like+triple+helices+by+protein+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Stabilization of short collagen-like triple helices by protein engineering.</a> J. Mol. Biol. 308, 1081-1089 (2001).</li>
<li>Stetefeld, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagen+stabilization+at+atomic+level%3A+crystal+structure+of+designed+%28GlyProPro%2910foldon%5BTitle%5D)+AND+%22Structure%22%5BJournal%5D)">Collagen stabilization at atomic level: crystal structure of designed (GlyProPro)10foldon.</a> Structure. 11, 339-346 (2003).</li>
<li>Chung, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagenase+unwinds+triple-helical+collagen+prior+to+peptide+bond+hydrolysis%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Collagenase unwinds triple-helical collagen prior to peptide bond hydrolysis.</a> EMBO J. 23, 3020-3030 (2004).</li>
<li>Bell, G. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Models+for+the+specific+adhesion+of+cells+to+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Models for the specific adhesion of cells to cells.</a> Science. 200, 618-627 (1978).</li>
<li>Selvin, P. R., Ha, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSelvin%2C+PR+%22Single-molecule+techniques%3A+a+laboratory+manual%22">Single-molecule techniques: a laboratory manual</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. (2008).</li>
<li>Graneli, A., Yeykal, C. C., Prasad, T. K., Greene, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organized+arrays+of+individual+DNA+molecules+tethered+to+supported+lipid+bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Organized arrays of individual DNA molecules tethered to supported lipid bilayers.</a> Langmuir. 22, 292-299 (2006).</li>
<li>Danilowicz, C., Greenfield, D., Prentiss, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissociation+of+ligand-receptor+complexes+using+magnetic+tweezers%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Dissociation of ligand-receptor complexes using magnetic tweezers.</a> Anal. Chem. 77, 3023-3028 (2005).</li>
<li>Zhang, X., Halvorsen, K., Zhang, C. Z., Wong, W. P., Springer, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanoenzymatic+cleavage+of+the+ultralarge+vascular+protein+von+Willebrand+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanoenzymatic cleavage of the ultralarge vascular protein von Willebrand factor.</a> Science. 324, 1330-1334 (2009).</li>
<li>Woodside, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomechanical+measurements+of+the+sequence-dependent+folding+landscapes+of+single+nucleic+acid+hairpins%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Nanomechanical measurements of the sequence-dependent folding landscapes of single nucleic acid hairpins.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 6190-6195 (2006).</li>
<li>del Rio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stretching+single+talin+rod+molecules+activates+vinculin+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Stretching single talin rod molecules activates vinculin binding.</a> Science. 323, 638-641 (2009).</li>
<li>Gosse, C., Croquette, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+tweezers%3A+micromanipulation+and+force+measurement+at+the+molecular+level%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Magnetic tweezers: micromanipulation and force measurement at the molecular level.</a> Biophys. J. 82, 3314-3329 (2002).</li>
</ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

이 프로토콜은 고전적인 단일 분자 기술을위한 새로운 사용을 설명합니다. 마그네틱 핀셋은 비용 효율적인 방법으로 높은 처리량 단일 분자 assays에 대한 중간 수 있습니다. 그러나 모든 실험 기법처럼 도전과 잠재적인 함정이 있습니다. 마그네틱 핀셋의 한계 광학 트랩에 비해 MT 장치의 공간과 시간적 해상도가 낮습니다. 또한, 여기에 설명된 간단한 MT에 의해 생성된 세력은 정기적 AFM 실험에 액세스할 세력보다 훨씬 적은 30 PN 이하입니다. 이 제한은 미덕이 될 수있다 : MT가 잘 서브 PN 힘을 적용에 적합합니다. 그러한 이곳 장치와 같은 광학 트랩이나 AFM, 기존의 MT와 달리, 개별 입자의 조작을 허용하지 않습니다. 광학 트랩은 보통 MT를 수직으로 세울 실험에 가장 적합한하는 동안, coverslip 평행 력을 적용하는 데 사용됩니다. Electromagne안면 경...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> 마이크로 커버 글래스 # 1.5 (22x22) </td><td> VWR </td><td> 48366-067 </td></tr><tr><td> 마이크로 커버 글래스 # 1.5 (22x40) </td><td> VWR </td><td> 48393-048 </td></tr><tr><td> 람다 디엔에이 </td><td> Invitrogen </td><td> 25250-010 </td></tr><tr><td> T4의 DNA Ligase </td><td> Invitrogen </td><td> 15224-041 </td></tr><tr><td> Microcon Ultracel YM-100 </td><td> Millipore </td><td> 42,413 </td></tr><tr><td> 안티 Digoxigenin </td><td> 로슈 진단 </td><td> 11-333-089-001 </td></tr><tr><td> 십대 초반 20 </td><td> 시그마 </td><td> P9416-100ML </td></tr&gt; <tr><td> 안티 - myc 항체 </td><td> Invitrogen </td><td> 46-0603 </td></tr><tr><td> 소의 알부민 세럼 </td><td> 시그마 </td><td> B4287-5G </td></tr><tr><td> Dynabeads M-280 Streptavidin </td><td> Invitrogen </td><td> 658.01D </td></tr><tr><td> Dynabeads MyOne T1 Streptavidin </td><td> Invitrogen </td><td> 658.01D </td></tr><tr><td> P-Aminophenylmercuric 아세트산 </td><td> Calbiochem </td><td> 164,610 </td></tr><tr><td> 비오틴 - Maleimide </td><td> 시그마 알드리치 </td><td> B1267 </td></tr><tr><td> 비오틴은 oligo를 분류 </td><td> IDT의 DNA </td><td> 사용자 지정 합성 </td></tr><tr><td> Digoxigenin는 oligo를 분류 </td><td> IDT의 DNA </td><td> 사용자 지정 합성 </td></tr><tr><td> 콜라겐펩타이드 유전자 </td><td> DNA 2.0 </td><td> 사용자 지정 합성 </td></tr><tr><td> MMP-1 cDNA </td><td> 하버드 플라스미드 데이터베이스 </td><td></td></tr><tr><td> Z-번역 </td><td> Thorlabs </td><td> MTS50 </td></tr><tr><td> 번역자를위한 서보 제어기 </td><td> Thorlabs </td><td> TDC001 </td></tr></tbody></table>

마그네틱 족집게를 사용하여 다중 단일 분자 강제 proteolysis 측정

Multiplexed Single-molecule Force Proteolysis Measurements Using Magnetic Tweezers

기계 력의 생성 및 검출이 암 전이 1, atherogenesis 2 및 치료 3 상처에 직접 관련으로, 세포 생리학의 유비 쿼터스 측면이다. 이러한 예는 각에서 세포들은 주변에서 힘을 발휘하고 동시에 효소 리​​모델링 세포외 매트릭스 (ECM) 둘. ECM의 세력의 영향 때문에 4-7의 가능성이 생물 학적, 의학적 중요성으로 인해 상당한 관심 지역이되었다. 이러한 광학 트래핑 8, 원자 힘 현미경 9, 마그네틱 핀셋 10,11과 같은 단일 분자 기술은 연구자 개인의 단백질에 힘을 exerting하여 분자 수준에서 효소의 기능을 알아내기 수 있습니다. 이러한 기법, 마그네틱 핀셋 (MT)은 낮은 비용과 높은 처리량을 위해 주목할 수 있습니다. MT는 ~ 1-100 PN의 범위에서 힘을 발휘하고 밀리초에게 시간적 해상도를 제공할 수잘 단일 분자 수준 12 효소 메커니즘의 연구와 일치되는 자질. 여기에서 우리는 단일 단백질 분자의 proteolysis에 힘의 효과를 공부하는 높은 parallelizable MT 분석을보고합니다. 우리는 매트릭스 metalloproteinase 1 (MMP-1)에 의해 trimeric 콜라겐 펩타이드의 proteolysis의 구체적인 예제를 제시하지만, 이러한 분석은 쉽게 다른 기판과 프로 테아제를 공부하는 데 적용할 수 있습니다.

이 문서에서 우리는 높은 parallelizable 방식으로 단일 분자 수준에서 효소 proteolysis에 대한 힘의 효과를 공부하는 자기 족집게의 사용을 설명합니다.

마그네틱 족집게를 사용하여 다중 단일 분자 강제 Proteolysis 측정

기계적 힘의 생성과 감지는 세포 생리학의 보편적인 측면이며, 이는 암 전이1, 죽상동맥경화증2... 등과 직접적인 관련이 있습니다.

이 절차의 전반적인 목표는 고도로 병렬적이고 비용 효율적인 방식으로 단일 단백질의 단백질 분해 절단에 미치는 기계적 부하의 영향을 연구하는 것입니다. 본 시연에서는 matrix metalloproteinase one에 의한 콜라겐의 절단을 조사하며, 첫 번째 단계로 유동 셀(flow cell)의 유리 커버슬립에 콜라겐 트리머를 부착한 후, 개별 콜라겐 분자에 마이크로미터 크기의 자기 비드를 부착합니다. 두 번째 단계는 유동 셀을 자기 핀셋(magnetic tweezers) 장치에 장착하고 비특이적으로 부착된 비드들이 커버슬립 표면에서 제거되었는지 확인하는 것입니다.다음으로, 프로테아제를 유동 셀(flow cells)에 첨가합니다. 마지막 단계는 비드의 탈착을 실시간으로 모니터링하여 단백질 분해 속도를 결정하는 것입니다. 다양한 프로테아제 농도와 힘에서 비드 탈착 속도를 측정함으로써, 극소량의 기질과 프로테아제를 사용하여 표준 동물학적 반응 속도론 파라미터를 도출할 수 있습니다.또한, 이 기술은 기계적 힘이 단백질 분해 속도와 절단 시 수반되는 기질 단백질의 구조적 변화에 미치는 영향에 관한 고유한 정보를 제공합니다. 광학적 T trace 및 원자 힘 현미경과 같은 다른 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 고속 처리(high throughput)가 가능하며 비용 효율적이라는 점입니다. 이 방법은 단일 단백질의 단백질 분해 절단에 작용하는 유효한 힘에 대한 통찰을 제공할 수 있을 뿐만 아니라, 해당 장비와 기술을 단백질 접힘 및 구조에 힘이 미치는 영향을 포함한 광범위한 생물물리학적 문제에 적용할 수 있습니다.초음파 세척을 통해 커버 슬립을 세척하여 플로우 셀 준비를 시작합니다. 커버 슬립을 초음파 세척기에 들어갈 수 있는 작은 유리 용기에 넣습니다. 용기에 이소프로판올을 채우고 배스형 초음파 세척기에서 20분 동안 처리한 후, 이소프로판올을 제거하고 커버 슬립을 다량의 탈이온수로 헹굽니다.용기에 물을 채우고 20분 동안 초음파 처리합니다. 초음파 처리 후, 여과된 먼지 없는 공기 흐름으로 커버슬립을 건조시킵니다. 커버슬립을 검사하여 얼룩이 없는 것들만 사용하십시오.커버슬립을 분젠 버너의 가스 불꽃에 통과시켜 몇 초간 살짝 가열함으로써 잔류 먼지와 수분을 제거합니다. 이때 과도한 열로 인해 커버슬립이 변형되지 않도록 주의하십시오. 이 단계는 표면의 잔류 오염 물질을 제거하기 위한 것입니다.다음으로, 양면 테이프를 사용하여 커버슬립 두 개를 서로 부착합니다. 먼저 테이프를 길이 약 3cm, 너비 0.3cm로 자른 후, 22 x 40mm 커버슬립에 부착하며 이때 중앙에 1.6cm의 채널을 남겨둡니다. 피펫 팁을 사용하여 커버슬립을 가볍게 눌러 테이프가 제대로 접착되었는지 확인합니다.자기 집게 장치는 이 실험실에서 1mm 직경의 핀홀이 있는 알루미늄 L 브래킷을 사용하여 제작되었으며, 집게의 높이를 조절하기 위해 수직 Z 축 이동 장치(Z translator)에 장착되었습니다. 자기장 구배를 생성하기 위해 핀홀 양측의 브래킷에 두 개의 영구 희토류 자석을 부착하였습니다. 이 절차에서는 자기 트랩의 적절한 보정이 필수적입니다.성공적인 실험을 위해 본 섹션에서 설명하는 두 가지 서로 다른 방법을 사용합니다. 자기 트랩을 보정하기 위해, 서면 프로토콜에 기술된 대로 5' 말단과 3' 말단이 각각 비오틴과 옥시게닌으로 라벨링되어 미리 준비된 람다 파지의 DNA를 사용하십시오. DNA를 플로우 셀에 부착하려면, 먼저 플로우 셀을 항-옥시게닌 항체 용액으로 채우고 항체가 유리 표면에 부착될 수 있도록 15분 동안 유지하십시오.다음으로, BSA 용액을 플로우 셀에 첨가하여 DNA의 비특이적 부착을 방지하기 위해 플로우 셀 표면을 블로킹합니다. 이 블로킹 단계와 이후의 모든 단계에서 플로우 셀에 첨가하는 시약의 부피는 플로우 셀 부피의 최소 2배가 되어야 함에 유의하십시오. 본 시연에서 플로우 셀의 부피는 75 microliters이며, 플로우 셀을 상온에서 45분 동안 배양합니다.이 단계를 반복한 후, 50 pM의 기능화된 lambda DNA를 첨가하고 15분 동안 커버 슬립에 부착되도록 합니다. 그 후 1x PBS로 과잉 DNA를 씻어냅니다. 마지막으로, streptavidin이 코팅된 초상자성 비드를 첨가하고 고정된 DNA에 15분 동안 부착되도록 합니다. 본 시연에서는 2.8 µm 비드가 사용되었습니다.XPBS 1회 분량으로 과잉 비드를 씻어냅니다. 다음으로, 영구 자석을 시료 표면에서 멀리 떨어진 위치로 이동시켜 자기 집게(magnetic tweezers) 보정을 수행합니다. 그런 다음 준비된 플로우 셀을 현미경에 배치합니다.영구 자석을 플로우 셀 상단의 정해진 위치로 이동합니다. 양쪽 유리 표면에서 떨어진 비드를 포커싱하여 Lambda DNA로 기능화된 비드의 초점 평면을 선택합니다. 올바른 초점 평면은 대상 비드의 중심부가 밝게 보이는 평면입니다.80 Hz 이상의 주파수로 500 프레임 동안 비드 움직임을 촬영하십시오. 자석을 시료 표면에 더 가까이 이동시키며 각 위치에서 비드의 움직임을 비디오로 기록하십시오. 5 mm 이상의 거리에서는 1 mm 간격으로 이동하고, 1 mm에서 5 mm 사이의 거리에서는 더욱 세밀한 간격으로 이동하십시오.1mm 미만의 거리에서는 0.5mm 간격으로 이동하고, 그 이하에서는 0.25mm 간격으로 이동하십시오. 각 데이터 세트에 대해 2D 가우시안 피팅(Gaussian fit)을 사용하여 비드의 중심을 추적하십시오. 서면 절차에 기술된 대로 브라운 운동 요동(brownian fluctuations)을 통해 힘을 계산하십시오. 파워 스펙트럼 선형 피팅(power spectrum linear fit)을 통한 힘 계산 값을 확인하여 힘의 정확도를 검증하십시오.차단 주파수를 구하기 위해, 가해진 힘과 차단 주파수 사이의 관계는 흐름 셀(flow cell)에 콜라겐 펩타이드 부착 전 단계의 텍스트에서 확인할 수 있으며, 콜라겐 펩타이드와 MMP one 단백질을 발현 및 정제하십시오. 먼저 anti mic 항체 용액을 흐름 셀에 넣고 실온에서 20분 동안 배양하여 anti mic가 흐름 셀 표면에 부착되도록 합니다. 5 mg/mL BSA를 사용하여 단백질의 비특이적 부착을 방지하기 위해 흐름 셀을 블로킹하십시오. 150 pM 콜라겐 펩타이드를 첨가하고 M ttag를 통해 항체에 45분 동안 부착되도록 합니다.플로우 셀에 2.8 µm 비즈를 추가하기 전, PBS 버퍼를 사용하여 과량의 콜라겐을 씻어냅니다. 비즈는 강력한 자석을 사용하여 strep divid 및 코팅 비즈 용액으로부터 분리한 후, PBS에 재현탁해야 합니다. 이 과정을 세 번 반복합니다.이 단계는 2.8 µm 비즈가 표면에 고정된 콜라겐 펩타이드에 결합하도록 하는 데 필수적입니다. 다음으로, streptavidin이 코팅된 초상자성 비즈를 추가하고 콜라겐 분자에 부착될 수 있도록 45분 동안 유지합니다. 콜라겐 펩타이드와 자성 비즈로 플로우 셀 조립이 완료되면, 자기 트랩 내에서 플로우 셀을 이미징합니다.낮은 힘에서는 비드의 일부 하위 집단이 비특이적인 방식으로 표면에 부착되어 약하게 결합하는 경우가 있습니다. 적절한 힘을 가함으로써 이러한 비드들이 분리되도록 합니다. 활성화된 효소를 플로우 셀에 첨가합니다.본 사례에서는, 3.5 mM PMA를 첨가하여 MMP 1을 사전 활성화한 후 37 °C에서 3시간 동안 배양하였습니다. 플로우 셀을 자기 핀셋 장치에 다시 장착하는 즉시, 일반적으로 수백 개의 부착된 비드가 포함되는 몇 개의 시야 영역에 걸쳐 비디오를 기록합니다. 이 측정 시점이 시간 t=0에 해당합니다.모든 비드가 분리되거나 더 이상 단백질 분해가 관찰되지 않을 때까지 정해진 시간 간격으로 여러 시야를 기록하는 과정을 반복합니다. 마그네틱 트위저는 1 µm 및 2.8 µm 비드에 대해 교정되었습니다. 강제 단백질 분해 실험에서 관찰된 브라운 변동의 크기와 다양한 자석 위치에서의 롤오프 주파수 계산을 모두 사용하여, 남아 있는 비드의 정규화된 수를 시간의 함수로 도식화함으로써 단백질 분해 속도를 구할 수 있습니다.이 과정은 다양한 효소 농도와 힘에 대해 반복할 수 있습니다. 단백질 분해 속도는 가해진 힘에 따라 달라집니다. 단백질 분해 속도는 1 pN, 6.2 pN, 그리고 13 pN에서 측정되었습니다.15분 이후에 unfolding되지 않은 비드의 분율은 서로 다른 실험 전반에 걸쳐 약 0.25로 일정하게 유지됩니다. 본 연구에서 이 분석법을 통해 가해진 힘의 함수로서 MMP1의 촉매 효율을 측정할 수 있었습니다. 데이터를 분석한 결과, 콜라겐 삼중 나선이 단백질 분해 이전에 국소적으로 풀려야 한다는 것을 확인하였습니다.이 기술을 숙달하면 정확하게 수행했을 때 5~6시간 내에 완료할 수 있습니다. 데이터의 통계적 유의성을 충분히 확보하기 위해서는 시야당 최소 30~50개의 비드가 필요하다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. PMA는 매우 위험할 수 있으므로, 이 실험을 수행하는 동안에는 항상 장갑, 실험복, 안면 마스크와 같은 보호 장구를 착용해야 함을 잊지 마십시오.이 영상을 시청한 후, 여러분은 마그네틱 트위저(magnetic tweezers)를 사용하여 단일 단백질의 단백질 분해 절단에 가해지는 힘의 영향을 측정하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 마그네틱 트위저는 단일 분자 생물물리학 실험을 이해하는 데 매우 유용한 도구입니다. 이 기술은 다른 프로테아제 및 기질 조합으로도 확장하여 적용할 수 있습니다.또한, 유사한 기술을 사용하여 단백질의 구조적 역학을 이해할 수 있을 뿐만 아니라, RNA 또는 DNA에 결합하거나 이를 변형하는 다른 단백질들을 이해하는 데에도 활용할 수 있습니다.

multiplexed-single-molecule-force-proteolysis-measurements-using

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

마그네틱 핀셋, 강력한 단일 분자 조작 기술은 생물학적 거대 분자에 (자기 토크 핀셋 칭했다 구성을 사용하여) 및 토크 (자기 핀셋을 자유롭게 선회 불리는 구성을 사용하여) 꼬임의 직접적인 측정을 위해 구성 될 수있다. 이러한 측정을 수행하기위한 지침은 DNA 및 관련 nucleo 단백질 필라멘트의 연구에 응용 프로그램을 포함하여 제공됩니다.

트위스트와 토크의 측정을위한 자석 집게

단일 분자 자석 족집게 플랫폼 G-quadruplexes를 조작 하는 보고, G4 안정성과 규제의 연구에 대 한 수 있는 다양 한 단백질에 의해.

마그네틱 핀셋으로 G-quadruplexes의 단일 분자 조작

단일 분자 수준에서 DNA의 부위 별 분열을 측정하는 매우 병렬적인 방법이 기재된다. 이 프로토콜은 제한 엔도니올리스 NdeI를 사용하는 기술을 보여 줍니다. 이 방법은 사이트별 DNA 분열의 결과를 초래하는 모든 과정을 연구하기 위해 쉽게 수정될 수 있다.

현장 별 DNA 분열을 위한 병렬 높은 처리량 단 분자 운동 분석

이 프로토콜은 광학 핀셋을 사용하여 RNA 단백질 상호 작용을 연구하기위한 완벽한 실험 워크플로우를 제공합니다. 공초점 현미경 검사법과 광학 핀셋의 조합을 포함하여 몇 가지 가능한 실험 설정이 설명되어 있습니다.

번역 조절에서 RNA 단백질 상호 작용을 연구하는 광학 핀셋

미세 유체 챔버를 통해 연구 된 시각적 단일 분자 생화학은 유리 배럴, 기밀 주사기, 튜브와 플로우 셀의 안정적인 연결 및 주사기와 튜브 사이에 스위칭 밸브를 배치하여 기포 제거를 사용하여 크게 촉진됩니다. 이 프로토콜은 DNA 거래 및 분자간 상호 작용의 시각화를 가능하게 하는 이중 광학 트랩을 설명합니다.

단일 분자 연구를 위한 이중 광학 핀셋 및 미세 유체 공학 사용

여기에서는 최대 1.2kHz의 속도로 힘에 민감한 생체 분자에 대한 나노기계적 측정을 수행하는 고속 자기 핀셋 설정에 대해 설명합니다. 우리는 모델 시스템으로 DNA 헤어핀과 SNARE 복합체에 대한 적용을 소개하지만 기계 생물학적 사건에 관여하는 다른 분자에도 적용 할 수 있습니다.

힘에 민감한 요소에 대한 나노 역학 측정을 위한 고속 자기 핀셋

이 프로토콜은 단일 분자 자기 핀셋을 사용하여 텔로미어 DNA 결합 단백질(텔로미어 반복 결합 인자 1[TRF1] 및 TRF2)과 인간 세포에서 추출한 긴 텔로미어 간의 상호 작용을 연구하는 방법을 보여줍니다. 텔로미어 및 텔로메릭 반복 결합 인자에 대한 준비 단계, 단일 분자 실험의 실행, 데이터 수집 및 분석 방법에 대해 설명합니다.

Single-Molecule Magnetic Tweezers를 사용한 텔로머 단백질-DNA 상호 작용 분석

우리는 짧은 DNA 분자의 기계적 성질을 탐험 할 수있는 일정한 힘을 축 광 핀셋의 사용을 보여줍니다. 축 방향으로 DNA를 스트레칭함으로써, 우리는 우리 ~ 100 nm의 짧은으로 DNA 분자를 연구 할 수 있습니다 steric hindrances 및 종래의 측면 조작하여 발생하는 유물을 최소화합니다.

상수 강제 축 방향 광학 족집게로 DNA의 짧은 시퀀스를 스트레칭

지속성 길이 또는 biopolymers의 굽힘 강성을 측정 할 방법이 설명되어 있습니다. 방법은 실험적으로 개별 미소의 지속성 길이를 결정하는 kinesin 기반 미세 소관 글라이딩 분석을 사용하고 고를 기반 글라이딩 assays에 적용 할 수 있습니다.

글라이딩 Assays를 사용 Biopolymers의 굽힘 강성 측정

셀룰로솜은 셀룰로오스를 소화하도록 설계된 다효소 복합체입니다. AFM 기반 SMFS는 셀룰로솜 관련 단백질 어셈블리의 기계적 특성과 접힘 구성을 연구하는 데 사용되었습니다. 우리는 셀룰로솜 조립에 관여하는 개별 수용체-리간드 복합체의 상호 작용을 연구하기 위해 단백질 고정화, 데이터 수집 및 데이터 분석을 위한 완전한 워크플로우를 제시합니다.

AFM 기반 Single-molecule Force Spectroscopy를 사용한 셀룰로솜의 수용체-리간드 시스템 조사

배우세요 마그네틱 족집게를 이용한 단일 분자 단백질 분해 측정법입니다. 콜라겐과 MMP-1을 사용하여 기계적 하중이 효소 활성에 미치는 영향을 실시간으로 분석하고 운동학적 매개변수를 도출하는 고효율 생물물리학 기법을 익히세요.

마그네틱 족집게를 사용하여 다중 단일 분자 강제 Proteolysis 측정

더 많은 동영상 탐색