Name: 질소 산화물 Bioactivity을 시금을위한 분석 기법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-18T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 28 s
Description: 배우세요 생물학적 샘플에서 질소 산화물 대사산물을 정확하게 검출하는 방법을. 혈액 샘플의 즉각적인 처리와 조직 채취를 통해 저산소 효과를 최소화하고, 생화학 분석으로 질산염, 아질산염, 니트로티올 수준을 정량화하여 혈관 내피 기능을 평가합니다.

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저자 홍 지앙 박사에게 감사를 표합니다 그리고 Deepa Parathasarthy, 시속, 기술 지원 BDS.

1. 전체 혈액 수집 <ol><li> 인간이나 NEM / EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)가 들어있는 튜브에 실험 동물의 정맥 혈액을 수집합니다. </li><li> 즉시 7분 대한 rcf는 (상대 원심력) 혈장 및 적혈구 세포 펠렛을 준비하는 14,300에서 benchtop 원심에 혈액을 다운 스핀. </li><li> 고성능 액체 크로마 토그래피 (HPLC)와 chemiluminescence 검출 (CLD) 분석을 위해 플라즈마 샘플을 준비합니다. HPLC : 플라즈마, 석출물 플라즈마 단백질까지 10 분간 13,200 rpm으로 소용돌이와 원심 분리기에서 차가운 메탄올의 1시 1분 볼륨을 추가합니다. HPLC 분석을위한 뜨는 수집합니다. CLD : 나누어지는 구체적으로 분석 nitrosothiols에 sulfanilamide 및 mercuric 염화와 샘플 및 preinc​​ubate. </li><li> HPLC 및 CLD 분석에 붉은 세포 펠렛을 준비합니다. HPLC : 10 밀리미터 NEM, 2.5 밀리미터 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)과 ferricyanide 10 밀리미터를 포함 hypotonic 용해 용액에 추가 1시 4분 붉은 세포 펠릿. 와동은 철저하고 1시 1분 메탄올, 와동과 centrif 추가침전물 단백질까지 10 분 동안 13,200 rpm으로 uge. HPLC 분석을위한 뜨는 수집합니다. CLD. 10 밀리미터 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산), 2.5 밀리미터 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)과 Ferricyanide 10 밀리미터를 포함 hypotonic 용해 용액에 1시 4분 붉은 세포 펠렛을 추가합니다. 나누어지는 샘플 nitrosothiols의 특정 검색에 대해 sulfanilamide 및 mercuric 염화물을 포함 튜브합니다. </li></ol> 2. 조직 추출 및 준비 <ol><li> NO metabolites의 조직 수준을 결정하기 위해서는 위에서 설명한 시료 준비를 위해 혈액을 무료로 조직을 수확 먼저 필요합니다. 전체 혈액의 교환은 좌심실의 꼭대기를 통해 생리 버퍼가 기적으로 열립니다. 모든 혈액이 제거되면 관심 휴지 그런 다음 수확 할 수 있습니다. </li><li> 조직 샘플을 Homogenize 및 HPLC 및 CLD 분석을 위해 위에서 설명한 샘플을 준비합니다. </li></ol> 3. 내피 기능에 대한 대동맥 반지 격리 조직 장기 목욕 <ol><li> 마우스가 anest 될 것입니다이상 반응 핀치를 상대하고, 이전 수술로 자궁 전위를 받아야 할 때까지 디에틸 에테르로 hetized. thoracotomy는 흉부 및 복부 대동맥을 폭로하기 위해 수행됩니다. 25 게이지 주사기는 좌심실의 꼭대기에 삽입 및 산소 Krebs Henseleit 버퍼와 혈액의 무료 perfused있다. </li><li> 오른쪽 심방은 혈액을위한 출구를 제공하기 위해 절단됩니다. 복부 대동맥이 제거되고 adventitia으로 지워지게됩니다. </li><li> 반지는 2mm 길이 세그먼트로 잘라 생리적 완충 용액으로 목욕 4 채널 조직 장기 목욕 (DMT 720MO, 광고 인 스트 루먼트)에 장착됩니다. </li><li> 선박 고리는 37 ° C.에 산소 Krebs 버퍼 (95% O 2 5 % CO 2)와 함께 10-ML 장기 욕조에 보관됩니다 한 g의 요구는 각 대동맥 고리 (이전 실험에서 결정된 최적 vasomotor 기능에 적합한 시작 장력)에 위치합니다. 여덟 채널 진수 브리지 (Powerlab) 및 데이터 수집 소프트웨어 (차트 버전 5.2.2)모든 힘을 측정을 기록하는 데 사용 기쁩니다. </li><li> 반지는 각 장기의 욕조에서 버퍼와 80분마다 20 분 동안 평형을 변경할 수있게됩니다. 80 분 대한 평형 후, 1 μm의 제품 phenylephrine은 submaximal 수축 각 고리에 추가됩니다. </li><li> 안정화되면, 이러한 아세틸콜린과 같은 내피 작용제는 선박 휴식 어떠한 생산과 노출된 정도를 확인하지에 추가됩니다. 아세틸콜린에 대한 선량 반응 후, 목욕탕은 질소 산화물, 평활근의 반응을 파악하고 100 %의 휴식을위한 가치를 얻을 나트륨 nitroprusside의 외인성 소스로 씻어서 recontracted 후 처리됩니다. </li><li> 어떠한 썩은 고기를 명확하게 선박 휴식 NO 및 억제의 석방을 설명하기 위해 욕조에 추가할 수 없습니다. </li></ol> 4. 대표 결과 이노-20 전용 HPLC의 이용은의 아질산염과 질산염의 구체적이고 민감한 검출을 위해 높은 처리량 방법을 사용하기 쉽게 제공합니다생물 학적 매트릭스. 감지 및 원래의 크로마토 그램의 원리는 그림 1에 표시됩니다. 이 방법은 아질산염과 질산염을 결정하는 생물 학적 샘플을 사용할 수 있습니다. NO metabolites의 CLD 기반 감지 NO의 분자 소스를 결정하는 화학 derivitization 단계가 필요합니다. chemiluminescence 검출기를위한 동시 산화 denitrosation 및 reductive denitrosation위한 실험 설정은 그림 2에 표시됩니다. 오른쪽의 반응 용기는 PBS 산도 7.4의 800mM ferricyanide으로 가득차 있으며, 왼쪽에있는 반응 용기는 감소 denitrosation위한 초산 (그림 2A)에 칼륨 요오드화물 / 요오드 혼합으로 가득합니다. 전체 설정은 그림 2B에 표시됩니다. 그림 3은 그룹의 특정 denitrosation의 아질산을 감지하고 계량 수 assays, nitrosothiols, nitrosamines뿐만 아니라 nitrosyl 헴 제품을 보여줍니다. 이 방법은 이전에 descri되었습니다침대 4,5 검증. 이러한 중요한 생화 학적 분석은 쉽게 내피 실험 동물에있어서 어떠한 생산을 결정하지 위해 절연 대동맥 고리에 대한 기능적 연구와 상호하실 수 있습니다. 이것은 고전 pharmacological 실험은 쉽고 정확하게 내피 기능과 생산 아니오를 평가할 수 없습니다. 이러한 아세틸콜린과 같은 내피 agonists에 선박 반응을 측정하는 것은 바로 다음 실험 동물의 혈액과 조직에서 발견 생화학 생체와 상호하실 수 있습니다 내피 어떠한 생산을 결정할 수 없습니다. 아세틸콜린에 대한 선량 반응의 전형적인 표현은 그림 4에 표시됩니다. 정상적인 내피 기능과 건강한 컨트롤 마우스는 휴식에 의해 아세틸콜린에 반응한다. 내피 기능 장애와 쥐 (hypercholesterolemic 생쥐)는 동일한 자극에 어떠한 생산을 줄일 수 없다 때문에 감소 휴식을 보여줍니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3722/3722fig1.jpg" /> 무화과우레 1. 이노-20 및 샘플 크로마토 그램에 의한 아질산염과 질산염의 검출 원리. 아질산염과 질산염에 대한 검색의 이노-20 방식의 (위) 도식. (아래) 10 pmol의 아질산염과 질산염의 표준 chromotogram는 이노-20 (아질산염과 질산염 100 nm의 솔루션을 100 μl)에 주입. 100 μl 주입 부피 각 음이온 1 NM의 감도. 단백질이나 색 종 아무도 간섭 없습니다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3722/3722fig2.jpg" /> 정화 질소 산화물 가스의 기상 탐지와 요오드화물 / 요오드 검정을 사용 ferricyanide하고 reductive denitrosation에 의해 모두 산화 denitrosation를 사용하여 그림 2. CLD 실험 설정. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3722/3722fig3.jpg" /> 그림 3. (패널) 그룹의 특정 chemic있는 샘플 preincubation 의해 reductive denitrosation 분석에서 아질산염의 Chemiluminescence 감지, RSNO, RNNO알 시약. 피크 영역의 뺄셈은 아질산염과 RSNOs의 검출을 허용합니다. ferricyanide의 산화 denitrosation 솔루션을 사용하여 nitrosyl 헴 종의 (패널 B) Chemiluminescent 탐지. 이 방법은 RSNOs (GSNO 또는 SNO-알부민) 또는 RNNO (NO-pyrrolidine와 N-nitroso-알부민)과 노 교차 반응으로 NO-헴 제품에만 적용됩니다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3722/3722fig4.jpg" /> 그림 4. 절연 대동맥 고리에서 전의 생체내 기관 목욕 후 HPLC 및 CLD에 의해 감지 생화학 생체와 상호하실 수 있습니다 내피 NO 생산의 직접적인 측정을 제공합니다. 이 수치는 더 이상 생산 감소하지 인해하도록 내피 기능 장애와 생쥐의 감소 휴식을 보여줍니다.

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</ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

방법은 여러 생물 학적 구획의 관련 없음의 metabolites의 부량 위해 여기에서 설명한 내피에 의한 NO의 기능 측정과 상호 수있는 건강과 질병의 어떠한 생물의 지문 채취를 허용합니다. 이러한 방법은 높은 처리량을 위해 적응을위한 잠재력을 지닌 간단한 샘플 준비가 필요합니다. 이러한 분자의 상대적인 수량은 질환의 실험적 모델과 인간의 환자에서조차 직렬 샘플 수가 NO의 생산과 신진 대사 운명을 이해하는 데 도움이됩니다. 인위적으로 시료 준비하는 동안 이러한 제품의 일부를 생산 어떠한 기반 생체 많은 분석 방법을 감지하지에 많은 함정이 있습니다. 생물 학적 샘플에서 아질산염에주의 회계 인해 시스테인 thiols 6 nitrosothiols 7 artifactual 형성과의 반응에 중요합니다. 무산소 조건에서 아질산의 특정 검출을위한 CLD 기반 방법론은의로 연결다른 생물 학적 구획 8 특정 아질산 환원 효소 효소의 활동으로 인해 일관성있는 결과입니다. 여기에서 설명...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> N-ethylmaleimide </td><td> 써모 과학 </td><td> 23,030 </td></tr><tr><td> EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> E7889 </td></tr><tr><td> Ferricyanide 칼륨 </td><td> Fluka </td><td> 60,299 </td></tr><tr><td> HPLC </td><td> Eicom 사 </td><td> 이노-20 </td></tr><tr><td> Autosampler </td><td> Alcott </td><td></td></tr><tr><td> DMT Myograph </td><td> 광고 인 스트 루먼트 </td><td></td></tr><tr><td> PowerLab </td><td> 광고 인 스트 루먼트 </td><td></td></tr><tr><td> Chemiluminescent </td><td> EcoPhysics </td><td> CLD 88Y </td></tr><tr><td> 원심 분리기 </td><td> Eppendorf </td><td> 5415D </td></tr><tr><td> 아세틸콜린 </td><td> 시그마 - 올드 리치</td><td> A6625 </td></tr><tr><td> R-(-) Phenylephrine </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> P6126 </td></tr></tbody></table>

질소 산화물 bioactivity을 시금을위한 분석 기법

Analytical Techniques for Assaying Nitric Oxide Bioactivity

질소 산화물은 (NO) 생물 학적 시스템 (혈액 순환에 이하 일초) 1로 극히 짧은 살고있다 이원 자유 라디칼이다. 아니오는 포함한 필수 기능을 조절, 우리의 신체에서 생산되는 가장 중요한 신호 분자 중 하나를 고려 없지만 혈압, 면역 반응 및 신경 통신 규제에 국한되지 수 있습니다. 따라서 생물 학적 매트릭스에서의 정확한 탐지 및 부량는 건강과 질병에서 NO의 역할을 이해하기 위해 중요합니다. NO 이러한 짧은 생리적 반 생활을 통해 어떠한 생화학의 반응 제품의 탐지를위한 대안 전략이 개발되었습니다. 여러 생물 학적 구획의 관련 없음의 metabolites의 양을 정함은 생체내에에 관해서는 어떠한 생산, 생체 이용률과 신진 대사에 중요한 정보를 제공합니다. 간단히 같은 혈액이나 혈장과 같은 하나의 구획을 샘플링하는 것은 전체 보의 정확한 평가를 제공하지 않을 수 있습니다특히 조직에서 어떠한 자격을 마구 없습니다. 실험 동물의 선택 조직으로 혈액을 비교하는 기능까지 건강과 질병의 어떠한 생체 진단 및 전조 유틸리티 등 기초 과학 및 임상 의학 간의 격차를 해소하는 데 도움이됩니다. 따라서 관심의 특정 조직에 혈장 또는 혈액 어떠한 상태의 추정은 더 이상 유효한 접근하지 않습니다. 그 결과, 방법 개발 및 생체내의 실험 동물의 여러 구획의 NO 및 NO-관련 제품 / metabolites의 탐지 및 부량을 허용하는 검증받을 것을 계속한다. 과 질산염 (NO 3 -) - 아질산 (NO 2) 최종 산화에 대한 수용성 guanylyl cyclase (SGC)의 활성화에 어떠한 synthases에 의해 생산에서 어떠한 생화학의 설립 패러다임은 생체내에서 NO의 효과의 일부분에 해당됩니다. S-nitrosothi을 형성하는 단백질 thiols, 차 아민 및 금속과 NO 및 NO-파생 metabolites의 상호 작용ols (RSNOs), N-nitrosamines (RNNOs) 및 nitrosyl-헴는 각각 NO의 cGMP 독립적인 효과를 나타내며 어떠한 의한 SGC의 활성화로 생리학 가능성만큼이나 중요하다. 생리학에서 NO의 진정한 이해는 동시에 여러 구획을 샘플링 생체내 실험에서에서 파생됩니다. 질소 산화물 (NO) 방법론은 어떠한 생화학에 대해서도 많은 논쟁과 토론의 복잡하고 종종 혼란 과학 및 초점이다. 우리의 능력을 구체적에 대한 어떠한 경첩과 관련된없는 새로운 메커니즘 및 신호 전달 경로의 해설은 선택과 sensitively 눈치채지 못한 어떠한와 관련된 모든 복잡한 생물 학적 매트릭스의 어떠한 제품과 metabolites을 수량. 여기서는 HPLC에 의한 아질산염과 질산염의 신속하고 민감한 분석 방법뿐만 아니라 NO의 분자 소스뿐만 아니라 전 생체내과를 결정하는 화학 derivitazation와 체외의 오존 기반 chemiluminescence에서 사용하는 생물 학적 시료의 여유 없음의 검출을 제시장기 목욕 myography.

질소 산화물 (NO)의 내생적인 생산은 생물 학적 기능의 다양한 조절. 그것은 어떠한 기반 시그널링의 장애 또는 dysregulation이 많은 사람이 질병에 연루되어 있는지 점점 더 분명 해지고 있습니다. 메소드는 더 이상 metabolites 인간 질병에 대한 소설 진단 또는 전조 생체 자료를 제공할 수 없습니다 관련된 계량합니다.

질소 산화물 Bioactivity을 시금을위한 분석 기법

산화질소(NO)는 생체 내에서 수명이 극도로 짧은(순환 혈액 내에서 1초 미만) 이원자 자유 라디칼입니다1. NO는 ...

다음 실험의 전반적인 목표는 생물학적 시료에서 일산화질소 대사물을 정확하고 특이적으로 검출하는 방법을 시연하는 것입니다. 이를 위해 우선, 대사물의 손실이나 아티팩트(artifact) 형성을 방지하기 위해 채혈 직후 혈액 시료를 처리합니다. 이와 동시에, 저산소 환경이 일산화질소 대사물에 미치는 영향을 최소화하기 위해 신속하고 효율적인 조직 채취를 수행합니다.대동맥 링을 수집하여 오간 배스(organ bath)에 걸어 내피 기능을 평가합니다. 또한, 생화학적 분석을 통해 조직 내 질산염 수치, 아질산염 수치, 그리고 니트로티올 및 기타 니트로화 생성물의 상대적 수치를 정량화합니다. 이러한 분석법을 사용하여 실험군과 대조군 동물을 적절히 비교함으로써 일산화질소의 생성 및 대사에 관한 유용한 정보를 얻을 수 있습니다.단일 방법이나 분석법보다 이러한 다중 시스템 접근법을 사용하는 주요 장점은 여러 장기 시스템에서 산화질소 생화학의 더 넓은 전체상을 파악할 수 있다는 점입니다. 이를 통해 이러한 대사산물 중 어떤 것이 예후 또는 진단적 유용성을 가질 수 있는지, 그리고 산화질소 대사산물의 레퍼토리가 내피 산화질소 형성 및 가용성을 어떻게 반영하는지 이해하기 시작할 수 있습니다. 공정의 각 단계가 시료의 무결성을 유지하는 데 매우 중요하므로, 이 방법의 시각적 시연이 필수적입니다.일반적인 학술지의 방법 섹션만 읽어서는 시료 채취 및 조직 추출의 세부 사항이 매우 정밀하기 때문에 일부 단계들을 명확히 파악하기 어렵습니다. 본 절차의 시연은 저희 실험실의 수석 연구원인 Hong Jing 박사가 진행하겠습니다. 본 프로토콜을 위해 혈액 채취가 가능한 사람 또는 실험 동물을 준비하십시오. 실험 동물을 사용하는 경우, 해당 동물의 조직 또한 함께 검사하게 됩니다.먼저, 25 gauge 바늘을 하대정맥(inferior vena cava)에 삽입하여 전혈을 수집합니다. 500 to 1000 µL가 수집되면, 좌심실 첨단(apex of the left ventricle)을 통해 생리적 완충액을 주입하여 동물 체내의 잔류 혈액을 제거하며, 혈액과 완충액이 하대정맥을 통해 배출됨에 따라 혈액이 완전히 교체되도록 합니다. 정맥혈은 수집 직후 NEM과 EDTA가 포함된 1.5 mL 원심분리 튜브에 수집해야 합니다.원심분리 후 14,300 RCF에서 7분 동안 혈액을 회전 분리합니다. 피펫을 사용하여 RBC 펠렛으로부터 혈장을 흡입하고 이를 별도의 튜브로 옮깁니다. 분리된 혈장 샘플 50 µL에 동일한 부피의 차가운 메탄올을 첨가하여 HPLC 분석을 위한 준비를 합니다.혼합물이 탁해질 때까지 3~5초 동안 강하게 볼텍싱합니다. 그런 다음 14,300 RCF에서 7분 동안 혼합물을 원심분리합니다. 혈장 단백질을 침전시키기 위해 상층액을 별도의 1.5 milliliter 튜브에 수집하고, 분석 전까지 4 °C에서 보관합니다.화학발광 분석을 위해 혈장을 준비하려면, 약 200 내지 400 µL 정도 남은 혈장 부피를 두 부분으로 나눕니다. 혈장의 절반에 5% 산성 황화물을 부피 기준 10% 추가하고 10분 동안 기다려 준비합니다. 이제 이 시료를 CLD 분석에 사용할 수 있습니다.5분 후, 2% 염화수은(mercuric chloride)을 10% 부피만큼 첨가하여 플라즈마의 나머지 절반을 준비합니다. 실온에서 산성화된 설폰아마이드(sulfonamide)를 10% 부피만큼 첨가합니다. 다시 10분 동안 기다린 후, 플라즈마와 동일하게 이 시료를 CLD에 주입합니다.RBC 펠릿은 HPLC 및 CLD 분석 모두를 위해 준비할 수 있습니다. 세포 펠릿 1분량에 저장성 용해액 4분량을 혼합하는 것으로 시작하십시오. CLD 분석을 위해 혼합물을 충분히 볼텍싱하십시오.세포 준비 과정은 혈장 준비 과정과 동일합니다. 먼저 동일한 부피의 methanol을 첨가합니다. 그런 다음 혼합물을 3~5초간 강하게 vortex한 후, 14,300 RCF에서 7분간 원심 분리합니다.이제 상층액을 피펫으로 제거하여 4 °C에 보관하고, 이후 HPLC 분석을 통해 조직 내 산화질소 대사물질 수치를 측정합니다. 실험 동물의 해당 관심 조직의 경우, 먼저 이전 섹션에서 설명한 대로 혈액을 채취 및 준비해야 하며, 조직이 저산소 상태가 되지 않도록 속도와 효율성에 각별히 주의하여 평소와 같이 조직을 채취해야 합니다. 채취가 완료되면, NEMEDTA가 포함된 PBS를 1:5 비율로 사용하여 조직 시료를 균질화합니다.그 후, 이전 섹션의 RBC 분석 방법과 동일하게 균질화된 조직을 HPLC 및 CLD 분석을 위해 준비합니다. 성체 마우스를 에테르로 마취하고 발가락 꼬집기에 반응이 없는 것을 확인한 후, 흉강 절개술을 실시합니다. 흉골부터 치골 부위까지 정중선 절개를 하여 흉강과 복강을 노출시킵니다.다음으로, 산소화된 Krebs Alite 완충액으로 동물을 관류합니다. 25게이지 주사기를 사용하여 좌심실 심첨부에 완충액을 주입하십시오. 이때 혈액이 배출될 수 있도록 우심방을 절개하여 엽니다.관류 후, 대동맥을 덮고 있을 수 있는 간, 폐 및 기타 조직을 절개하여 제거함으로써 복부 대동맥을 분리합니다. 다음으로, 핀셋으로 심장을 잡고 동물의 후벽으로부터 대동맥을 조심스럽게 절단하여 분리합니다. 심장과 대동맥을 얼음이 채워진 페트리 접시에 넣습니다.디쉬에 차가운 Krebs 완충액을 채웁니다. 대동맥에서 지방과 외막을 조심스럽게 절제하여 제거합니다. 세척 과정에서 혈관 내부의 내피세포가 손상되지 않도록 주의하십시오.5분마다 산소가 공급된 차가운 얼음 버퍼로 교체하여 대동맥의 대사 속도를 늦춤으로써 저산소증을 방지하십시오. 이제 메스를 사용하여 대동맥을 3 mm 길이의 링 모양 세그먼트로 절단합니다. 절단된 세그먼트들을 산소가 공급된 Krebs 버퍼가 채워진 4채널 10 mL 조직 장기 배양조(tissue organ bath)로 옮기십시오.트랜스듀서 노브를 사용하여 각 대동맥 링에 1.5 grams의 예비 장력을 가합니다. 경험적 연구 결과에 따르면, 최적의 혈관 운동 기능을 위한 적절한 초기 장력은 1.5 grams입니다.8채널 옥탈 브리지(octal bridge)와 데이터 수집 소프트웨어를 사용하여 마우스의 힘 측정을 모니터링하고 기록하며, 20분마다 버퍼를 교체하면서 80분 동안 링을 평형 상태로 둡니다. 그 후 실험을 진행합니다. 조직 장력이 평형에 도달하면, 하위 최대 수축을 유도하기 위해 각 링에 100 nanomolar fennel rine을 첨가합니다. 링의 장력이 안정화되어 일정 수준의 톤(tone)이 유지되면, acetylcholine과 같은 내피 작용제에 대한 용량-반응 분석을 수행합니다.이를 통해 일산화질소 생성량과 혈관 이완 정도를 결정합니다. 아세틸콜린에 대한 용량 반응 측정이 끝나면, 욕조를 Krebs 버퍼로 씻어내고 각 장기 욕조에 100 nanomolar 페넬린(fennel rine)을 첨가하여 혈관을 수축시킵니다. 그 후, 가용성 구아닐릴 사이클라아제(soluble guile cyclase) 억제제인 ODQ의 처리 여부에 따라, 소듐 나이트로프루사이드(sodium nitropress side)와 같은 외인성 일산화질소원에 대한 평활근 링의 반응성을 다시 결정합니다.이러한 방식의 접근법은 혈관의 100% 이완 값을 결정하며, 혈관 이완에 대한 산화질소 반응을 매개하는 가용성 구아닐릴 사이클레이스의 필수적인 성격을 보여줍니다. ODQ는 아세틸콜린에 반응하여 소듐 니트로프루사이드에 의해 일어나는 이완을 방해하기 때문에, 건강한 대조군 마우스의 대동맥 링은 이완된 반면, 내피 기능 장애가 있는 마우스의 대동맥 링은 산화질소 생성 감소로 인해 이완이 감소된 것을 나타냈습니다. 또한 대조군 동물들을 대상으로 아질산염의 화학발광을 이용한 그룹별 탈질화 분석이 수행되었습니다.환원적 탈질소화 분석법(reductive denitros assay)을 사용하여 RSNO와 RNNO를 검출하였습니다. 피크 면적을 차감함으로써 아질산염(nitrite)과 r sno 수준을 측정하였습니다. 이 방법은 순환하는 이러한 일산화질소 대사물질의 수준이 조직 수준을 어떻게 반영하는지, 그리고 서로 다른 질환 상태에서 질환 대사물질이 어떻게 변하는지와 같이 일산화질소 및 혈관 생물학 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.단일 동물의 여러 장기 시스템과 전신 순환계에서 이러한 관련 일산화질소 대사산물의 정상 상태 농도와 반감기를 결정하면, 질병 과정의 특정 분자적 시그니처를 식별할 수 있으며, 새로운 일산화질소 기반 치료법을 정의하는 데 도움이 되어 임상의가 질병의 중증도나 진행 정도를 판단할 수 있는 더 나은 바이오마커를 확보할 수 있게 될 것입니다. 일반적으로 일산화질소 분야의 입문자들은 생물학적 샘플에서 발견되는 이러한 낮은 수준의 일산화질소 대사산물을 검출하고 정량화하기에 많은 분석법의 민감도가 충분하지 않기 때문에 어려움을 겪을 수 있습니다. 무엇보다도, 숙련되지 않은 작업자는 샘플 처리 과정에서 아티팩트를 생성할 가능성이 높으며, 이는 잘못된 데이터 생성과 데이터의 오해석으로 이어질 수 있습니다.

analytical-techniques-for-assaying-nitric-oxide-bioactivity

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

염증성 세포 신호 분자인 산화질소(NO)의 수준은 일반적으로 Griess 시약을 사용하여 분석합니다. 이 프로토콜에서는 간단하고 정량화할 수 있으며 반복 가능한 방법으로 NO의 분비를 검출하기 위해 살아있는 초파리 뇌 조직을 사용하여 변형된 Griess 분석을 만들었습니다.

Drosophila Neuroinflammatory Response에서 산화질소 수치의 새로운 전체 조직 정량 분석

이 문서에서 우리는 형광 염료를 엉 얼굴 동시 탐지 및 세포 내 산화 질소의 시각화 (NO)과 슈퍼 옥사이드 음이온 (O 2 diaminofluorescein-2 디 아세테이트 (DAF-2DA) 및 dihydroethidium (DHE)를 사용하여 적응 상대적으로 쉬운 방법을 설명 .- )는 각각 갓에 비만 마우스 모델을 그대로 대동맥을입니다.

본래 동맥의 내피 층에서 산화 질소와 활성 산소의 욕실 얼굴 인식

산화질소(NO)는 혈관 항상성에서 중요한 신호 분자입니다. NO in vivo 생산량은 직접 측정하기에 너무 낮습니다. 화학발광(Chemiluminescence)은 전구체와 산화 생성물인 아질산염 및 질산염을 측정하여 NO cycle에 대한 유용한 통찰력을 제공합니다. 신체 조직과 체액에서의 아질산염/질산염 측정에 대해 설명합니다.

화학 발광 법을 사용하여 생체 물질에서 산화 질소 통로에서 아질산염과 질산염, 대사 산물을 측정

이전 연구는 대기 중 질소 산화물의 질소 동위원소 구성이 환경에 대한 다양한 공급원의 영향을 구별할 수 있음을 시사합니다. 우리는 시간별 시간 분해능에서 N 동위원소 분석을 위한 대기 NOx의 높은 수집 효율을 위한 자동화된 모바일 현장 기반 방법에 대해 보고합니다.

고해상도 모바일 콜렉션 시스템은 NO의 질소 동위 원소 분석, 자동화<sub&gt; X</sub

이 문서는 postharvest 해충에 대 한 산화 질소 (NO) 훈 증 프로토콜을 설명합니다. 질소 (N2) 아니오 전에 ultralow 산소 조건 설정 하로 훈 증 챔버 플러시 주입. 끝에, 챔버 N2 없음2에 노출을 방지 하기 위해 주변 공기에 제품을 노출 하기 전에 노 희석 플러시됩니다.

산화 질소 가스와 해충에 대 한 훈 증 실험실의 절차

여기, 우리 혈액에 산화 질소 매우 민감한 센서로 혈소판의 잠재적인 사용을 해결 하기 위해 프로토콜을 제시. 그것은 산화 질소 생성기로 초기 혈소판 준비 및 아 질산염 및 deoxygenated 붉은 혈액 세포를 사용 하 여 설명합니다.

VASP 인 산화를 측정 하 여 혈액에 산화 질소의 혈소판 기반 탐지

우리는 질산염과 아질산염의 수준을 측정하고 비교하기 위해 쥐 골격근 조직의 4 가지 근육 그룹의 균질화를위한 세 가지 다른 방법에 대한 프로토콜을 제시합니다. 또한 조직 샘플 크기가 균질화 결과에 영향을 미치는지 여부를 조사하기 위해 다양한 샘플 가중치를 비교합니다.

질산염 및 아질산염 측정을 위한 쥐 골격근 균질액의 제조

여기에서는 고감도의 화학 발광 기반 분석을 사용하여 산화 질소 및 이의 생물학적 관련 유도체를 검출하기위한 프로토콜을 제시합니다.

산화 질소 및 그 유도체의 검출을위한 화학 발광 기반 분석 및 자동 산화 및 니트로화 화합물

이 프로토콜은 삼이오다이드 기반 화학발광 분석법을 이용해 위단 분비물(ALI)에서 분화된 기도 상피 배양에서 일산화질소(NO) 생성을 정량화하는 방법을 설명합니다.

공기 액체 계면에서 분화된 마우스 기관 상피 세포 배양에서 질소 산화물 생성 측정

우리는 FDA 승인, superparamagnetic 철 산화물 (SPIO), ferumoxytol (Feraheme)와 줄기 세포를 라벨링 및 추적을위한 기술을 설명합니다. 시각화에 대한 자기 공명 (MR) 영상을 이용하여이 세포 이미징 기술은 환자의 성공 여부에 줄기 세포 engraftments의 장기 모니터링 및 진단을 위해 쉽게 액세스할 수 있습니다.

Ferumoxytol, FDA 승인 철 산화물 Nanoparticle과 함께 줄기 세포를 라벨링

배우세요 생물학적 샘플에서 질소 산화물 대사산물을 정확하게 검출하는 방법을. 혈액 샘플의 즉각적인 처리와 조직 채취를 통해 저산소 효과를 최소화하고, 생화학 분석으로 질산염, 아질산염, 니트로티올 수준을 정량화하여 혈관 내피 기능을 평가합니다.

질소 산화물 Bioactivity을 시금을위한 분석 기법

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