Name: 동적 세포 돌출부에서 소프트웨어를 이용한 단백질 농도 추적을위한 그래픽 사용자 인터페이스 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-11T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 12 s
Description: 배우세요 적응형 형태 추적 알고리즘을 사용하여 필로포디아 돌출부 역학과 단백질 농도를 정량 분석하는 방법을. 이 소프트웨어 GUI는 신경세포, HeLa, COS 세포에서 단백질 역학을 연구하는 연구자들에게 강력한 도구를 제공합니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

저자는 DFG (EXC-1003에서 MG까지)의 자금 지원을 인정합니다.

1. 세포 배양 <ol><li> 4.5g / L D- 글루코오스, L- 알라닌 -L- 글루타민 디 펩티드, 피루 베이트, 10 % 소 태아 혈청 및 10 유닛 / ml 페니실린 / 스트렙토 마이신을 함유하는 둘 베코 변형 이글 배지 (DMEM) 중의 HeLa 또는 COS 세포 배양. 0.5 mM L- 알라닌 -L- 글루타민 디 펩티드, 무 혈청 신경원 보충제 및 페니실린 / 스트렙토 마이신 10 단위 / ml가 보충 된 L- 글루타민, 글루탐산 또는 아스파르트 산이없는 배지에서의 배양 뉴런. </li><li> 40 %의 confluency가 도달되면 제조 업체의 지침에 따라 transfection 시약을 사용하여 선택의 구조로 세포를 transfect하십시오. 37에서 배양기에 transfected 세포를 유지 ° C와 5 % CO 2 15-18 시간. </li><li> 이미지 수집 중 산도와 삼투압의 변화를 줄이려면 37 ℃에서 미리 90 %까지 세포 배양 챔버를 채우십시오 (예 : 20 mM 4- (2- 하이드 록시 에틸) -1) -1 (HEPES)를 포함한다. 밀봉뚜껑 안쪽에 얇은 진공 그리스를 묻혀 트랜 스펙 션 된 세포가 들어있는 배양기에서 가볍게 누릅니다. </li></ol> 2. 이미지 수집 참고 : filopodia의 길이는 2-10 μm에서 다릅니다. Filopodia는 0.05-0.1 μm / s의 평균 속도로 자랍니다 13 , 14 . <ol><li> 60X 또는 100X 대물 렌즈 및 픽셀 비닝 (여기서는 회전 디스크 공 촛점 현미경)이있는 현미경을 사용하여 이미지를 수집하십시오. 골반 동역학을 추적하기 위해 1 헤르츠 (Hz) 이상의 수집 속도를 사용하십시오. 초점이 맞지 않는 아티팩트를 최소화하기 위해 기저막 ( 즉, 기판 표면)에 가까운 영상 필로 디아를 사용합니다. </li><li> 매끄러운 트래킹을 보장하려면 SNR (Signal to Noise Ratio)이 4 이상이되도록 카메라의 노출 시간과 레이저 강도를 조정하십시오. 개별 채널의 채도를 피하십시오 ( 예 :8 비트 이미지의 경우 255, 16 비트 이미지의 경우 65,535), 이후 이미지 분석이 어려워집니다. </li><li> 블리드 스루 (bleed-through)를 피하려면 현미경의 레이저 라인 및 필터와 호환되는 형광 태그 만 사용하십시오 (자세한 내용은 참조 15 참조). </li></ol> 3. 이미지 전처리 참고 : ImageJ 또는 다른 사용 가능한 소프트웨어를 사용하여 이미지 16 , 17 을 사전 처리하십시오. <ol><li> 샘플이 움직이는 경우 분석 전에 사용 가능한 소프트웨어 ( 예 : https://github.com/NMSchneider/fixTranslation-Macro_for_ImageJ)를 사용하여 측면 드리프트를 보정하십시오. 축 방향 드리프트가있는 동영상 제외 (예 : z 방향으로의 이동). </li><li> 올바른 배경 ( 즉 , 세포 외부 영역의 회색 값), 표백 (형광 단백질 손상으로 인한 형광 강도의 경우 연속적인 손실) 및 가능한 블리드 물마루 ( 즉 , 한 가지 독감orescence probe) ( 예 : http://imagej.net/Category:Plugins and 16 , 17 ). 참고 : 개별 채널의 형광 강도는 소프트웨어에 의해 변경되지 않습니다. </li><li> 후속 이미지 분석을 위해 특정 단백질 채널에 해당하는 영화를 그레이 스케일로 &#39;.tiff&#39;스택 파일 형식으로 작업 폴더에 저장하십시오. 참고 : 스택의 크기 ( 즉, 크기, 길이)는 모든 채널에서 동일해야합니다. </li></ol> 4. 이미지 분석 - 1 단계 : 이미지로드 참고 : 여기에 설명 된 소프트웨어는 Matlab (프로그래밍 소프트웨어라고 함)으로 작성되었으며이 프로그램에서만 실행됩니다. <ol><li> 다음 사이트에서 이미지 분석에 필요한 모든 파일이 들어있는 압축 폴더를 다운로드하십시오. https://campus.uni-muenster.de/en/einrichtungen/impb0/nanoscale-forces-in-cells/softw아르/. 압축을 풀고 파일을 작업 폴더에 복사하십시오. </li><li> 일단 설치되면 프로그래밍 소프트웨어를 열고 &#39;filopodiaAnalysisM3.fig&#39;를 실행하십시오. 그림 2A 와 같이 GUI 창 # 1이 열립니다. </li><li> 단백질 A는 &lt;1b&gt;, 단백질 B는 &lt;1c&gt;, 단백질 C는 &lt;1d&gt; GUI 창 # 1에서 관심있는 특정 단백질에 해당하는 저장된 스택 &#39;.tiff&#39;파일을로드하십시오. 그림 2 및 표 참조 자세한 내용은 1 페이지 를 참조하십시오. 참고 : GUI 창 # 1에 표시된 단백질 A는 최종 비율 측정 분석을위한 참조 채널 역할을합니다. </li><li> &lt;1a&gt;를 클릭하여 단백질 채널에서 세포의 이미지를 겹쳐서 만듭니다. </li><li> &lt;2a&gt;를 클릭하여 첫 번째 프레임을 지정하고 &lt;2b&gt;를 분석에 사용 된 마지막 프레임으로 지정합니다. </li><li> 선택적으로, &lt;2h&gt; 버튼을 사용하여 원하는 대상자를 포함하는 관심 영역 (ROI)을 자르고, 이미지를노래 버튼 &lt;2i&gt;을 사용하거나 손으로 그리는 도구 &lt;2j&gt;를 사용하여 불필요한 영역을 삭제하십시오. 참고 : 이미지 분석을 간소화하려면 ImageJ를 사용하여 ROI (자르기, 회전, 삭제)를 다른 전처리 단계 (배경 빼기, 표백 수정 등)와 함께 격리하는 것이 좋습니다. </li><li> 품질 관리를 위해 각 프레임에 대한 슬라이더 &lt;2c&gt;를 이동하고 전체 영화에서 필로 드가 명확하게 보이는지 확인하십시오. </li></ol> 5. 이미지 분석 - 2 단계 : 추적 생성 <ol><li> GUI 창 # 1에서 &lt;3a&gt; 버튼을 클릭하여 GUI 창 # 2를 엽니 다 ( 그림 2B 참조). </li><li> GUI 창 # 2에서 &lt;4&gt; 버튼을 클릭하여 겹쳐진 셀 본문의 마스크를 생성하십시오 (&lt;1a&gt;를 클릭 한 후 GUI 창 # 1에서 생성됨). 또한이 프로그램은 마스크의 경계를 생성하며, 볼록 선체가 구현되어 정점을 얻습니다. </li><li> 클리ck 버튼 &lt;5&gt;; 커서가 나타납니다. 커서를 사용하여베이스를 선택하고 (여기에서 필립 드 팁의 거리를 측정 한 후), 처음 나타나는 프레임에서 필로 디아의 팁을 선택하십시오. 이렇게하려면 창 # 2에서 슬라이더를 움직입니다. 참고 : 데이터 출력의 오류를 최소화하려면 축을 따라 원위치를 filopodial 팁 아래에 수직으로 배치하십시오. 기준점을 다른 장소에 배치하면 ( 예 : 옆으로 이동) 세포체 내에서 형광 값에 방향성 편향이 생길 수 있습니다. </li><li> &lt;6c&gt;를 사용하여 문턱 길이를 선택하십시오. 참고 :이 길이는 기준점 (&lt;5&gt;를 사용하여 선택)과 세포체의 경계선 ( 즉 , 사상충증이 성장하기 시작하는 영역) 사이의 거리로 정의됩니다. 측정 거리는 픽셀 단위입니다. </li><li> &lt;6a&gt; 상자에서 유창 모양을 대략적으로 나타내는 데 사용되는 세그먼트 수를 지정하십시오. 참고 : m가장 많은 수의 세그먼트는 필로폰이 도달하는 최대 길이에 달려 있지만, 또한 필로소움이 어떻게 구부러 지느냐에 달려있다. 기본과 팁 사이의 픽셀 수보다 큰 세그먼트 수 ( 예 : 임계 길이)를 선택하지 마십시오. 5.4 단계에서 정의한 임계 길이보다 많은 세그먼트를 선택합니다. ( 즉, 베이스와 팁 사이의 픽셀 수)는 필로 피이드의 길이를 과대 평가하게됩니다. </li><li> &lt;6b&gt;에 노드를 놓을 수평 스캐너 역할을하는 스캔 너비를 지정하십시오. 참고 :이 노드는베이스와 팁을 filopodium의 본문에 연결하는 선에 맞게 프로그램에서 사용됩니다 ( 즉 , 백본을 만드는 데 사용됩니다). 출발점으로 최대 길이에 인수를 곱한 값을 픽셀 단위로 입력하십시오. <img alt="방정식" src="/files/ftp_upload/55653/55653eq1.jpg" /> . </li><li> &lt;6d&gt; 상자에 스캔 반경 (픽셀 단위)을 지정하십시오. ob보다 약 50 % 큰 값을 사용하십시오.프레임 간 팁 이동을 제공했습니다. 참고 : 매우 큰 스캔 반경을 사용하면 실제 filopodial 팁이없는 프레임에서 원하지 않는 convex-hull 점을 얻을 수 있습니다 ( 예 : 평면 이동 또는 낮은 SNR). </li><li> &lt;6e&gt; 상자에 굽힘 각도를 지정하십시오. 참고 : 각도 임계 값은 전체 분석 중에 filopodium이 구부려지는 최대 각도로 결정됩니다. 각도 임계 값을 지정하면, 소프트웨어가 filopodia가 세포체쪽으로 구부러져있을 때, filopodia의 측면에서 성장하는 원치 않는 구조의 추적을 제외시키는 데 도움이됩니다. 이 프로그램은 세로 축에서 45도 미만의 기울기 각도를 가진 filopodia에 대해 안정적으로 작동합니다. </li><li> 추적을 시작하려면 GUI 창 # 2에서 &lt;트랙 및 분석&gt; 버튼을 클릭하십시오. 나중에 참조 할 수 있도록 전체 추적 프로토콜을 저장하려면 GUI 창 # 2에서 &#39;기록 추적&#39;상자를 클릭하십시오. 참고 : 추적 절차가 완료되면 각 프레임에서 필로폰의 길이가나중에 참조 할 수 있도록 &#39;dynamics.xlsx&#39;의 &#39;length_vel&#39;이라는 시트가 있습니다. 마찬가지로 다른 모든 추적 매개 변수는 &#39;dynamics.xlsx&#39;의 &#39;parameters&#39;시트에 저장됩니다. </li><li> 선택적으로, 모든 프레임에서 파일 아이콘이 자동으로 검색되지 않으면 다음 단계를 사용하여 수동으로 수정하십시오. <ol><li> 창 # 2의 슬라이더를 사용하여 각각의 프레임을 방문하여 수동으로 필로소움의 팁을 선택하십시오. 참고 : 볼록 선체 점이 발견되지 않은 프레임은 GUI 창 # 2의 추적 창에서 파란색 영역으로 표시됩니다. 해당 프레임의 노드 좌표에 액세스하기 위해 추적 프로그램이 시작되기 전에 &#39;기록 추적&#39;버튼을 선택해야합니다. </li><li> GUI 창 # 2에서 &lt;6f&gt;를 사용하여 참조 점 (밑면과 뒤끝)을 선택하십시오. &#39;스캔 길이&#39;, &#39;정확한 측정 후&#39;및 &#39;최대 굴곡 각도&#39;와 같은 다른 매개 변수를 지정하십시오.; 그 프레임에 대해서는 5.4-5.8 단계에 설명 된대로. </li><li> &lt;6i&gt; 버튼을 클릭하여 새 매개 변수 (해당 한 프레임에만 해당)를 저장하십시오. 파란색 영역으로 표시된 모든 프레임에 대해 단계가 반복됩니다. </li><li> 완료되면 &lt;7&gt;을 사용하여 추적 절차를 다시 초기화하십시오. 참고 :이 보정은 프로그램 내에서 영화 내에서 돌연변이가 갑자기 바뀌는 경우에도 사용할 수 있습니다. 대안으로, 여러 가지 사체를 포함하는 동영상 자르기를 고려하십시오. </li></ol></li></ol> 6. 이미지 분석 - 3 단계 : 시공간 단백질 분석 <ol><li> 시공간 분석을 위해 &lt;8b&gt;로 표시된 상자를 선택한 다음 관심있는 단백질 채널 (&lt;8c&gt; 및 / 또는 &lt;8d&gt; 및 &lt;8e&gt;)을 선택하십시오. 참고 : Protein A가 참조로 사용되므로 비율 분석 (&lt;9a&gt;, &lt;9b&gt; 및 / 또는 &lt;9c&gt;) 전에 단백질 A를 선택해야합니다. </li><li> &lt;8a&gt;를 클릭하십시오.단계 5.9에서 생성 된 추적을 사용하여 유두 길이를 따라 단백질 추적을 시작합니다. </li></ol> 7. 이미지 분석 - 4 단계 : 비율 - 메트릭 단백질 분석 <ol><li> &lt;9b&gt; 또는 &lt;9c&gt; 확인란을 선택하고 &lt;9a&gt; 버튼을 클릭하여 시공간 비례 곡선을 얻습니다. 참고 : 상대 단백질 농도의 허위 진술을 피하기 위해 비율 계산 이미지는 X / Y로 표시되지 않고 log (X / Y)로 표시됩니다. 나중에 사용하기 위해 비율 그림은 &#39;.png&#39;및 &#39;.fig&#39;형식 파일로 내보내지고 원시 플롯 데이터는 &#39;dynamics.xlsx&#39;파일에 저장됩니다. </li></ol> 8. 이미지 분석 - 5 단계 : 유두 팁 분석 <ol><li> &lt;8f&gt; 확인란을 선택하고 &lt;8g&gt; 및 &lt;8h&gt;를 사용하여 밑면에서 팁 길이 및 임계 길이를 지정합니다. 데이터를 &#39;dynamics.xlsx&#39;파일에 저장하려면 &lt;누름 버튼&gt;을 클릭하십시오. &lt;Protein Intensities 분석&gt;을 클릭하여filopodial tip의 단백질 강도를 추적하고 Ratiometric 분석을 위해 저장합니다. 참고 : 팁 길이는 분석에 사용되는 팁의 픽셀 수를 결정합니다. 소프트웨어는 각 프레임의 끝 부분에있는 픽셀의 평균 밝기 값을 반환합니다. 임계 길이는 기지에서 필로움 (filopodial tip)이 자라기 시작하는 팁까지의 최소 거리를 결정합니다 (그리고 프로그램이 팁의 강도 값을 추적하기 시작할 때). 따라서 팁 길이는 임계 길이보다 작아야합니다. </li><li> &lt;9d&gt; 또는 &lt;9e&gt;를 사용하여 분석 할 원하는 비율을 클릭하십시오. </li><li> 비교 단추 &lt;9a&gt;를 클릭하여 비율 데이터를 생성하십시오. </li></ol>

<ol><li>Dunaevsky, A., Tashiro, A., Majewska, A., Mason, C., Yuste, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+regulation+of+spine+motility+in+the+mammalian+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Developmental regulation of spine motility in the mammalian central nervous system.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 96 (23), 13438-13443 (1999).</li>
<li>Matus, A., Brinkhaus, H., Wagner, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Actin+dynamics+in+dendritic+spines%3A+a+form+of+regulated+plasticity+at+excitatory+synapses%5BTitle%5D)+AND+%22Hippocampus%22%5BJournal%5D)">Actin dynamics in dendritic spines: a form of regulated plasticity at excitatory synapses.</a> Hippocampus. 10 (5), 555-560 (2000).</li>
<li>Galic, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+recruitment+of+the+curvature-sensitive+protein+ArhGAP44+to+nanoscale+membrane+deformations+limits+exploratory+filopodia+initiation+in+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Dynamic recruitment of the curvature-sensitive protein ArhGAP44 to nanoscale membrane deformations limits exploratory filopodia initiation in neurons.</a> Elife. 3, e03116(2014).</li>
<li>Hotulainen, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+mechanisms+of+actin+polymerization+and+depolymerization+during+dendritic+spine+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Defining mechanisms of actin polymerization and depolymerization during dendritic spine morphogenesis.</a> J Cell Biol. 185 (2), 323-339 (2009).</li>
<li>Leijnse, N., Oddershede, L. B., Bendix, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Helical+buckling+of+actin+inside+filopodia+generates+traction%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Helical buckling of actin inside filopodia generates traction.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 112 (1), 136-141 (2015).</li>
<li>Tsygankov, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CellGeo%3A+a+computational+platform+for+the+analysis+of+shape+changes+in+cells+with+complex+geometries%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">CellGeo: a computational platform for the analysis of shape changes in cells with complex geometries.</a> J Cell Biol. 204 (3), 443-460 (2014).</li>
<li>Xiong, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+characterization+of+cell+shape+changes+during+amoeboid+motility+by+skeletonization%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Syst+Biol%22%5BJournal%5D)">Automated characterization of cell shape changes during amoeboid motility by skeletonization.</a> BMC Syst Biol. 4, 33(2010).</li>
<li>Styner, M., Gerig, G., Lieberman, J., Jones, D., Weinberger, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Statistical+shape+analysis+of+neuroanatomical+structures+based+on+medial+models%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Image+Anal%22%5BJournal%5D)">Statistical shape analysis of neuroanatomical structures based on medial models.</a> Med Image Anal. 7 (3), 207-220 (2003).</li>
<li>Blum, H. A transformation for extracting new descriptors of shape. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBlum%2C+H+%22Models+for+the+Perception+of+Speech+and+Visual+Form%3A+Proceedings+of+a+Symposium%22">Models for the Perception of Speech and Visual Form: Proceedings of a Symposium</a>. Wathen-Dunn, W. , MIT Press. Cambridge, MA. 362-380 (1967).</li>
<li>Barry, D. J., Durkin, C. H., Abella, J. V., Way, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open+source+software+for+quantification+of+cell+migration%2C+protrusions%2C+and+fluorescence+intensities%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Open source software for quantification of cell migration, protrusions, and fluorescence intensities.</a> J Cell Biol. 209 (1), 163-180 (2015).</li>
<li>Machacek, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coordination+of+Rho+GTPase+activities+during+cell+protrusion%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Coordination of Rho GTPase activities during cell protrusion.</a> Nature. 461 (7260), 99-103 (2009).</li>
<li>Saha, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+analysis+of+filopodial+length+and+spatially+resolved+protein+concentration+via+adaptive+shape+tracking%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biol+Cell%22%5BJournal%5D)">Automated analysis of filopodial length and spatially resolved protein concentration via adaptive shape tracking.</a> Mol Biol Cell. 27 (22), 3616-3626 (2016).</li>
<li>Argiro, V., Bunge, M. B., Johnson, M. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+quantitative+study+of+growth+cone+filopodial+extension%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">A quantitative study of growth cone filopodial extension.</a> J Neurosci Res. 13 (1-2), 149-162 (1985).</li>
<li>Mogilner, A., Rubinstein, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+physics+of+filopodial+protrusion%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">The physics of filopodial protrusion.</a> Biophys J. 89 (2), 782-795 (2005).</li>
<li>Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+guide+to+choosing+fluorescent+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">A guide to choosing fluorescent proteins.</a> Nat Methods. 2 (12), 905-909 (2005).</li>
<li>Abramoff, M. D., Magalhaes, P. J., Ram, S. J. <a target="_blank" href="https://imagescience.org/meijering/publications/download/bio2004.pdf">Image Processing with ImageJ.</a> Biophotonics International. 11, 36-42 (2004).</li>
<li>Courtney, J., Woods, E., Scholz, D., Hall, W. W., Gautier, V. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MATtrack%3A+A+MATLAB-Based+Quantitative+Image+Analysis+Platform+for+Investigating+Real-Time+Photo-Converted+Fluorescent+Signals+in+Live+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">MATtrack: A MATLAB-Based Quantitative Image Analysis Platform for Investigating Real-Time Photo-Converted Fluorescent Signals in Live Cells.</a> PLoS One. 10 (10), e0140209(2015).</li>
<li>Schell, M. J., Erneux, C., Irvine, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inositol+1%2C4%2C5-trisphosphate+3-kinase+A+associates+with+F-actin+and+dendritic+spines+via+its+N+terminus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Inositol 1,4,5-trisphosphate 3-kinase A associates with F-actin and dendritic spines via its N terminus.</a> J Biol Chem. 276 (40), 37537-37546 (2001).</li>
<li>Korobova, F., Svitkina, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+architecture+of+synaptic+actin+cytoskeleton+in+hippocampal+neurons+reveals+a+mechanism+of+dendritic+spine+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biol+Cell%22%5BJournal%5D)">Molecular architecture of synaptic actin cytoskeleton in hippocampal neurons reveals a mechanism of dendritic spine morphogenesis.</a> Mol Biol Cell. 21 (1), 165-176 (2010).</li>
<li>Cheadle, L., Biederer, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+novel+synaptogenic+protein+Farp1+links+postsynaptic+cytoskeletal+dynamics+and+transsynaptic+organization%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The novel synaptogenic protein Farp1 links postsynaptic cytoskeletal dynamics and transsynaptic organization.</a> J Cell Biol. 199 (6), 985-1001 (2012).</li>
<li>Tarnok, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+tool+for+the+quantitative+analysis+of+dendritic+filopodial+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">A new tool for the quantitative analysis of dendritic filopodial motility.</a> Cytometry A. 87 (1), 89-96 (2015).</li>
<li>Hendricusdottir, R., Bergmann, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((F-dynamics%3A+automated+quantification+of+dendrite+filopodia+dynamics+in+living+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">F-dynamics: automated quantification of dendrite filopodia dynamics in living neurons.</a> J Neurosci Methods. 236, 148-156 (2014).</li>
<li>Fanti, Z., Martinez-Perez, M. E., De-Miguel, F. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NeuronGrowth%2C+a+software+for+automatic+quantification+of+neurite+and+filopodial+dynamics+from+time-lapse+sequences+of+digital+images%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">NeuronGrowth, a software for automatic quantification of neurite and filopodial dynamics from time-lapse sequences of digital images.</a> Dev Neurobiol. 71 (10), 870-881 (2011).</li>
<li>Costantino, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Semi-automated+quantification+of+filopodial+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Semi-automated quantification of filopodial dynamics.</a> J Neurosci Methods. 171 (1), 165-173 (2008).</li>
<li>Nilufar, S., Morrow, A. A., Lee, J. M., Perkins, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FiloDetect%3A+automatic+detection+of+filopodia+from+fluorescence+microscopy+images%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Syst+Biol%22%5BJournal%5D)">FiloDetect: automatic detection of filopodia from fluorescence microscopy images.</a> BMC Syst Biol. 7, 66(2013).</li>
</ol>

저자는 공개 할 것이 없습니다.

여기에 우리는 철근 - 성장 알고리즘을 통해 이러한 동적 구조에서의 상대 단백질 농도 분석과 생식기 성장 역학을 추적하기위한 상세한 프로토콜을 제시합니다. 이 소프트웨어를 사용하면 최대 3 개의 채널을 한 번에 쌍으로 비교할 수 있으므로 두 채널 ( 즉, 단백질)의 상대적 농도가 확장 / 수축 사이클 전체에서 결정되고 이미지 파일과 데이터 파일로 별도의 폴더에 저장됩니다. 일상적인 작업 외에도 소프트웨어는 각 실험에 대한 분석을 최적화하기 위해 수정할 수있는 많은 매개 변수를 제공합니다. 이러한 수정 및 문제 해결에 대한 자세한 설명은 프로토콜 섹션과 표 1 에서 확인할 수 있습니다. 이미지 분석은 특정 현미경 유형에 국한된 것이 아니라 시계열의 이미지 품질에 의해 제한됩니다. 관련성을 고려하면 이미지 품질은획득하는 동안 채널이 잘못되었습니다. 우리의 실험은 알고리즘이 40X 이상의 배율과 픽셀 비닝 (pixel binning)이...

actin 조절 단백질의 시공간 조절은 filopodium dynamics 1 , 2 와 관련이있다. 시간에 따른 전체의 유두 길이에 따른 공간적으로 분석 된 단백질 농도를 추적하는 것은 이러한 동적 구조의 개시, 신장, 안정화 또는 붕괴의 기초가되는 메커니즘에 대한 우리의 이해를 증진 시키는데 중요하다 3 , 4 . 세포 모양의 변화가 더 큰 규모에서 일어나는 세포질에서의 단백질 분석과는 달리, filopodia는 끊임없이 5 번 굴곡하여 선형 주사와 같은 간단한 접근법을 사용하여 분석을 방해하는 동적 인 미세 구조이다. 유두 모양 추적을위한 다양한 소프트웨어 솔루션을 사용할 수 있습니다 6 , 7 , 8 , 9 . 유사성ise, 세포 동체 내에서 단백질 동역학의 비율 측정 용 소프트웨어가 개발되었습니다 10 , 11 . 우리는 철근 형상의 자동 추적과 시공간 단백질 분석을 결합하기 위해 최근에 convex-hull 알고리즘을 기반으로 한 이미지 분석 소프트웨어를 개발했습니다. 그래픽 사용자 인터페이스 (GUI) 를 통해 작동하는이 새로운 분석 방법은 처음으로 유두 길이와 성장 속도에 따른 상대적 단백질 농도를 결합하여 이들의 움직임에 관계없이 시공간 단백질 분포의 정확한 측정을 가능하게합니다 동적 구조 12 . 소프트웨어의 아이디어 (소스 코드는 자유롭게 사용할 수 있습니다. 아래 참조)는 볼록 선체의 꼭지점 중 하나가 필리 포듐의 팁과 일치한다는 것입니다 ( 그림 1A ). 후속 프레임을 보면r은 convex-hull의 가장 가까운 꼭지점이며 움직이는 팁은 전체 영화에서 추적 할 수 있습니다. 일단 각 프레임에서 팁이 검출되면, 그 위치는 필로소움의 기저에있는 기준점과 팁을 결합함으로써 축을 그리는 데 사용됩니다 ( 그림 1B ). 마지막으로, 축에 직각 인 선을 따라 최대 강도를 갖는 중앙 픽셀에 의해 위치가 결정되는 등거리 노드 점을 사용하여 파일 포트 모양을 따르는 백본을 결정합니다. 이 adaptive backbone을 이용하여 kymograph가 생성되어 filopodial 길이 ( 그림 1C )를 따라 최대 3 개의 채널에 대한 filopodial 성장과 단백질 농도를 추적합니다. <img alt="그림 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55653/55653fig1.jpg" /> 그림 1 : 이미지 분석 소프트웨어의 작동 원리. ( A ) 뒤에있는 알고리즘소프트웨어 1 단계에서 사용자는 필로폰의 참조 (기본)와 꼭지점 (끝)을 지정합니다. 단계 2-1에서, 최대 강도 값을 갖는 중간 값 픽셀을 사용하여 필로폰의 백본을 얻는다. 3 단계에서 백본은 공간 단백질 강도 프로파일에 사용됩니다. 단계 2-2에서 소프트웨어는 자동으로 후속 프레임의 팁을 추적합니다. 전체 절차가 반복됩니다. ( B ) 추적에 사용되는 볼록 선체와 같은 중요한 요소를 소개하는 실제 사상 최고로 알고리즘의 스냅 샷. ( C ) 알고리즘으로 측정 할 수있는 매개 변수 개요. 이 숫자는 참고 문헌 12 에서 수정되었습니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55653/55653fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 이미지 분석 소프트웨어는 그래픽 사용을 통해 Matlab (프로그래밍 소프트웨어라고 함)에서 작동합니다.r 인터페이스. 특정 실험 설정에 대한 유연성과 견고성을 극대화하기 위해 사용자는 일련의 추적 매개 변수 ( 예 : 허용 된 굽힘 각도 및 프레임 간 이동)를 조정할 수 있으며 영화 ( 예 : 자르기, 회전, 원하지 않는 객체 제거) ( 도 2a 및 표 1) . <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> GUI </td><td> 아니. </td><td> 필수 </td><td colspan="5"> 기술 </td><td> 이름 (GUI에서) </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 1a </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 셀 본문을 나타내는 스택 된 .tiff 파일로드 (상자를 체크 인) 또는 채널에서 중첩 된 셀 본문 만들기 </td><td> CellBody </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 1b </td><td> 와이 </td><td colspan=&quot;5&quot;&gt; 단백질 1에 해당하는 적층 이미지 파일로드 </td><td> 단백질 1 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 1c </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 단백질 2에 상응하는 스택 이미지 파일로드 </td><td> 단백질 2 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 1d </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 단백질 3에 해당하는 적층 이미지 파일로드 </td><td> 단백질 3 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 1e </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 미리로드 된 이미지 파일에 대한 모든 것을 재설정합니다. </td><td> 다시 놓기 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2a </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> GUI 창 # 2에서 분석을위한 초기 프레임을 결정하기 위해 스크롤 막대 </td><td> 없음 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2b </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> GUI 창 # 2에서 분석 할 최종 프레임을 결정하기 위해 스크롤 막대 </td><td> 없음 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2c </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> curre를 나타내는 스크롤 막대NT 프레임 </td><td> 없음 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2d </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 모든 픽셀이 0으로 설정되는 픽셀의 회색 값 </td><td> 없음 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2e </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 모든 픽셀이 최대 값으로 설정되는 위의 픽셀의 회색 값 </td><td> 없음 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2f </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> &lt;2e&gt; 및 &lt;2f&gt;에 지정된 픽셀의 강도 값을 설정합니다. </td><td> 세트 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2g </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 강도 조절 동영상 재생 </td><td> 놀이 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2 시간 </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 자르기 이미지 </td><td> 수확고 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2i </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 이미지 회전 </td><td> 회전 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 2j </td><td> 엔 </td><td colspan="5">전체 스택에서 영역 삭제 </td><td> 영역 삭제 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 3a </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> &#39;분석 창&#39;(GUI 창 # 2)을 열려면 클릭하십시오. </td><td> 추적 창 </td></tr><tr><td> #1 </td><td> 3b </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 픽셀 크기를 미크론 단위로 입력하십시오. </td><td> 픽셀 크기 입력 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 4 </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 중첩 된 셀 본문의 경계 / 가장자리 이미지를 생성하려면 클릭하십시오. </td><td> 경계 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 5 </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 유두의 기저부를 클릭하여 선택하십시오. </td><td> Referernce </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6a </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 세그먼트 또는 노드 수를 입력하십시오. </td><td> 세그먼트 수 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6b </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 스캔 길이 (축에 수직)를 입력하십시오. </td><td> 스캔 너비 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6c </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 철학이 굴곡을 시작하는 길이를 입력하십시오. </td><td> 정확한 측정 후 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6d </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 팁 감지 원의 반지름을 입력하십시오 (즉, 다음 프레임에서 정점이 지역화 될 수있는 영역) </td><td> 팁 감지 반경 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6e </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> filypodium이 수직 축에서 구부릴 수있는 최대 각도를 입력하십시오. </td><td> 각도 임계 값 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6f </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 해당 특정 프레임에 대한 기준점 및 기준점을 추가합니다. </td><td> 참조 선택 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6g </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 해당 특정 프레임에 대해 절곡이 시작되는 길이를 입력하십시오. </td><td> 정확한 측정 후 </td></tr><tr><td> # 2 </td> &lt;td&gt; 6h </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 특정 프레임에 대한 감지 원의 반지름을 입력하십시오. </td><td> 팁 감지 반경 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6i </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 특정 프레임에 대한 모든 매개 변수를 입력 한 후 추가 참조를 위해 값을 메모리 및 파일에 저장하려면 클릭하십시오. </td><td> 더하다 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6j </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 해당 프레임의 수동 매개 변수를 삭제하려면 클릭하십시오. </td><td> 지우다 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6k </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 모든 프레임에 대해 &#39;선택적 기능 패널&#39;을 사용하여 수동으로 저장된 모든 매개 변수를 삭제하려면 클릭하십시오. </td><td> 다시 놓기 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 6l </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 추적 전에 모든 추적 결과를 메모리에 저장하여 나중에 참조 할 수 있도록하십시오. </td><td> 기록 추적 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 7 </td><td> 와이 </td><td colspan="5"> 추적을 시작하려면 클릭하십시오. </td><td> 추적 및 분석 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8a </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 단백질 채널 강도 추적 시작하려면 클릭하십시오. </td><td> 단백질 농도 분석 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8b </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 유두 길이에 따른 단백질 채널 강도를 추적하려면 체크인하십시오. </td><td> 전체 filopodia </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8c </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 참조 단백질 또는 단백질 A를 추적하기 위해 체크인하십시오. </td><td> ProteinA </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8d </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 단백질 B를 추적하기 위해 체크인하십시오. </td><td> ProteinB </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8e </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 단백질 C를 추적하기 위해 체크인하십시오. </td><td> ProteinC </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8f </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 체크인시 평균 단백질 강도를 확인하십시오.전자 팁 </td><td> 이끄는 팁 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8g </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 팁의 길이를 입력하십시오. </td><td> 팁 길이 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8 시간 </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 팁이 형성되기 시작하는 바닥에서 최소 거리를 입력하십시오 </td><td> 문지방 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 8i </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 선도 팁 분석 결과를 파일로 저장하려면 클릭하십시오. </td><td> 누름 단추 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 9a </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> Ratiometric 단백질 분석을 시작하려면 클릭하십시오 </td><td> 비교 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 9b </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 단백질 B를 A와 비교하기 위해 체크인하십시오. </td><td> log10 (B / A) </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 9c </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> A와 관련하여 단백질 C를 비교하기 위해 체크인하십시오. </td><td> log10 (C / A) </td></tr><tr><td> # 2 </td> &lt;td&gt; 9d </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 팁에서 A와 관련하여 단백질 B를 비교하기 위해 체크인하십시오. </td><td> log10 (B / A) </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 9e </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 팁에서 A와 관련하여 단백질 C를 비교하려면 체크인하십시오. </td><td> log10 (C / A) </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 10a </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 다른 색상 맵을 선택하십시오 (기본값 : Jetplot). </td><td> 컬러 맵 </td></tr><tr><td> # 2 </td><td> 10b </td><td> 엔 </td><td colspan="5"> 색상 맵 편집 </td><td> 색상 맵 편집 </td></tr></tbody></table> 표 1 : GUI에있는 모든 기능 개요 Windows # 1 및 # 2. 이 작업이 완료되면 프로그램은 볼록 선체를 만들고 영화 전체에 걸쳐 팁을 자동으로 추적합니다. Ratiometric kymograph, 성장 속도 및 유두 길이와 같은 영화에서 추출한 매개 변수다시 표시되며 이미지 및 데이터 파일로 작업 폴더에 저장됩니다. filopodial lifetime, growth rate 및 retraction rate와 같은 다른 매개 변수를 추출하고 저장된 데이터 파일 ( 그림 2B )에서 추가로 분석 할 수 있습니다. <img alt="그림 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55653/55653fig2.jpg" /> 그림 2 : 이미지 분석 소프트웨어를 사용하기위한 그래픽 사용자 인터페이스. ( A ) GUI 창 # 1은 이미지로드 및 처리에 사용됩니다. 이 프로그램은 최대 3 개의 단백질 채널을로드 할 수 있으므로 2 개 채널을 쌍으로 비교합니다. 이 창에는 추적 전에 이미지를 사전 처리하기위한 필수 (파란색) 및 선택적 기능 (녹색)이 있습니다. ( B ) GUI 창 # 2는 시신경 및 비율 메트릭 단백질 분석뿐만 아니라 필로도를 추적하는 데 사용됩니다. 다시 옵션 기능은 녹색으로 표시됩니다. 이 숫자는 수정되었습니다.참고 문헌 12 에서 편집. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55653/55653fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 여기에서는 샘플 준비 및 소프트웨어 처리를위한 상세한 프로토콜을 제시합니다. 우리는 세포 배양과 이미지 분석에 최적화 된 영화 획득에 대한 자세한 지침부터 시작합니다. 데이터 수집에 대한이 절 다음에는 이미지 분석 소프트웨어 작동에 대한 자세한 설명이 나와 있습니다. 프로토콜 전반에 걸쳐 데이터를 수집하고 처리 할 때 고려해야 할 중요한 단계와 옵션 기능을 소개합니다. 마지막으로 우리는 이미지 분석 소프트웨어로 다른 모델 시스템의 파일 포리아를 분석 한 후 설명 된 이미지 분석 소프트웨어와 유치원 계량화에 사용할 수있는 다른 프로그램을 비교하고 제한 사항 및 향후 방향에 대한 논의를 마무리합니다.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies</td><td>31966-021</td><td></td></tr><tr><td>10% 소 태아 혈청</td><td>Biochrom AG</td><td>L11-044</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>Life Technologies</td><td>11668-027</td><td></td></tr><tr><td>1% 페니실린/스트렙토마이신</td><td>Biochrom AG</td><td>12212</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal Medium</td><td>Life Technologies</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>B27</td><td>Life Technologies</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>HEPES (1M 재고 솔루션)</td><td>Life Technologies</td><td>15630</td><td></td></tr><tr><td>Citrine-N1</td><td>Addgene</td><td>54593</td><td></td></tr><tr><td>Labtech</td><td>Thermo</td><td>155411</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax-I</td><td>Thermo</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Hela</td><td>Leibniz Institute DSMZ</td><td>ACC-57</td><td></td></tr><tr><td>COS 7</td><td>Leibniz 연구소 DSMZ</td><td>ACC-60</td><td></td></tr><tr><td>3T3 세포</td><td>라이프니츠 연구소 DSMZ</td><td>ACC-59</td><td></td></tr><tr><td>현미경</td><td>니콘 이클립</td><td></td><td></td></tr>스 <tr><td>카메라</td><td>Andor</td><td>DU888 울트라</td><td></td></tr><tr><td>컨포칼 유닛</td><td>요카가와</td><td>CSU-X1</td><td></td></tr><tr><td>피루브산</td><td>Gibco</td><td>31966-021</td><td></td></tr></tbody></table>

동적 세포 돌출부에서 소프트웨어를 이용한 단백질 농도 추적을위한 그래픽 사용자 인터페이스

A Graphical User Interface for Software-assisted Tracking of Protein Concentration in Dynamic Cellular Protrusions

Filopodia는 이동 및 세포 - 세포 통신과 관련된 동적 인 손가락 모양의 세포 돌출부입니다. 섬유 유두의 개시, 연신율 및 후속 안정화 또는 수축의 근본적인 복잡한 신호 메커니즘을 더 잘 이해하기 위해 이러한 동적 구조에서 시공간 단백질 활성을 결정하는 것이 중요합니다. Filopodia에서 단백질 기능을 분석하기 위해 우리는 최근에 filopodial 모양 변화에 적응하는 반자동 추적 알고리즘을 개발하여 전체 filopodial 길이에 따른 돌출부 역학 및 상대 단백질 농도의 병렬 분석을 허용했습니다. 여기서는 최적화 된 셀 처리, 이미지 수집 및 소프트웨어 분석을위한 자세한 단계별 프로토콜을 제시합니다. 또한 이미지 분석 및 데이터 표현 과정에서 옵션 기능을 사용하는 방법에 대한 지침과 함께 중요한 모든 단계에 대한 문제 해결 지침을 제공합니다. 마지막으로, 우리는 또한 dfilopodia 부량을 위해 유효한 다른 프로그램을 가진 escribed 영상 분석 소프트웨어. 함께 제시된 프로토콜은 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 유두 돌출에서 단백질 역학의 정확한 분석을위한 프레임 워크를 제공합니다.

섬유질 악틴 (f-tractin 18 , 빨간색)과 세포질 참조 (녹색)에 대한 마커로 형질 감염된 COS 세포를 사용하여 우리는 액틴 풍부 유두 돌출을 발견했습니다 ( 그림 3A , 상단 패널). 시계열은 filopodia가 빠르게 늘어나고 철회하는 것을 보여 주었다 ( 그림 3A , 가운데 패널). 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 우리는 개별적인 사상충을 추적했습니다. 손으로 측정 한 유두 길이와 이미지 분석 소프트웨어를 비교 한 결과 피어슨 상호 상관 값은 0.947이었고 소프트웨어가 섬유 유성 확장을 신뢰할 수있게 추적했다고 주장했다. 개별 filopodia의 성장과 retraction 속도 이외에, 그림 3A 의 하단에 kymographs <strong cl...

우리는 동적 세포 돌출부의 길이에 따른 상대 단백질 농도의 반자동 추적을위한 소프트웨어 솔루션을 제시합니다.

Filopodia are dynamic, finger-like cellular protrusions associated with migration and cell-cell communication. In order to better understand the complex ...

이 이미지 분석 소프트웨어의 전반적인 목표는 전체 필로포디알 길이를 따라 돌출 역학 및 상대 단백질 농도를 병렬로 분석하는 것입니다. 이 방법은 세포 생물학의 핵심 질문, 특히 filopodia의 확장 및 수축에 관여하는 개별 단백질을 이해하는 데 실제로 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 제공되는 적응형 형상 추적 알고리즘을 통해 돌출 역학 및 공간적으로 해결된 단백질 국소화에 대한 정량적 평가가 가능하다는 것입니다.먼저, 텍스트 프로토콜에 자세히 설명된 대로 보충된 배지에서 뉴런, HeLa 또는 COS 세포를 배양합니다. 40%confluency에 도달하면 제조업체의 지침에 따라 transvection 시약을 사용하여 선택한 구조로 세포를 transvect합니다. 형질주입된 세포를 섭씨 37도, CO2 5%의 인큐베이터에 15-18시간 동안 보관합니다.배양 후 20밀리 몰 HEPES를 함유한 섭씨 37도의 예열 배지로 세포 배양 챔버를 최대 90%까지 채워 이미지 획득 중 증발로 인한 pH 및 삼투압 변화를 줄입니다. 뚜껑을 밀봉하려면 뚜껑 내부에 진공 그리스를 얇게 바르고 transvected 세포가 들어있는 배양 챔버를 부드럽게 누릅니다. 이미지 분석에서 가장 중요한 부분은 아마도 이미지 품질일 것입니다.우리가 주의해야 할 한 가지는 신호 대 잡음비인데, 이 비율은 4 이상이어야 하며 카메라의 노출 시간과 레이저 강도 및 힘을 조정하여 프레임 속도가 1헤르츠 이상이 되어야 한다는 것을 보장할 수 있습니다. 픽셀 벤딩이 없는 60x 또는 100x 대물렌즈가 있는 현미경을 사용하여 이미지를 획득합니다. 1헤르츠 이상의 획득 속도를 사용하여 필로포디얼 역학을 추적합니다.초점이 맞지 않는 아티팩트를 최소화하려면 기저막에 가까운 필로포디얼을 이미지화합니다. 원활한 추적을 위해 신호 대 잡음비가 4보다 커지도록 카메라의 노출 시간과 레이저 강도를 조정하십시오. 이 작업이 완료되면 이미지 획득을 시작합니다.텍스트 프로토콜에 설명된 대로 이미지 사전 처리 후에는 이미지 분석에 필요한 모든 파일이 포함된 압축 폴더를 다운로드하여 이미지를 로드합니다. 파일의 압축을 풀고 작업 폴더에 복사합니다. 설치가 완료되면 filopodiaAnalysisM3.fig라는 파일을 열어 그래픽 사용자 인터페이스를 시작합니다.개별 단백질에 대해 저장된 stack TIFF 파일을 그래픽 사용자 인터페이스 또는 GUI에 로드합니다. 단백질 A의 경우 1B, 단백질 B의 경우 1C, 선택적으로 단백질 C의 경우 1D 버튼을 사용하여 1A를 클릭하여 단백질 채널에서 세포의 중첩 이미지를 만듭니다. 그런 다음 2A를 클릭하여 첫 번째 프레임을 할당하고 2B를 클릭하여 분석을 위한 마지막 프레임을 할당합니다.선택적으로, 2H 버튼을 사용하여 관심 있는 필로포듐을 포함하는 관심 영역 또는 ROI를 자릅니다. 2I 버튼을 사용하여 이미지를 회전하거나 자유 그리기 도구인 2J를 사용하여 원하지 않는 영역을 삭제합니다. 품질 관리를 위해 각 프레임에 대해 슬라이더를 2C씩 이동하고 전체 영화에서 필로포듐이 명확하게 보이는지 확인합니다.추적을 생성하려면 먼저 GUI 창 1에서 3A 버튼을 클릭하여 GUI 창 2를 엽니다. GUI 창 2에서 4개의 버튼을 클릭하면 1A를 클릭한 후 GUI 창 1에서 생성된 중첩된 세포체의 질량을 생성합니다. 실험 데이터 세트에 대한 세그먼트 수, 스캔 너비 및 스캔 반경과 같은 매개변수를 최적화하는 데 시간을 할애하는 것이 좋습니다.두 번째 창의 슬라이더를 이동하여 필로포디얼 팁이 처음 나타나는 위치를 확인합니다. 그런 다음 버튼 5를 클릭하면 커서가 나타납니다. 커서를 사용하여 filopodial tip의 거리가 측정되는 베이스를 선택합니다.그 다음에는 그것이 처음 나타나는 프레임의 filopodia의 끝이 있습니다. 다음으로, 6C를 사용하여 filopodia가 구부러질 임계값 길이를 선택합니다. 그런 다음 상자 6A에서 필로포디아의 모양을 근사화하는 데 사용되는 세그먼트 수를 지정합니다.수평 스캐너 역할을 하는 스캔 너비를 지정하여 노드를 6B에 배치합니다. 상자 6D에서 스캔 반경을 지정하고, 관찰된 프레임 간 팁 변위보다 약 50% 큰 값을 사용합니다. 그런 다음 상자 6E에서 굽힘 각도를 지정합니다.GUI 창 2에서 상자의 이력 추적을 선택하여 나중에 참조할 수 있도록 전체 추적 프로토콜을 저장한 다음 추적 및 분석 버튼을 클릭하여 추적을 시작합니다. 공간 시간 분석의 경우 8B로 표시된 상자를 선택한 다음 관심 있는 단백질 채널을 선택합니다. 8A를 클릭하면 이전에 생성된 추적을 사용하여 필로포디알 길이를 따라 단백질 추적을 시작할 수 있습니다.비율계량 단백질 분석의 경우 9B 또는 9C를 선택하고 9A 버튼을 클릭하여 공간 시간 비율계량 플롯을 가져옵니다. 필로포디얼 팁 분석을 수행하려면 8F에 확인란을 선택하고 8G 및 8H를 사용하여 베이스에서 팁 길이와 임계값 길이를 지정합니다. 푸시 버튼을 클릭하여 dynamics.xlsx라는 이름의 엑셀 파일에 데이터를 저장합니다.그런 다음 단백질 강도 분석을 클릭하여 필로포디알 팁의 단백질 강도 트레이스를 생성하고 비율 계량 분석을 위해 저장합니다. 9D 또는 9E를 사용하여 분석할 원하는 비율을 클릭합니다. 마지막으로 비교 버튼 9A를 클릭하여 비율계량 데이터를 생성합니다.빨간색의 필라멘트 액틴 마커와 녹색의 세포질 참조로 transveced COS 세포를 분석하면 액틴이 풍부한 filopodial 돌출부가 나타납니다. 시계열은 액틴이 풍부한 필로포듐 돌출부가 빠르게 확장 및 수축하는 것을 보여줍니다. 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 개별 filopodia를 추적했습니다.이미지 분석 소프트웨어는 필로포디아의 성장 및 수축률 외에도 필로포디아 확장을 안정적으로 추적하며, 화학 그래프는 세포질 참조로 정규화된 액틴의 농도를 보여줍니다. 이 기술을 적절하게 사용하면 filopodia를 따라 돌출 역학 및 공간적으로 분해된 단백질 농도의 정량적 분석이 가능합니다. 절차를 시도할 때 획득 속도를 기억하고 신호 대 잡음비를 4 이상으로 유지하면서 개별 이미지를 포화시키지 않는 것이 중요합니다.

a-graphical-user-interface-for-software-assisted-tracking-protein

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

단일 분자 추적과 함께 Photoactivated 현지화 현미경 (PALM)은 허용 라이브 대장균 세포에서 단백질-DNA 상호 작용의 직접 관찰 및 정량화.

Photoactivated 단일 분자 추적을 사용하여 라이브 박테리아 세포에있는 단백질-DNA 상호 작용을 시각화

이 프로토콜은 전반사 형광 현미경을 사용하여 살아있는 세포 표면의 단일 수용체를 시각화 및 추적하여 수용체 측면 이동성, 수용체 복합체의 크기를 분석하고 일시적인 수용체-수용체 상호 작용을 시각화하는 방법을 설명합니다. 이 프로토콜은 다른 막 단백질로 확장될 수 있습니다.

단일 분자 형광 현미경에 의한 수용체 역학의 고해상도 시공간 분석

이 비디오 프로토콜에서는 변형된 이광자 현미경에서 궤도 추적 방법을 사용하여 살아있는 세포 내에서 형광 표지된 리소좀을 고속으로 3차원으로 추적합니다.

수정 된 두 개의 광자 현미경에서 3D 궤도 추적 : 세포 내 소포의 추적에 응용

Clathrin-mediated endocytosis는 빠르고 매우 역동적인 과정으로 신호 수용체를 포함한 많은 단백질을 내부화합니다. 여기에 설명된 프로토콜은 개별 내포세포 이벤트의 동역학을 직접 시각화합니다. 이는 내포세포 기전의 핵심 구성원이 서로 어떻게 협력하는지, 그리고 단백질 화물이 이 과정에 어떤 영향을 미치는지 이해하는 데 필수적입니다.

TIRF 현미경을 통해 단일 ​​이벤트 해상도에서 G 단백질 결합 수용체의 Clathrin 매개 엔도 시토 시스를 시각화

여기, 우리는 확산 계수, 형광 현미경 검사 법에 의해 감지 하는 단일 입자의 모션 및 클러스터 크기의 종류의 정량적 인 평가 허용 하는 이미지 분석을 추적 하는 단일 입자에 대 한 프로토콜을 제시.

확산의 분석 및 형광 현미경 검사 법에 의해 수용 체 막의 클러스터 크기에 대 한 프로토콜을 처리 하는 이미지

3D 단일 분자 국소화 현미경 검사법은 살아있는 세균 세포에서 형광표지된 단백질의 공간 위치 및 운동 궤적을 조사하는 데 사용됩니다. 본원에 기재된 실험 및 데이터 분석 프로토콜은 풀화된 단일 분자 궤적에 기초하여 세포성 단백질의 널리 퍼진 확산 거동을 결정한다.

단일 분자 추적 현미경 검사법 - 세포화 분자의 확산 상태를 결정하는 도구

이 문서는 와이드필드 형광 현미경 검사를 사용하여 모바일, 단일 분자 Förster 공명 에너지 전송 (smFRET) 기반 프로브의 현면 분석을위한 방법을 제시한다. 새로 개발된 소프트웨어 툴킷을 사용하면 정확한 FRET 효율과 분자 위치를 포함한 움직이는 프로브의 smFRET 시간 추적을 시간의 함수로 판단할 수 있습니다.

모바일 단일 분자 FRET 프로브의 자동화된 2차원 스파티오 측량 분석

이 프로토콜은 확산 세포의 가장자리에서 돌출부의 동적 매개 변수 (돌출부, 수축, 주름)를 측정하는 것을 목표로합니다.

라이브 셀 현미경을 사용하여 확산 중 셀 에지 돌출 역학 측정

이 프로토콜은 분자 질량의 동시 조사 및 지질 막과 상호 작용하는 거대 분자의 확산 거동을 가능하게하는 iSCAT 기반 이미지 처리 및 단일 입자 추적 접근법을 설명합니다. 샘플 준비, 질량 대비 변환, 영화 수집 및 사후 처리에 대한 단계별 지침이 잠재적 인 함정을 방지하기위한 지침과 함께 제공됩니다.

막과 관련된 거대분자 역학을 특성화하기 위한 질량 민감성 입자 추적

이 글은 고체 지지 지질 이중층에서 단일 단백질 추적용 샘플을 만드는 방법에 대해 상세히 설명합니다. 또한 단일 분자 감도와 빠른 프레임 속도를 가진 단순한 형광 현미경을 설명해 줍니다. 마지막으로, 단일 단백질 궤적을 추출하는 절차를 개괄합니다.

형광현미경을 이용한 지질 이중층 내 단일 단백질 추적

배우세요 적응형 형태 추적 알고리즘을 사용하여 필로포디아 돌출부 역학과 단백질 농도를 정량 분석하는 방법을. 이 소프트웨어 GUI는 신경세포, HeLa, COS 세포에서 단백질 역학을 연구하는 연구자들에게 강력한 도구를 제공합니다.

동적 세포 돌출부에서 소프트웨어를 이용한 단백질 농도 추적을위한 그래픽 사용자 인터페이스

더 많은 동영상 탐색