Name: 유학을위한 방법론 B. 서브 틸리 바이오 필름 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 17 s
Description: 학습하세요 Bacillus subtilis 바이오필름 형성을 평가하는 재현 가능한 방법론을 통해 소분자 억제제의 효과를 분석하는 기술을. 이 방법은 정량적 및 정성적 통찰을 제공하여 새로운 치료 전략 설계에 기여합니다.

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전자 현미경 이미징은 Irving and Cherna Moskowitz Center for Nano and Bio-Nano Imaging의 일부 지원을 받아 Weizmann Institute of Science의 전자 현미경 유닛에서 수행되었습니다. 이 연구는 또한 ISF I-CORE 보조금 152/1, Dan Kane 부부, Lois Rosen, Yeda-Sela 연구 보조금, Larson Charitable Foundation, Ruth and Herman Albert Scholars Program for New Scientists, Ilse Katz Institute for Materials Sciences and Magnetic Resonance Research 보조금, 대체 연구 방법에 대한 보건부 보조금, 프랑스-이스라엘 협력 - Maimonide-Israel 연구 프로그램에 의해. IKG는 Rowland and Sylvia Career Development Chair를 수상했습니다.

1. 펠리클과 바이오 필름 콜로니 형성에 작은 분자 억제제의 효과 평가 <ol><li> 칼슘 염화 철 (III) 클로라이드 수화물없이 정의 생물막 유도 MSgg 매체 (25)의 2 배 솔루션을 준비합니다. 여과 멸균 한 후, 염화칼슘을 추가한다. 매체는 직접적으로 사용할 준비가되거나 어둠 속에서 4 ℃에서 저장 될 수있다. </li><li> 실험의 날에 1 배 MSgg 희석을 준비합니다. <ol><li> (멸균 증류수 (펠리클) 또는 멸균 3 %의 고온 (80 ℃) 한천 (생물막)와 1 배 50 μM (펠리클) 또는 250 μM의 최종 농도로 철 (III) 클로라이드 수화물을 추가 배 MSgg 매체 희석 바이오 필름). 원하는 농도로 항생제 또는 작은 분자 억제제를 넣고 잘 섞는다. 예를 들어, 펠리클 또는 생물막을 확립 76.3 밀리미터 (10 ㎎ / ㎖) D 류신 원액 196.6 μL를 추가 30 ㎖ 0.5mm의 D 류신의 최종 농도를 얻었다. 아니TE는 :. 최종 1X MSgg 조성물은 표 1에 설명되어있는 원래의 레시피 (25)에 비해, 배지를 50㎍ / 트레오닌 mL 및 고체 MSgg 매체에 생물막 콜로니를 성장 철 농도가 주름 콜로니 형태를 최적화하기 위해 2.5 배 증가 하였다 포함 . </li></ol></li><li> 한천의 고화 후, 접종 전에 30-45 분간 생물학적 후드 고체 MSgg 판을 건조. </li><li> 박막 형성 (그림 1)의 메커니즘을 방해 특정 억제제를 선택하려면, 사용 농도는 플랑크톤 및 정적 성장에 영향을 미치는 것을 배제. <ol><li> 고정 성장 단계까지 600 nm에서 매 시간마다 광학 밀도를 측정하여 단순 성장 곡선에서 플랑크톤 성장 (액체 배양 시간에 따른 광학 밀도의 증가)를 결정합니다. </li><li> (CFU)를 측정 배양 탁도 생균 수를 나타내는 것을 확인 집락 형성 단위의 수를 결정하기 위해여러 시점 이후 진탕 배양에서 플랑크톤 성장 단계에서 세포. </li><li> 또한, 동일한 조건에서 접종 섹션 1.7-1.9에서 설명한 바와 같이 24 웰 세포 배양 물에서 23 ℃에서 3 일간 배양 한 끝에 고정 펠리클 성장 수확 세포 소분자 억제제의 효과를 평가 그리고 CFU를 결정한다. 이 컨트롤의 경우, 세포 외 기질 구성 요소에 대한 코딩하는 오페론이 부족 펠리클 결핍 균주를 사용하여 (즉, B. 서브 틸리 Δ epsH, Δ TASA). 주 :이 균주는 정적 조건에서 성장시킬 수 있지만 펠리클 형성 야생형 달리 그 성장이 증가 된 산소 농도 26 호의 액체 - 공기 계면에 부유 할 수있는 능력의 부족이다. 따라서,이 세포 외 매트릭스 - 및 펠리클 결핍 균주는 정적 조건에서 성장을 평가하는 추천 기준 균주이다. 주 : 특정 예를 들어비표준 D-D 아미노산 류신이 충분한 펠리클 형성 12,17 배제 된 간섭 농도 아래 플랑크톤 정적 성장에 영향을 설명했다. 플랑크톤 및 정적 성장을 결정하는 방법을 상세하게도 17에서 설명된다. </li></ol></li></ol><img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54612/54612fig1.jpg" /> 그림 1. 강력한 실험 장치의 식별을위한 개념적 개요 biofilm 형성의 구체적인 억제를 평가하기 위해. 플랑크톤 성장에 뚜렷한 효과없이 생물막 형성 특정 간섭을 나타내는 작은 분자 억제제에 대한 선택 기준을. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54612/54612fig1large.jpg" target="_blank">더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오 이 그림의.</a> <ol start="5"><li> B. 밖으로 행진 -80 ° C 형 재고 서브 틸리 스 (LB의 cultu20 % 글리세롤에 얼의 재 109 세포 / ㎖)을 멸균 팁 또는 스틱 어플리케이터와 LB-1.5 % 한천 플레이트 상에 단일 콜로니를 분리한다. </li><li> 30 ℃에서 하룻밤 성장. </li><li> CRITICAL STEP : 예 D 류신과 같은 비표준 D - 아미노산에 의해 견고 펠리클 저해 단일 콜로니는 4 시간 동안 37 ° C에서 3 ㎖ LB 배지에서 LB-1.5 % 한천 플레이트에서 고른 성장 인큐베이터를 흔들어 (속도 200 rpm으로 진탕). 조심스럽게 상층 액을 제거하고 1.5 ml의 MSgg 매체에 펠렛을 다시 중단, 6,000 XG에서 4 분 동안 1.5 ml의 스타터 문화를 원심 분리하여 접종 이전에 생물막 유도 MSgg 매체와 LB 배지를 교체합니다. 문화의 나머지는 폐기 될 수있다. 중요 : 시스템의 안정성을 보장하기 위해, 세척 스타터 문화의 600 nm의 (OD 600)에서 광학 밀도가 0.6과 1 사이 여야합니다. </li><li> 스타터 문화의 성장하는 동안, 12 웰 세포 배양 multidish 판 containin을 준비이없는 또는 작은 분자 억제제 (예, 0.3, 0.5, 1 mM의 D 류신 17)의 농도 범위 MSgg 배지 3 ㎖ g. 가장자리 효과를 배제하기 위해, multidish 접시에 걸쳐 서로 다른 농도의 위치를 ​​배포 할 수 있습니다. 또한, MSgg 매체의 1.5 ml에 포함 된 24 웰 세포 배양 multidish 플레이트를 사용합니다. </li><li> (1,000 희석 1) 세척 스타터 문화의 3 μL와 12 웰 세포 배양 multidish 판의 우물을 접종한다. 주 : 낮은 희석 비율, 즉, 1 : 500이 사용될 수있다. 이 펠리클의 개발 시간을 감소시킨다. </li><li> 사흘 동안 정적 상태에서 23 ° C에서 펠리클 성장. 이 펠리클의 최종 표면 형상에 영향을 미칠 수 있기 때문에,이 시간 동안 펠리클을 움직이지 않는다. </li><li> 번개의 양안 및 균일 한 노출 사진을 획득. 대안 적으로, 고해상도 카메라와 펠리클의 사진을 촬영. inconsis에 의한 유물을 방지하려면텐트 빛의 각도와 그림자, 삼각대에 고정 된 카메라로 위에서 아래로 사진을 찍고 양쪽에서 45 °에서 부드럽고 큰 광원을 사용합니다. 참고 : B를 공부하는 다른 방법 서브 틸리 다세포 고체, 바이오 필름 유도 MSgg 매체에 생물막 식민지 분석이다. 펠리클과 마찬가지로,이 분석은 시공간 과정의 연구를 할 수 있습니다. 소분자 저해제의 유효 범위가 결정되면, 생물막 콜로니 형성에 미치는 영향을 연구 할 수있다. </li><li> 8.5 cm 직경의 페트리 접시 당 4 방울 - 생물막 식민지를 성장, 대칭 씻지 사전 문화의 1.5 μL 템플릿의 도움으로 건조 MSgg 1.5 % 한천 플레이트에 (단계 1.7) 자리. 방울 그들을 이동하기 전에 판에 흡착 할 수 있습니다. 참고 : 템플릿은 세포가 재배되는 지역 내 바이오 필름 식민지의 동일한 분포를 얻을 수 있습니다. 템플릿을 준비하려면, 원래 규모에서 성장의 전체 면적을 그릴 동일한 종파로 분할ORS과 중앙을 표시합니다. 8.5 cm 직경의 원형 페트리 접시의 경우,이 14 cm 2 일 생물막 식민지를 지정합니다. </li><li> 사흘 동안 30 ° C에서 접시를 품어. 이 시간 동안, 생물막 콜로니 개발 입체 주름 구조를 형성한다. </li><li> 단계 1.11에서와 같이 사진을 촬영합니다. </li></ol> 2. 에탄올 저항 분석 <ol><li> 단계 1.1-1.7 및 1.12-1.14의 설명에 따라 생물막 성장. </li><li> 30 ° C에서 성장의 68 시간 후, 면도날과 템플릿의 도움으로 동일한 두 부분으로 생물막 식민지를 잘라. </li></ol><img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/54612/54612fig2.jpg" /> 도 2 실시 예 살균제에 생물막 콜로니 셀의 저항을 평가하기위한 실험 설계. 페트리 접시에 걸쳐 생물막 콜로니 동일한 분배 절단에 사용되는 (A) 템플릿. (B)처리되지 않은 야생형 생물막의 하향식 이미지는 30 ℃에서 고체, 정의 생물막 유도 MSgg 매체에 68 시간 동안 성장. 확대는 생물막 식민지 두 개의 동일한 절반으로 절단하는 방법을 보여줍니다. (C)은 두 개의 동일한 생물막 절반은 동일하게 (제어, PBS)을 치료 또는 PBS 또는 살균제 중 하나와 설명에 따라 처리됩니다. 스케일 바 :. 1cm <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54612/54612fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <ol start="3"><li> 조심스럽게 작은 주걱 한천 플레이트에서 콜로니 생물막의 각각의 절반을 올려 인산 완충 용액 (PBS) 500 ㎕를 함유하는 1.5 ml의 마이크로 원심 튜브로 이동합니다. 필요하다면, 플레이트에 남아있는 세포를 긁어 아니라 마이크로 원심 튜브로 옮긴다. 주 : 생물막 콜로니 후반전, 차분 처리는 제어 여부에 따라 또는 steri에 대한 내성을 테스트하는 것이다LIZING 에이전트. </li><li> 제어의 경우, 단계 2.3에서와 같이 500 ㎕의 PBS에서 생물막 식민지의 두 번째 절반을 품어. , 멸균 제에 대한 내성을 평가하는 500 ㎕의 50 % (v / v)의 에탄올 생물막 콜로니의 후반을 전송한다. 참고 : 예컨대 차아 염소산 나트륨 등의 대안의 살균제를 사용할 수있다. 사용 된 모든 살균 에이전트의 경우, 예비 실험의 활성 농도 및 배양 시간을 결정합니다. </li><li> 실온에서 벤치 탑에서 10 분 동안 생물막 콜로니 부화. </li><li> 18,000 XG에서 5 분 동안 생물막 식민지를 원심 분리기 조심스럽게 피펫으로 뜨는을 제거합니다. PBS 300 μl를 추가합니다. </li><li> 소니 케이의 마이크로 팁과 세포 온화 (진폭 10 %, 펄스 5 초) sonicate하세요. 주 : 초음파 에너지가 별도의 생물막 집계에 충분해야한다. 그러나, 지나치게 강한 초음파가 세포 용균있다. 광학 현미경 초음파 에너지에 의해 사전에 확인세포를 용균하지 않습니다 사용하고 모든 집계 용해됩니다. </li><li> 1 ML의 최종 볼륨 PBS 700 μl를 추가합니다. PBS (10 -7) 일련의 희석을 수행하고 멸균 유리 비드를 사용하여 LB-1.5 % 한천 플레이트 상에 3 희석액 100 ㎕를 확산. 주 :이 살균제에 응답 관심 및 세포 생존율의 생물막 콜로니 세포의 양에 따라, 상기 최적의 희석은 도금 될는 예비 실험에서 결정되어야한다. </li><li> 하룻밤 30 ° C에서 접시를 품어 CFU를 계산하고 CFU에게 / ㎖를 결정한다. 각 반 생물막 식민지의 최종 CFU / ㎖에서 생존자의 비율을 계산합니다. 주 : 실시 분석 한 바와 같이 대칭 또는 콜로니의 저항 값을 확인하는 제어 생물막 콜로니의 반쪽과 생존 세포 수의 10 % 이하의 차이를 산출한다 미처리 생물막 콜로니 에탄올 처리 절반 대 비 처리 , respectively. 대안 적으로, 결과는 전체 CFU로 표현 될 수있다. 제어 및 미처리 생물막 집락의 세포 수는 동일한 정도의 크기로 유지한다. 반대로, 작은 분자 처리 생물막 콜로니의 에탄올 처리 절반의 세포 수는 살균제로 증가 된 감도 항에 2 차의 크기를 최소로 감소 할 것으로 예상된다. </li></ol> 주사 전자 현미경 3. 바이오 필름 식민지 샘플 준비 <ol><li> 단계 1.1-1.7 및 1.12-1.14의 설명에 따라 생물막 식민지를 성장. </li><li> 2 % (v / v)의 글루 타르 알데히드, 100mM의 3 % 나트륨 cacodylate의 (v / v)의 파라 포름 알데히드 용액을, 5 mM의 염화 칼슘 완충액, pH가 7.3의 신선한 배치를 준비한다. 8.5 cm 직경의 모든 페트리 접시에 대한 정착액 5 ㎖를 준비합니다. 주의 : 글루 타르 알데히드 및 ​​파라 포름 알데히드는 유해하다. 화학 후드 내부에 안전 장비로 처리합니다. HAZ의 솔루션과 오염 물질을 폐기농사 폐기물. </li><li> 조심스럽게 바이오 필름 위에 직접 분배하지 않고, 생물막 식민지에 정착을 추가합니다. 참고 : 생물막 식민지의 소수성 특성으로 인해, 식민지 천천히 한천에서 분리하고 떠 시작합니다. </li><li> 조심스럽게 파라 필름의 스트립 판을 밀봉. 실온에서 2 시간 동안 회전 진탕 기에서 인큐베이션하고이어서 밤새 39 ° C로 플레이트를 옮긴다. </li><li> 다음 날, 조심스럽게 진공 펌프에 연결 파스퇴르 유리 피펫으로 액체를 제거합니다. </li><li> 조심스럽게 바이오 필름을 씻고 5 분 동안 배양 10 ml의 100 mM의 나트륨 cacodylate, 5 mM의 염화칼슘 버퍼를 추가합니다. 조심스럽게 바이오 필름의 손상을 방지하고 부드러운 피펫으로 신선한 세척 솔루션을 추가 할 판의 모서리에서 파스퇴르 유리 피펫으로 액체를 제거합니다. 일단이 단계를 반복합니다. </li><li> 생물막 콜로니 탈수 다음 단계로 진행 DDH 2 O 2 배에 5 분; 3 배 20 분0 % 에탄올; 배 20 분 50 %의 에탄올; 배 20 분 70 %의 에탄올; 배 20 분 96 %의 에탄올; 2 × 100 % 에탄올에서 30 분. <ol><li> 각 단계에서 8.5 cm 직경의 모든 페트리 접시에 대한 액체의 15 ML을 추가하고주의 깊게 각 배양 후 액체를 제거합니다. </li></ol></li><li> 에탄올에서 샘플을 건조하기위한 두 가지 방법 중 하나를 사용합니다. <ol><li> 에탄올 항공 건조의 경우 : <ol><li> 분기 셀룰로오스 여과지 (직경 9cm의)을 잘랐다. 간단히 100 % 에탄올에 1/4 잠수함, 다음 조심스럽게에 하나의 부동 생물막 식민지를 전송합니다. 여과지 줄 지어 페트리 접시에 젖은 필터 용지를 넣습니다. 페트리 접시를 덮고 생물막 식민지에게 화학 후드에서 건조 하룻밤을 할 수 있습니다. </li></ol></li><li> 전이 유체로서 이산화탄소 (CO 2)를 사용 -drying 임계점 (CP)의 경우 : <ol><li> 100 % 에탄올 임계점 건조기 챔버의 75 %를 채운다. 자신의 C에, 홀더에 각각의 샘플을 샘플로 이동hamber. 필요한 경우, 작은 조각으로 가위로 바이오 필름을 잘라. 모든 취급시 에탄올에 빠져들 샘플을 남겨주세요. 그 후, 챔버로 홀더를 전송하고 단단히 챔버를 닫습니다. </li><li> 7 ° C까지 챔버를 냉각 교반 시작합니다. 액체 CO 2와 완전히 챔버를 입력합니다. 7 분 인큐베이션 시간 동안 CO 2와 에탄올 혼합하자. 이어서, 용액을 25 % 방출. 주 : 샘플의 수준 아래의 실을 버리지 말 것. </li><li> 단계를 반복 3.8.2.2 네 번. </li><li> 단계를 반복 3.8.2.2 5 분의 배양 시간에 다섯 번. 마지막으로 에탄올을 완전히 CO 2로 대체한다. </li><li> 챔버의 마지막 라운드, 빈 5 % 중. 교반 및 냉각을 끕니다. 42 ° C에 실을 가열 시작합니다. 31.1 ° C의 온도 및 73.9 bar의 압력에서, 액체 CO 2 임계점의 상태에 도달 여기서 기체 산도ASE는 용매 (27)의 액상과 동일한 밀도를 갖는다. 온도가 42 ° C에 도달하면, 10 분 동안 배양한다. 42 ° C에서, 챔버 내의 이산화탄소는 초 임계 기체로서 존재한다. 주 : 끊임없이 챔버의 압력을 확인합니다. 압력은 42 ° C에서 120 줄을 초과하지 않아야합니다. </li><li> 천천히 연속 난방 가스를 방출하기 시작합니다. 이것은 CO 2 - 가스 단계에서 샘플을 유지하고, 액체의 표면 장력을 통해 시료의 형태의 변형을 방지한다. 미세 조정하여 유량계를 제어하는 ​​계량 밸브를 5 리터 / h에 유량계를 설정합니다. 챔버 내의 모든 압력이 해제 될 때까지 기다립니다. 이제 챔버를 열고 홀더에서 조심스럽게 샘플을 제거합니다. </li></ol></li></ol></li><li> 코트 카본 테이프 전자 현미경 토막. 핀셋의 도움으로 조심스럽게 그루터기에 바이오 필름의 식민지를 전송합니다. 차에서 얇은 다리를 추가하여 스텁 각 식민지 연결전자 빔에서 충전 제거를위한 중요 봉 테이프. 그들은 매우 깨지기 쉬운만큼이 단계에서주의하여 생물막 식민지를 처리합니다. 최소 24 시간 동안 또는 시험 때까지 데시 케이 터에서 샘플을 저장합니다. </li><li> 주사 전자 현미경 검사의 날은, 금, 팔라듐 스퍼터 코터에서 60 °의 각도에서 2 분간 생물막 콜로니 - 스퍼터 코팅. 두 번이 단계를 반복 사이에 120 °로 샘플을 돌립니다. 마지막에, 스퍼터 코팅 샘플을 일단 위로부터 3 분. 금 - 팔라듐 20 nm의 얇은 층은 도전성을 향상시키고 SEM의 영상에 대한 샘플의 콘트라스트를 향상시킨다. </li><li> 주 사형 전자 현미경 (29, 30)로 촬상 할 때까지 샘플 (28)의 재수 않도록 데시 케이 터에서 샘플을 저장한다. </li></ol>

저자는 공개할 것이 없습니다.

바실러스 서브 틸리 스 (Bacillus subtilis) 형태 강력하고 고도로 구조화 된 생물막 모두 액체 (펠리클)와 고체 배지에 (식민지). 따라서, 특정 바이오 필름 저해제의 작용 모드를 특성화하는 이상적인 모델 생물로서 기능한다. 고체 배지에서 세포 가장자리에 중심에서 방사 주름 등 펠리클에서 알 수없는 고유 한 특징을 가진 다세포 구조를 형성한다. 따라서, 펠리클과 식민지 B.을 연구 보완 시스템은 서브 틸리 다세포. 이 연구의 목적은 B. 개발하는 바이오 필름 (펠리클과 식민지) 억제를위한 서브 틸리 모델 시스템입니다. 몇 가지 단계는 생물막 방해 논문의 재현성을 위해 중요하다. 첫 번째 중요한 단계는 biofilm 형성에 미치는 영향으로 인해 플랑크톤 생활에서 자란 박테리아에 대한 일반적인 독성이 아니라고 확인하는 것입니다. 이는 등의 소정의 농도의 효과를 비교하여 고려 될 수있다플...

다세포 세균 지역 사회는 자연 및 인위적 환경에서 중요한 역할을하고, 유익하거나 매우 유해 할 수 있습니다. 이러한 다세포 콜로니 개별 세포 자체 생산 세포 외 폴리머 물질 (EPS) 매트릭스에 매립되는 것을 특징으로하는 바이오 필름으로서 알려져있다. 허가제 강하게들이 정착 표면에 세포를 접착. 그들은 기계적 및 화학적 힘에 대항하는 방패 역할 및 셀룰러 통신 1을 촉진, 인접 셀 사이에 긴밀한 연락을 만듭니다. 생물막은 세포가 고도로 규제 사용하십시오 차별화 된 커뮤니티로 볼 수있다, 종 2-5에서뿐만 아니라, 지역 사회 내에서 활동을 조정하는 프로세스를 조율. 생물막 상태로 성장 플랑크톤 자유 생활 모드 간의 전환은 종종 개발 프로세스와 관련된다. 좋은 예는 그람 양성 토양 박테리아 고초균 및 따라서 인 undomesticated 균주는 biofilm 형성을 유도하는 발달 단계를 연구하는 강력한 모델 생물 역할을한다. 이 박테리아에서, 운동성 세포는 전문적인 작업 4를 수행 눈에 띄는 다세포 구조로 자신을 구성 할 수 있습니다. 셀들의 하나의 그룹은 매트릭스 생산자 엑소 폴리 사카 라이드 6 분비 아밀로이드 단백질 TASA 7,8, 표면 소수성 단백질 BslA 9,10; 이는 모두는 EPS 11-13의 조립에 참여한다. 자연스럽고 인위적 틈새에 생물막의 풍부하고 일으킬 수있는 치명적인 손상 추정을 감안할 때, 그 형성을 방지하는 방법을 찾기 위해 가압 할 필요가있다. 소분자 억제제는 새로운 규제 경로, 효소 및 생물막 형성에 관여하는 구조 단백질의 발견에 도움이, 이에 다세포 커뮤니티 어셈블리의 복잡한 프로세스의 통찰을 촉진 할 수있다. B.으로 서브 틸리는 바이오 잘 연구 된 모델입니다성막 14,15, 다양한 생물막 억제제의 효과를 평가하기 위해 사용될 수있다. 이 연구는 작은 분자 억제제에 바이오 필름의 반응을 평가하기위한 중요한 4 개의 기본적인 방법을 다룹니다. 첫째,이 억제제는 생물막 특정 대상이 있는지 확인하기 위해, biofilm 형성에 미치는 영향에서 플랑크톤의 성장에 미치는 영향의 분리는 매우 중요하다. 대부분의 항균제는 플랑크톤 성장기에있는 세포를 표적으로하지만, 생물막 라이프를 대상 분자는 드물다. 플랑크톤의 성장에 영향을 미치지 않는 분자 독성이기 때문에 또한 이들은 항생제 내성 돌연변이 체 (16)를 선호 선택 압력을 감소시킬 수있다. 바이오 필름은 D 아미노산 또는 기타 특정 세포벽 간섭 분자로 처리하는 경우, 예를 들면, 그들은 어느 방해하거나 분해하지만, 이러한 억제제는 약간 플랑크톤 성장 12,17 영향을한다. 대조적으로, 많은 항생제 극적 리터와 플랑크톤 성장을 저해ittle 또는 biofilm 형성 (17)에 아무런 영향. 둘째, 작은 분자의 효과를 연구하는 일관되고 견고한 실험 프레임 워크를 확립하는 것이 중요하다. 우리는 소분자 억제제의 활성 농도 범위는 예비 배양 조건 이러한 소분자 저해제의 효과를 연구하기 위해 실험 구성에 민감한 것을 관찰 하였다. 특히이 B를 공부 각종 보고서, 부유 세균 바이오 필름 12,17-19 - 서브 틸리는 D-아미노산 펠리클의 형성을 억제하는 농도 범위의 변화를 한 것으로 밝혀졌습니다. 여기에 제시된 결과는 다음과 같은 요소가 활성 농도 범위의 차이를 고려하는 것이 제안 : 예비 배양 조건 (후기 정지 20 성장기 대 로그 12,17) 예비 배양 조건에서 사용 된 배양 배지는 (풍부 정의 대 정의되지 않은 [루리아 국물, LB] [글루탐산 나트륨글리세롤, MSgg), 접종 비 접종 전의 상기 배지 특히 제거. 정적 펠리클의 성장 온도는 소분자 억제제 D 류신, 본 연구에 사용 된 대표 D 아미노산의 활성 영역에서 덜 중요한 역할을 나타내었다. 마지막으로, 한 번 생물막은 특정 바이오 필름 억제제, 강력하고 유익한 방법이 생물막 피트니스 이러한 억제제의 효과를 특성화하기 위해 필요로 처리됩니다. 생물막 콜로니 및 항균제 그들의 저항 내 단일 세포 (1) 효과 : 여기서, 독립적 소분자 억제제의 효과를 특징 화하는 두 가지 방법이 상세히 설명된다. 자유 살아있는 박테리아 21-23에 비해 생물막의 셀은 전형적으로 더 많은 항생제 내성한다. 이 현상은 인성이지만, 항생제 침투를 줄이기위한 EPS의 능력은 종종 매력 설명 24 여겨졌다 </suP&gt;. 이 방법은 항균성 물질에 노출 된 후 미리 설정된 생물막 세포의 생존율을 평가한다. (2) 작은 규모에 큰에서 생물막 식민지 아키텍처에 미치는 영향. 생물막 콜로니는 입체 구조와 EPS의 존재를 특징으로한다. 주사 전자 현미경을 이용하여, 세포 형태, 생물막 콜로니 구조 및 EPS의 구조 및 다량의 변화는 작은 크기 (μm의)에 큰 (mm)에서 가시화 될 수있다.

<table><tbody><tr><td>Luria Broth, Lennox</td><td>Difco</td><td>240230</td><td></td></tr><tr><td>Bacto Agar</td><td>Difco</td><td>214010</td><td></td></tr><tr><td>인산 칼륨 monobasic&nbsp;</td><td>시그마, 136.09 g/mol</td><td>P0662-500G</td><td></td></tr><tr><td>인산칼륨 이염기성&nbsp;</td><td>Fisher Scientific, 174.18 g/mol</td><td>BP363-1</td><td></td></tr><tr><td>3-(N-morpholino)프로판설폰산</td><td>Fisher Scientific, 209.27 g/mol</td><td>BP308-500</td><td></td></tr><tr><td>마그네슘 클로라이드 헥사하이드레이트&nbsp;</td><td>머크, 203.30 g/mol&nbsp;</td><td>1.05833.0250</td><td></td></tr><tr><td>염화칼슘 무수</td><td>J.T. Baker, 110.98 g/mol</td><td>1311-01</td><td></td></tr><tr><td>염화 망간(II) 사수화물</td><td>Sigma, 197.91 g/mol</td><td>31422-250G-R</td><td></td></tr><tr><td>철(III) 염화물 육수화물&nbsp;</td><td>시그마, 270.30g/월)</td><td>F2877-500G</td><td></td></tr><tr><td>염화아연 무수&nbsp;</td><td>Acros Organics, 136.29g/mol</td><td>424592500</td><td></td></tr><tr><td>티아민 염산염</td><td>시그마, 337.27g/mol</td><td>T1270-100G</td><td></td></tr><tr><td>L-트립토판</td><td>Fisher Scientific, 204.1g/mol</td><td>BP395-100</td><td></td></tr><tr><td>L-페닐알라닌</td><td>시그마, 165.19g/mol</td><td>P5482-100G</td><td></td></tr><tr><td>L-트레오닌</td><td>시그마, 119.12g/mol</td><td>T8625-100G</td><td></td></tr><tr><td>글리세롤 무수</td><td>Bio-Lab Itd</td><td>712022300</td><td></td></tr><tr><td>L-글루탐산 모노소듐 염 수화물&nbsp;</td><td>시그마, 169.11g/mol</td><td>G1626-1KG</td><td></td></tr><tr><td>D-류신</td><td>시그마, 169.11g/mol</td><td>855448-10G</td><td></td></tr><tr><td>에탄올 무수</td><td>Gadot</td><td>830000054</td><td></td></tr><tr><td>면도날</td><td>Eddison</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>원형 셀룰로오스 여과지</td><td>Whatman, 90mm</td><td>1001-090</td><td></td></tr><tr><td>글루타르알데히드</td><td>EMS(Electron Micoscopy Science), 물 25%</td><td>16220</td><td></td></tr><tr><td>파라포름알데히드&nbsp;</td><td>EMS, 물</td><td>15710</td><td></td></tr><tr><td>나트륨 카코딜레이트</td><td>머크에 16%, 214.05 g/mol&nbsp;</td><td>8.2067</td><td></td></tr><tr><td>칼슘 클로라이드 2-하이드레이트</td><td>머크, 147.02 g/mol&nbsp;</td><td></td><td></td>1172113</tr><tr><td>스텁 - 알루미늄 마운트</td><td>EMS, 슬롯 헤드</td><td>75230</td><td></td></tr><tr><td>탄소 접착 테이프</td><td>EMS</td><td>77825-12</td><td></td></tr><tr><td>셰이커 37 &deg; C</td><td>New Brunswick Scientific Innowa42</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>Eppendorf 탁상용 원심분리기 5424</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>디지털 소닉파이어, 모델 250, 더블 스텝 마이크로팁</td><td>브랜슨 NA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>인큐베이터 30 &deg; C</td><td>바인더</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>인큐베이터 23 &deg; C</td><td>바인더</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>필터 시스템, 500 ml, 폴리스티렌</td><td>Cornig Incorporated</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>로터리 쉐이커 - Orbitron Rotatory II</td><td>Boekel</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>S150 스퍼터 코터&nbsp;</td><td>Edwards</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>CPD 030 임계점 건조기</td><td>BAL-TEC</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>환경 주사 전자 현미경</td><td>XL30 ESEM FEG Philips (FEI)</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

유학을위한 방법론<em&gt; b. 서브 틸리</em작은 분자 바이오 필름 억제제를 특성화 모델로&gt; 바이오 필름

Methodologies for Studying B. subtilis Biofilms as a Model for Characterizing Small Molecule Biofilm Inhibitors

이 연구는 D-아미노산과 같은 저분자 생물막 억제제가 Bacillus subtilis 생물막의 발달 및 복원력에 미치는 영향을 연구하기 위한 다양한 방법론을 평가합니다. 먼저, 플랑크톤 성장에 대한 소분자 억제제의 효과와 생물막 형성에 대한 효과를 분리하기 위해 생물막 특이적 표적을 가진 소분자 억제제를 선택하는 방법이 제시됩니다. 다음으로, 접종 조건이 소분자 억제제에 대한 다세포 부유 B. subtilis 배양의 민감도에 어떤 영향을 미치는지에 초점을 맞춥니다. 결과는 D-아미노산과 같은 이러한 억제제의 보고된 효과의 불일치가 일관되지 않은 배양 전 조건에 기인함을 시사합니다. 또한, 항균 물질에 대한 생물막 내성에 대한 소분자 처리의 기여도를 평가하기 위해 최근에 개발된 프로토콜이 설명됩니다. 마지막으로, B. subtilis 생물막에서 세포와 주변 세포외 기질의 3차원 공간 배열을 분석하기 위해 주사 전자 현미경(SEM) 기술이 제시됩니다. SEM은 3차원 생물막 구조와 매트릭스 질감에 대한 통찰력을 용이하게 합니다. 여기에 설명된 방법의 조합은 생물막 억제제의 존재 및 부재 시 생물막 발달 연구에 크게 도움이 될 수 있으며 이러한 억제제의 작용 메커니즘을 밝힐 수 있습니다.

펠리클 분석은 B의 높은 규제 및 동적 프로세스를 연구하는 하나의 방법이다 서브 틸리 다세포. 이 외에, 펠리클 분석 한 실험에서 단일 세포 배양 multidish 접시에 미리 시동 조건 또는 소분자 어느 농도의 범위를 테스트하는 데에 적합하다. 그러나, B. 서브 틸리 펠리클 형성은 예비 배양 조건에 민감하다 (예를 들어, 예비 - 배양의 성장 배지 및 성장 단계) 접종 비와 미리 배양 배지의 제거. 우리는 따라서 먼저 우리가 D-류신에 의한 페리 클 억제를 재현 할 수 실험 설정에 대한 검사. 우리의 결과는 세포 진탕 4 시간 동안 37 ° C에서 3 ㎖ LB의 중간 대수 증식기 (단일 콜로니로 정의 풍부한 LB 배지에서 사전 배양 한 경우 D 류신 의해 재현 펠리클 억제를 얻을 수 있음을 보여 ), 스핀 다운하여 (1)에 사전 정의 MSgg 배지에 재현 탁 : 1000 inoculat이온 (그림 3A). 200에서 진탕하면서 3...

본 연구는 생물막 억제제와 Bacillus subtilis 다세포성에 미치는 영향을 연구하기 위한 재현 가능한 방법론의 개발을 제시합니다.

유학을위한 방법론<em&gt; B. 서브 틸리</em작은 분자 바이오 필름 억제제를 특성화 모델로&gt; 바이오 필름

This work assesses different methodologies to study the impact of small molecule biofilm inhibitors, such as D-amino acids, on the development and ...

박테리아 바이오필름은 내부에 서식하는 박테리아를 환경적 자극과 항균제로부터 보호함으로써 인간의 건강에 중요한 영향을 미칩니다. 본 실험 절차의 목적은 소분자 억제제가 바이오필름 형성에 미치는 영향을 평가하기 위한 모델 시스템을 개발하는 것입니다. 이러한 방법들은 바이오필름 형성만을 특이적으로 표적으로 하는 소분자 억제제를 선정하는 데 있어 바이오필름 연구 분야에 필수적인 툴셋을 구축하는 데 도움을 줄 수 있습니다.이러한 방법론의 주요 장점은 일관되고 견고한 실험적 프레임워크에서 시작하여, 바이오필름 특이적 억제제의 작용 기전에 대한 정량적 및 정성적 통찰을 제공한다는 점입니다. 이러한 방법들은 Bacillus subtilis 바이오필름에 대한 통찰을 제공할 수 있을 뿐만 아니라, Pseudomonas aeruginosa 또는 식물 병원균인 Xanthomonas citri와 같은 다른 바이오필름 형성 박테리아에도 적용될 수 있습니다. 주사 전자 현미경은 세포외 기질의 관찰이 가능하고 단일 세포 수준의 해상도를 제공하므로, 소분자가 바이오필름 형성에 미치는 영향을 분석하는 데 필수적일 수 있습니다.먼저 적절한 단일 콜로니를 선택하여 3 mL의 LB 배지에 접종합니다. 이 스타터 배양액을 진탕 배양기에 넣고 37 °C에서 4시간 동안 배양합니다. 배양 후, 스타터 배양액 1.5 mL를 취해 4분 동안 원심분리합니다.상청액을 조심스럽게 제거한 다음, 펠렛을 1.5 milliliters의 MSgg 배지에 다시 현탁합니다. 펠리클을 배양하기 위해, 각 웰에 3 milliliters의 MSgg를 첨가하여 12-웰 세포 배양 플레이트를 준비합니다. 이 중 일부 웰에는 저분자 억제제가 포함된 MSgg를 농도 범위별로 첨가하며, 가장자리 효과(edge effects)를 방지하기 위해 서로 다른 농도의 위치를 플레이트 전체에 분산시켜 배치합니다.재현탁한 스타터 배양액의 600 nanometers에서의 광학 밀도를 측정합니다. 배양액의 수치는 0.6에서 1 사이여야 합니다. 이는 시스템의 견고함을 위해 매우 중요합니다.배양 플레이트의 각 웰에 재부유시킨 스타터 배양액 3 µL를 접종합니다. 그 다음, 플레이트를 23 °C에서 3일 동안 정적 상태로 배양합니다. 이후, 플레이트를 배양기에서 꺼내 펠리클(pellicle)을 관찰합니다.바이오필름을 배양하기 위해, 템플릿을 사용하여 건조된 8.5 cm 1.5% Agar MSgg 플레이트 위에 세척하지 않은 스타터 배양액 1.5 µL를 네 군데에 대칭적으로 점적합니다. 플레이트를 옮기기 전, 점적한 액체가 배지에 흡수되도록 둡니다. 플레이트를 30 °C에서 3일 동안 배양합니다.균일한 조명이 제공되는로 쌍안 현미경을 사용하여 바이오필름 군집이 발달하고 3차원적인 주름 구조가 형성되었는지 확인합니다. 먼저, 깨끗한 면도날을 사용하여 템플릿의 도움을 받아 바이오필름 군집을 동일하게 두 부분으로 절단합니다. 깨끗한 스패튤라로 군집의 절반을 조심스럽게 들어 올려 500 µL의 PBS가 들어 있는 1.5 mL 마이크로 원심분리 튜브로 옮깁니다.콜로니의 나머지 절반을 취하여 50% ethanol 500 µL가 들어 있는 마이크로 원심분리 튜브로 옮깁니다. 이는 멸균제에 대한 저항성을 평가하는 데 사용됩니다. 그 후, 동일한 방식으로 D-lysine 처리된 콜로니의 첫 번째 절반을 취하여 PBS에 넣습니다.그다음, 이 콜로니의 나머지 절반을 에탄올로 옮깁니다. 바이오필름 절반이 들어있는 모든 튜브를 실온에서 10분 동안 배양합니다. 그런 다음, 18,000 ×g에서 5분 동안 원심분리합니다.피펫을 사용하여 상층액을 조심스럽게 제거합니다. 300 µL의 PBS를 첨가한 후, 마이크로팁 소니케이터를 사용하여 낮은 설정에서 세포를 초음파 처리합니다. 최종 부피가 1 mL가 되도록 700 µL의 PBS를 추가로 첨가합니다.다음으로, PBS를 사용하여 10⁻⁷까지 단계별 희석을 수행합니다. 희석액 중 하나에서 100 µL를 취해 1.5% Agar LB 플레이트에 접종합니다. 샘플당 다른 두 가지 희석 배수에 대해서도 이 단계를 반복합니다.유리 비드를 사용하여 접종균을 도말한 후, 플레이트를 30 °C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 플레이트를 검사하고 콜로니 형성 단위(CFU)를 측정합니다. mL당 CFU 값을 계산한 후, PBS 처리군 대비 에탄올 처리군의 생존율 백분율을 계산합니다.시료 고정을 시작하려면, 먼저 원하는 수의 바이오필름 콜로니에 사용할 충분한 양의 신선한 고정액을 준비합니다. 각 페트리 접시에 고정액 5 mL를 조심스럽게 첨가하되, 콜로니 위에 직접 피펫팅하지 않도록 주의합니다. 콜로니가 한천(Agar)에서 떨어져 나오기 시작하며 떠오르게 됩니다.플레이트를 파라필름으로 조심스럽게 밀봉하고, 상온의 회전 쉐이커에서 2시간 동안 배양합니다. 플레이트를 4°C 보관소로 옮겨 하룻밤 동안 보관합니다. 진공 펌프에 연결된 파스퇴르 피펫을 사용하여 고정액을 조심스럽게 제거합니다.바이오필름을 세척하기 위해 100 nanomolar sodium cacodylate, 5 millimolar calcium chloride 완충액 10 milliliters를 첨가하고 5분 동안 배양합니다. 파스퇴르 피펫을 사용하여 Agar 플레이트에서 바이오필름 콜로니의 중앙 부분을 조심스럽게 떼어냅니다. 콜로니를 공기 중으로 건조시키려면 셀룰로오스 여과지를 4등분으로 자른 후, 한 섹션을 100% ethanol에 담급니다.부유하는 바이오필름 콜로니 하나를 종이 위로 조심스럽게 옮깁니다. 건조한 여과지로 깐 페트리 접시에 해당 종이를 넣습니다. 그 후 접시의 뚜껑을 덮고, 화학 흄후드 내에서 하룻밤 동안 건조시킵니다.바이오필름 군락의 형태를 보존하기 위해서는, 부유하는 바이오필름의 아래쪽을 셀룰로오스 페이퍼로 완전히 받쳐주는 것이 중요합니다. 일단 페이퍼 위에 놓인 바이오필름은 다시 조정할 수 없습니다. 전자현미경 스텁에 카본 테이프를 입힌 후, 핀셋을 사용하여 바이오필름 군락을 스텁 위로 조심스럽게 옮깁니다.탄소 테이프로 얇은 브리지를 만들어 각 콜로니를 스터브에 연결한 후, 스터브를 데시케이터에 넣고 24시간 동안 또는 필요할 때까지 보관합니다. 이 단계에서 바이오필름은 매우 취약하여 쉽게 파손될 수 있으므로, 안정적이고 정밀한 손놀림이 필요합니다. 핵심은 균열 없이 바이오필름의 상당 부분을 부착하는 것입니다.검사 당일, 콜로니를 금-팔라듐 스퍼터 코터(gold-palladium sputter coater)에 넣습니다. 샘플을 60도 각도로 2분 동안 코팅합니다. 이 단계를 두 번 반복하며, 매회 샘플을 120도씩 회전시킵니다.마지막으로, 상단부터 3분 동안 샘플을 한 번 코팅합니다. 이제 샘플을 SEM으로 이미징할 준비가 되었습니다. 이 이미지들은 바이오필름 유도 MSgg 배지에서 배양된 B.subtilis의 펠리클 형성 과정을 보여줍니다.저분자 억제제인 D-lysine을 첨가하면 펠리클(pellicle) 형성이 감소합니다. 또한 억제제의 농도가 증가함에 따라 펠리클 형성이 상관관계 있게 감소하는 양상을 보입니다. 이 그래프는 D-lysine 억제제로 처리하거나 처리하지 않은 바이오필름 콜로니 내 세포의 생존에 에탄올 노출이 미치는 영향을 보여줍니다.D-lysine으로 처리하고 50% ethanol에 10분 동안 노출시킨 콜로니는 처리하지 않은 분획에 비해 생존율이 급격히 감소한 것으로 나타났습니다. 상단-하단(top-down) 쌍안경 이미지에서는 D-lysine 존재 하에 성장한 콜로니가 전반적으로 크기가 더 작았으며, 처리하지 않은 콜로니보다 주름 형성이 덜 뚜렷했음을 보여줍니다. 임계점 건조(critical point dried)된 바이오필름 콜로니의 주사 전자 현미경 이미지는 변화된 바이오필름 발달 과정을 더욱 상세히 드러냅니다.세포 외 고분자 물질 매트릭스(EPS)는 처리하지 않은 샘플에서는 거미줄과 유사한 형태였으나, 처리된 샘플에서는 조직화 정도가 더 낮게 나타났습니다. 마지막으로 개별 박테리아 세포 수준의 해상도로 관찰한 결과, 처리된 세포는 외형이 길쭉해지고 EPS로 덮인 정도가 낮으며, 처리하지 않은 세포만큼 인접한 세포와 밀접하게 연결되어 있지 않음을 확인했습니다. 이 절차를 수행할 때, 재현성 있는 결과를 얻기 위해서는 바이오필름 억제제를 연구하기 위한 일관된 프레임워크를 설정하는 것이 필수적이라는 점을 기억하는 것이 중요합니다.숙련된 후 적절하게 수행한다면, 바이오필름 억제를 위한 소분자 스크리닝은 일주일 이내에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 통해 소분자 억제제의 표적에 대한 추가적인 통찰을 얻기 위해 단일 바이오필름 세포의 유전자 발현 조사와 같은 다른 방법들을 수행할 수 있습니다. 이 영상을 시청한 후에는 특정 바이오필름 억제제가 바이오필름 발달 및 항생제 내성에 미치는 전반적인 영향을 분석하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

methodologies-for-studying-b-subtilis-biofilms-as-model-for

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

출처: Tay, S. B. 외 조작된 쿼럼 소환 락토나제를 이용한 병원성 바이오필름의 항병원성 파괴.  J. Vis. 경험 (2016)이 영상은 병원성 박테리아에서 바이오필름 생체량을 정량화하는 방법을 시연하며, 처리되지 않은 대조군과 쿼럼 소환 효소로 처리된 샘플을 비교합니다. 이 효소는 초기 배양 과정에서 박테리아의 신호를 방해하여 세포 부착을 감소시킵니다. 세척 후 추가 배양 후 대조 우물은 밀도가 높은 바이오필름을 형성하는 반면, 처리된 우물은 형성이 감소합니다. 양이온염료를 사용해 바이오필름을 염색하고, 흡수도를 측정하여 생체량을 평가합니다.

병원성 박테리아에서 효소 유도 바이오필름 억제의 정량화

출처: 테이, S. B., et.al. 조작된 쿼럼 소환 락토나제를 이용한 병원성 바이오필름의 항병원성 파괴.  J. Vis. 경험 (2016)이 영상은 박테리아 세포 신호를 교란하는 효소를 도입하여 바이오필름 형성을 억제하는 과정을 보여줍니다. 이 효소는 박테리아가 세포외 고분자 물질을 생성하는 것을 막아, 유리 바닥 마이크로디시에서 바이오필름 발생을 감소시킵니다. 마지막으로, 형광 렉틴과 공초점 레이저 주사 현미경을 사용하여 바이오필름 구조를 시각화합니다.

효소 매개 바이오필름 형성 억제의 현미경 평가

출처: Bucher, T. 외 B . subtilis 바이오필름을 소분자 바이오필름 억제제 특성 모델로 연구하는 방법론. J. Vis. 경험 (2016)이 영상은 Bacillus subtilis 를 이용한 펠리클 형성 분석법을 시연하여 매트릭스 합성과 바이오필름 발생을 방해하는 소분자 억제제를 평가하며, 자유 부유 세포에 영향을 주지 않고 표면 관련 성장을 선택적으로 억제하는 화합물을 스크리닝하는 모델을 제공합니다.

Bacillus subtilis에서 펠리클 형성에 미치는 억제제 효과 평가

출처: Bucher, T. 외 B. subtilis 바이오필름을 소분자 바이오필름 억제제 특성 모델로 연구하는 방법론. J. Vis. 경험 (2016).이 영상은 바이오필름 매트릭스 무결성이 세균의 에탄올 내성에 미치는 영향을 미처리된 및 억제제 파괴된 바이오필름의 군락 형성 단위를 비교하여 보여줍니다. 억제제 처리 샘플에서 감소된 CFU는 세포외 기질이 바이오필름 내장된 세포를 항균 스트레스로부터 보호하는 데 필수적임을 보여줍니다.

바이오필름 매트릭스 무결성 평가를 위한 에탄올 저항성 분석법

출처: Bucher, T. 외, 『B. subtilis 바이오필름 연구를 위한 소분자 바이오필름 억제제 특성화 모델로서의 방법론』. J. Vis. 경험(2016)이 영상은 고해상도 이미징을 위해 성숙한 박테리아 바이오필름 집락을 준비하는 과정을 보여줍니다. 고정, 탈수, 장착, 금속 코팅 단계를 다루어 바이오필름 형태를 보존하고 시각화합니다.

형태학적 분석을 위한 박테리아 바이오필름 군락 준비

이 비디오는 다중 웰 플레이트를 사용한 생물막 분산 분석을 보여줍니다. 완충액과 포도당 처리는 생물막을 분해하여 박테리아를 방출하는 반면, 담즙염은 스트레스를 유발하여 박테리아를 보호하는 세포외 고분자 물질에 유지합니다. 완충액과 포도당을 사용한 더 높은 분산은 성공적인 생물막 분해를 확인하며, 이는 집락 형성 단위 측정으로 추정됩니다.

Dispersion Assay를 통한 Biofilm 분해 검출

대부분의 박테리아 감염은 생물막을 생성합니다. 환경 덕분에, 생물막 관련 박테리아는 종종 표현형 약물 내성을 가지고 있습니다. 따라서 생물막에서 박테리아를 죽이는 새로운 항균 분자는 최우선 순위입니다. 당사는 생물막을 박멸하는 데 효과적인 항균 화합물을 신속하게 스크리닝하기 위한 분석을 수립합니다.

바이오 필름 관련 타겟팅<em&gt; 황색 포도상 구균</em&gt; 사용 레사 주린 기반 약물 감수성 분석

생물막 감염은 화학요법에 대한 내성이 높습니다. 단일 분석법으로 생물막의 복잡성을 파악할 수 없습니다. 대신, 보완적인 분석이 필요합니다. 우리는 생존력, 바이오매스 및 생물막 매트릭스에 대한 분석을 결합한 스크리닝 플랫폼(S. aureus를 위해 개발됨)을 제시합니다. 이를 통해 장기적인 화학 요법 효과 평가를 포함한 항생물막 약물 발견을 할 수 있습니다.

천연 화합물 라이브러리의 탐험에 적합 안티 바이오 필름 분석 실험의 플랫폼

천연 제품은 신약 및 치료제 개발을 위한 유망한 출발점을 나타냅니다. 그러나, 높은 화학 다양성으로 인해, 식물에서 새로운 치료 화합물을 찾는 것은 도전적이고 시간이 많이 소요되는 작업입니다. 우리는 식물 추출물과 분획에서 항균 및 항바이오필름 분자를 식별하는 단순화된 접근법을 설명합니다.

식물의 추출물과 분획에서 새로운 항균 및 항바이오필름 분자를 식별하여 치과 용 충치를 방지하기 위한 체계적인 접근법

이 프로토콜은 고처리량 96웰 고정 뚜껑 정적 생물막 스크리닝을 위해 자체 조립된 딥 웰 PCR 플레이트 장치를 사용하여 생물막 성장 및 바이오매스 측정을 수행하는 방법론을 제시합니다.

PCR-플레이트 딥웰 마이크로플레이트 장치를 이용한 더 큰 박테리아 바이오필름 바이오매스의 생성

이 프로토콜은 낙농 산업에서 생물막을 박멸하기 위한 유기 퍼옥시산의 효능을 평가하기 위해 정적 및 동적 방법을 결합한 접근 방식을 설명합니다. 이 접근법은 또한 생물막을 제어하기 위한 새로운 생물학적 또는 화학적 제형의 효과를 시험하기 위해 사용될 수 있다.

정적 방법과 동적 방법을 결합한 접근법을 사용하여 낙농 생물막을 박멸하기 위한 유기 과산화산의 효능 평가

학습하세요 Bacillus subtilis 바이오필름 형성을 평가하는 재현 가능한 방법론을 통해 소분자 억제제의 효과를 분석하는 기술을. 이 방법은 정량적 및 정성적 통찰을 제공하여 새로운 치료 전략 설계에 기여합니다.

유학을위한 방법론

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