June 4th, 2012
methicillin - 내성으로 인해 실험 쥐의 심내막염 모델 S. 구균.
이 절차의 전반적인 목표는 쥐에서 실험적인 감염성 심내막염 모델을 확립하는 것입니다. 이는 먼저 아우레우스를 배양하고 감염에 대비한 수술용 카테터를 준비함으로써 이루어집니다. 다음으로, 수술 부위를 준비하고 동물을 마취합니다.
동물이 마취되면 카테터가 오른쪽 경동맥을 통해 심장 쪽으로 삽입됩니다. 마지막 단계는 꼬리 정맥 주사를 통해 동물을 황색포도상구균에 감염시키는 것입니다. 궁극적으로 표적 조직을 절개하고 정량적 배양을 위해 준비합니다.
급속 심내막염 모델과 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 적색 심내막염 모델을 in vivo 이미징 시스템과 함께 사용할 수 있다는 것입니다. 이부스. 이 방법은 항균제의 독성 및 효능과 같은 단계 구강 발병 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 일반적으로 이 기술을 처음 접하는 개인은 수술 절차가 까다롭기 때문에 어려움을 겪을 것입니다.
먼저 냉동 재고에서 양 혈액 여행 케이스에 이르기까지 M SSA 배양으로 가득 찬 루프를 접종합니다. 대두 오거 플레이트는 오염이 없는지 확인한 후 섭씨 37도에서 밤새 배양합니다. 플레이트에서 콜로니 하나를 선택하여 15ml 스냅 캡 튜브에 5ml의 try toay soy 육수를 접종하는 데 사용합니다.
섭씨 37도의 물방울을 흔들리는 인큐베이터에서 하룻밤 동안 배양합니다. 카테터를 먼저 준비하려면 200RPM으로 설정하십시오. 폴리에틸렌 튜브를 10cm 길이로 자르고 cex 소독액으로 카테터를 30분 동안 살균합니다.
다음으로, 가열된 멸균 겸자로 팁을 눌러 멸균된 튜브의 한쪽 끝을 녹여 오른쪽 경동맥에서 좌심실로 통과하여 심장이 박동할 때 심내막에 손상을 입히는 카테터를 만듭니다. 그런 다음 마취제가 효과를 발휘할 때까지 일대일 불소 산소 혼합물이 들어있는 챔버에 쥐를 넣어 마취합니다. 근육이 이완되고 페달 반사 신경이 없는지 확인하여 마취를 확인하십시오.
그리고 수술 중에는 가스 혼합물과 연결된 콧방울을 사용하여 마취 상태를 유지하십시오. 수술 내내 멸균 기술을 사용하여 베타딘과 70% 에탄올로 수술 부위를 청소합니다. 쥐를 등쪽 위치에 놓고 둔기 해부를 사용하여 흉골 위의 목 피부층을 통해 수직으로 절개합니다.
오른쪽 경동맥이 노출되도록 근막을 분리합니다. 우측 경동맥은 쇄골 위의 정중선에서 약간 오른쪽에 위치합니다. 목강에서 동맥을 조심스럽게 당겨 빼내고 동맥 아래에 10cm 길이의 실크 봉합사 2개를 놓고 노출된 두부 끝에서 묶습니다.
그런 다음 출혈을 방지하기 위해 동맥에 클립을 놓습니다. 겸자를 사용하여 카테터 삽입기를 사용하여 동맥 상단에 작은 구멍을 만듭니다. 동맥의 구멍을 통해 카테터의 밀봉되지 않은 끝을 삽입합니다.
클립을 제거하고 카테터를 심장 쪽으로 밀어 넣습니다. 저항이 적절히 삽입될 때까지, 카테터는 동맥 속으로 4-5cm 뻗어 들어가야 하며 쥐의 심장 박동에 따라 맥박을 치야 한다. 카테터가 제자리에 놓이면 동맥의 코들 끝 주위에 느슨한 봉합사를 묶고 카테터를 제자리에 고정합니다.
실크 봉합사로 여분의 봉합사와 카테터 끝을 잘라낸 다음 끝을 목 피부 아래에 밀어 넣습니다. 스킨 클립으로 피부를 닫습니다. 쥐를 깨끗한 케이지에 넣고 마취에서 회복될 때까지 따뜻한 곳에 보관하십시오.
음식과 물을 제공하고 회복 중과 회복 후에 쥐를 자주 확인하십시오. 감염은 수술 후 1일에서 7일 사이에 수행할 수 있지만 실험 내에서 시간은 일정하게 유지되어야 합니다. 쥐의 꼬리에 70% 에탄올을 세척하고 원하는 세포에 0.5ml의 MRSA 배양액을 주입합니다.
꼬리 정맥으로 세십시오. 27 게이지 반 인치 바늘을 사용하여 쥐를 케이지로 되돌리기 전에 출혈이 멈출 때까지 주사 부위에 압력을 가합니다. 쥐를 제물로 바친 후 에탄올 70%로 가슴을 닦고 흉골 아래 가슴을 V자형으로 절개합니다.
흉골 양쪽에 있는 갈비뼈의 연골을 자릅니다. 심장을 노출시키려면 심장을 부드럽게 위로 당겨 대동맥에 가까운 조직을 통해 클립으로 끼우고 위쪽으로 절개하여 심장을 풀어줍니다. 4x4인치 거즈를 깐 멸균 페트리 접시에 심장을 놓은 다음 좌심실 내벽을 절단하고 왼쪽 챔버를 엽니다.
카테터가 올바르게 배치되었는지 확인한 다음 제거하십시오. 가위와 집게로 밸브에서 식물을 검사하고 제거합니다. 또한 신장과 비장을 제거하고 조직과 식물의 무게를 측정하고 균질화한 후 정량 배양을 위해 PBS에서 연속 희석합니다.
여기에 표시된 것은 가장 왼쪽 화살표로 표시된 대로 올바르게 배치된 카테터입니다. 대동맥 판막을 가로질러 심실의 왼쪽까지 뻗어 있으며, 가운데 및 오른쪽 화살표로 표시된 것처럼 대동맥 판막 주변에 수많은 식물이 보입니다. 이 표는 쥐 심내막염 모델에서 ssus 균주의 독성에 대한 예를 제공합니다.
모든 동물은 10에서 5 번째, 10에서 6 번째의 이노큘라로 도전했습니다. CFU는 심장 식물뿐만 아니라 신장 및 비장에서 높은 ssus 밀도를 가진 심내막염을 개발했습니다. 이 수술 절차는 적절하게 수행되면 10분 이내에 완료할 수 있습니다.
이 절차를 시도하는 동안 이 절차를 따르는 동안 동물을 평가된 상태로 유지하는 것을 기억하는 것이 중요합니다. ivus와 같은 방법은 항균제의 효능을 실시간으로 모니터링하고 개발 후 생체 내 유전자 발현과 같은 추가 질문에 답하기 위해 수행할 수 없습니다. 이 기술은 단계 또는 소설 분야의 연구자가 혈관 내 감염에서 병원성 독성 인자를 탐구하는 방법입니다.
이 비디오를 시청한 후에는 쥐에서 실험적 심내막염 모델을 설정하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. MRA로 작업하는 것은 매우 위험할 수 있으며 이 절차를 수행하는 동안 실험실, 코트 및 장갑 착용과 같은 예방 조치를 취해야 한다는 것을 잊지 마십시오.
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이 기사는 메티실린 내성 S. aureus를 사용하여 쥐에서 실험적 감염성 심내막염 모델을 설정하는 것을 설명합니다. 이 절차에는 박테리아 배양, 수술용 카테터 준비 및 꼬리 정맥 주사를 통한 동물 감염이 포함됩니다.
Establishing a controlled rat model of MRSA endocarditis enables reproducible evaluation of antimicrobial efficacy and virulence mechanisms, addressing a critical need in anti-infective drug development. This model supports mechanistic de-risking by providing quantitative tissue burden data and consistent host-pathogen interactions, which are essential for lead optimization and go/no-go decisions in preclinical pipelines. By minimizing inter-animal variability, it enhances predictive confidence in translating candidate therapies to clinical settings.
This model fits within the preclinical infectious disease workflow, bridging early target validation with lead optimization through quantifiable infection burden and therapeutic response metrics.