Name: Methicillin 내성의 실험 심내막염 모델 황색 포도상 구균 (MRSA) 쥐에서 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-04T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 46 s
Description: 배우세요 쥐에서 MRSA에 의한 실험 심내막염 모델을 수립하는 방법을. 꼬리 정맥 주입과 카테터 삽입을 통해 감염을 유도하고 조직을 정량 배양하여 병원성과 치료 효능을 연구할 수 있습니다.

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이 작품은 건강의 미국 국립 연구소에 의해 지원되었다 [부여 ASB에 R01AI-39108]와 미국 심장 협회 [보조금 SDG 0630219N 및 YQX에 대한 지원 09GRNT2180065].

1. 감염 MRSA 변종 준비 <ol><li> 소이 한천 배지 (TSA) 플레이트 Trypticase 양의 혈액 (특정 시약 및 장비의 표 참조) -80에서 재고 관에서 MRSA 문화의 loopful ° C를 접종하고, 37 ° C에서 하룻밤 동안 품어. </li><li> 전혀 오염이없는 있는지 확인하기 위해 혈액 한천 플레이트 (유사 식민지의 ph​​enotypes)에서 문화의 순도를 확인합니다. </li><li> 양의 혈액 TSA 플레이트에서 한 식민지를 선택하고 15 ML 스냅인 뒤덮인 튜​​브에 5 ML Trypticase 간장 국물 (TSB)에 식민지의 예방. </li><li> 37 품어 ° C에서 200 rpm으로 떨고있는 하룻밤. </li></ol> 2. 수술 카테터를 준비 10cm 길이로하고, 멸균 포셉와 팁을 눌러 한쪽 끝을 녹여, 폴리에틸렌 튜브 (Becton 디킨슨, 순서없이 427,401. PE10)을 잘라. 카테터의 한쪽 끝을 씰링의 목적은 catheterization 동안 출혈을 방지하는 것입니다. 3. 사전의urgery 준비 및 아나스타샤 <ol><li> isofluorane - 산소 가스 혼합물 (50 % : 50 %)를 포함하는 챔버에서 개최되는 Sprague-Dawley 쥐 (할렌, 인디애나 폴리스 여성, 2백50-3백g) 마취하기 전까지는 (적용됩니다 예 : 근육은 긴장과 페달 반사 부재 있습니다 ) 및 가스 혼합물로 수술하는 동안 anesthetized 상태의 동물을 유지합니다. </li><li> 턱에서 불과 Betadine 및 70 % 에탄올과 흉골 아래 목 부분을 청소합니다. </li></ol> 4. 수술 <ol><li> 수술 전반에 걸쳐 무균 기술을 사용합니다. 수직 흉골 위의 목의 유일한 피부 계층을 통해 절개 (1-1.5 cm)를 확인합니다. </li><li> 무딘 절개 사용하여 곡선 톱니 포셉 2 켤레를 사용하여 오른쪽 경동맥을 노출 근막을 분리. </li><li> 부드럽게 목 캐비티의 동맥을 밖으로 끌어 올려서, 그리고 실크 봉합사의 두 개 10cm 길이 동맥 아래와 노출된 두부 끝에 동맥을 묶을, 아르테에 클립을 삽입출혈을 방지하는 공예. </li><li> 카테 테르 introducer (Becton 디킨슨, 주문 안돼. 406,999)를 사용하여 동맥의 상단에 작은 구멍을 만들고, 동맥에있는 구멍을 통해 포셉로 카테터를 삽입, 클립을 제거하고 심장 방향으로 카테터를 밀어 때까지 저항 충족하고 있습니다. </li><li> 동맥의 꼬리 끝에 주변의 느슨한 봉합을 묶어하고 카테터가 정한 장소에있을 때 실크 봉합사가있는 장소에서 카테터를 확보 : I) 삽입된 카테 테르의 길이 (4~5센티미터) 추가 발전에 ii) 본 저항 및 3) 심장 박동과 카테터의 맥동. 실험의 나머지를위한 장소에 카테터를 남겨주세요. </li><li> 과잉 봉합 및 카테 테르의 끝을 잘라, 그리고 카테 테르로부터 출혈이 없다는 것을 확인하십시오. 목 피부 아래에 미심쩍은 부분을 넣어, 피부 클립으로 피부를 닫습니다. </li><li> 마취에서 회복 때까지 따뜻한 곳에 새장에 쥐를 삽입하고, 음식과 물을 제공합니다. 도중에 자주 쥐를 확인하고후 마취에서 회복. </li><li> 이 수술은 &#39;카테고리 전자 &quot;절차입니다. 고통을 생산 절차는 동물에게 고통을 동반 MRSA 감염 이후 진통제에 의해 누그 러지지 않은 것입니다. </li></ol> 5. MRSA 감염 <ol><li> 감염은 1 칠일 수술 사이에 수행하지만, 실험 내에서 일관성있게 유지할 수 있습니다. </li><li> 클린 쥐의 70 %의 에탄올과 꼬리, 그리고 원하는 셀 개수 (10 4 - 가장 S. 구균의 변종에 대한 10 6 cfu / 동물)에서 0.5 ML MRSA를 삽입. 꼬리 정맥에서 정맥 G 2분의 1 인치 바늘 27와주의 사항 : MRSA 문화 biosafety 레벨 2 (BSL2)에 속하는 인력과 환경에 어느 정도 잠재적인 위험을 가지고 있습니다. </li><li> hemostasis는 새장에 쥐를 제공하기 전에 발생할 때까지 사이트에서 압력을 잡아. </li></ol> 6. 희생 고양이와 문화 대상 조직 <ol><li> 나트륨 pentobarbital (200 MG의 IP 주사로 쥐를 희생/ ㎏) 1-6일 이후 감염 후. </li><li> 그녀의 쥐를 삽입하고 70 % 에탄올로 가슴을 닦으십시오. </li><li> 흉골 아래의 가슴에 V 자형의 절개를 확인하고 가슴을 노출하는 흉골의 각 측면에있는 갈비뼈의 연골을 했네요. </li><li> 최대 부드럽게 가슴을 당겨와 클립 대동맥 가까운 심장 조직을 통해 마음을 해방하기 위해 해부. </li><li> 4x4 인치 거즈 내부와 멸균 배양 접시에 마음을 놓고, 왼쪽 심실 내벽을 통해 상처를 만들고 왼쪽 양면 챔버를 엽니다. </li><li> 카테 테르 게재 위치를 시각적으로 확인합니다. 검사하고 가위와 집게와 밸브에서 vegetations를 제거합니다. </li><li> 무게와 homogenize vegetations을, 그리고 양적 문화를 위해 PBS로 직렬 dilutions하다. </li></ol> 7. 대표 결과 바로 동맥에 카테터를 삽입하고 심장쪽으로 4~5센티미터에 대한 카테터를 밀어 후 저항 experien 될 것입니다ced. 저항이 감지되지 않으면 카테터는 성공적으로 카테터의 배치에 영향을 줄 수있는 심장 챔버의 왼쪽에 삽입되지 않았을 수 있습니다. 이전 9 출판 올바른 카테터 게재 위치는 그림 1에 표시됩니다. MRSA 감염 샘플 중 하나는 감염 시료의 감염과 정결에 대한 정확한 가능한 세균 수를 확인 정량 교양 있어야합니다. 또한, vegetations에서 발견한 미생물들은 i​​noculum에 사용된 것과 동일해야합니다. 표 1은 S.의 독성의 예를 제시 이전 9로 출판 되었음 : 쥐 심내막염 모델에서 구균 변형. 모든 동물은 10 5 10 6 cfu의 inocula 맡고 및 6-3 사이의 일 높은 S로 감염 개발한 endocardits 후 희생 심장 vegetations뿐만 아니라 신장과 비장의 구균 밀도 ( <st룽&gt; 표 1). 멸균 밸브 문화와 쥐가 감염되지 않은 것으로 간주됩니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3863/3863fig1.jpg" /> 그림 1. 카테터가 올바른 위치 (심장 챔버의 왼쪽)에 있으며, 수많은 vegetations은 대동맥 판막 9 시에 볼 수 있습니다. <table border="1"><tbody><tr><td> Inoculum (animas 호) </td><td colspan="3"> 조직의 10 CFU / g ±에서 SD를 기록할 평균 : </td></tr><tr><td></td><td> 초목 </td><td> 신 </td><td> 비장 </td></tr><tr><td> 10 6 CFU / 동물 (9) </td><td> 10.36 ± 0.85 </td><td> 7.30 ± 0.64 </td><td> 6.70 ± 0.57 </td></tr><tr><td> 10 5 CFU / 동물 (8) </td><td> 9.93 ± 0.53 </td><td> 7.14 ± 0.53 </td><td> 6.44 ± 0.63</td></tr><tr><td> 10 4 CFU / 동물 (7) </td><td> 3.46 ± 0.50 * </td><td> 1.81 ± 0.74 * </td><td> 1.58 ± 0.59 * </td></tr></tbody></table> SD, 표준 편차. P 10 5 10 6 CFU 남겨놓은 동물과 관련한 &lt;0.001. 표 1. S. 쥐 심내막염 모델 9 가지 inocula과 심장 vegetations의 구균 밀도.

<ol><li>Petti, C. A., Fowler, V. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Staphylococcus+aureus+bacteremia+and+endocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiol.+Clin%22%5BJournal%5D)">Staphylococcus aureus bacteremia and endocarditis.</a> Cardiol. Clin. 21, 219-233 (2003).</li>
<li>Bashore, T. M., Cabell, C., Fowler, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Update+on+infective+endocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Probl.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Update on infective endocarditis.</a> Curr. Probl. Cardiol. 31, 274-352 (2006).</li>
<li>Fowler, V. G. Jr, Justice, A., Moore, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Risk+factors+for+hematogenous+complications+of+intravascular+catheter-associated+Staphylococcus+aureus+bacteremia%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Infect.+Dis%22%5BJournal%5D)">Risk factors for hematogenous complications of intravascular catheter-associated Staphylococcus aureus bacteremia.</a> Clin. Infect. Dis. 17, 313-320 (1993).</li>
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</ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

쥐 심내막염은 세균 감염 9-11의 치료 pathogenesis 및 항균 대리인의 생체내 연구에 대한 중요하고 잘 특징 동물 모델입니다. 또한, 쥐의 심내막염 모델은 급성과 하위 급성 감염의 합성을 대표하고, 밀접하게 인간의 대응과 인간의 원시 밸브 심내막염을 모방한 것이었 지요. 또한,의 주거 카테터와 함께, 그것은 고전 biofilm - 연관된 감염, 임상 설정 12 일반적이고 어려운 문제를 나타냅니다. 가장 중요한 것은 쥐 심내막염 모델로 생성된 결과는 매우 재현할 수 있습니다. S.의 pathogenicity 쥐 심내막염 모델에서 구균은 다른 동물 모델로, inoculum 선량, 박테리아의 성장 단계 (로그 대 고정), 동물의 나이, 그리고 동물의 유전적 배경 9, 13을 포함하여 매개 변수의 수에 따라 달라질 수 있습니다. 외과의 성공 요금은 H입니다연구원의 기...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 댓글 </td></tr><tr><td> Trypticase의 콩 한천의 혈액 한천 플레이트, 5 %의 양을 혈액 (TSA) </td><td> 하디 진단 </td><td> A10BX </td><td></td></tr><tr><td> Trypticase 간장 국물 (TSB) </td><td> Becton 디킨슨 </td><td> 211,825 </td><td></td></tr><tr><td> 배양기를 흔들어봐 </td><td> Labnet </td><td> I5311-DS </td><td></td></tr><tr><td> 폴리에틸렌 튜브 </td><td> Becton 디킨슨 </td><td> 427,401 </td><td></td></tr><tr><td> 카테 테르 introducer </td><td> Becton 디킨슨 </td><td> 6999 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Isofluorance </td><td> 서양 의학 SuppY, INC </td><td> 2147 </td><td> 안전 및 취급 정보를 따라 </td></tr><tr><td> 외과 용구 </td><td> 파인 과학 도구 및 바이오 메디컬 리서치 인 스트 루먼트 주식 회사에게 </td><td></td><td> 사용자의 요구에 두 회사로부터 악기를 찾기 </td></tr></tbody></table>

methicillin 내성의 실험 심내막염 모델<em&gt; 황색 포도상 구균</em&gt; (mrsa) 쥐에서

Experimental Endocarditis Model of Methicillin Resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in Rat

심내막염을 포함한 Endovascular 감염은 생명을 위협하는 전염성 syndromes 있습니다 1-3. 포도상 구균은 unacceptably 높은 병적 상태, 심지어 적절한 항균 대리인 트리 트먼트 4-6과 사망률과 같은 syndromes의 가장 일반적인 전세계 원인입니다. 인해 methicillin - 내성 S.로 감염의 증가 구균 (MRSA)은 vancomycin 임상 치료 실패 및 linezolid와 daptomycin 저항의 증가 문제의 높은 가격은 같은 감염 환자의 더 복잡한 관리 기능을 가지고 있고, 높은 의료 비용 7, 8로 이끌었다. 또한, 그것은 항생제 치료 결과와 최근의 연구는 임상 설정에 기반되어, 따라서 잘 환자 대 환자에서 다양한 호스트 요인에 의해 영향을받을 수 있다고 강조한다. 따라서, 호스트 요인 동물 대 동물에서 유사한있는 endovascular 감염의 관련 동물 모델은 더미생물 pathogenesis뿐만 아니라, 소설 항균 대리인의 효능을 조사하는 것이 매우 중요합니다. 쥐의 심내막염은 밀접하게 인간의 기본 밸브 심내막염을 대략 잘 확립된 실험 동물 모델입니다. 이 모델은 특히 포도상 구균 독성 요인의 역할과 포도상 구균 심내막염에 대한 항생제 치료 regimens의 효능을 검사하기 위해 사용되었습니다. 이 보고서에서는 세균 pathogenesis 및 항생제 치료에 반응을 조사하는 데 사용할 수있는 MRSA에 의한 실험 심내막염 모델을 설명합니다.

methicillin - 내성으로 인해 실험 쥐의 심내막염 모델<em&gt; S. 구균</em&gt;.

Methicillin 내성의 실험 심내막염 모델<em&gt; 황색 포도상 구균</em&gt; (MRSA) 쥐에서

심내막염을 포함한 혈관 내 감염은 생명을 위협하는 감염성 증후군입니다1-3. 황색포도상구균(Staphylococcus aureus)은 전 세계적으로 가장 흔한 원인균이며...

이 프로시저의 전체적인 목표는 쥐를 이용한 실험적 감염성 심내막염 모델을 구축하는 것입니다. 이를 위해 먼저 aureus를 배양하고 감염용 수술 카테터를 준비합니다. 그 다음, 수술 부위를 준비하고 동물에게 마취를 실시합니다.동물에게 마취를 실시한 후, 우측 경동맥을 통해 심장 방향으로 카테터를 삽입합니다. 마지막 단계로 꼬리 정맥 주사를 통해 동물에게 aureus를 감염시킵니다. 최종적으로 표적 조직을 적출하여 정량 배양을 위해 준비합니다.신속 심내막염 모델과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 적색 심내막염 모델을 in vivo 이미징 시스템인 Ivus와 함께 사용할 수 있다는 점입니다. 이 방법은 항균제의 효능 및 병원성으로 대표되는 구강 발병 기전 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 일반적으로 이 기술이 처음인 사람은 수술 과정이 까다롭기 때문에 어려움을 겪을 수 있습니다.먼저 냉동 보존된 M SSA 배양액을 루프 가득 덜어 양 혈액 한천 사면배지에 접종합니다. 오염이 없는지 확인한 후, 대두-카제인 소화물 한천(soy auger) 플레이트에서 배양액을 37°C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 플레이트에서 단일 콜로니 하나를 선택하여 15 mL 스냅 캡 튜브에 담긴 5 mL의 try toay soy broth에 접종합니다.접종물을 진탕 배양기에서 37°C로 하룻밤 동안 배양합니다. 먼저 카테터를 준비하기 위해 200 RPM으로 설정합니다. 폴리에틸렌 튜브를 10 cm 길이로 자르고, cex 소독액에서 30분 동안 카테터를 멸균합니다.다음으로, 가열된 멸균 포셉으로 멸균 튜브의 한쪽 끝을 눌러 녹여, 우경동맥에서 좌심실로 진입하여 심장 박동 시 심내막에 손상을 줄 수 있는 카테터를 제작합니다. 그 다음, 마취제가 효과를 나타낼 때까지 이소플루란과 산소 혼합 가스가 1:1 비율로 들어 있는 챔버에 쥐를 넣어 마취시킵니다. 근육이 이완되었는지와 발 반사가 소실되었는지를 확인하여 마취 상태를 검증합니다.가스 혼합물이 연결된 노즈콘을 사용하여 수술 중에 마취 상태를 유지하십시오. 수술 전 과정 동안 무균법을 사용하여 베타딘과 70% ethanol로 수술 부위를 세척하십시오. 쥐를 등으로 눕힌 자세(dorsal position)로 배치하고, 둔성 박리법을 사용하여 흉골 위쪽의 목 피부층을 수직으로 절개하십시오.근막을 분리하여 우경동맥을 노출시킵니다. 우경동맥은 쇄골 위쪽 정중선에서 약간 오른쪽에 위치합니다. 경부강에서 동맥을 조심스럽게 끌어올린 후, 노출된 두측단에서 결찰할 수 있도록 10cm 길이의 실크 봉합사 두 가닥을 동맥 아래에 배치합니다.그 다음, 출혈을 방지하기 위해 동맥에 클립을 고정합니다. 포셉과 카테터 도입기를 사용하여 동맥 상단에 작은 구멍을 냅니다. 카테터의 밀봉되지 않은 끝부분을 동맥의 구멍을 통해 삽입합니다.클립을 제거하고 카테터를 심장 방향으로 밀어 넣습니다. 저항이 느껴질 때까지 삽입하며, 카테터가 동맥 내부로 4~5 cm 정도 들어가 쥐의 심박동에 따라 맥동해야 적절하게 삽입된 것입니다. 카테터가 제자리에 위치하면, 동맥의 끝부분 주변을 느슨하게 봉합하고 카테터를 고정합니다.실크 봉합사로 여분의 봉합사와 카테터 끝부분을 잘라낸 후, 끝부분을 목 피부 아래로 밀어 넣습니다. 피부 클립을 사용하여 피부를 봉합합니다. 쥐를 깨끗한 케이지에 넣고 마취에서 회복될 때까지 따뜻한 곳에 둡니다.회복 기간 및 회복 후에도 쥐에게 먹이와 물을 제공하고 수시로 상태를 확인하십시오. 감염은 수술 후 1일에서 7일 사이에 수행할 수 있으나, 실험 내에서는 이 시점을 일정하게 유지해야 합니다. 쥐의 꼬리를 70% ethanol로 닦아낸 후, 원하는 부위에 MRSA 배양액 0.5 milliliters를 주입하십시오.미정맥에 주입합니다. 27게이지 0.5인치 바늘을 사용하여, 쥐를 케이지로 돌려보내기 전 출혈이 멈출 때까지 주사 부위를 압박합니다. 쥐를 희생시킨 후, 흉부를 70% ethanol로 닦아내고 흉골 아래 가슴 부위에 V자형 절개를 가합니다.흉골 양측의 갈비뼈 연골을 절개합니다. 심장을 노출시키기 위해 심장을 조심스럽게 위로 당기고, 대동맥 근처의 조직을 클립으로 집어 위쪽으로 박리하여 심장을 분리합니다. 4x4인치 거즈를 깐 멸균 페트리 접시에 심장을 놓고, 좌심실 내벽을 절개하여 좌측 심실을 엽니다.카테터가 올바르게 배치되었는지 확인한 후 제거하십시오. 가위와 포셉을 사용하여 판막의 증식물을 검사하고 제거하십시오. 또한 신장과 비장을 적출하고, 조직과 증식물의 무게를 측정한 후 균질화하여 PBS로 연속 희석하여 정량 배양을 수행하십시오.가장 왼쪽 화살표가 가리키는 곳에 올바르게 배치된 카테터가 보입니다. 카테터는 대동맥판막을 지나 심장의 좌심실까지 뻗어 있으며, 가운데와 오른쪽 화살표가 가리키는 것처럼 대동맥판막 주변에 수많은 증식물(vegetations)이 관찰됩니다. 이 표는 쥐 심내막염 모델에서 ssus 균주의 독성을 보여주는 사례입니다.10⁵ 및 10⁶ CFU의 접종물을 투여하여 감염시킨 모든 동물은 심장 판막의 증식물뿐만 아니라 신장과 비장에서 높은 ssus 밀도를 보이며 심내막염이 발생했습니다. 숙련된 경우, 본 수술 절차는 적절하게 수행된다면 10분 이내에 완료될 수 있습니다.이 절차를 수행할 때, 수술 중 및 수술 후 동물 상태를 평가된 상태로 유지하는 것이 중요합니다. ivus와 같은 방법은 항균제의 효능을 실시간으로 모니터링하거나, 발달 후의 in vivo 유전자 발현과 같은 추가적인 질문에 답하기 위해 수행될 수 있습니다. 이 기술은 혈관 내 감염에서 병원성 독성 인자를 탐구하려는 stem orus 및 fiction 분야 연구자들에게 유용한 방법이 될 것입니다.이 영상을 시청한 후에는 쥐에서 실험적 심내막염 모델을 구축하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. MRA를 다루는 것은 매우 위험할 수 있으므로, 이 절차를 수행하는 동안 실험복과 장갑을 착용하는 등의 예방 조치를 취해야 함을 잊지 마십시오.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

급성 심근 경색 (AMI)의 쥐 모델은 심장 pathophysiological 및 생리 기능에 MI의 결과를 연구하는 데 유용합니다.

고양이에서 급성 심근 경색

Murine 피부와 부드러운 조직 감염 모델은 methicillin 내성 포도상 구균 (MRSA) 및 호스트 면역 응답의 독성 기능을 평가하기위한 활용합니다. 여기, 우리는 피부와 부드러운 조직 감염 피하 감염 모델을 소개하고 있습니다.

Methicillin 내성 황색 포도상 구균 아리 어스의 피하 감염 (MRSA)

연쇄상구균 폐렴은 심장에 별개의 비화농성 현미경 병변을 형성합니다. 요약된 것은 심장 미세 병변 형성의 쥐 모델에 대한 프로토콜입니다. 현미경을 사용한 미세 병변 시각화, 초기 미세 병변과 후기 미세 병변 구별, 회복기 동물의 심장에서 심장 리모델링을 감지하는 방법에 대한 지침이 제공됩니다.

시각화<em&gt; 폐렴 구균</em&gt; 심장 Microlesions 및 후속 심장 리모델링 내

피부 부상에 타고 난 면역 반응의 실시간 탐지 및 쥐의 포도 상 구 균 감염에 대 한 접근 방식을 설명 합니다. 비교 LysM EGFP 여 쥐 (형광 neutrophils 보유) LysM EGFP와 잡종 immunodeficient 마우스 스트레인, 우리가 미리 감염에 대 한 우리의 이해 및 감염을 방지 하는 방법의 개발.

마우스 모델을 평가 타고 난 면역 반응 포도 상 구 균 감염

이 프로토콜은 스테인리스강 k-와이어 임플란트가 생물 발광 황색포도상구균 Xen36에 감염된 척추 임플란트 감염의 새로운 생체 내 마우스 모델을 설명합니다. 박테리아 부담은 생물 발광 이미징으로 종단적으로 모니터링되고 안락사 후 콜로니 형성 단위 수로 확인됩니다.

척추 임플란트 감염의 In Vivo 마우스 모델

우리는 리모델링 과정의 개시에 관여하는 신호 변환 경로가 활성화되는 압력 과부하 유도 적당한 리모델링 및 초기 수축기 기능 장애의 쥐 모델의 생성을 설명합니다. 이 동물 모델은 심부전을 위한 초기 치료 반대로 리모델링 전략을 적용하기 위한 분자 표적을 확인하는 것을 도울 것입니다.

압력 과부하의 쥐 모델은 오버트 수축기 심부전과 반대로 적당한 리모델링 및 수축기 기능 장애를 유도했습니다.

여기에서, 우리는 쥐에서 재현 가능한 중환자 실 지향 내독소 모델을 제시한다.

쥐의 재현 가능한 집중 치료실 지향 내독소 모델

쥐 심장의 심근 허혈-재관류 모델은 자체 제작된 리트랙터, 폴리염화비닐 튜브, 및 독특한 매듭 방법을 사용하여 개선된다. 심전도, 트리페닐테트라졸륨 클로라이드 및 조직학적 염색 및 퍼센트 생존율 분석 결과는 개선된 모델 그룹이 이미 존재하는 모델 그룹보다 더 높은 성공률 및 생존율을 갖는다는 것을 보여주었다.

심근 허혈 및 재관류 손상의 개선 된 설치류 모델

이 연구는 중증 대동맥 협착증 또는 저형성 좌심 증후군과 같은 선천성 심장 결함에서 볼 수 있는 내피에서 중간엽으로의 전이 유도 섬유증의 동물 모델을 제시하여 상세한 조직학적 조직 평가, 조절 신호 경로 식별 및 치료 옵션 테스트를 가능하게 합니다.

내피에서 중간엽으로의 전환 연구를 위한 신생아 이종성 쥐 심장 이식 모델

황색포도상구균 (S. aureus)은 몸 전체로 퍼질 수 있는 능력이 있어 지속적이고 재발성 감염을 일으킵니다. 이러한 과정을 더 잘 이해하기 위해 이 연구는 S. aureus에 대한 세포 내 감염 모델을 확립합니다. 이 모델은 세포 내 감염의 기전을 조사하는 데 중요한 토대를 제공할 것입니다.

황색포도상구균에 대한 세포 내 감염 모델의 개발 및 평가

본 프로토콜은 임플란트 관련 감염을 조사하기 위해 피하 등쪽 이식을 사용하는 마우스 모델을 설명하며, 이를 통해 병태생리학적 메커니즘을 포괄적으로 조사할 수 있고 표적 치료 전략으로 진단 기준 개발을 지원할 수 있습니다.

마우스의 임플란트 관련 감염에 대한 동물 모델

배우세요 쥐에서 MRSA에 의한 실험 심내막염 모델을 수립하는 방법을. 꼬리 정맥 주입과 카테터 삽입을 통해 감염을 유도하고 조직을 정량 배양하여 병원성과 치료 효능을 연구할 수 있습니다.

Methicillin 내성의 실험 심내막염 모델

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