Name: 전기 영동 이동성 분석 (EMSA) 및 Shift 키를 사용하여 기능 비 코딩 유전자 변형에 대한 심사 DNA 화성 강수 분석 (DAPA) (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 35 s
Description: 학습하세요 비코딩 유전자 변형의 기능을 EMSA와 DAPA 기법으로 분석하는 방법을. 이 프로토콜은 질병 관련 변이체의 전사인자 결합 영향을 평가하여 유전체학 연구에 활용됩니다.

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프로토콜 개발에 대한 조언과 지시에 대해 Erin Zoller, Jessica Bene, Lindsey Hays에게 감사드립니다. MTW는 NIH R21 HG008186와 신시내티 아동 병원 연구 재단(Cincinnati Children's Hospital Research Foundation)의 신탁 관리자 상 보조금의 일부 지원을 받았습니다. ZHP는 T32 GM063483-13에 의해 부분적으로 지원되었습니다.

솔루션 및 시약 1. 준비 <ol><li> EMSA 및 방위 사업 청에 사용하기위한 사용자 정의 DNA 올리고 뉴클레오티드 프로브를 주문하십시오. <ol><li> 짧은 올리고 디자인, 바인딩이 아닌 특정 단백질을 감소시키기 위해 30, 및 17 bp의 내인성 게놈 서열에 의해 측면 중앙에 직접 관심의 변형을 배치 (35 ~ 45 염기의 길이 쌍 (BP) 사이). EMSA 올리고 들어, 5 &#39;형광을 추가합니다. 방위 사업 청 올리고 들어, 5 &#39;비오틴 태그를 추가합니다. </li><li> 센스 가닥과 역 보완 가닥 모두를 주문하십시오. 또한, 주문 듀플렉스 (프리 어닐링) 올리고. 올리고 이름을 지정할 때 설립 참조 게놈의 명칭을 기반으로. 참고 : &quot;위험&quot;과 질병 및 프로젝트 특정 할 수있다 &quot;비 위험&quot;지정 &quot;참조&quot;와 &quot;비 참조&quot;더 보편적으로 관련이있다. </li><li> 올리고 도착하면, 간단히 100 μ의 최종 농도 클레아없는 물에서 재현 탁 내용과 스핀 다운;엠. 스토어는 -20 ° C에서 주식을 재현 탁. 알루미늄 호일로 포장하여 빛에서 형광 태그 올리고를 보호합니다. </li></ol></li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> 이름 </td><td> 순서 </td></tr><tr><td> rs76562819_REF_FOR </td><td> GTAATGCCTTAATGAGAGAG GTTAGTCATCTTCTCACTTC </td></tr><tr><td> rs76562819_REF_REV </td><td> GAAGTGAGAAGATGACTAAC T CTCTCTCATTAAGGCATTAC </td></tr><tr><td> rs76562819_NONREF_FOR </td><td> GTAATGCCTTAATGAGAGAG G GTTAGTCATCTTCTCACTTC </td></tr><tr><td> rs76562819_NONREF_REV </td><td> GAAGTGAGAAGATGACTAAC C CTCTCTCATTAAGGCATTAC </td></tr></tbody></table> 표 1 : 예 EMSA / 방위 사업 청 올리고 뉴클레오티드 디자인은 차동 빈의 SNP를 테스트&quot;NONREF&quot;은 비 기준 대립 약자 동안 딩. &quot;REF&quot;는 기준 대립 유전자를 나타낸다. &quot;에 대한&quot; &quot;REV는&quot;그 보완을 표시하면서, 앞으로 가닥을 의미합니다. SNP는 빨간색으로 볼 수있다. <ol start="2"><li> 최종 10 mM의 HEPES (pH를 7.9)의 농도, 10 밀리미터의 KCl, 탈 이온수 0.1 mM의 EDTA와 세포질 추출 (CE) 버퍼를 준비합니다. </li><li> 핵 추출 (NE) 최종 20 mM의 HEPES (pH를 7.9)의 농도, 0.4 M의 NaCl, 및 탈 이온수에 1 mM의 EDTA와 버퍼를 준비합니다. </li><li> 최종 10 mM 트리스 (PH 7.5-8.0)의 농도, 50 mM의 염화나트륨, 탈 이온수에 1 mM의 EDTA와 어닐링 버퍼를 준비합니다. </li></ol> 배양 된 세포에서 핵 해물 2. 준비 참고 :이 실험 프로토콜은 B-임파 세포 라인을 사용하여 최적화되었지만, 여러 가지 다른 관련이없는 접착 / 서스펜션 세포주에서 테스트를 거쳤으며 보편적으로 작동합니다. <ol><li> Cultu2 mM L- 글루타민, 10 % 소 태아 혈청, 페니실린 100 유니트 / ㎖, 스트렙토 마이신 100 ㎍ / ml를 함유 1X 항생제 - 항진균제 250 NG와 로스웰 파크 메모리얼 연구소 (RPMI) 1640 B-임파 세포 재 암포 테리 신 B의 / ㎖ <ol><li> 200,000-500,000 생존 세포 / ml의 범위에서 시드와 통하게되거나 느슨한 캡 세워서 5 % 이산화탄소, 37 ℃에서 플라스크 배양한다. 참고 :이 1,000,000 이상 세포 / ml에 도달했을 때 B-임파 세포의 성장이 느려집니다. 최대 피펫 팅에 의해 여러 번 아래로 셀 폭발을 휴식과 성장의 빠른 속도를 유지하기 위해 200,000-500,000 세포 / ml로 세포를 반환합니다. </li></ol></li><li> 5 분, 4 ° C에서 300 XG에 스핀 다운 및 흡입을 통해 PBS를 제거, 두 번 10 ml의 차가운 얼음 인산염 완충 식염수 (PBS)로 배양 된 세포를 씻으십시오. </li><li> 10 7 세포 당 차가운 PBS 1 ml의 얼음 같은 혈구와에 resuspend 펠렛을 사용하여 세포를 계산합니다. 참고 : 예를 들어, 2 × 10 7 용균 경우 &lt;/ SUP&gt; 셀, 2 ml의 PBS에 재현 탁. </li><li> 나누어지는 1.5 ml의 마이크로 원심 튜브에 1 ㎖의 각 튜브는 PBS에서 10 7 세포를 포함하도록. PBS 오프 2 분 4 ° C 및 흡인을위한 3,300 XG에 원심 분리기. </li><li> 사용 CE 버퍼의 작업 스톡 1 mM 디티 오 트레이 톨 (DTT), 1X 포스파타제 억제제 및 1X 프로테아제 억제제를 추가하기 전에. 재현 탁 셀 CE 버퍼 400 μL로 펠릿 15 분 동안 얼음 위에서 배양한다. </li><li> 10 % Nonidet P-40의 25 μl를 추가하고 피펫으로 혼합한다. 4 ° C, 3 분 동안 최대 속도로 원심 분리기. 가만히 따르다 및 상층 액을 버린다. </li><li> 사용 NE 버퍼의 작업 재고 1 mM의 DTT, 1X 포스파타제 억제제, 및 1X 프로테아제 억제제를 추가하기 전에. 재현 탁 세포 NE 버퍼의 30 μL와 펠렛 및 텍싱하여 혼합한다. </li><li> 튜브 회전에서 10 분 동안 얼음에 4 ° C에서 품어. 원심 분리기 2 분 4 ° C를위한 3,300 XG. </li><li> 에 저장하기 전에 맑은 상층 액 (핵 해물) 및 분취를 수집 -806; C는 단백질을 분해 할 수있다 여러 동결 - 해동 사이클을 방지 할 수 있습니다. bichoninic 산 분석 (BCA) (31)를 사용하여 단백질 농도를 측정하기 위해 10 μL 나누어지는 둡니다. </li></ol> 3. 전기 영동 이동성 이동 분석 (EMSA) <ol><li> 올리고 작업 주식 및 EMSA 젤을 준비합니다. <ol><li> 올리고가 양면에 정렬 된 경우, 100 μM 스톡을 해동 한 희석 : 2000 어닐링 완충액에 50 nM의 작업 스톡을 달성했다. </li><li> 올리고는 단일 가닥 주문 된 경우, 100 μM 주식을 해동 및 100 nm의 작업 주식을 달성하기 위해 어닐링 버퍼에 1:10 희석. 미세 원심 분리 관에서 서로 100 nM의 상보 가닥 용액 100 ㎕를 결합. <ol><li> 5 분 동안 95 ℃의 열 블록에 놓는다. 열 블록을 끄고 올리고 천천히 사용 전 적어도 한 시간 동안 실온까지 냉각 할 수있다. </li></ol></li><li> EMSA 젤 사전 실행합니다. <ol><li> 프리 캐스트 6 % T에서 슬라이드를 제거젤을하고 우물에서 모든 버퍼를 제거하는 탈 이온수에서 여러 번 헹군다. 탈 이온수 950 ml의 10 배 TBE 50 ㎖를 추가하여 0.5 배의 TBE 버퍼 1 L를 준비합니다. </li><li> 겔 전기 영동 장치를 조립하고 0.5 배의 TBE 버퍼와 내부 챔버를 작성하여 누출이 있는지 확인합니다. 어떤 버퍼가 외부 챔버로 누출되지 않으면 외부 챔버에게 길의 약 2/3 채운다. </li><li> 60 분 동안 100 V에서 젤을 사전 실행합니다. </li><li> 0.5 배의 TBE 버퍼 200 μL 잘 각을 플래시합니다. </li></ol></li></ol></li><li> 버퍼 마스터 믹스 바인딩 준비합니다. <ol><li> 100 mM 트리스, 500 밀리미터의 KCl, 10 mM의 DTT의 최종 농도로 버퍼를 바인딩 10 배를 준비; 탈 이온수의 pH가 7.5. </li><li> 미세 원심 분리 관에, 모든 반응 (표 2 내지 10 μL의 10 배의 결합 완충액 10 μL DTT / 소르 베이트, 5 μL 폴리 D (IC), 2.5 ㎕의 연어 정자 DNA)에 공통 시약 이루어진 마스터 믹스를 생성한다. 추가로 10 %를 준비피펫에 의한 볼륨 손실을 설명합니다. </li></ol></li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> 시약 </td><td> 최종 용액에 농축. </td><td> # 1 RXN </td><td> # 2 RXN </td><td> # 3 RXN </td><td> # 4 RXN </td></tr><tr><td> 초순수 </td><td> 20 μL의 부피합니다. </td><td> 13.5 μL </td><td> 11.98 μL </td><td> 13.5μl </td><td> 11.98 μL </td></tr><tr><td> 10 배 버퍼 바인딩 </td><td> 1 배 </td><td> 2 μL </td><td> 2 μL </td><td> 2 μL </td><td> 2 μL </td></tr><tr><td> DTT / TW-20 </td><td> 1 배 </td><td> 2 μL </td><td> 2 μL </td><td> 2 μL </td><td> 2 μL </td></tr><tr><td> 연어 정자 DNA </td><td> 500 NG / μL </tD&gt; <td> 0.5 μL </td><td> 0.5 μL </td><td> 0.5 μL </td><td> 0.5 μL </td></tr><tr><td> 1μg / μL 폴리 D (IC) </td><td> 1 μg의 </td><td> 1 μL </td><td> 1 μL </td><td> 1 μL </td><td> 1 μL </td></tr><tr><td> 핵 추출물 (5.26 UG / μL) </td><td> 8 μg의 </td><td> - </td><td> 1.52 μL </td><td> - </td><td> 1.52 μL </td></tr><tr><td> NE 버퍼 </td><td></td><td> 1.52 μL </td><td> - </td><td> 1.52 μL </td><td> - </td></tr><tr><td> 참조 대립 유전자 올리고 </td><td> 50 fmol </td><td> 1 μL </td><td> 1 μL </td><td> - </td><td> - </td></tr><tr><td> 비 참조 대립 유전자 올리고 </td><td> 50 fmol </td><td> - </td><td> - </td><td> 1 μL </td><td> 1 μL </td></tr></tbody></table> 표 2 : 예 EMSA 반응 세투P. 표는 유전자형 - 의존성 특정 SNP TF들로의 결합이 있다는 가설을 테스트하기 위해 예 EMSA를 나타낸다. <ol start="3"><li> 이러한 모든 시약을 첨가 한 다음 최종 부피가 20 μL 될 것으로 각 microcentrifuge 관에 뉴 클레아없는 물을 추가합니다. </li><li> 각 microcentrifuge 관에 마스터 믹스의 적당량 (5.5 μL)를 추가합니다. </li><li> 적절한의 microcentrifuge 튜브에 핵 해물의 8 μg의 추가. 핵 부정적인 컨트롤 등의 추출물 (예를 들어, 표 2, RXN # 1과 RXN # 3)없이 올리고을 포함하는 튜브를 포함합니다. 주의 : 반응 당 분해물의 최적 량은 적정에 의해 실험적으로 결정되어야한다. 일반적으로, 해물의 2-10 μg의 범위를 적정하면 충분하다. </li><li> 적절한의 microcentrifuge 튜브에 올리고 50 fmol를 추가합니다. 톡 믹스 앤 간단히 튜브의 바닥에 내용을 회전합니다. 실온에서 20 분 동안 인큐베이션. 참고 : 만약 attemptisupershift 겨, 올리고 첨가하기 전에 실온에서 20 분 동안 항체 해물 혼합물을 배양한다. 최상의 결과를위한 칩 학년 항체의 1 μg의 사용을 권장합니다. </li><li> 각 microcentrifuge 관에 10 배 오렌지로드 염료의 2 μl를 추가합니다. 최대 피펫 아래로 혼합. </li><li> 별도의 우물에 각 샘플을 추방 한 후로 pipetting 아래로 혼합에 의해 사전 실행 6 % TBE 겔에 샘플을로드합니다. 주황색 염료가 젤 내리막 길의 3/4에 2/3를 마이그레이션 할 때까지 80 V에서 젤을 실행합니다. 이 약 60-75 분 정도 소요됩니다. </li><li> 겔 칼이 열려 들리 플라스틱 카세트에서 젤을 제거하고 마르지을 유지하기 위해 0.5 % TBE 버퍼와 용기에 젤을 배치합니다. </li><li> 이미지를 방해 할 어떤 거품이나 오염 물질을 제거해야되고, 적외선 및 화학 발광 영상 시스템의 표면에 젤을 놓습니다. </li><li> 스캐닝 시스템 소프트웨어를 사용하면은 &quot;획득&quot;탭을 클릭합니다다음 겔 스캐너의 표면에있는 위치에 대응하는 영역 주위에 상자를 그립니다 &quot;새 그리기&quot;를 선택합니다. </li><li> 은 &quot;획득&quot;탭의 &quot;채널&quot;섹션에서 올리고에 형광 태그의 파장에 해당하는 채널을 선택합니다. 은 &quot;스캐너&quot;섹션에서 낮은 품질의 미리보기 스캔을 얻기 위해 &quot;미리보기&quot;를 클릭합니다. 겔의 부분에 아래로 취득 미리보기 이미지를 둘러싼 파란색 상자를 드래그하여 스캔 영역을 조정하는 이미징합니다. 참고 : 예를 들어, 700 나노 형광으로 표지 올리고를 사용하는 경우 &quot;700 nm의&quot;채널 스캔하기 전에 선택되어 있는지 확인합니다. </li><li> 은 &quot;스캔 제어&quot;섹션에서 &quot;84 μM&quot;해상도 옵션과 &quot;중간&quot;품질 옵션을 선택합니다. 겔의 절반 두께 오프셋에 포커스를 설정한다. 참고 : 예를 들어, 1 mm 겔 오프셋 0.5 mm의 초점을 사용한다. </li><li> 은 &quot;스캐너&quot;섹션에서 b에 &quot;시작&quot;버튼을 클릭스캔을 egin. 주 : 스캔하는 동안, 휘도, 명암 및 색상이 종종 주사 시스템의 제조사에 따라 수동으로 조정될 수있다. </li><li> 검사가 완료되면, &quot;영상&quot;탭을 선택하고 방향을 수정하려면 &quot;만들기&quot;절에서 &quot;회전 또는 뒤집기&quot;를 클릭합니다. 메인 메뉴에서 &quot;내보내기&quot;를 클릭하여 이미지 파일을 저장 한 다음 선택 &quot;단일 이미지보기를.&quot; </li></ol> 4. DNA 선호도 정화 분석 (DAPA) <ol><li> 5 μM 올리고 작업 주식의 준비. <ol><li> 올리고는 양면 인쇄로 주문 된 경우, 100 μM의 주식을 해동하고 5 μm의 작업 주식을 달성하기 위해 어닐링 버퍼에 1:20 희석. </li><li> 올리고는 단일 가닥 주문 된 경우, 100 μM 주식을 해동과 주식을 작업 10 μM을 달성하기 위해 어닐링 버퍼에 1:10 희석. 서로 10 μM 상보 가닥의 10 μl를 결합한다. 95 ℃에서 가열 블럭에서 발생5 분. 열 블록을 끄고 올리고 천천히 사용하기 전에 실온까지 냉각 할 수 있습니다. </li></ol></li><li> 시작하기 전에 실온으로 결합 완충액 낮은 엄격 세척 완충액, 고 엄격 세척 완충액 및 용출 완충액을 따뜻하게. 참고 : 50 ng의 최종 농도 / ㎖ 폴리 D (IC)를 올리고 발 단백질의 잠재적 비 - 특이 적 결합을 감소시키기 위해 결합 완충액 낮은 엄격 세척 완충액, 및 고 엄격 세척 완충액에 첨가 할 수있다. </li><li> 각 변형에 대한 바인딩 혼합물을 준비합니다. <ol><li> 버퍼를 바인딩의 2 권으로 핵 해물의 1 볼륨을 섞는다. 참고 : 해물의 필요한 양으로 인해 TF가 풍부한 변화를 실험적으로 결정되어야한다. 열 당 핵 해물의 μg의 100 ~ 250 사이를 사용하면 대부분의 경우에 충분하다. </li><li> 1 배 포스 파타 아제 억제제, 1X 프로테아제 억제제 및 1 배 결합 증강 (옵션)을 추가하고 튜브를 여러 번 쓸어 넘겨 섞는다. 참고 : 100 배 바인딩증강은 750 밀리미터의 MgCl 2, 300MM ZnCl 2로 구성되어 있습니다. DNA에 TF의 결합은 보조 인자 또는 환원제에 의존하는 경우 바인딩 인핸서를 추가합니다. 이 정보가 알려져 있지 않은 경우, 상기 바인딩 인핸서를 추가한다. </li><li> 각각의 결합 혼합물에 5 μm의 바이오틴 캡처 DNA (50 pmol의) 10 μl를 추가합니다. 실온에서 20 분 동안 인큐베이션. 참고 : 배양 시간 및 온도는 TF에 따라 다를 수 있습니다. 최적의 값은 실험적으로 결정되어야한다. </li></ol></li><li> 스트렙 타비 딘 마이크로 비드의 100 μl를 추가합니다. 실온에서 10 분 동안 인큐베이션. </li><li> 각 올리고 프로브를 테스트중인 경우, 자기 분리기에 바인딩 열을 배치합니다. 각 바인딩 열 아래 직접 microcentrifuge 관을 삽입하고 열을 씻어 바인딩 버퍼 100 μl를 적용합니다. </li><li> 분리 컬럼에 각각 결합 혼합물의 내용을 피펫 및 액체가 미세 원심으로 칼럼을 통해 완전히 흐를 수 있도록진행하기 전에 관. 바인딩 혼합물에 사용 된 변형 올리고과 열 레이블을해야합니다. 플로우를 통해 샘플을 레이블과 낮은 엄격 세척를 수집하는 새로운 마이크로 원심 튜브로 교체합니다. </li><li> 열을 둘러 엄격 세척 버퍼 100 μl를 적용; 열 저수지가 비어 때까지 기다립니다. 세척 4 배를 반복합니다. 저 엄격 세척 샘플 라벨과 높은 엄격 세척를 수집하는 새로운 마이크로 원심 튜브로 교체합니다. </li><li> 칼럼에 높은 엄격 세척 버퍼 100 μl를 적용; 열 저수지가 비어 때까지 기다립니다. 세척 4 배를 반복합니다. 높은 엄격 세척 샘플 라벨 및 사전 용출를 수집하는 새로운 마이크로 원심 튜브로 교체합니다. </li><li> 열 네이티브 용출 버퍼의 30 μl를 추가하고 5 분 동안 서 보자. 사전 용출 샘플 라벨 및 용출를 수집하는 새로운 마이크로 원심 튜브로 교체합니다. 주 :이 결합 된 단백질을 용출하지 않는다; 그것은 나머지 고 엄격 세척컬럼에서 용출 완충액의 효율을 극대화하는 용출 버퍼로 대체. </li><li> 바인딩과 TF를 용출하는 추가 50 μl의 기본 용출 버퍼를 추가합니다. 높은 수율 미만 농축 용출액 들어 천연 용출 버퍼의 추가 50 μL를 추가하고 관류를 수집한다. 주 : 결합 TF들 (32)의 신원을 확인하기 위해 질량 분석을 통해 용출 샘플을 분석한다. 이후, 웨스턴 블롯 (33)이어서 소듐 도데 실 황산나트륨 폴리 아크릴 아미드 겔 전기 영동 (SDS-PAGE)을 통해 결과를 확인 단백체. 질량 분석기를 사용할 수없는 경우, 유전자형 의존적 결합을 나타내는 단백질 (들)의 크기를 결정하는 대신 웨스턴 블롯의 표준 기술을 사용하여 실버 염색을 실행. 소개에 자세히 계산 방법에서 예측과 TF의 목록을 좁힐이 정보를 사용합니다. </li></ol>

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<html> 시퀀싱 및 유전형 기술의 발전이 크게 질병과 관련된 유전자 변형을 식별하는 우리의 능력을 강화하고 있지만, 이러한 변형의 영향을 기능적 메커니즘을 이해하는 능력이 떨어지고있다. 문제의 주된 원인 가능성 유전자 발현을 제어하기 어려워-간 예측 메커니즘에 영향을하는 부호화 게놈 영역 많은 질병 관련 변종 N에 위치된다는 것이다. 여기서는 가능성이 많은 비 - 코딩 변이체의 기능에 기여하는 이벤트를 결합 유전자형 의존 TF를 식별하는 EMSA 및 DAPA 기술 유용한 분자 도구에 기초하여 프로토콜을 제시한다. 이러한 두 가지 기술이 과거에 널리 이용되었지만, 그것들은 단지 최근에 결합 TF의 유전 적 변이 분석하도록 구성되어있다. TF들 외에도 EMSA는 또한 프로토콜 (36) 만 약간의 조정으로 RNA 결합 단백질에 대한 유전자 변형의 효과를 분석하기 위해 사용될 수있다. . &quot;ove_content&gt; 여기에 제시된 프로토콜을 수행하는 간단하고 쉬운 그럼에도 불구하고, 특정 부분은...

시퀀싱 및 게놈 넓은 협회 연구 (GWAS), 후보의 궤적 연구를 포함하여 유전자형을 기반으로 연구, 그리고 깊은 시퀀싱 연구는 통계적으로 질병, 특성, 또는 표현형과 관련된 많은 유전자 변형을 확인했다. 초기 예측과는 반대로, 이러한 변형 (85-93%)의 대부분은 비 - 코딩 영역에 위치하는 단백질 1,2의 아미노산 서열을 변경하지 않는다. 이들 비 - 코딩 변이체의 기능을 해석하고 관련된 질환에 접속 생물학적 메커니즘을 결정하는 단계, 특성, 또는 표현형 3-6 도전 입증되었다. 유전자 발현 - 우리는 중요한 중간 표현형 변이를 연결하는 분자 메커니즘을 식별하기위한 일반적인 전략을 개발했다. 이 파이프 라인은 특히 유전 적 변이에 의해 결합 TF의 변조를 식별 할 수 있도록 설계되었습니다. 이 전략은 예측하기위한 계산 방법과 분자 생물학 기술을 결합생물학적 인 실리코 후보 변종의 효과 및 확인이 예측 경험적으로 (그림 1). <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54093/54093fig1.jpg" /> 그림 1 :.. 회색 음영이 원고와 관련된 상세한 프로토콜에 포함되지 않은 비 코딩 유전자 변형 단계의 분석을위한 전략적 접근 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54093/54093fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 많은 경우, 각각 통계 학적으로 관련된 변이체 높은 링크 - 불평형 (LD)의 모든 것을 포함하는 변이체의 목록을 확대함으로써 시작하는 것이 중요하다. LD는 R 7이 통계에 의해 측정 될 수있는 두 개의 다른 대립 유전자의 염색체 위치에서의 비 - 무작위 교제의 척도이다. R 2는 린의 측정두 가지 변종 사이의 R 2 = 1 나타내는 완벽한 결합으로 두 가지 변형 사이의 케이지는 불균형. 높은 LD의 대립 유전자는 조상의 인구에서 염색체에 공동으로 분리하는 찾을 수 있습니다. 현재 유전자형 배열은 인간 게놈의 모든 알려진 변종을 포함하지 않는다. 대신, 그들은 인간 게놈 내에서 LD을 악용 LD (8)의 특정 지역 내에서 다른 변형에 대한 프록시 역할 알려진 변종의 서브 세트를 포함한다. 이 의미 생물학적 효과와 인과 변형 - 변형와 LD에 있기 때문에, 생물학적 결과없이 변이체는 특정 질환과 연관 될 수있다. 절차 적, 1000 게놈의 최신 버전은 가용 스루풋 10, 11, 전체 게놈 협회 분석을위한 오픈 소스 도구와 호환 바이너리 파일에 9 변형 호출 파일 (VCF)를 프로젝트로 변환하는 것이 좋습니다. 그 후, 각 입력 유전 버지니아와 LD의 R 2&gt; 0.8 다른 모든 유전자 변형쾌활한 후보로서 식별 될 수있다. 변형이 유럽 가계의 주제, 비슷한 조상의 과목에서 데이터가 LD 확장을 사용해야에서 확인 된 경우는,이 ​​스텝 - 예에 대한 적절한 기준 인구를 사용하는 것이 중요합니다. LD 확장들은 후보 변형 수십 결과 및 이들의 단지 작은 분획이 질병기구에 기여할 것으로 예상된다. 종종, 실험적 개별적으로 각 변형을 조사하기 불가능하다. 변형의 우선 순위를 필터로 공개적으로 사용 가능한 기능 게놈 데이터 세트의 수천을 활용하는 것이 유용하다. 예를 들어, 인 코드 컨소시엄 (12)는의 DNase-SEQ 13 ATAC 같은 기술에서 염색질 접근성 데이터와 함께 콘텍스트의 넓은 범위에서 칩 배열하여 TFS의 결합을 설명하는 실험 및 공동 인자 및 히스톤 마크 수천을 수행 -seq 14 및 서열 FAIRE-15. Datab같은 UCSC 게놈 브라우저 (16), 로드맵 후성 유전체학 (17), 청사진 후성 유전체 (18), Cistrome (19), 및 매핑 20 ASE에 웹 서버는 세포 유형 및 조건의 넓은 범위에 걸쳐 이들과 다른 실험 기법에 의해 생성 된 데이터에 대한 무료 액세스를 제공합니다. 실험적 검토하기에 너무 많은 변형이있을 때, 이러한 데이터는 관련 세포 및 조직 유형의 것으로 조절 영역 내에 위치하는 우선 순위를 사용할 수있다. 또한, 변형 특정 단백질 칩 서열 피크 내에있는 경우,이 데이터는 특정 TF (들) 또는 그의 영향을 줄 수 있습니다 결합 공동 요인으로 잠재적 인 단서를 제공 할 수 있습니다. 다음으로, 우선 순위 결과 변종은 EMSA (21, 22)를 사용하여 결합 예측 유전자형에 의존하는 단백질을 확인하는 실험적으로 상영된다. EMSA은 비 환원성 TBE 겔상에서 올리고의 이동 변화를 측정한다. 형광 표지 올리고는 함께 배양핵 해물, 핵 인자의 결합은 올리고 겔상에서의 이동을 지연시킬 것이다. 이러한 방식으로, 스캔시 강한 형광 신호로 발표 할 예정보다 핵 요소를 결합했다 올리고있다. 특히, EMSA 바인딩 영향을받는 특정 단백질에 대한 예측을 필요로하지 않습니다. 변형이 예측 규제 지역 내에 위치하며, 차동 결합 핵 인자 할 수있는있다가 발견되면, 계산 방법은 누구가에 영향을 줄 수있는 바인딩 특정 TF (들)을 예측하기 위해 사용된다. 우리는 CIS-BP 23, 24, RegulomeDB 25 UniProbe (26), 및이 JasPAR (27)를 사용하는 것을 선호합니다. 후보 TF가 식별되면,이 예측은 구체적으로 다음과 TF (EMSA-supershifts 및 DAPA-서부)에 대한 항체를 사용하여 시험 할 수있다. EMSA-supershift 핵 분해물 및 올리고 TF에 특이 항체의 첨가를 포함한다. EMSA-supershift에서 긍정적 인 결과를 repr입니다EMSA 대역에서 추가의 이동 또는 대역의 손실로 esented (레퍼런스 28에서 검토). 상보 DAPA에서, 변형 및 뉴클레오티드의 측면에 20 염기쌍을 함유하는 5&#39;- 비오틴 올리고 양면은 특히 올리고 결합 핵 인자 캡처 관련된 세포 유형 (들)로부터 핵 파쇄 액과 함께 배양된다. 올리고 이중 핵 인자 복합체는 자기 칼럼에서 마이크로 비드를 스트렙 타비 딘에 의해 고정된다. 결합 된 핵 인자 용출 29,48 통해 직접 수집됩니다. 바인딩 예측이어서 단백질에 특이적인 항체를 사용하여 웨스턴 블롯에 의해 평가 될 수있다. 후속하여 검증 할 수있는 명백한 예측 또는 너무 많은 예측, 질량 분석법을 이용하여 후보의 TF를 식별하기 위해 프로테오믹스 코어로 전송 될 수 DAPA 실험 변이체 풀 - 다운에서 용리가없는 경우에서, 이들은 전술 행동 양식. articl의 나머지 부분에서즉, 유전자 변형 및 DAPA EMSA 분석 상세한 프로토콜이 제공된다.

<table><tbody><tr><td>맞춤형 DNA 올리고뉴클레오티드</td><td>통합 DNA 기술</td><td></td><td></td></tr><tr><td>http://www.idtdna.com/site/order/oligoentry 염화칼</td>륨 <td>피셔 사이언티픽</td><td>BP366-500</td><td>KCl, CE 버퍼</td></tr><tr><td>HEPES (1M)</td><td>피셔 사이언티픽</td><td>15630-080</td><td>CE 및 NE 버퍼</td></tr><tr><td>EDTA (0.5M), pH 8.0</td><td>Life Technologies</td><td>R1021</td><td>CE, NE 및 어닐링 버퍼</td></tr><tr><td>염화나트륨</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP358-1</td><td>NaCl, NE 버퍼</td></tr><tr><td>Tris-HCl (1M), pH 8.0</td><td>Invitrogen</td><td>BP1756-100</td><td>어닐링 버퍼</td></tr><tr><td>용 인산염 완충 식염수 (1x)</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT21040CM</td><td>PBS, 세포 세척</td></tr><tr><td>DL-Dithiothreitol 용액 (1M)</td> <td>Sigma</td><td>646563</td><td>환원제</td></tr><tr><td>프로테아제 억제제 칵테일</td><td>Thermo Scientific</td><td>87786</td>은 TFs 인산가수분해효소 억제제 칵테일<td>의 이화작용을 예방</td></tr>합니다<tr><td>.</td><td>Thermo Scientific</td><td>78420</td><td>TF의 탈인산화 방지</td></tr><tr><td>Nonidet P-40 대체품</td><td>IBI Scientific</td><td>IB01140</td><td>NP-40, 핵 추출용</td></tr><tr><td>BCA 단백질 분석 키트</td><td>Thermo Scientific</td><td>23225</td><td>단백질 농도 측정용</td></tr><tr><td>Odyssey EMSA Buffer Kit</td><td>Licor</td><td>829-07910</td><td>필요한 모든 EMSA 완충액</td></tr><tr><td>TBE Gels, 6%, 12 Wells 포함</td><td>Invitrogen</td><td>EC6265BOX</td><td>EMSA</td></tr><tr><td>TBE 버퍼 (10x)</td><td>Thermo Scientific</td><td>B52</td><td>EMSA FactorFinder</td></tr><tr><td>시작 키트</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-092-318</td><td>필요한 모든 DAPA 버퍼 포함</td></tr><tr><td>Licor Odyssey CLx</td><td>Licor</td><td></td><td>DAPA/EMSA</td></tr><tr><td>항생제-항진균제</td><td>Gibco</td><td>15240-062</td><td>용 권장 스캐너페니실린 10,000 단위/ml, 10,000 &마이크로를 포함합니다. 스트렙토마이신의 g/ml 및 25 &마이크로; Fungizone&reg의 g/ml; 항진균성</td></tr><tr><td>소 태아 혈청</td><td>Gibco</td><td>26140-079</td><td>FBS, 배양 배지용</td></tr><tr><td>RPMI 1640 배지</td><td>Gibco</td><td>22400-071</td><td>L-글루타민 및 25mM HEPES 함유</td></tr></tbody></table>

전기 영동 이동성 분석 (emsa) 및 shift 키를 사용하여 기능 비 코딩 유전자 변형에 대한 심사 dna 화성 강수 분석 (dapa)

Screening for Functional Non-coding Genetic Variants Using Electrophoretic Mobility Shift Assay (EMSA) and DNA-affinity Precipitation Assay (DAPA)

인구 및 가족 기반 유전 연구는 일반적으로 임상 질병 또는 표현형과 통계적으로 관련된 유전적 변이를 식별하는 결과를 낳습니다. 많은 질병 및 형질의 경우, 대부분의 변이체는 비코딩(non-coding)이며, 따라서 유전자 발현을 제어하는 미묘하고 비교적 예측하기 어려운 메커니즘에 영향을 미쳐 작용할 가능성이 높습니다. 여기에서는 코딩되지 않은 변형의 우선 순위를 지정하고 해당 기능을 선별하기 위한 일반적인 전략적 접근 방식을 설명합니다. 이 접근 방식에는 기능적 게놈 데이터베이스를 사용한 계산 우선 순위 지정과 위험 및 비위험 대립유전자에 대한 전사 인자(TF)의 차등 결합에 대한 실험적 분석이 포함됩니다. 유전적 변이의 전기영동 이동성 이동 분석(EMSA) 및 DNA 친화성 침전 분석(DAPA) 분석을 위해 합성 DNA 올리고뉴클레오티드(올리고)를 사용하여 질병 또는 표현형 관련 세포의 핵 용해물 인자를 식별합니다. EMSA의 경우, 결합된 핵 인자(종종 TF)가 있거나 없는 올리고뉴클레오티드는 트리스-붕산염-EDTA(TBE) 폴리아크릴아미드 겔에서 비변성 전기영동에 의해 분석됩니다. DAPA의 경우, 올리고뉴클레오티드가 자기 컬럼에 결합되고 DNA 염기서열에 특이적으로 결합하는 핵 인자를 용출 및 분석하여 질량 분석법 또는 환원성 도데실 황산나트륨 폴리아크릴아미드 겔 전기영동(SDS-PAGE)을 사용한 후 웨스턴 블롯 분석을 수행합니다. 이 일반적인 접근 방식은 모든 질병, 특성 또는 표현형과 관련된 비코딩 유전 변이의 기능을 연구하는 데 널리 사용될 수 있습니다.

해물의 품질을 특징으로 관련이있는 EMSA 또는 방위 사업 청, 그리고 다양성을 수행 할 때이 절에서 무엇을 기대해야하는지의 대표적인 결과가 제공된다. 예를 들어, 여러 번 동결 융해 단백질 시료 것은 변성 될 수 있다는 것을 제안하고있다. 이러한 &quot;동결 - 해동&quot;사이클의 맥락에서 EMSA 분석 재현성을 탐색하기 위해, 하나 이상의 유전 적 변형에 다른 두 개의 35 염기쌍 올리고는 지정된 시간 동안 해동 재 동결 하였다 핵 해물 일괄 적으로 배양 하였다 . 시간의 두 그림은 5 번이 특정 B 림프구 핵 추출물을 동결 및 해동하는 단백질의 무결성에 겉으로는 아무 효과가 없다는 것을 보여줍니다; 그러나, 핵 단백질의 안정성은 샘플에 따라 다르며, 따라서 사용되는 각 개별 셀 라인에서 테스트해야합니다. 다른 배치 위해 준비 할으로부터 변화를 가질 수도있다핵 해물의 관리 포인트. 이 변형으로 인해 분해 셀 통로 번호, 또는 다...

우리는 전사 인자(TF) DNA 결합에 영향을 미치는 비암호화 유전적 변이를 식별하기 위한 전략적 계획과 프로토콜을 제시합니다. 유전자형 의존성 TF DNA 결합의 전기영동 이동성 이동 분석(EMSA) 및 DNA 친화성 침전 분석(DAPA) 분석을 위한 자세한 실험 프로토콜이 제공됩니다.

전기 영동 이동성 분석 (EMSA) 및 Shift 키를 사용하여 기능 비 코딩 유전자 변형에 대한 심사 DNA 화성 강수 분석 (DAPA)

Population and family-based genetic studies typically result in the identification of genetic variants that are statistically associated with a clinical ...

이 실험 전략의 전반적인 목표는 질병과 관련된 비코딩 변이체의 기능을 조사하는 것입니다. 이 방법은 실제로 아미노산 염기서열을 변경하지 않는 유전적 변이가 여전히 질병 표현형에 어떻게 기여하는지와 같은 유전체학의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 기능 활성에 대한 유전적 변이를 평가하기 위한 간소화된 프로세스를 제공하고 영향을 받는 조절 단백질 및 경로에 대한 통찰력을 제공한다는 것입니다.이 기술은 후보 원인 변이가 있는 모든 질병의 조사에 도움이 될 수 있습니다. 이러한 변이체를 분석하는 절차는 연구되는 표현형에 관계없이 보편적이기 때문입니다. 이 방법은 인간의 질병에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 모든 유기체의 돌연변이에도 적용할 수 있습니다.이 실험에서는 B-림프모세포 세포에서 핵 용해물을 준비하지만 이 절차는 대부분의 세포주에 적용할 수 있습니다. 혈구계를 사용하여 세포를 계수한 후 용해를 위해 원하는 수의 세포를 스핀다운합니다. 배지를 흡인하고 얼음처럼 차가운 PBS 10ml를 첨가한 다음 셀을 다시 스핀다운합니다.PBS로 세포를 두 번 세척하고 탈수 후 PBS를 제거합니다. 7번째 세포까지 10개당 1ml의 PBS를 사용하여 얼음처럼 차가운 PBS에서 세포 구개를 재현탁합니다. 1ml의 세포 현탁액을 1.5mL의 마이크로 원심분리 튜브에 분취하여 각 튜브가 PBS에서 10개에서 7번째 세포를 포함하도록 합니다.2분 동안 원심분리기를 사용하고 PBS를 흡입합니다. CE 완충액, 1밀리몰 디티오트레이톨(DTT), 1X 포스파타제 억제제, 0.5밀리몰 페닐메탄설포닐 플루오라이드(PMSF)를 추가합니다. 이 완충액 400마이크로리터로 각 세포 팔레트를 재현탁하고 얼음 위에서 15분 동안 배양합니다.각 마이크로 원심분리기 튜브에 25마이크로리터의 10%Nonidet P-40을 넣고 피펫팅으로 혼합합니다. 섭씨 4도에서 원심분리기를 사용하고 최대 속도를 3분 동안 유지합니다. 상층액을 디캔팅하고 버립니다.다음으로, NE-완충액, 1밀리몰 DTT, 1X 포스포아제 억제제 및 1밀리몰 PMSF의 작업 재고에 추가합니다. 이 완충액 30마이크로리터로 각 세포 구개를 재현탁하고 와류로 혼합합니다. 섭씨 4도의 튜브 로테이터에서 10분 동안 배양합니다.2분 동안 원심분리기를 사용합니다. 핵 용해물인 투명한 상층액을 수집합니다. 단백질을 분해할 수 있는 여러 번의 동결 해동 주기를 피하기 위해 섭씨 영하 80도에서 보관하기 전에 핵 용해물을 분취하십시오.프로토콜 텍스트에 설명된 대로 올리고뉴클레오티드의 50나노몰 작업 스톡을 준비하여 이 절차를 시작합니다. 올리고를 섭씨 90도의 열 블록에 5분 동안 놓습니다. 5분 후 가열 블록을 끄고 올리고를 사용하기 전에 최소 1시간 동안 실온으로 천천히 식히십시오.다음으로 전기영동 이동성 이동 분석 또는 EMSA 겔을 준비합니다. 프리캐스트, 6% 트리스-보레이트-EDTA 또는 TBE 겔에서 슬라이드를 제거하고 탈이온수로 여러 번 헹구어 웰에서 완충액을 제거합니다. 겔 전기영동 장치를 조립하고 내부 챔버를 0.5X TBE 버퍼로 채워 누출 여부를 확인합니다.외부 챔버로 버퍼가 누출되지 않으면 외부 챔버를 대략 2/3 정도 채웁니다. 젤을 100볼트에서 60분 동안 미리 실행합니다. 사전 실행이 완료되면 200마이크로리터의 0.5X TBE 버퍼로 각 웰을 플러시합니다.바인딩 버퍼 마스터 믹스를 준비합니다. 마이크로 원심분리기 튜브에서 모든 반응에 공통적인 이러한 시약을 혼합합니다. 10X 결합 완충액, DTT 폴리소르베이트, 폴리(dI-dC) 및 연어 정자 DNA.EMSA 반응을 설정하려면 각 마이크로 원심분리 튜브에 뉴클레아제가 없는 물을 추가하여 모든 시약을 추가한 후 최종 부피가 20마이크로리터가 되도록 합니다. 각 마이크로 원심분리기 튜브에 적절한 양의 마스터 믹스를 추가합니다. 8마이크로그램의 핵 용해물을 적절한 마이크로 원심분리기 튜브에 추가합니다.핵 추출물이 없는 올리고를 함유한 튜브를 음성 대조군으로 포함합니다. 50 펨토몰의 올리고를 적절한 마이크로 원심분리기 튜브에 넣고 튕겨서 섞습니다. 내용물을 튜브 바닥으로 짧게 돌립니다.모든 튜브를 실온에서 20분 동안 배양합니다. 다음으로, 각 마이크로 원심분리기 튜브에 2마이크로리터의 10X 주황색 로딩 염료를 추가합니다. 피펫을 위아래로 섞습니다.위아래로 피펫팅하여 혼합한 다음 각 샘플을 별도의 웰로 배출하여 실행 전 6% TBE 겔에 샘플을 로드합니다. 주황색 염료가 젤 아래의 2/3에서 3/4로 이동할 때까지 약 60-75분 동안 80볼트에서 젤을 실행합니다. 실행이 완료되면 젤 나이프를 사용하여 플라스틱 카세트를 들어 올립니다.카세트에서 젤을 제거하고 0.5% TBE 버퍼가 있는 용기에 넣어 건조되지 않도록 합니다. 겔을 적외선 및 화학발광 이미징 시스템의 표면에 놓습니다. 이미지를 방해할 수 있는 기포나 오염 물질을 제거합니다.프로토콜 텍스트에 설명된 대로 스캔 시스템 소프트웨어를 사용하여 겔을 스캔합니다. 이 절차를 시작하려면 프로토콜 텍스트에 설명된 대로 5마이크로몰 올리고 작업 재고를 준비합니다. 올리고를 섭씨 95도의 열 블록에 5분 동안 놓습니다.5분 후 가열 블록을 끄고 올리고를 사용하기 전에 실온으로 천천히 식히십시오. 다음 완충액을 실온으로 데우십시오: 결합 완충액, 낮은 엄격성 세척 완충액, 높은 엄격성 세척 완충액 및 용리 완충액. 각 변형에 대한 결합 혼합물을 준비합니다.1 부피의 핵 용해물과 2 부피의 결합 완충액을 혼합합니다. 1X 인산가수분해효소 억제제, 0.5밀리몰 PMSF 및 1X 결합 강화제를 추가합니다. 각 결합 혼합물에 10마이크로리터의 5마이크로몰 비오틴화된 포획 DNA를 추가합니다.튜브를 여러 번 튕겨 섞습니다. 결합 혼합물을 실온에서 20분 동안 배양합니다. 다음으로, 각 결합 혼합물에 100마이크로리터의 스트렙타비딘 마이크로비즈를 추가합니다.실온에서 10분 동안 배양합니다. 테스트 중인 각 올리고 프로브에 대해 자기 분리기에 결합 컬럼을 배치합니다. 결합 혼합물에 사용된 변형 올리고(variant oligo)로 컬럼에 라벨이 부착되어 있는지 확인합니다.각 결합 컬럼 바로 아래에 미세 원심분리 튜브를 놓고 100마이크로리터의 결합 버퍼를 적용하여 컬럼을 헹굽니다. 각 결합 혼합물의 내용물을 별도의 컬럼에 피펫으로 주입합니다. 액체가 컬럼을 통해 마이크로 원심분리기 튜브로 완전히 흐르도록 합니다.100마이크로리터의 낮은 엄격성 세척 버퍼를 컬럼에 적용하고 컬럼 저장소가 비워질 때까지 기다립니다. 100마이크로리터의 낮은 엄격성 세척 버퍼를 컬럼에 다시 적용합니다. 100마이크로리터의 매우 엄격한 세척 버퍼를 컬럼에 적용하고 컬럼 저장소가 비워질 때까지 기다립니다.100마이크로리터의 고강도 세척 버퍼를 컬럼에 다시 적용합니다. 30마이크로리터의 천연 용리 완충액을 컬럼에 추가하고 5분 동안 그대로 둡니다. 마지막으로, 50마이크로리터의 천연 용리 완충액을 추가로 추가하여 결합된 전사 인자를 용리합니다.EMSA 결과의 재현성과 동결 해동 주기의 결과를 조사하기 위해 유전적 변이의 참조 또는 비참조 대립유전자를 포함하는 올리고를 사용하여 여러 번의 동결 및 해동 주기 후 B-림프구 핵 추출물의 동일한 준비를 조사했습니다. 파란색 화살표는 프리 프로브를 나타냅니다. 전사 인자(transcription factor)가 올리고(oligo)에 결합하는 것은 겔의 위쪽 절반에 있는 띠로 보이며, 빨간색 화살표로 표시됩니다.이러한 결과는 이 특정 핵 추출물을 최대 5회까지 동결 및 해동하는 것이 겉보기에는 단백질의 무결성에 영향을 미치지 않는다는 것을 나타냅니다. EMSA에 대한 신호 대 잡음비를 최적화하는 것도 중요합니다. 다양한 농도의 올리고를 사용하여 핵 용해물의 단일 제제를 조사했습니다.밴드의 강도 증가, 최대 100 개의 올리고가 관찰되었습니다. 루푸스 관련 위험 대립유전자에 대한 연구의 대표적인 결과가 여기에 나와 있습니다. 전사 인자인 STAT 1은 DAPA에 의해 먼저 식별된 후 단백질체 분석이 수행되었습니다.그런 다음 DAPA 웨스턴 블롯을 통해 STAT 1의 정체를 확인하고 STAT 1의 인산화 형태와 루푸스 위험 올리고의 더 높은 결합을 확인했습니다. 이 절차에 따라 질량 분석 및 웨스턴 블롯과 같은 다른 기술을 수행할 수 있습니다. 이것은 대립유전자 의존성 결합을 보여주는 조절 단백질을 식별하는 데 도움이 될 것입니다.루시퍼라제(luciferase)와 같은 리포터 분석법은 대립유전자의 기능으로서 유전자 발현의 변화를 조사하는 데에도 사용할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

자폐증과 정신 분열증과 같은 일반적인 장애를 일으키는 데 노보 변이를 찾기위한 분자 유전 전략.

같은 자폐증과 정신 분열증과 같은 일반적인 장애에 드 노보 변이를 식별하는 전략

이 비디오에서는 적외선 형광 표지 DNA 프로브를 사용하여 단백질-DNA 상호 작용을 감지하는 전기영동 이동성 이동 분석을 시연합니다. 단백질이 DNA 프로브에 결합할 때, 천천히 이동하며 겔에 이동된 밴드로 나타나는 큰 복합체를 형성합니다.

transcription factor-DNA 복합체 검출을 위한 전기영동 이동성 전환 분석

이 비디오 문서는 두 개의 구성 요소 시스템 응답 레귤레이터 유전자 표적 및 결합 부위를 결정하기 위해 시험 관내 마이크로 어레이 기반의 방법을 설명한다.

세균에 대한 두 개의 구성 요소 규제 시스템을 유전자 표적을 확인하는 DNA 친화력 - 정제 칩 (DAP-칩) 방법

여기에서 우리는 RNA / 단백질 상호 작용을 분석하는 프로토콜을 제시한다. 전기 영동 이동성 변화 분석 (EMSA)이 네이티브 겔 전기 영동시 RNA / 단백질 복합체 및 무료 RNA의 차분에 기초하여 이동된다. 방사성 표지 된 RNA 프로브를 사용함으로써, RNA / 단백질 복합체는 오토 라디오 그래피에 의해 시각화 될 수있다.

IRE / IRP 예 : RNA - 단백질 상호 작용의 연구에 대한 전기 이동 기동성 교대 분석 실험 (EMSA)

우리는 여기서 중요한 생물학적 문제를 해결하기 위해 사례 연구와 같은 적외선 형광 염료 표지 DNA 프로브와 함께 정제 된 SOX-2 단백질을 사용하여 형광 전기 영동 이동성 이동 분석 (fEMSA)의 최적화 된 프로토콜을 설명합니다.

적외선 형광 염료로 표지 올리고 뉴클레오티드를 사용하여 전기 영동 이동성 시프트 분석을위한 최적화 된 프로토콜

여기, 우리는 정확 하 게 계량 드롭 ddPCR 독특한 가수분해 프로브 쌍을 사용 하 여 단일 반응에서 대상 지역의 여러 유전 변경 하는 프로토콜을 제시.

하나의 물방울 디지털 연쇄 반응 핫스팟 지역에서 돌연변이의 포괄적이 고 동시 검색

디지털 연쇄 반응 (PCR) 단일 뉴클레오티드 이체와 DNA 복사 번호 이체의 고감도 검출을 위한 유용한 도구입니다. 여기, 칩에 튜브 형식으로 디지털 PCR를 사용 하 여 인간 게놈에 있는 드문 이체를 측정 하기 위한 주요 고려 사항을 설명 합니다.

튜브에 칩 형식을 사용 하 여 산발적 인 가족 용 대 환자에 있는 유전 변이 대 한 디지털 중 합 효소 연쇄 반응 분석 결과

여기에서, 우리는 환자 생물학적 유체 (biofluids)에 존재하는 순환 DNA에 있는 종양 체세포 돌연변이를 검출하는 프로토콜을 제시합니다. 우리의 액적 디지털 중합효소 연쇄 반응 (dPCR) 기지를 둔 방법은 종양 돌연변이 allelic 주파수 (MAF)의 정량화를 가능하게 하고, 종양 반응의 진단 그리고 시간적 감시에 최소침습 적인 보충을 촉진하.

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어둠 / 빛으로 전환 시험은 마우스의 동작과 같은 불안을 측정하기 위하여 가장 널리 사용되는 검사 중 하나입니다. 여기, 우리가 테스트를 실시하는 방법에 대한 자세한 절차를 보여주는 동영상을 제시한다.

마우스에 대한 진한 / 라이트 전환 테스트

학습하세요 비코딩 유전자 변형의 기능을 EMSA와 DAPA 기법으로 분석하는 방법을. 이 프로토콜은 질병 관련 변이체의 전사인자 결합 영향을 평가하여 유전체학 연구에 활용됩니다.

전기 영동 이동성 분석 (EMSA) 및 Shift 키를 사용하여 기능 비 코딩 유전자 변형에 대한 심사 DNA 화성 강수 분석 (DAPA)

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