Name: 분리 및 설치류 대동맥 절제; 심혈관 질환의 연구에 다목적 기술 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 25 s
Description: 학습하세요 설치류 대동맥 절제 기술을 통해 심혈관 질환 연구를 수행하는 방법을. 흉복강 노출, 생리식염수 관류, 주변 조직 절제 단계를 포함하며, 분자생물학 분석과 세포 배양에 활용할 수 있습니다.

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저자는 어떤 승인이 없습니다.

모든 동물의 절차는, 신시내티 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회와 국립 보건원 (National Institutes of Health)에서 실험 동물의 관리 및 사용을위한 설명서에 따라 승인 (NIH 공개 제 85-23으로 수행 하였다 ) 1996 개정. 1. 마우스를 준비 <ol><li> 마취의 supratherapeutic 복용량에 동물을 노출시켜 안락사, 이소 플루 란은 효과를 흡입. 유해 자극으로 발가락 핀치를 통해 주 안락사를 확인합니다. 안락사, 다이아 프램 절단의 보조 방법은, 곧 단계에서 발생합니다. 다른 방법도 사용할 부여 안락사 수득 될 수있다. </li><li> Sanitizie 수분의 포인트에 70 % 에탄올로, 초기 상처가 될 것이다 복부, 함께 모피를 분사하여 마우스의 외부 표면은되도록 모피 에탄올 젖은이며 느슨한 / 마른 머리카락은 입력하지 지역. </li><li> 쉬르에 마우스를 배치합니다상부 및 하부 부속와 앙와위에서 학적 보드 바깥쪽으로 확장. </li><li> 수술 테이프를 사용하여 보드에 대한 보안 부속. </li></ol> 심장 및 대동맥 2. 분리 <ol><li> 마우스를 적절하게 배치 한 후, 찾아 흉골의 칼 모양의 과정에 불과 열등한 복부 피부를 분리하기 위해 집게를 사용합니다. </li><li> 똑바로 피부를 들어 올려 긴장을 만들고 복막 및​​ 흉강의 열등한 부분의 우수한 부분을 노출, 표피를 제거하기 위해 가위를 사용합니다. </li><li> 칼 모양의 과정을 들어 올리고 subcostal 여백 따라 처리 단지 열등한 측면 절개하여 복강을 입력합니다. </li><li> 심장이나 주요 혈관을 괴롭히다하지 확인되고, 다이어프램을 통과, 흉강들로 해부하다. </li><li> 흉곽의 앞쪽 부분을 제거하는 단계 2.3 두개쪽으로에서 만든 횡 절개를 확장 할 수 있습니다. 면필요에 무딘 절개를 이용하여 전방 흉벽에서 심장 무료. </li><li> 물질을 흡수하는 멸균 거즈를 사용하여 외부 피와 유체의 흉강을 청소합니다. 지역이 더 눈에 보이는되면, 더 나은 심장과 대동맥을 노출 폐를 제거합니다. </li></ol> 심장 및 대동맥 3. 관류 참고 :이 단계 그래서 그냥 전에해야, 혈액을 심장 천자를 통해을 구하십시오. <ol><li> 살균 얼음 차가운 1X 인산 완충 용액 (PBS)의 10 ㎖로 10 CC 주사기를 가득 채운 후 주사기에 25 게이지 바늘을 연결합니다. </li><li> 조심스럽게 심장의 좌심실에 바늘을 삽입합니다. </li><li> 관류에서 압력 상승을 완화하기 우심방을 잘라. 3 분 - 2 위에 마우스로 주사기의 내용을 관류. </li><li> 관류 액을 흡수 우심방에서 개막식에서 멸균 거즈를 사용합니다. </li></ol> 대동맥 4. 분리 및 절제 <ol><li> PE 완료되면rfusion, 흉강 내 시야를 흐리게 남아있는 액체를 흡수하는 멸균 거즈를 사용합니다. </li><li> 치골 상부 지역에 절개를 확장, 복부 벽을 통해 꼬리 쪽 절단하여 위장 내용을 노출. 양자 아래로 고정 또는 절제 할 수 있습니다 피부 플랩을 만들 낮은 사지를 향해 더 절개를 확장합니다. </li><li> 더 나은 대동맥을 시각화 간, 췌장, 위, 비장, 창자의 로브를 제거합니다. 대동맥은 신장 동맥의 가지에서 피상적으로, perirenal 지역 근처 해부 할 때주의하십시오. 참고 : 정확한에서이 단계를 수행하고 위장관 오염에 대한 성향을 증가 세균이 풍부으로 방법을 진학. </li><li> 1X PBS와 지역을 씻어 멸균 거즈로 흡수에 의해 모든 유체를 제거합니다. </li><li> 멸균 microscissors과 microforceps를 사용하여 척추의 등쪽과 복부 식도에서 대동맥을 구분합니다.그것은 무딘 해부 및 이에 대한 해부 현미경을 이용를 사용하는 것이 가장 좋은 방법입니다. 참고 : 대동맥을 분리에서 장골 분기에 꼬리 쪽 시작하고 꼬리 쪽 해부 경동맥과 완두 동맥에서 두개쪽으로 두개쪽으로 청소 및 공동의 등면에서 대동맥을 분리 이동하거나 시작합니다. 어느 방법이 적절한 지와 연구자의 편안함에 달려있다. </li><li> 대동맥 벽의 일부를 제거하지 않도록 확인되는 미세 microscissors를 사용하여 혈관 주위 지방 조직을 제거합니다. 이것은 대동맥 평활근 세포를 배양 할 때 섬유 아세포 오염 가능성을 최소화하는 것이 필수적이다. </li></ol>

<ol><li>Go, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+disease+and+stroke+statistics--2014+update%3A+a+report+from+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart disease and stroke statistics--2014 update: a report from the American Heart Association.</a> Circulation. 129 (3), 28-292 (2014).</li>
<li>Ross, R., Harker, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperlipidemia+and+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Hyperlipidemia and atherosclerosis.</a> Science. 193 (4258), 1094-1100 (1976).</li>
<li>Clouse, W. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+aortic+dissection%3A+population-based+incidence+compared+with+degenerative+aortic+aneurysm+rupture%5BTitle%5D)+AND+%22Mayo+Clin+Proc%22%5BJournal%5D)">Acute aortic dissection: population-based incidence compared with degenerative aortic aneurysm rupture.</a> Mayo Clin Proc. 79 (2), 176-180 (2004).</li>
<li>Daugherty, A., Cassis, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+abdominal+aortic+aneurysms%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">Mouse models of abdominal aortic aneurysms.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 24 (3), 429-434 (2004).</li>
<li>Pleumeekers, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aneurysms+of+the+abdominal+aorta+in+older+adults.+The+Rotterdam+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Epidemiol%22%5BJournal%5D)">Aneurysms of the abdominal aorta in older adults. The Rotterdam Study.</a> Am J Epidemiol. 142 (12), 1291-1299 (1995).</li>
<li>Brophy, C. M., Reilly, J. M., Smit, G. J., Tilson, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+inflammation+in+nonspecific+abdominal+aortic+aneurysm+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">The role of inflammation in nonspecific abdominal aortic aneurysm disease.</a> Ann Vasc Surg. 5 (3), 229-233 (1991).</li>
<li>Ray, J. L., Leach, R., Herbert, J. M., Benson, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+vascular+smooth+muscle+cells+from+a+single+murine+aorta%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Isolation of vascular smooth muscle cells from a single murine aorta.</a> Methods Cell Sci. 23 (4), 185-188 (2001).</li>
<li>Weiss, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+the+murine+cardiovascular+system+with+magnetic+resonance%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Imaging the murine cardiovascular system with magnetic resonance.</a> Circ Res. 88 (6), 550-551 (2001).</li>
<li>Graham, E. L., Balla, C., Franchino, H., Melman, Y., del Monte, F., Das, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+culture%2C+and+functional+characterization+of+adult+mouse+cardiomyoctyes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation culture, and functional characterization of adult mouse cardiomyoctyes.</a> J Vis Exp. (79), 50289(2013).</li>
<li>Wassef, M., Upchurch, G. R. Jr, Kuivaniemi, H., Thompson, R. W., Tilson, M. D. 3rd <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Challenges+and+opportunities+in+abdominal+aortic+aneurysm+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Challenges and opportunities in abdominal aortic aneurysm research.</a> J Vasc Surg. 45 (1), 192-198 (2007).</li>
</ol>

저자가 공개하는 게 없다.

대동맥 질환은 심각한 전신 병리를 유발할 수 있으며 심한 경우 사망에 이를 수도 있습니다. 현재 치료 옵션이 제한되어 있으므로 해당 분야의 지속적인 연구가 필요합니다10. 쥐 모델은 질병 진행 및 잠재적인 치료 옵션을 추가로 연구하는 데 이상적입니다4. 따라서 이 원고에 설명된 방법을 성공적으로 완료하면 연구자에게 질병 진행 및 약물 효능을 측정할 수 있는 도구가 제공됩니다. 
이 기술은 결과를 최적화하기 위해 여러 가지 방법으로 수정할 수 있습니다. 수술용 확대경이나 해부 현미경을 사용하면 쥐의 해부학적 구조와 맥관 구조의 세부 사항을 시각화하고 대동맥에서 주변 지방 조직을 제거하는 데 도움이 될 수 있습니다. 또한 특정 작업에 전용 수술 도구를 사용하면 도구의 수명을 늘릴 수 있습니다. 예를 들어, 피부를 자르기 위해 가위를 사용하고 갈비뼈를 자르기 위해 별도의 가위를 사용하는 것이 이상적입니다. 심장을 관류할 때 작은 게이지 바늘을 사...

대동맥 산소화 된 혈액과 신체의 다른 부분들과 유사한 몸체 공급 심혈관 기능의 중추적 인 역할을하는 질병에 민감하다. 일반 대동맥 질환 다이어트, 흡연, 앉아있는 생활 습관 하나를 포함하여 유전 적, 환경 적 요인의 결과이다 죽상 동맥 경화증과 동맥류를 포함한다. 죽상 경화증은 전형적 만성 고지혈증이있는 환자에서 발견 대동맥 벽 칼슘 및 지질 계 플라크의 침착이다. 궁극적 세 동맥류 파열로 이어질 수 대직 다음 대동맥과 용기 벽의 박막화의 구성 부품의 분해에 의해 특징 지어진다. 동물 모델은 질병과 잠재적 치료 효과의 메커니즘을 연구하는 데 중요한 도구입니다. 심혈관 연구에 사용 된 일반적인 동물 모델은, 구체적으로는 혈관 및 대사 장애를 조사 조회예컨대 아포지 단백질 E 유전자 녹아웃 및 저밀도 지단백질 수용체 유전자 녹아웃 마우스 (4)와 같은 지질 수준을 변경할 수있는 유전자 변형 마우스를 포함한다. 질병 및 치료의 효능을 평가하는 메커니즘 방법 중 대부분은 대동맥의 분리 및 절제를 포함한다. 대동맥 지역화 및 격리되면, 형태 계측 학적 분석은 동맥류의 존재하에, 일반적으로 직경 5 이상, 50 % 증가로 정의 된 바와 같이 결정될 수있다. 계내 분석 필요가 완료된 후, 대동맥을 적출 추가 분석 할 수있다. 절개 된 대동맥 단백질 및 / 또는 유전자 발현 분석법 또는 분자 연구를 수행 할 수있는 냉동 플래시 4 % 파라 포름 알데히드를 사용하여 고정 이상, 매립 단면 조직 학적 분석을 위해 염색. 대동맥의 조직 학적 분석은 구조 저하, 플라크 형성하고, 백혈구의 침투와 같은 대동맥 질환의 공통적 인 특징을 보여줄 수있는 &lt;SUP&gt; 6,7. 또한 대동맥 절개이어서 관내 연구 (7)의 다양한 사용될 수 내피 및 평활근 세포를 포함한 일차 세포주를 분리 할 수있다. 현재, 대동맥 질환이 심도있는 특성을 제공 할뿐만 아니라 추가로 심혈관 질환을 연구하는 도구와 연구자를 제공 할 다른 방법이 없습니다. 자기 공명 영상, 컴퓨터 단층 촬영과 같은 초음파 이미징을 그러나 이것은 작은 동물 어렵고 적절한 기술 취득 장치 8 비싸 형태학 대동맥을 평가하는 가장 가까운 방법이다. 불멸화 세포주는하지만이 세포의 인공 자연 세포 생존 구간 및 아폽토시스 9 효과를 연구에 제한되는 질병의 치료 효능의 잠재적 기전을 조사하기 위해 구입할 수있다. 의 전반적인 목표이 원고는 심혈관 질환의 조사에 쥐의 대동맥의 무균 분리 및 절단을 입증하는 것입니다.

<table><tbody><tr><td>Isoflurane</td><td>Med-Vet International</td><td>#RXISO-250</td><td></td></tr><tr><td>70% 에탄올</td><td>Fisher</td><td>07-678-001</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5368-10PAK</td><td></td></tr><tr><td>수술 테이프</td><td>3M</td><td>1527-1</td><td></td></tr><tr><td>멸균 거즈</td><td>Dukal Corporations</td><td>1312</td><td></td></tr><tr><td>25 게이지 바늘</td><td>BD</td><td></td><td></td>305122</tr><tr><td>10ml 주사기</td><td>BD</td><td>309604</td><td></td></tr></tbody></table>

분리 및 설치류 대동맥 절제; 심혈관 질환의 연구에 다목적 기술

Isolation and Excision of Murine Aorta; A Versatile Technique in the Study of Cardiovascular Disease

심혈관 질환은 심장 및/또는 혈관의 질병을 설명하는 광범위한 용어입니다. 신체에 산소가 공급된 혈액을 공급하는 주요 혈관은 대동맥입니다. 대동맥은 죽상동맥경화증 및 동맥류와 같은 질병에 영향을 받을 수 있습니다. 이러한 질병을 연구하는 연구자들은 대동맥을 직접 관찰하여 질병 진행을 특성화하고 잠재적인 치료법의 효능을 평가하는 데 도움이 될 것입니다. 이 프로토콜의 목표는 심혈관 질환을 연구하는 연구자를 돕기 위해 대동맥의 적절한 격리 및 절제를 설명하는 것입니다. 대동맥의 분리 및 절제를 통해 연구자는 전체적인 형태학적 변화를 볼 수 있을 뿐만 아니라 원하는 경우 조직을 보존하고 염색하여 조직학적 변화를 볼 수 있습니다. 대동맥은 관심 표적과 작용 기전을 발견하기 위해 단백질과 유전자 발현을 평가하기 위한 분자 연구에 사용될 수 있습니다. 이 기술은 기술과 비용에 내재적 한계가 있기 때문에 이미징 방식보다 우수합니다. 또한 새로 분리되고 절제된 대동맥에서 1차 분리된 세포를 통해 연구원들은 현장 및 체외 분석을 추가로 수행할 수 있습니다. 대동맥의 격리 및 절제는 동물을 희생해야 하는 한계가 있지만, 이 경우 대동맥 질환 연구에서 가장 다재다능한 기술이기 때문에 이점이 해로움보다 큽니다.

절차가 완료되면, 여전히 (그림 1A)에 부착 된 신장 동맥 흉부 및 복강으로 내려 심장에서 발생하는 손상 대동맥이 될 것입니다. 여기에서, 대동맥이 복부 대 동맥류 (그림 1B 및 1C)의 연구에서 진단이다 형태 학적 변화를 정량화하기 위해 현장에서 이미징 할 수있다. 그 후, 대동맥, 제거 고정 및 조직 학적 변화를보고 염색 할 수있다. 대동맥 일반적인 공통 얼룩이 마톡 실린 및 에오신 염색 (도 2a 및도 2b)이다. 또한, 대동맥의 구조적 무결성 질적 엘라스틴 밴드 (그림 2C 및 2D)를보고 Verhoff 반 Geison 염색을 사용하여 정량화 할 수있다. 대신 조직 학적 분석을 얻기의, 깜박일 수 있습니다 연구자 후속 단백질과 리보 핵산의 expre의 대동맥을 동결ssion. 조사자에 대한 마지막 옵션은 일차 전지 격리를...

대동맥의 병리학은 심각한 이환율과 사망률을 유발할 수 있으므로 질병 진행 및 잠재적 치료법에 대한 연구가 필요합니다. 여기에서는 심혈관 질환에 대한 연구자의 연구를 돕기 위해 쥐 대동맥을 분리하고 절제하는 프로토콜을 제시합니다.

Cardiovascular disease is a broad term describing disease of the heart and/or blood vessels. The main blood vessel supplying the body with oxygenated ...

이 절차의 전반적인 목표는 쥐 대동맥을 완전히, 분리 및 절제하는 것입니다. 이것은 먼저 흉강과 복강을 노출시킴으로써 이루어집니다. 두 번째 단계는 차갑고 멸균된 식염수를 관류하는 것입니다.다음으로, 흉강과 복강의 장기를 제거하고 심장을 대동맥에 붙인 상태로 만듭니다. 마지막 단계는 대동맥에서 혈관 주위 지방 조직과 출현 조직을 절제하는 것입니다. 궁극적으로 해부 현미경을 사용하여 주변 조직이 모두 제거되었는지 확인하고 대동맥은 다양한 실험 분석에 사용할 수 있습니다.따라서 이 기술은 동맥류 발병 및 죽상경화성 플라크 형성과 같은 심혈관 연구 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 됩니다. 그래서 여러분은 유전자와 단백질 발현과 같은 분자 생물학의 변화를 살펴봄으로써 그것들을 볼 수 있습니다. 마우스를 안락사시킨 후 발가락 꼬집기로 안락사 상태를 확인합니다.다음으로, 복부 털을 70% 에탄올로 적셔 피부를 살균합니다. 그런 다음 부속물을 쭉 뻗은 상태로 수술 보드에 마우스를 고정합니다. 집게를 사용하여 xiphoid process보다 바로 아래에 있는 복부 피부를 찾아 분리하여 수술을 시작합니다.다음으로 피부를 들어 올려 가위로 잘라냅니다. 이것은 복막의 상부와 하흉강을 노출시켜야 합니다. 그런 다음 집게와 가위를 사용하여 xiphoid process를 들어 올리고 늑골하 가장자리를 따라 바로 아래쪽 측면 절개를 만듭니다.흉강을 절개하려면 횡격막을 통해 들어가며 그 과정에서 심장이나 주요 혈관이 손상되지 않도록 주의하십시오. 이제 두개골은 늑골 아래 가장자리를 따라 측면 절개를 확장합니다. 따라서 흉곽의 앞부분을 제거하십시오.이러한 절개를 완료하기 위해 전방 흉벽에서 심장을 제거하기 위해 둔기 절개가 필요할 수 있습니다. 이제 거즈를 사용하여 흉강에서 과도한 체액을 제거하여 장기에 더 쉽게 접근할 수 있도록 합니다. 그런 다음 집게와 가위 엽을 사용하여 폐를 제거합니다.그런 다음 심장과 대동맥이 완전히 노출되고 심장 천자를 통해 혈액을 채취할 수 있도록 쉽게 접근할 수 있어야 합니다. 지금 그렇게 하십시오 심장을 관류하기 위해 관류를 진행하기 전에 10cc 주사기에 10ml의 멸균 얼음처럼 차가운 XPBS를 채웁니다. 그런 다음 25 게이지 바늘을 부착합니다.좌심실에 바늘을 조심스럽게 삽입합니다. 그런 다음 다음 단계에서 순환계에 과도한 압력이 형성되지 않도록 우심방을 절개합니다. 이제 2-3분에 걸쳐 주사기에서

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우리는 마우스의 복부 대동맥의 한 부분이 단지 allogeneic 또는 syngeneic받는 사람의 신장 동맥 아래에 orthotopically 이식되는 기술을 설명합니다. 이 기술은 균일 한 크기의 큰 동맥의 이식이 유리한 것으로 간주되는 연구에 유용 할 수 있습니다.

혈관 질병의 연구에 대한 마우스의 Orthotopic 대동맥 이식

이 비디오에서는 미니어처 돼지에서 대동맥을 외과적으로 제거하는 절차를 보여줍니다. 이러한 분리된 대동맥에서 채취한 내피 세포는 응고 및 면역 반응을 연구하기 위해 체외 조건에서 추가로 배양할 수 있습니다.

돼지 대동맥 분리: 다운스트림 분석을 위해 미니어처 돼지에서 흉부 대동맥을 절제하는 수술 절차

조직화학적 및 면역조직화학적 분석과 결합된 대동맥동 및 상행 대동맥의 정밀 절단을 사용하여 마우스 모델에서 죽상경화성 병변을 정량화하고 특성화하는 절차를 설명합니다.

쥐의 대동맥 부비동의 동맥 경화 병변의 정량 분석​​ 및 특성

혈관 내피 세포는 많은 중요한 심혈관 질환에서 중요한 역할을 합니다. 이 기사에서는 특별한 장비를 사용하지 않고 쥐 대동맥에서 내피 세포를 분리하고 확장하는 간단한 방법을 설명합니다. 당사의 프로토콜은 내피 세포 생리병리학에서 메커니즘을 식별하는 효과적인 수단을 제공합니다.

분리 및 마우스 대동맥 내피 세포의 차 문화

이 프로토콜의 목적은 관상 동맥에서 뮤린 주 혈관 평활근 세포의 분리 및 배양 방법 (혈관 평활근 세포)을 보여주는 것이다. 혈관 평활근 세포가 분리되고 나면, 이들은 많은 표준 배양 기술에 사용될 수있다.

쥐 관상 동맥 혈관 평활근 세포의 분리

심혈관 수술 (바이 패스 수술, 혈관 성형술 또는 스텐트 삽입) 후의 재 협착은 이러한 과정의 내구성을 감소시키는 중요한 문제입니다. 이상적인 치료법은 내피 세포의 재생을 촉진시키면서 평활근 세포 (VSMC)의 증식을 억제합니다. 우리는 생체 내에서 VSMC의 증식과 내피 기능의 동시 평가를위한 모델을 설명합니다.

소뇌 대동맥 파열 상해 : 효율적<em&gt; In Vivo</em&gt; 평활근 세포 증식과 내피 기능 모델

배아와 perinatal murine 대동맥 여기 vivo에서 클론 분석 및 운명 매핑, 대동맥 explants 및 격리 된 부드러운 근육 세포 상세를 사용 하 여 공부에 대 한 프로토콜. 이러한 다양 한 접근의 정상적인 발전에서 배아 및 perinatal 대동맥 및 질병의 병 인 morphogenesis 조사를 촉진 한다.

Morphogenesis 배아 및 Perinatal 대동맥의 병 인을 공부 하 고 Vivo에서 , 조직 및 세포 Explant 접근을 사용 하 여

여기서, 우리는 자궁 경부 뮤린 모델에서 비 봉합술 커프 기술을 사용하여 마우스에서 이종성 대동맥 이식의 프로토콜을 제시한다. 이 모형은 만성 동종 이식 혈관병증 (CAV)의 근본적인 병리를 공부하기 위하여 이용될 수 있고 그것의 대형을 방지하기 위하여 새로운 치료에이전트를 평가하는 것을 도울 수 있습니다.

수정된 비봉합사 커프 기술을 사용한 뮤린 자궁 경부 대동맥 이식 모델

이 프로토콜은 성인 마우스에서 심방 및 심실 근세포의 동시 격리를 위한 대동맥 통조림의 깊이를 포함하는 Langendorff 방법의 변형을 설명합니다.

성인 마우스에서 심방 및 심실 근세포의 동시 격리를위한 랑엔도르프 방법의 수정

우리는 단일 세포 체학 실험을 수행하기 위해 안정하거나 방해받는 흐름 조건에 노출 된 마우스 경동맥의 내강에서 내피 세포와 핵을 분리하는 방법을 제시합니다.

단일 세포 다중 오믹스 실험을 위한 마우스 경동맥 내강에서 내피 세포 분리

이 프로토콜은 죽상경화증의 메커니즘과 진행에 대한 보다 심층적인 연구를 용이하게 하기 위해 죽상경화성 플라크의 정량적 분석을 위한 포괄적인 방법론을 제공합니다.

Isolation and Analysis of Aortic Arch and Root Lesions in an Atherosclerotic Mouse Model(죽상경화성 마우스 모델에서 대동맥궁 및 뿌리 병변의 분리 및 분석)

학습하세요 설치류 대동맥 절제 기술을 통해 심혈관 질환 연구를 수행하는 방법을. 흉복강 노출, 생리식염수 관류, 주변 조직 절제 단계를 포함하며, 분자생물학 분석과 세포 배양에 활용할 수 있습니다.

분리 및 설치류 대동맥 절제; 심혈관 질환의 연구에 다목적 기술

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