Name: Blastomere Explants는 배아 개발하는 동안 세포 운명의 헌신에 대해 테스트 할 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 8 s
Description: 배우세요 Xenopus 배아의 분열구 배아 세포를 분리 배양하여 세포 운명의 내재적·외재적 요인을 분석하는 방법을. 이 기술은 발달생물학 연구에서 유전자 발현과 세포 분화 메커니즘을 규명하는 데 활용됩니다.

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저자는 모나 Herold의 지원 Paaqua를 부여하고 GWU 루터 쌀의 원정 지원 GWU 할란 휄로 십을 인정하고 싶습니다. 이 작품은 국립 과학 재단 (National Science Foundation) 기금 MCB-1121711에 의해 지원되었다.

1. 악기, 문화 미디어와 요리 준비 <ol><li> 알루미나 연마 필름을 사용하여 네 포셉을 선명하게. 팁 크기를 모니터링 할 수있는 해부 현미경으로이 작업을 수행합니다. 포셉 중 하나 쌍은 백업 경우에는 팁이 절차를 수행하는 동안 손상된 역할을합니다. 네 개의 집게를 압력솥과 멸균 용기에 보관하십시오. </li><li> 및 필터 소독, 500 ML 0.1X와 1.0X 문화 매체의 각 (15 조리법 중 마크의 수정일 Ringers는 [MMR] 또는 수정일 바스의 식염 [MBS])가합니다. 우리는 정기적으로 MBS를 (; 1 ㎜ KCl, 0.7 MM CaCl 2, 1 MM MgSO 4, 5 밀리미터 HEPES [산도 7.8], 2.5 MM NaHCO 3 1X = 88 MM NaCl)을 사용합니다. 개월 동안 14-18 ° C에서 저장합니다. </li><li> 문화 매체 (나사 캡 유리 병에 100 ML 1X 문화 매체에 2g 전기 등급 아가로 오스)의 2 % 아가로 오스 솔루션을 확인하십시오. 아가로 오스를 해산하기 위해 압력솥. 이것은 달 동안 4 ° C에 저장하고,이 다음에 필요할 때 아가로 오스를 녹일 수있는 microwaved 할 수 있습니다. </li><li> 아가로 오스는 액체이지만, 멸균 24도 문화 판의 각 우물의 바닥에 약 0.5 ML를 따르다. 이 플라스틱에 고집에서 explants를 방지 할 수 있습니다. </li><li> 아가로 오스는 액체이지만, 2-3 60mm 배양 접시의 바닥에 2-3 ML을 흘려, 그리고 소용돌이 부드럽게 바닥 적용되어 있는지 확인합니다. 이러한 분해 요리로 봉사하고 세포막이 제거되면 아가로 오스는 플라스틱으로 고집에서 배아를 방지 할 수 있습니다. </li><li> 아가로 오스는 냉각과 경화되면 불꽃은 6 &quot;파스퇴르 피펫의 팁은 공에 녹아 있으며, 가볍게 문화 판의 각 잘에있는 아가로 오스의 표면에 터치까지.이 얕은 우울증 만들어집니다로 explant가 배치됩니다. </li><li> 1X 멸균 문화 매체와 문화 판의 각 우물을 입력합니다. </li><li> 아가로 오스는 냉각과 경화되면, blastomere 분리를 촉진하기 위해 희석 문화 매체 (0.1X MMR 또는 0.1X MBS)로 분해 요리를 채 웁니다. </lI&gt; </ol> 2. 태아의 선택 <ol><li> 수정 된 알을 얻고 표준 프로토콜 15에 따라 젤리 코트를 제거합니다. 100mm 배양 접시에 0.5X 문화 매체로 전송할 수 있습니다. </li><li> 배아는 2 셀 단계에 도달하면, 첫 번째 절단의 고랑가 별도의 그릇에 동물 반구에서 가볍게 색소 영역 (그림 1)을 양분하는 사람들을 정렬합니다. 다음은 explants의 기증자 될 것입니다. explants을 시작할 수있는 단계 형제 제어 역할을 할 수있는 절차를 통해 기증 배아 옆에 별도의 접시에 나머지 2 세포 배아세요. </li></ol> 3. Explants의 작성 <ol><li> 분해 접시에 5-10 배아를 놓고 있지만, 한 번에 하나의 배아에서 작동합니다. </li><li> 투명 vitelline 막을 볼 수 있도록 최초의 배아를 배치, 그것은 배의 동물 극의 표면 위에 투명한 공간 (perivitelline 공간)로 구분합니다. 날카롭게 힘을 사용사람의 subdominant 손 (하나가 바로 전달하는 경우 왼쪽)에 PS, perivitelline 공간 위의 vitelline 멤브레인을 파악. 다른 손에 날카롭게 집게를 사용하여 첫 번째 포셉 팁에 가까운 멤브레인을 파악하고, 부드럽게 거리에 막 껍질을 벗기면에 반대 방향으로 당긴다. 대상 셀이 막 제거하는 동안 손상되​​지 않도록, 해부하는 셀에서 거리의 초기 이해하십시오. 하나는 배아가 결합한 것 때문에 멤브레인가 제거되었음을 알 수 있습니다. </li><li> subdominant 손에 포셉와 하나 이웃 셀을 잡아 해부 할 수있는 셀이 직접 접촉하지 않도록하는 &quot;핸들&quot;로 셀을 사용합니다. 다른 손에 포셉으로 부드럽게 원하는 blastomere에서 떨어져 남아있는 이웃 세포를 당긴다. 같은 운명을 공유하는 중간 선 세포, 타겟팅하는 경우, 그들은 한 쌍으로 함께 제거 할 수 있습니다. 마지막으로, &quot;핸들&quot;셀을 멀리 해부. </li><li> 살균과 blastomere (또는 blastomere 쌍), 픽업, 유리 파스퇴르 피펫, 기포 및 과도한 흡입을 피. 피펫은 세포가 손상 될 수 있습니다 날카로운 모서리를 제거 할 수 화재 연마 될 수 있지만, 우리는 정기적으로이 작업을 수행하지 않습니다. explant 문화 요리의 잘의 문화 매체의 표면 아래에있는 파스퇴르 (Pasteur) 피펫의 팁을 놓고, 가볍게 blastomere을 배출. 이 중력에 의해 얕은 우울증으로 밀어해야합니다. 하나 이상의 배아에서 같은 blastomere은 단일 explant로 결합 할 수 있습니다. </li><li> 분해 요리, 하나 하나에 남아있는 배아와이 절차를 반복합니다. 10 배아에 대한 후, 해부 접시는 세포 부스러기로 가득합니다. 이 문제가 발생하면, 새로운 절개 요리로 변경합니다. </li><li> 모든 dissections 완료 후 explants가 얕은 우울증에 있는지 확인합니다. 그렇지 않은 경우, 그들은 부드럽게 건조 70 % 에탄올과 공기 살균 된 헤어 루프와 함께 우울증에 밀려 할 수 있습니다. </li><li> 지난 해부 한 후 한 시간 정도, 파편 surrou를 제거살균, 유리 파스퇴르 피펫으로 치료 explants를 nding. </li><li> 14-20의 문화 explants의 판을 ° C 형제, 컨트롤 배아를 포함하는 페트리 접시 옆에. 형제 자매 배아는 blastomere explants의 개발 단계를 나타냅니다. </li></ol> 4. 분석을위한 수확 Explants <ol><li> 형제 자매가 원하는 발달 단계에 도달 할 때 explants를 수확. 세포의 일부가 붕괴하는 경우에도 이러한 explants 아주 잘 남아있다. 문화의 구름 덩어리가 잘있을 경우 따라서, 건강 explant가 내 매장되어 있는지 확인 할 수있는 헤어 루프 나 집게로 탐험 해보세요. </li><li> 유리 파스퇴르 피펫과 문화 솔루션의 작은 볼륨에서 explants를 선택하고, 부드럽게 실시 할 수있는 분석에 적합한 정착액 또는 용해 버퍼에 넣어 배출. </li></ol>

<ol><li>Dale, L., Slack, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fate+map+of+the+32-cell+stage+of+Xenopus+laevis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Fate map of the 32-cell stage of Xenopus laevis.</a> Development. 100, 279-295 (1987).</li>
<li>Masho, R., Kubota, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+fates+of+blastomeres+of+the+eight-cell+stage+Xenopus+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Growth%2C+Diff%22%5BJournal%5D)">Developmental fates of blastomeres of the eight-cell stage Xenopus embryo.</a> Dev. Growth, Diff. 30, 347-359 (1988).</li>
<li>Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fates+of+the+blastomeres+of+the+16-cell+stage+Xenopus+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Fates of the blastomeres of the 16-cell stage Xenopus embryo.</a> Dev. Biol. 119, 560-578 (1987).</li>
<li>Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fates+of+the+blastomeres+of+the+32-cell+stage+Xenopus+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Fates of the blastomeres of the 32-cell stage Xenopus embryo.</a> Dev. Biol. 122, 300-319 (1987).</li>
<li>Moody, S. A., Kline, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+fate+during+cleavage+of+frog+%28Xenopus+laevis%29+blastomeres%5BTitle%5D)+AND+%22Anat.+Embryol%22%5BJournal%5D)">Segregation of fate during cleavage of frog (Xenopus laevis) blastomeres.</a> Anat. Embryol. 182, 347-362 (1990).</li>
<li>Takasaki, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fates+and+roles+of+the+presumptive+organizer+region+in+the+32-cell+embryos+in+normal+development+of+Xenopus+laevis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Growth%2C+Diff%22%5BJournal%5D)">Fates and roles of the presumptive organizer region in the 32-cell embryos in normal development of Xenopus laevis.</a> Dev. Growth, Diff. 29, 141-152 (1987).</li>
<li>Sullivan, S. A., Moore, K. B., Moody, S. A. Chapter 20 Early events in frog blastomere fate determination. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSullivan%2C+SA+%22Cell+Fate+and+Lineage+Determination%22">Cell Fate and Lineage Determination</a>. Moody, S. A. , Academic Press. 297-321 (1999).</li>
<li>Moore, K. B., Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal-vegetal+asymmetries+influence+the+earliest+steps+in+retinal+fate+commitment+in+Xenopus%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Animal-vegetal asymmetries influence the earliest steps in retinal fate commitment in Xenopus.</a> Dev. Biol. 212, 25-41 (1999).</li>
<li>Yan, B., Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+competence+of+Xenopus+blastomeres+to+produce+neural+and+retinal+progeny+is+repressed+by+two+endo-mesoderm+promoting+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">The competence of Xenopus blastomeres to produce neural and retinal progeny is repressed by two endo-mesoderm promoting pathways.</a> Dev. Biol. 305, 103-119 (2007).</li>
<li>Gallagher, B. C., Hainski, A. M., Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autonomous+differentiation+of+dorsal+axial+structures+from+an+animal+cap+cleavage+stage+blastomere+in+Xenopus%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Autonomous differentiation of dorsal axial structures from an animal cap cleavage stage blastomere in Xenopus.</a> Development. 112, 1103-1114 (1991).</li>
<li>Hainski, A. M., Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xenopus+maternal+mRNAs+from+a+dorsal+animal+blastomere+induce+a+secondary+axis+in+host+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Xenopus maternal mRNAs from a dorsal animal blastomere induce a secondary axis in host embryos.</a> Development. 116, 347-3345 (1992).</li>
<li>Godsave, S. F., Slack, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+cell+analysis+of+mesoderm+formation+in+the+Xenopus+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Single cell analysis of mesoderm formation in the Xenopus embryo.</a> Development. 111, 523-530 (1991).</li>
<li>Hainski, A. M., Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+activin-like+signal+activates+a+dorsal-specifying+RNA+between+the+8-+and+16-cell+stages+of+Xenopus%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Genetics%22%5BJournal%5D)">An activin-like signal activates a dorsal-specifying RNA between the 8- and 16-cell stages of Xenopus.</a> Dev. Genetics. 19, 210-221 (1996).</li>
<li>Pandur, P. D., Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+maternal+influences+on+dorsal-ventral+fate+of+Xenopus+animal+blastomeres%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">Multiple maternal influences on dorsal-ventral fate of Xenopus animal blastomeres.</a> Dev. Dyn. 225, 581-587 (2002).</li>
<li>Sive, H. L., Grainger, R. M., Harland, R. M. Early Development of Xenopus laevis. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSive%2C+HL+%22A+Laboratory+Manual%22">A Laboratory Manual</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. (2000).</li>
<li>Sullivan, S. A., Akers, L., Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((foxD5a%2C+a+Xenopus+winged+helix+gene%2C+maintains+an+immature+neural+ectoderm+via+transcriptional+repression+that+is+dependent+upon+the+C-terminal+domain%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">foxD5a, a Xenopus winged helix gene, maintains an immature neural ectoderm via transcriptional repression that is dependent upon the C-terminal domain.</a> Dev. Biol. 232, 439-457 (2001).</li>
<li>Yan, B., Neilson, K. M., Moody, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FoxD5+plays+a+critical+upstream+role+in+regulating+neural+fate+and+onset+of+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">FoxD5 plays a critical upstream role in regulating neural fate and onset of differentiation.</a> Dev. Biol. 329, 80-95 (2009).</li>
<li>Vincent, J. -P., Gerhart, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcortical+rotation+in+Xenopus+eggs%3A+an+early+step+in+embryonic+axis+specification%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Subcortical rotation in Xenopus eggs: an early step in embryonic axis specification.</a> Dev. Biol. 123, 526-539 (1987).</li>
<li>Peng, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Appendix+A%3A+Solutions+and+Protocols%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Appendix A: Solutions and Protocols.</a> Methods in Cell Biology. 36, 657-662 (1991).</li>
<li>Klein, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+first+cleavage+furrow+demarcates+the+dorsal-ventral+axis+in+Xenopus+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">The first cleavage furrow demarcates the dorsal-ventral axis in Xenopus embryos.</a> Dev. Biol. 120, 299-304 (1987).</li>
<li>Masho, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Close+correlation+between+the+first+cleavage+plane+and+the+body+axis+in+early+Xenopus+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Growth+Diff%22%5BJournal%5D)">Close correlation between the first cleavage plane and the body axis in early Xenopus embryos.</a> Dev. Growth Diff. 32, 57-64 (1990).</li>
</ol>

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

개인 blastomeres 성공적으로 배양하기위한 가장 중요한 단계는 1) 제대​​로 관심 blastomere 식별, 필요한 매뉴얼을 개발하고 4), 살균, 건강한 문화를 유지 2), 3) 세포주기의 정확한 부분에서 박리 세포를 해부하는 동안 손상을 방지하고 잘 문화에 전송하는 민첩성. 특정 blastomeres를 조작하려면, 그것은 추기경의 축을 식별 할 수 있도록 필수적입니다. Xenopus의 배아에서 등쪽의 측면은 세 가지 방법으로 식별 할 수 있습니다 (2) 팁의 체외 계란은 수정 된 한 쪽 18, 19를 표시 (1) 중요한 염료 18, 19로 정자 진입 지점을 표시하거나 (3) 첫 번째 절단의 고랑은 동물 반구 20, 21에 가볍게 색소 지역을 양분하는 2 세포 단계에서 배아를 선택합니다. 우리는 정확하게 자연스럽게 - fertiliz에서 b​​lastomeres를 식별 할 수...

Xenopus laevis의 배아들은 달걀 microsurgical 접근 방식을 허용 할 수있을만큼 크기 때문에 배아 세포가 특정 운명을 취득하는하여 메커니즘을 식별 할 수 광범위하게 활용되었습니다. 각 셀은 고유 에너지 저장소를 제공 난황의 혈소판의 풍부한 세포 공급을 포함되어 있기 때문에 또한, 그들은 문화 매체의 영양 보완 필요없이 외부 개발할 수 있습니다. 1, 2, 3, 4, 5, 6 - 세포의 운명이 결정되는이 메커니즘을 연구하는 중요한 자산이 (32 세포 단계를 통해 2) 절단 단계의 blastomeres의 운명지도의 종합 세트입니다. 이지도는 하나의 식별 blastomere으로 감지 분자를 microinjecting와 조직이 표시 자손에 의해 채워하는 후 개발의 모니터링에 의해 구축되었다. 배아의 추기경 축 안정적으로 많은 엠브리에서 확인 할 수 있기 때문에 일관성있는 운명의지도는 가능합니다OS. 식물 반구이 아닌 반면, 첫째, 모든 야생를 입력 배아에 동물 반구는 색소입니다. 둘째, 기름지게에서 정자의 항목은 미래 복부 편으로 동물 반구의 착색의 수축을 초래, 많은 배아에 착색 차이 따라서 등쪽과 복부 측면 구별하는 데 사용할 수 있습니다. 셋째, 첫 번째 절단의 고랑 따라서 중간 시상 대부분의 배아에서 비행기, 그리고는 배의 오른쪽과 왼쪽 측면을 식별하는 데 사용할 수 있습니다 대략. 운명의지도는 자연스럽게 태아의 큰 인구에서 각 blastomere는 식별 할 일반 패턴에 알이 자주 다니엘 수정 된 사실에 의존하고 있습니다. 설명 내의 선택 절차를 사용하여 착색 및 절단 패턴에 대한 알 클러치 사이에 다양성이있는 반면 여기에서 소정의 운명과 셀이 90 %의 정확도로 식별 할 수 있습니다. 세포 운명은 방지 할 수 있습니다여러 메커니즘에 의해 embryogenesis 동안 채굴. 이러한 differentially 상속 세포질 mRNAs이나 단백질 등의 고유 요소는, 초기 패턴의 여러 측면에 기여합니다. 예를 들어, 특정 산모 mRNAs는 세포, 세균 라인에 기여 endoderm가, 또는 등쪽 몸 축 (7 검토)에 기여를 결정합니다. 태아의 신호 센터에서 더 많은 먼 이웃 셀이나이 지역에서 제공하는 외부 요인이 특정 조직 유형과 패턴 거의 모든 기관이 시스템을 유도 할 책임이 있습니다. 신호 센터의 예는 신경 외배엽 및 패턴 중배엽을 유도 gastrula의 주최자 / 노드 및 활동을 편광의 영역을 포함 사지 꽃 봉오리의 패턴 앞 - 뒤 축이. 운명의지도 다른 기관의 전구체를 확인하고 정상 배아에서 자신의 자손에 의해 촬영 발달 경로를 보여 있지만, 그들은 고유 구별 할 수 없습니다그리고 그 세포에 외부 영향을 미친다. 또한 자손 배의 복잡한 신호 환경에서 차별화 셀의 전체 발달 가능성을 공개하지 않습니다. 에 문화 다음 배아에서 세포의 제거 또는 2) 소설의 배아의 위치 1) 세포의 이식을 : 두 실험 방법은 셀의 운명은 고유 요인에 의해 결정됩니다 또는 이후 외부 요인에 의해 영향을 여부를 테스트 할 수 있습니다 외인성 신호의 부재. 세포가 수동으로 분리 될만큼 크기 때문에 두 실험 방법이 Xenopus에 가능했습니다. 예를 들어, 다수의 연구 (7 검토, 8, 9) 운명의 변화를 테스트하기 위해 호스트 배아의 소설 위치에 배아 (세포 세포 상호 작용을 변경하려면) 또는 이식 세포에서 단일 세포를 삭제했습니다. 또한, 배의 다른 지역에서 세포의 작은 번호를 explanting의 두 번째 접근법 전Xenopus의 배아의 세포가 세포 내 영양소 저장, 난황의 혈소판으로 가득하기 때문에 외인성 요인의 부재에 유도 조직 상호 작용을 명료하게하다하는 n 인물 문화이 가능합니다. 따라서, 그들은 문화 매체의 영양이나 성장 인자 보완없이 정의 된 소금 매체에서 몇 일 동안 배양 할 수 있습니다. 우리는 등쪽 동물 blastomeres가 maternally 상속 mRNAs 10, 11로 인해 신경과 등쪽 mesodermal 조직을 생성 할 수있는 자율적 인 능력을 가지고 있으며, 다른 32 셀 blastomeres의 중배엽 사양이 고유 및 외부 정보를 12 두에 의존했다 표시하려면이 방법을 사용했습니다 . explants 등의 배양 세포의 장점은 중간도 explanted 셀 12, 13, 14의 운명에 영향을 미칠 수있는 휴대 전화 통신 경로를 결정하기 위해 정의 된 신호 요소를 보완 할 수 있다는 것입니다. 또한, 하나는 blastomere 홍보를 삽입 할 수 있습니다내생 mRNAs의 번역을 방지하기 위해 오버 명시 적 유전자, 또는 안티 센스 oligonucleotides와에 mRNA와 문화 ior. 이, 이득과 손실 기능 분석은 분자가 자율적으로 표현 운명에 필요한되는 식별 할 수 있습니다. explant의 운명을 분석하려면 특정 세포 유형의 식별은 표준 유전자 발현 (예를 들어, 현장 하이브리드 화에 RT-PCR)과 immunocytochemical assays에 의해 수행 할 수 있습니다. 이 프로토콜은 배아 세포는 특정 조직에 개발 방법을 규제 고유 및 외부 메커니즘을 구별 할 수있는 간단하면서도 강력한 방법을 제공합니다.

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 코멘트 (선택 사항) </td></tr><tr><td> 알루미나 연마 필름 </td><td> 토마스 과학 </td><td> # 6775E-38 </td><td> 포셉 팁의 주요 수리 과정 (12 μm), </td></tr><tr><td> 알루미나 연마 필름 </td><td> 토마스 과학 </td><td> # 6775E-46 </td><td> 포셉 도움말을 선명하게 잘 대해 보통 (3 μm) </td></tr><tr><td> 알루미나 연마 필름 </td><td> 토마스 과학 </td><td> # 6775E-54 </td><td> 포셉 도움말 연마를위한 고급 (0.3 μm) </td></tr><tr><td> 집게 : 뒤몽, Dumoxel Biologie # 5 </td><td> 정밀 과학 도구 </td><td> # 11252-30 </td><td> 이 처음 구입했을 때 선명하게 필요하지 않는 좋은 방법이 있습니다. 부식 방지가 할 수 있도록autoclaved합니다. </td></tr><tr><td> Gentamicin 솔루션 </td><td> 시그마 </td><td> G1397 </td><td> 사용과 같은 날에 중간에 추가 </td></tr></tbody></table>

blastomere explants는 배아 개발하는 동안 세포 운명의 헌신에 대해 테스트 할

Blastomere Explants to Test for Cell Fate Commitment During Embryonic Development

배의 세포를 모두 추적 계보 (Lineage)로 구성 운명의지도는 조직이 배의 각 셀에서 내려 어떤 알 수있다. 운명의지도 기관의 전구체를 식별와 후손 세포가 정상적인 배아에서 해당 기관을 채우는 것들로부터 발달 경로를 elucidating 매우 유용하지만, 그들은 전구체 세포의 전체 발달 가능성을 설명하거나 메커니즘을 식별되지 않는로 운명이 결정됩니다. 세포 운명의 노력에 대해 테스트하려면, 하나는 실험 조작 한 후 표현들과 함께 그대로 배아 (운명의지도)에 자손의 세포의 일반적인 레퍼토리를 비교합니다. 세포의 운명은 주변 세포 환경에 관계없이 (커밋) 고정, 또는 이웃에 의해 제공 외부 요인에 의해 그 영향을 받는가? Xenopus의 배아의 종합 운명지도를 사용하여, 우리는 확인하는 방법에 대해 설명합니다, 격리 및 문화 단일 절단 단계의 전구체, blasto라고meres. 이 방법은 하나가 이러한 초기 세포가 그들의 이웃 세포와의 상호 작용이 필요 손상 배아에서 자신의 정상적인 환경에서 획득 운명에 최선을 다하고 있습니다, 또는 신호의 다른 유형에 노출하는 경우 다른 운명을 표현하는 영향을 할 수 있는지 여부를 평가할 수 있습니다.

정확하게 세포의 발달 잠재력을 평가하는이 분석의 능력 운명에지도 1, 2, 3, 4, 5, 6을 기반으로 올바른 blastomere을 해부에 의존하고 있습니다. 따라서 이후 그림 2에 도시, 정기적으로 절단 패턴을 준수 그림 1에 도시 된 바와 같이, 2 셀 단계에서 올바른 착색 패턴 배아를 선택하는 것이 중요합니다. 하나가 필요한 절단 단계에 도달로 정렬 배아를 관찰하고 불규칙 cleavages을 보여 배아를 분리하는 경우, 정확성이 크게 향상됩니다. 그림 2에 도시 된 바와 같이, 일반 cleavages는 주로 배의 한쪽에 발생합니다. 기증 셀 &#39;일반&#39;편에서 유래하는 경우 이러한 배아는 기증자으로 사용할 수 있습니다. 당신이 해부하고자하는대로 정기적으로 절단 패턴은 많은 배아 등 5 회 정도 세포 분열 진행, 정렬 등의 적은 배아에서 발견되기 때문에. 당연히 Fertilized 알은 체외</e...

개인 배아 세포의 운명은 상속 분자 및 / 또는 주변 세포의 신호에 의해 영향을받을 수 있습니다. 절단 단계 Xenopus의 배아의 운명지도 활용 한 blastomeres는 세포 세포의 상호 작용 비해 상속 분자의 공헌을 평가하기 위해 격리 문화 식별 할 수 있습니다.

Blastomere Explants는 배아 개발하는 동안 세포 운명의 헌신에 대해 테스트 할

배아의 모든 세포에 대한 계보 추적을 통해 작성된 운명 지도(fate maps)는 배아의 각 세포로부터 어떤 조직이 유래하는지를 밝혀줍니다. 운명 지도가 ...

본 동영상에서 보여주는 방법은 난할기 opus 배아의 운명 지도(fate map)를 이용하여 단일 포배 세포를 분리 배양함으로써, 배아의 운명이 내재적 지시 또는 외재적 지시에 의해 결정되는지 평가하는 것입니다. 먼저, 첫 번째 난할구가 동물극의 옅은 색소 영역을 이등분하는 2세포기 배아를 수집합니다. 이 배아들을 배양하여 16~32세포기에 도달하면, 투명대(vitel membrane)를 제거하고 선택한 세포 주변의 인접 세포들을 박리하여 제거합니다. 그 후, 박리된 포배 세포를 agar가 코팅된 배양 웰의 오목한 부분으로 옮겨 배양합니다.외식편(explant)이 원하는 단계에 도달하면, 이를 회수하여 in situ hybridization, QPCR 또는 면역조직화학법을 이용해 유전자 또는 단백질 발현을 평가합니다. 배양, 대규모 배아 세포군 또는 오가노이드 배양과 같은 다른 기술과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 계보 추적 연구를 통해 발달 운명이 알려진 단일 배아 전구세포를 추가 성장 인자나 주변 세포의 존재 없이도 배양할 수 있다는 점입니다. 따라서 세포 내재적 인자가 해당 전구세포가 특정 조직의 전구세포가 되도록 지시하는지, 아니면 주변 세포로부터의 신호가 필요한지를 직접 테스트할 수 있습니다.Blairs의 해부와 배양 웰로의 이동은 실체 현미경 하에서 정밀한 조작이 필요하므로, 이 방법의 시각적 시연이 매우 중요합니다. 본 영상에서는 해부 현미경을 사용하여 모체 유래 mRNA가 세포를 신경 운명으로 편향시키는지 확인하기 위해 이 방법을 시연하겠습니다. Illumina 연마 필름을 사용하여 핀셋 네 세트를 날카롭게 다듬으십시오.포셉 한 쌍은 실험 과정 중 팁이 손상될 경우를 대비한 예비용으로 사용합니다. 포셉 4개 모두를 오토클레이브로 멸균한 후 멸균 용기에 보관하십시오. 0.1x 및 1.0x 농도의 modified Barth saline(MBS)를 각각 500 milliliters씩 제조하고 여과 멸균합니다. 이 용액들은 유리 스크류 캡 병에 담아 14 to 18 degrees Celsius에서 수개월 동안 보관할 수 있습니다. 1x 배지 100 milliliters에 전기영동 등급의 agarose를 2% 농도로 준비하십시오. agarose를 녹이기 위해 오토클레이브를 사용하며, 이후 agarose가 필요할 때 액체 상태가 되도록 마이크로웨이브로 가열하여 액화시킵니다.멸균된 24웰 배양 플레이트

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

blastula 또는 gastrula 단계에서 이식의 대상이 키메라 zebrafish의 배아를 생성하는 단계별 가이드.

이식에 의해 키메라 Zebrafish의 배아를 생성

마이크로 해부 explants 기술은 골격 근육 줄기 세포의 원천으로 청소년, 성인이나 배아 근육에서 proliferative 골격근 세포를 분리를위한 강력하고 안정적​​인 방법입니다. 유니 클리,이 세포는 clonally 생체내 이식에 사용되는 골격 근육 줄기 세포 라인을 생산하기 위해 파생되었습니다.

성인 및 배아 골격근의 Microexplant 문화 및 골격 근육 줄기 세포의 분리

두개골 mesenchyme 가능성이 신경 주름 상승을위한 원동력을 제공 극적인 morphogenic의 움직임을...

두개골 Mesenchyme의 셀룰러 행동을 평가하기위한 Explant 분석

우리는 배양된 세포를 초기 마우스 배아의 정의된 부위에 이식하여 생체 내 잠재력을 결정하는 방법을 보여줍니다. 또한 알려진 직경의 유리 모세혈관을 사용하는 최적화된 전기천공법(electroporation method)을 도입하여 배아의 몇 개의 세포에 외인성 DNA를 정확하게 전달할 수 있습니다.

초기 Postimplantation 마우스 배아로 세포 나 DNA를 정확하게 현지화 전송하는 방법

제노푸스 배아에서 배반구의 지붕에 있는 세포는 만능이며 다양한 조직을 생성하도록 프로그래밍할 수 있습니다. 여기에서는 양서류 배반구 지붕 외식을 분석 시스템으로 사용하여 초기 신경 발달의 주요 생체 내 및 체외 기능을 조사하는 프로토콜에 대해 설명합니다.

줄기 세포처럼<em&gt; Xenopus의</em&gt; 배아의 Explants는 초기 신경 발달의 특징을 연구하는<em&gt; 체외</em&gt; 및<em&gt; 생체</em

이 프로토콜은 기본 양수 액체와 막 중간 엽 줄기 세포의 화학적으로 완벽 하 게 정의 된 조건에서 비 통합 episomal 접근을 사용 하 여 유도 만능 줄기 세포로 재프로그래밍 설명 합니다. 추출, 문화, 프로그래밍, 그리고 엄격한 방법으로 결과 유도 만능 줄기 세포의 특성의 절차 자세히 나와 있습니다.

기본 양수 및 Pluripotency 이종 무료 조건에서 막 셀 프로그래밍

Zebrafish blastoderm explant는 초기 배아 내내 내인성 신호 센터에서 배아 세포를 분리하여 생성되며, 상대적으로 순진한 세포 클러스터를 쉽게 조작하고 배양하여 ex vivo를배양한다. 이 문서에서는 이러한 각질에 대한 지침을 제공하고 위장 중에 Nodal 신호에 대한 역할을 심문하여 유용성을 입증합니다.

제브라피시 배아에서 나이브 Blastoderm 의 세대

침지된 비드 분석은 세포 분화 및 형태형성의 조절을 연구하기 위해 임의의 발달 시점에서 시험 시약의 표적화된 전달을 포함한다. 세 가지 다른 유형의 침지 된 구슬을 준비하고 닭 배아의 교차 숫자에 이식하기위한 모든 실험 동물 모델에 적용 가능한 상세한 프로토콜이 제시됩니다.

Soaked-Bead Assay를 사용한 닭 배아 발생 동안의 세포 분화, Morphogenesis, 및 패터닝 분석

올 Isacson는 간결한 파킨슨스의 질병의 개요, 그 원인, 치료 전략, 파킨슨병 연구에 발전을 제공합니다.

올 Isacson : 파킨슨병을위한 새로운 요법 개발

이 프로토콜은 건강, undifferentiated 인간의 배아 줄기 (ES) 세포를 유지하는 방법을 보여줍니다.

인간 배아 줄기 세포의 문화 및 유지 관리

배우세요 Xenopus 배아의 분열구 배아 세포를 분리 배양하여 세포 운명의 내재적·외재적 요인을 분석하는 방법을. 이 기술은 발달생물학 연구에서 유전자 발현과 세포 분화 메커니즘을 규명하는 데 활용됩니다.

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