Name: 마우스에 현지 아나필락시스 측정 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 49 s
Description: 배우세요 마우스 귀 내 피부 알레르기 반응 측정법을 Evans Blue 염료와 분광광도계로 정량화하는 방법을. 혈관 투과성 변화를 객관적으로 평가하여 알레르기 기전 연구에 활용할 수 있습니다.

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저자는 이 국소 아나필락시스 모델에 관한 연구에 대해 Ellen M. Fox 박사에게 감사를 표합니다. 이 작업은 Uniformed Services University of the Health Sciences 보조금 번호 R073UE의 지원을 받았습니다.

1 민감 마우스 <ol><li> 20 ㎎ / ㎖의 최종 농도로 1X PBS에 희석하여 OVA OVA 스톡 용액을 준비한다. 향후 사용을 위해 -80 ° C에서 cryovials 및 저장소에 분주을 동결. </li><li> 실온으로 20 ㎎ / ㎖ OVA 스톡 하나 이상의 분취 량을 준비한다. 모자 5 ㎖ 둥근 바닥 폴리스티렌 튜브에 1 ㎎ / ㎖의 최종 농도로 1X PBS에 희석 OVA. 소용돌이 간략하게 혼합한다. </li><li> : 1 비율 중속 설정 와류에 1 ㎎ / ㎖ OVA 함유 폴리스티렌 튜브 채 하나를 생성하기 위해 상기 튜브를 와동 계속하면서, 완전히 균질 Imject 명반 (40 ㎎ / ㎖)을 적하의 동량을 추가 면역원에 명반. </li><li> 소용돌이에 튜브 및 테이프 튜브에 뚜껑을 놓습니다. 낮은 설정에 소용돌이를 켜고 OVA가 30 분 동안 졸업생을 흡수 할 수 있습니다. <ol><li> 시간 많은 양의 OVA / 졸업생을 준비하고 쥐를 민감 사이를 통과하는 것을 허용하지 마십시오. 과민 반응은 OVA / 졸업생 후에는 준비를 직접 완료 할 수없는 경우상온에서 이온, 저장 OVA / 명반. 사용하기 전에 1 분 동안 소용돌이. </li></ol></li><li> OVA / 졸업생 혼합물과 함께 1 ml의 인슐린 주사기를로드합니다. 27 게이지 바늘과 주사기를 씌우고. </li><li> OVA의 50 μg 및 졸업생의 2 mg을 마우스 당 복용량 BALB / c 마우스의 복막에 OVA / 졸업생의 100 μl를 주입한다. </li><li> 음성 대조군의 경우, PBS에 쥐의 또 다른 그룹을 민감. OVA를 생략, 위에 나열된와 동일한 방식으로 졸업생과 PBS의 1 : 1 혼합물 일을 준비합니다. </li><li> 3 주사 총 삼주에 대한 일주일에 한 번 모든 마우스 (OVA와 PBS 제어) 민감. 최종 주입 한 후, 지역 아나필락시스 분석을 수행하기 전에 적어도 이주를 기다립니다. </li></ol> 2 지역 아나필락시스 분석 <ol><li> 실내 온도 OVA 원액을 가져와. (: 1X PBS에 희석 OVA 4 1) 1.5 ㎖의 마이크로 원심 튜브에, PBS 5 ㎎ / ㎖의 최종 농도 20 ㎎ / ㎖ OVA 스톡을 희석한다. 소용돌이 간략하게 혼합한다. </li><li> RC 2 &lt;사용하여 마우스를 마취/ SUP&gt; 설치류 마취 시스템 (또는 동등한 기화 전달 시스템). 이소 플루 란과 저수지를 채우고 O 2 공기 흐름을 켭니다. 유도 챔버에 넣어 마우스와는 마취를 시작하는 5 % 이소 플루 란 조절 다이얼을 조절합니다. 생쥐가 완전히 마취되면, 이동성의 부족에 의해 지시 깊은 마취를 유지하도록 3 % 이소 플루 란으로 제어 다이얼을 조정한다. 이 절차에서 마취의 목적은 동물을 고정화하는 것이다. 귀와 꼬리 정맥 주사는 동물에 심각한 통증이나 고통을 유발하지 않습니다. 참고 : 아이소 플루 란 인간의 생식 시스템에 부정적인 영향을 미칠 수 있습니다. 배기 가스를 중화 환기가 잘되는 방에서 사용하고 유도 챔버에 청소 통을 첨부해야합니다. 이소 플루 란을 사용하는 동안 임신 한 경우 노출을 최소화하기 위해 카본 필터 마스크를 착용하십시오. </li><li> 로드 31 G 바늘로 덮인 10.3 cc의 인슐린 주사기로 5 ㎎ / ㎖ OVA의 10 μL. 10 μL와 또 다른 10.3 cc의 인슐린 주사기를로드의 1X PBS. </li><li> 해부 현미경을 사용하여, OVA의 50 μg의 도전 복용량 마취 마우스 오른쪽 귀에 OVA의 10 μl를 주입. 기타 용량은 같은 20 μg으로도 허용됩니다. <ol><li> 15 ML 원뿔 튜브 주위에 스카치 테이프 (접착면을 위로) 포장, 사출에 귀를 안정화합니다. 테이프에 오른쪽 손잡이의 등 쪽을 고정합니다. 귀의 두 잎 사이에 바늘 베벨 쪽을 삽입합니다. 천천히 모든 혈관을 칠 않도록주의하면서 귀 조직의 중심으로 OVA를 주입. </li></ol></li><li> 상술 한 바와 같은 방법을 사용하여, 음성 대조군으로서 왼쪽 귀에 10 ㎕의 PBS를 주입. </li><li> 3 분을 기다립니다. <ol><li> 이 시간 동안, 저 지부에 마우스를 위치시키고 1 분 혈관을 팽창하기위한 열 램프 하에서 나 온수 욕에서 꼬리를 잡아. </li></ol></li><li> 천천히 꼬리 V로 0.5 % 에반스 블루 염료의 200 μl를 주입, 27 G 바늘로 덮인 1 ml의 인슐린 주사기를 사용하여마우스의 EIN. 전체 200 μL 전에 용기 구조를 파괴 할 수있다 급속 주사 투여된다. 이 경우, 꼬리의 반대측에 정맥에 염료의 잔량을 주입하도록 시도한다. </li><li> 10 분을 기다립니다. </li><li> 마우스를 안락사와 집게 및 수술 가위를 사용하여 두 귀를 제거합니다. <ol><li> 어떠한 압력이 귀 중심에 주사 부위에 적용되지 않는 것을 확인하고, 겸자와 귀의 가장자리를 잡아. 주변 절단함으로써 최대한 귀 조직을 제거 아니지만 통해 귀 연골 기지 존재 릿지. 모피의 소량 절제 귀 존재할 수있다; 이 분석에 영향을 미치지 않습니다. </li></ol></li><li> 나누어지는 1.5 ML의 microcentrifuge 튜브로 포름 아미드 700 μL. 귀 당 하나의 튜브 (마우스 당 두 개의 튜브)를 준비합니다. 참고 : 포름 아미드가, 기형 돌연변이, 및 자극이다. 장갑, 보안경 및 안면 보호구를 착용 할 것. 취급시 임산부는주의해야합니다의 포름 아미드가 태아 독성이 될 수 있습니다. </li><li> , 포름 아미드 튜브를 모자, 그리고 63 ° C로 설정 건열 화장실에서 하룻밤 배양 귀를 추가합니다. 귀는 여전히 배양 후에 약간 푸른 나타날 수 있습니다; 그러나 염료의 대부분 포름으로 추출한다. </li><li> 96 웰 플레이트에, 중복, 각 샘플의 300 μl를 추가합니다. 이 샘플에 존재하는 경우 모피 전사 피한다. 우물에 존재하는 기포가 없는지 그들은 흡광도 판독에 영향을 미칠 것으로 확인합니다. </li><li> 96 웰 플레이트에, 중복, 포름 아미드 300 μl를 추가합니다. 이 우물은 공백으로 사용됩니다. </li><li> 620 nm에서 흡광도를 측정하는 분광 광도계를 사용한다. 각 샘플 독서에서 빼기 포름 아미드 우물. 참고 : 모든 실험 군인 대학 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인 된 프로토콜에 따라 수행되었다. </li></ol>

<ol><li>Kojima, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mast+cells+and+Bbasophils+are+selectively+activated+in+vitro+and+in+vivo+through+CD200R3+in+an+IgE-independent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Mast cells and Bbasophils are selectively activated in vitro and in vivo through CD200R3 in an IgE-independent manner.</a> The Journal of Immunology. 179 (10), 7093-7100 (2007).</li>
<li>Parikh, S. A., Cho, S. H., Oh, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preformed+enzymes+in+mast+cell+granules+and+their+potential+role+in+allergic+rhinitis%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Allergy+and+Asthma+Reports%22%5BJournal%5D)">Preformed enzymes in mast cell granules and their potential role in allergic rhinitis.</a> Current Allergy and Asthma Reports. 3 (3), 266-272 (2003).</li>
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<li>Chase, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+the+sensitization+of+animals+with+simple+chemical+compounds%3A+X.+Antibodies+inducing+immediate-type+skin+reactions%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Studies on the sensitization of animals with simple chemical compounds: X. Antibodies inducing immediate-type skin reactions.</a> The Journal of Experimental Medicine. 86 (6), 489-514 (1947).</li>
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<li>Teshima, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+spectrophotometric+analysis+of+passive+and+active+ear+cutaneous+anaphylaxis+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicology+Letters%22%5BJournal%5D)">Simple spectrophotometric analysis of passive and active ear cutaneous anaphylaxis in the mouse.</a> Toxicology Letters. 95 (2), 109-115 (1998).</li>
</ol>

저자는 공개할 것이 없습니다.

알레르기 질환의 많은 마커기도 도전의 설정에서 기관지 유체에 순환 히스타민의 Th2 사이토 카인의 생산, 세포 모집의 수준의 변화를 포함하여 알레르기 항원의 반칙으로 알레르기 반응의 강도를 평가하는 데 사용됩니다. 이러한 매개 변수에 변화를 모니터링하는 알레르기 반응을 연구하는 것도 중요하지만, 생물학적 마커는 항상 임상 알레르기 질환과 상관 관계가 없습니다. 이 프로토콜에 설명 된 지역 아나필락시스 분석은 현지화 된 알레르기 질환에 대한 상관 관계를 지역화 된 혈관 투과성의 재생 가능한 측정을 제공합니다. 파란색 염료의 혈관 외 유출을 사용하여,이 프로토콜은 시각화 및 지역화 알레르기 반응의 상대 정량을 모두 할 수 있습니다. 임상 스코어링에 의존 알레르기 분석법 달리 (분광 광도계로 측정 한 흡광도 청색 염료 넘쳐)이 분석의 일차 결과 쉽게 관찰자 편의를 실시하지 않는다. 또 다른 ADVAntage 동물이 잠재적으로 알레르기 항원의 도전과 염료 관리로 인한 불편을 제한, 곧 공격 후 안락사된다는 것입니다. 아키야마 ...

타입 I의 과민 반응은 비만 세포와 호염기구의 표면에 IgE 항체의 항원 - 유도 된 가교 결합에 의해 매개된다. 이 세포의 탈과립과 히스타민, 트립 타제 및 혈소판 활성화 인자 (2)와 같은 혈관 작용 및 염증 매개 물질의 방출에 발생합니다. 탈과립 동안 예비 성형 매개 물질의 방출에 이어, 비만 세포는 합성하고 또한 혈관 투과성 3을 증가하는 프로스타글란딘과 류코트리엔을 놓습니다. 초기 임상 반응이 급격히 발생하여 &quot;즉각적인 반응&quot;이라한다. 피부에, 피부 발진 및 플레어 반응은 항원 도전 분 이내에 쉽게 볼 수 있습니다. 도전 복용량에 따라, &quot;늦은 위상 응답&quot;몇 시간 후를 관찰하는 것이 가능하다. 후기의 부종은 조직이로 현지화 부종 및 백혈구 모집 때문이다. 히스타민, 일반적에 참여 주요 매개체로 간주즉각적인 알레르기 반응은, 한 (HR1)의 선박과 히스타민 수용체 2 (HR2) 평활근에 표현에 표현 된 히스타민 수용체에 작용한다. 결합 된 효과는 염증 넷의 사이트에서 혈액의 흐름과 혈관 투과성을 증가시킨다. 알레르기 동물 모델의 다양한 알레르기 성 천식, 전신성 아나필락시스, 지역 과민증의 모델을 포함한 알러지 염증과 관련된 기전을 연구하기 위해 개발되었다. 정맥 염료 관리는 출판물이 1920 년대 5로 다시이 기술 데이트를 기술로, 거의 한 세기에 대 한 동물 모델에서 지역화 된 알레르기 반응을 측정하는 데 사용되었다. 토끼, 기니피그 즉각적인 과민성 반응을 검사하는 데 사용되는 제 동물 모델이었으며, 가장 민감한 반응은 일반적으로 귀 5,6에서 발견되었다. 분석은 이후 래트 (7) 및 마우스 (8)에 사용하기 위해 유효 하였다. 역사적으로,실험 다양한 방법 전에 염료를 주입, 염료를 주입하기 전에 항원의 주입에 항원을 주입하고, 염료 및 항원의 동시 분사로 사용되었다. 알레르기 반응을 측정하기위한 수단으로서 염료 정맥 투여는 수동, 활성 측정에 사용하고, 수동적 반응 5,9 반전 될 수있는 다목적 분석이다. 수많은 염료 트리 판 블루, Pontamine 스카이 블루, 에반스 블루,이기 블루 536, 인도 잉크 5,6,9 포함 알레르기 반응을 평가하기 위해 사용되었다. 0.5 % 에반스 블루의 용액은 현재 피부에 알레르기 반응을 측정하기 위해 사용되는 표준 염료이다. 도전에 대한 아나필락시스 반응은 과도하다; 최대 강도 (10) 내에 도달 - 염료 주입 15 분, 염료에 관계없이 구에 사용되는 동물 종, 공격 후 30 분을 투여하는 경우에는 반응은 볼 수 없습니다. 염료의 혈관 외 유출의 정량화는 원래이었다LY 파란색 염료 7-9으로 표시된 바와 같이 팽진 크기를 측정하여 얻을 수 있습니다. 또한 degranulated 비만 세포의 수는 반응 부위에서 피부 조직을 절개하고 7 톨루이딘 블루 염색에 의해 정량화 될 수있다. 비만 세포는 높은 친화도의 IgE 수용체 FcεRI를 발현 주요 지방 세포 집단 마찬가지로 비만 세포 탈과립은 종종 피부, IgE 매개 알레르기 반응을위한 마커로서 사용된다. 조직 염색에 넘쳐 분광 광도 측정을위한 기술은 1990 년 10 래트 및 마우스 (11)의 수동적 피부 아나필락시스 (PCA)를 위해 개발되었다. 다음 지역 아나필락시스 분석 프로토콜. 코지마 외에서 1을 적용하고, 알레르기 반응을 이끌어 내기위한 항원으로 닭 계란 난백 알부민 (OVA)를 사용 하였다. 그러나, 원한다면 이외 OVA 항원을 사용할 수있다. 분석은 다음 permeabilit 혈관의 변화를 모니터하는 에반스 블루 염료를 사용세포의 IgE 가교 및 히스타민의 방출을 비만으로 인해 발생하는 y를 입력합니다.

<table><tbody><tr><td>BALB / c 마우스</td><td>The Jackson Laboratory</td><td>651</td><td></td></tr><tr><td>PBS pH 7.4</td><td>품질 생물학적</td><td>114-058-101</td><td></td></tr><tr><td>Ovalbumin</td><td>Sigma</td><td>A5503-10G</td><td></td></tr><tr><td>Imject Alum</td><td>Thermo Scientific</td><td>77161</td><td>사용 전에 철저히 혼합</td></tr><tr><td>Evans Blue Dye</td><td>Sigma</td><td>E2129</td><td></td></tr><tr><td>포름 아미드</td><td>시그마</td><td>295876</td><td>99%+ 분광 광도계 등급</td></tr><tr><td>이소플루란, USP</td><td>피닉스</td><td>NDC 57319-474-06</td><td></td></tr><tr><td>1cc 인슐린 주사기</td><td>BD</td><td>329654</td><td></td></tr><tr><td>31G 바늘</td><td>Terumo</td><td>NDC 100861</td><td></td></tr><tr><td>27G 바늘</td><td>BD</td><td>305109</td><td></td></tr><tr><td>겸자</td><td>F.S.T.</td><td>11000-12</td><td></td></tr><tr><td>수술용 가위</td><td>F.S.T.14070-12</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>5ml 폴리스티렌 둥근 바닥 튜브</td><td>BD Falcon</td><td>352058</td><td></td></tr><tr><td>1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브</td><td>의료 공급 파트너</td><td>15-1151</td><td></td></tr><tr><td>15ml 원뿔형 튜브</td><td>BD Falcon</td><td>352097</td><td></td></tr><tr><td>평평한 바닥 96 웰 플레이트</td><td>Costar</td><td>3590</td><td></td></tr><tr><td>스카치 테이프</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>RC2 설치류 마취 시스템</td><td>VetEquip</td><td>922100</td><td></td></tr><tr><td>Vortex Genie 2</td><td>Scientific Industries</td><td>SI-0236</td><td>모델 G560(3인치 플랫폼</td></tr></tbody></table> 포함)

마우스에 현지 아나필락시스 측정

Measuring Local Anaphylaxis in Mice

알레르기 반응은 비만 세포 및 호염기구, 및 혈관 작용 및 염증 매개체의 후속 릴리스의 활성화의 결과이다. 감작 된 개인의 알레르기 항원에 노출되면 약간의 홍반에서 생명을 위협하는 아나필락시스까지 다양 임상 증상이 발생할 수 있습니다. 실험실에서, 다양한 동물 모델은 알레르기 반응을 구동 메커니즘을 이해하기 위해 개발되었다. 여기서, 우리는 지역화 알레르기 반응을 정량화 혈관 투과성의 변화를 측정하기위한 자세한 방법을 설명합니다. 지역 아나필락시스 분석은 첫째 1920 년대에보고하고, 코지마 외 출판 기술에서 적응하고있다. 2007 년 한.이 분석에서, OVA로 감작 마우스는 차량 왼쪽 귀에 및 OVA와 오른쪽 귀에 도전한다. 이것은 에반스 블루 염료의 정맥 내 주사에 의해 이어진다. 텐 분 에반스 블루를 주입 한 후, 동물은 extravasated에있다 염료 안락사되고귀에 포름 아미드 하룻밤 추출된다. 추출 염료의 흡광도 후 분광 광도계 정량화된다. 이 방법은 확실하게 지역의 알레르기 반응의 시각 및 정량화 할 수있는 징후가 발생합니다.

성공적으로 분석을 시행 한 동물 피부와 푸른 눈을 표시해야합니다. PBS 감응 동물 따라서 양쪽 귀에 흰색 (그림 1A) 남아 있어야, PBS 또는 OVA 도전 중 하나에 반응하지 않아야합니다. OVA 감작 동물, PBS 챌린지를 수신하는 귀 (왼쪽)이 완전히 흰색 또는 주사 부위에서의 국소 방식으로 가볍게 푸른 여야한다. OVA 도전을 받고 귀 (오른쪽) 염료 관리 (그림 1B) 후 10 분 동안 점진적으로 어두운 파란색이 될 것이다. PBS 감응 동물은 PBS와 OVA 도전 (그림 2A) 모두 무시할 수 흡광도 측정을해야합니다. OVA 감작 동물을, PBS 주사는 일반적으로 0.13의 평균 흡광도 판독과 0.04의 표준 편차를 초래한다. 반대로, 0.58의 평균 흡광도 판독과 0.18의 표준 편차를 50 μg OVA 챌린지 결과 (FIgure 2B). ...

비만 세포와 호염기구의 활성화를 특징으로 알레르기 반응은, IgE 항체의 가교 및 염증 매개 물질의 방출에 의해 구동된다. 알레르기 반응의 정량적 인 평가는 알레르겐 공격 후 혈관 투과성의 변화를 모니터하는 에반스 블루 염료를 사용함으로써 달성 될 수있다.

Allergic responses are the result of the activation of mast cells and basophils, and the subsequent release of vasoactive and proinflammatory mediators. ...

이 절차의 전반적인 목표는 혈관 투과성의 변화를 측정하여 국소 알레르기 반응을 정량화하는 것입니다. 이것은 먼저 동물을 O 알부민과 같은 알레르겐에 감작시킴으로써 달성됩니다. 두 번째 단계는 알레르기 항원의 피내 주사로 귀에 도전하는 것입니다.그런 다음 Evan의 파란색 염료를 꼬리 정맥에 주입합니다. 마지막 단계는 문제가 있는 귀를 하룻밤 동안 배양하여 염료를 추출하는 것입니다. 형태상, 아미드는 궁극적으로 분광 광도계로 귀에 들어간 염료의 양을 정량화하는 데 사용됩니다.기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 염료 유출이 분광법으로 측정된다는 것입니다. 이는 분석이 관찰자 편향에 쉽게 영향을 받지 않는다는 것을 의미합니다. 일반적으로 이 방법을 처음 접하는 개인은 피내 및 꼬리 정맥 주사가 기술적으로 어렵고 숙련도를 달성하기 위해 많은 연습이 필요하기 때문에 어려움을 겪을 것입니다.사용을 위해 난자 스톡 용액의 부분 표본을 실온으로 가져오는 것으로 시작합니다. 실온에서 난자 스톡을 1 XPBS에서 밀리리터당 1mg 농도로 희석합니다. 5 밀리리터 폴리스티렌 둥근 바닥 튜브를 사용하십시오.중간 속도로 튜브를 와류로 만들고 조심스럽게 완전히 균질화한 동일한 부피를 추가합니다. 난자 용액에 명반을 적방울로 주입합니다. 이와 병행하여, 동일한 기술을 사용하여 PBS에 혼합된 명반의 negative control 용액을 1:1 비율로 준비합니다.그런 다음 튜브에 캡을 씌우고 소용돌이에 고정합니다. 튜브를 부착한 상태에서 30분 동안 가장 낮은 설정에서 와류를 실행합니다. 용액이 준비되면 즉시 BAB 마우스의 감작을 진행합니다.난자 명반 혼합물을 1ml 주사기에 넣습니다. 그런 다음 27게이지 바늘로 각 마우스의 복막에 100마이크로리터를 주입합니다. 다음 3주 동안 난자가 없는 명반 용액을 사용하여 음성 대조군 마우스에 대해 이를 반복합니다.마지막 주입 후 마우스당 총 3회 주입에 대해 이 과정을 반복하고, 냉동 난자에서 국소 아나필락시스 분석을 수행하기 전에 최소 2주를 기다립니다. PBS에서 밀리리터당 5밀리그램 작업 용액을 만드는 것부터 시작하십시오. 5%ISO 불소를 사용하여 간단히 소용돌이칩니다.과민한 쥐를 마취하고, 움직이지 않게 될 때, 3%에 iso 불소를 다이얼하십시오이제 난자 준비의 10 마이크로리터로 3개의 10 인슐린 주사기를 적재하고, 31 계기 바늘로 그것을 덮고 1개의 XPBS의 10 마이

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

쥐 호흡 생리학과기도 염증 세포의 샘플링의 반복 측정이 바람직하지만, 일반적으로 가능하지 않습니다. 여기 구두기도 염증 세포의기도 기능 항 진성과 샘플링의 반복 측정을 허용 쥐를 intubating에 대한 반복 방법을 설명합니다.

에어웨이 저항 측정 및 마우스에 Bronchoalveolar 세척 유체 샘플링에 대한 가역, 비침습 방법

알레르기 천식의 실험 마우스 모델은 질병 pathogenesis를 공부하고 새로운 치료제 개발에 새로운 가능성을 제공합니다. 이러한 모델은 잘 알레르기 면역 반응,기도 염증과 폐의 pathophysiology을 규제하는 측정 요소에 적합합니다.

알레르기 항원 유도 천식의 Murine 모델

이 동영상은 쥐 모델에서 피부 염증을 유발하여 테스트 항원을 평가하는 생체 내 기술을 보여줍니다. 오일/아세톤 용액에 함유된 합텐(hapten)인 테스트 항원을 마우스 귀 피부에 국소적으로 적용하고 적절한 기간 후에 피부의 염증을 평가합니다.

피부 염증을 유발하여 항원에 대한 면역 반응을 평가하는 기법

복원력 반사 손실이 긴 동물 실험에서, 또한 최면이라는 의식을위한 표준 행동 대리 역임했다. 약리학 적 개입으로 인한 휘발성 마취제 감도의 변화는 흡입 치료제의 전달을 위해 적응 될 수있다 신중하게 제어 높은 처리량 평가 시스템으로 검출 될 수있다.

로컬 또는 전신 약물 개입 후 마우스의 휘발성 전신 마취 감도의 변화를 평가

Electronic von Frey 측정은 염증 사건 전후에 지속적으로 가해지는 압력 자극에 대한 설치류의 기계적 인출 임계값의 변화를 빠르고 정확하게 측정할 수 있기 때문에 고전적인 von Frey 필라멘트에 대한 효과적이고 개선된 대안입니다.

전자 폰 프레이 장치를 사용하여 생쥐의 뒷발에서 촉각 감도의 변화를 측정합니다.

설명 된 항 원 자주 나노 입자와 자극 B 세포 활성화에서 생체 외에서 그리고 vivo에서에서 그들의 사용의 준비가 이다. 일관 되 고 강력한 항 체 응답 새로운 땅콩 알레르기 모델의 개발을 주도. 항 원 리를 생성 하기 위한 프로토콜은 다른 항 원 및 예방 모델을 확장할 수 있습니다.

질병-특정 항 체의 생성에 대 한 항 원 리

여기 우리는 수동 조직의 알레르기 (PSA) 및 적외선 온도계를 사용 하 여 음식 알레르기 마우스 모델에서 몸 온도 차이 정확 하 게 측정 하는 새로운 방법을 제시. 이 절차는 이전 PSA 결과에 정확 하 게 중복 되었습니다.

수동 체계 알레르기 및 식품 알레르기 평가 하는 동안 적외선 온도계를 사용 하 여 마우스 신체 온도 측정

여기에서, 우리는 생체외 및 시험관내 둘 다 호중구 이동 및 침투를 평가하는 3개의 방법을 제시합니다. 이 방법은 호중구 이동을 표적으로 하는 유망한 치료법을 발견하기 위하여 이용될 수 있습니다.

마우스에서 호중구의 이동 및 침투 감지

접촉 과민증 (CHS)은 알레르기 성 접촉 피부염 (ACD)의 뮤린 실험 모델입니다. CHS는 가슴과 복부의 면도 된 피부를 페인팅하여 반응성 합텐으로 감작을 기반으로하며, 희석 된 합텐으로 후속 귀 피부 챌린지를 통해 다양한 방법으로 평가되는 붓기 반응을 일으 킵니다.

알레르기 성 접촉 피부염의 뮤린 모델로서의 접촉 과민증

여기에서는 1-플루오로-2,4-디니트로벤젠(DNFB)에 의해 마우스 귀에 알레르기성 접촉성 피부염을 유도하는 방법과 알레르기성 접촉성 피부염의 중증도를 평가하는 방법을 설명합니다.

알레르기성 접촉성 피부염 평가를 위한 마우스 귀 모델

배우세요 마우스 귀 내 피부 알레르기 반응 측정법을 Evans Blue 염료와 분광광도계로 정량화하는 방법을. 혈관 투과성 변화를 객관적으로 평가하여 알레르기 기전 연구에 활용할 수 있습니다.

마우스에 현지 아나필락시스 측정

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