Name: 3차원 모터 신경 오르간성 생성 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-09-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 57 s
Description: 배우세요 인간 iPS 세포로 3차원 모터 신경 오르간성을 생성하는 방법을 PDMS 마이크로플루이딕 칩을 사용하여. 이 기술은 축삭 발달 연구와 모터 뉴런 질환의 약물 스크리닝에 활용됩니다.

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이 연구는 과학 진흥을 위한 일본 사회 (JSPS) 과학 연구를 위한 보조금 에 원조 17H05661 및 18K19903, 코어 2 코어 프로그램 및 AI 를 넘어서는 기관에 의해 지원되었습니다.

<ol><li>Raper, J., Mason, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+strategies+of+axonal+pathfinding%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Perspective+Biology%22%5BJournal%5D)">Cellular strategies of axonal pathfinding.</a> Cold Spring Harbor Perspective Biology. 2 (9), 001933(2010).</li>
<li>Ito, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RIPK1+mediates+axonal+degeneration+by+promoting+inflammation+and+necroptosis+in+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">RIPK1 mediates axonal degeneration by promoting inflammation and necroptosis in ALS.</a> Science. 353 (6299), 603-608 (2016).</li>
<li>Fujimori, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+sporadic+ALS+in+iPSC-derived+motor+neurons+identifies+a+potential+therapeutic+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Modeling sporadic ALS in iPSC-derived motor neurons identifies a potential therapeutic agent.</a> Nature Medicine. 24 (10), 1579-1589 (2018).</li>
<li>Chen, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+ALS+with+iPSCs+Reveals+that+Mutant+SOD1+Misregulates+Neurofilament+Balance+in+Motor+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Modeling ALS with iPSCs Reveals that Mutant SOD1 Misregulates Neurofilament Balance in Motor Neurons.</a> Cell Stem Cell. 14 (6), 796-809 (2014).</li>
<li>Osaki, T., Uzel, S. G. M., Kamm, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microphysiological+3D+model+of+amyotrophic+lateral+sclerosis+%28ALS%29+from+human+iPS-derived+muscle+cells+and+optogenetic+motor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Advances%22%5BJournal%5D)">Microphysiological 3D model of amyotrophic lateral sclerosis (ALS) from human iPS-derived muscle cells and optogenetic motor neurons.</a> Science Advances. 4 (10), (2018).</li>
<li>Imamura, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Src%2Fc-Abl+pathway+is+a+potential+therapeutic+target+in+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">The Src/c-Abl pathway is a potential therapeutic target in amyotrophic lateral sclerosis.</a> Science Translational Medicine. 9 (391), (2017).</li>
<li>Wang, L., Marquardt, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+axons+tell+each+other%3A+axon-axon+signaling+in+nerve+and+circuit+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">What axons tell each other: axon-axon signaling in nerve and circuit assembly.</a> Current Opinion in Neurobiology. 23 (6), 974-982 (2013).</li>
<li>Kawada, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+a+Motor+Nerve+Organoid+with+Human+Stem+Cell-Derived+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Generation of a Motor Nerve Organoid with Human Stem Cell-Derived Neurons.</a> Stem Cell Reports. 9 (5), 1441-1449 (2017).</li>
<li>Nagendran, T., Poole, V., Harris, J., Taylor, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+Pre-Assembled+Plastic+Microfluidic+Chips+for+Compartmentalizing+Primary+Murine+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Use of Pre-Assembled Plastic Microfluidic Chips for Compartmentalizing Primary Murine Neurons.</a> JoVE. (141), e58421(2018).</li>
<li>Paranjape, S. R., Nagendran, T., Poole, V., Harris, J., Taylor, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compartmentalization+of+Human+Stem+Cell-Derived+Neurons+within+Pre-Assembled+Plastic+Microfluidic+Chips%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Compartmentalization of Human Stem Cell-Derived Neurons within Pre-Assembled Plastic Microfluidic Chips.</a> JoVE. (147), e59250(2019).</li>
<li>Chambers, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+small-molecule+inhibition+accelerates+developmental+timing+and+converts+human+pluripotent+stem+cells+into+nociceptors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Combined small-molecule inhibition accelerates developmental timing and converts human pluripotent stem cells into nociceptors.</a> Nature Biotechnology. 30 (7), 715-720 (2012).</li>
<li>Rimington, R. P., Fleming, J. W., Capel, A. J., Wheeler, P. C., Lewis, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioengineered+model+of+the+human+motor+unit+with+physiologically+functional+neuromuscular+junctions%5BTitle%5D)+AND+%22bioRxiv%22%5BJournal%5D)">Bioengineered model of the human motor unit with physiologically functional neuromuscular junctions.</a> bioRxiv. , (2020).</li>
<li>Cullen, D. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bundled+Three-Dimensional+Human+Axon+Tracts+Derived+from+Brain+Organoids%5BTitle%5D)+AND+%22iScience%22%5BJournal%5D)">Bundled Three-Dimensional Human Axon Tracts Derived from Brain Organoids.</a> iScience. 21, 57-67 (2019).</li>
<li>Giandomenico, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebral+organoids+at+the+air-liquid+interface+generate+diverse+nerve+tracts+with+functional+output%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neurosciences%22%5BJournal%5D)">Cerebral organoids at the air-liquid interface generate diverse nerve tracts with functional output.</a> Nature Neurosciences. 22 (4), 669-679 (2019).</li>
<li>Egawa, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug+screening+for+ALS+using+patient-specific+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Drug screening for ALS using patient-specific induced pluripotent stem cells.</a> Science Translational Medicine. 4 (145), (2012).</li>
<li>Sances, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+ALS+with+motor+neurons+derived+from+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neurosciences%22%5BJournal%5D)">Modeling ALS with motor neurons derived from human induced pluripotent stem cells.</a> Nature Neurosciences. 19 (4), 542-553 (2016).</li>
<li>Qu, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-efficiency+motor+neuron+differentiation+from+human+pluripotent+stem+cells+and+the+function+of+Islet-1%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">High-efficiency motor neuron differentiation from human pluripotent stem cells and the function of Islet-1.</a> Nature Communications. 5 (1), 3449(2014).</li>
<li>Kirihara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Human+Induced+Pluripotent+Stem+Cell-Derived+Tissue+Model+of+a+Cerebral+Tract+Connecting+Two+Cortical+Regions%5BTitle%5D)+AND+%22iScience%22%5BJournal%5D)">A Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Tissue Model of a Cerebral Tract Connecting Two Cortical Regions.</a> iScience. 14, 301-311 (2019).</li>
<li>Rigamonti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-Scale+Production+of+Mature+Neurons+from+Human+Pluripotent+Stem+Cells+in+a+Three-Dimensional+Suspension+Culture+System%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Large-Scale Production of Mature Neurons from Human Pluripotent Stem Cells in a Three-Dimensional Suspension Culture System.</a> Stem Cell Reports. 6 (6), 993-1008 (2016).</li>
<li>Yan, Y., Song, L., Madinya, J., Ma, T., Li, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+Cortical+Spheroids+from+Human+Induced+Pluripotent+Stem+Cells+in+a+Suspension+Bioreactor%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+A%22%5BJournal%5D)">Derivation of Cortical Spheroids from Human Induced Pluripotent Stem Cells in a Suspension Bioreactor.</a> Tissue Engineering Part A. 24 (5-6), 418-431 (2017).</li>
</ol>

이 프로토콜의 일환으로, 특허는 Jiro Kawada에 의해 설립된 직삭 생명 공학, Inc.에 허가되었습니다.

이 프로토콜은 인간 iPS 세포에서 생성된 운동 신경 스페로이드에서 확장된 축축이 있는 운동 신경 오르가노이드(MNO)의 형성을 설명합니다. 형성된 축축 묶음은 두껍고 유연하며 단방향 구조로 잘 구성됩니다. 축축묶음, 고순도 축산 단백질 및 RNA를 해부함으로써 생화학적 분석을 위해 충분히 얻을 수 있다. 신경 활동은 칼슘 화상 진찰을 가진 축산 번들 및 스페로이드에서 측정될 수 있습니다. 축 사 리자트에서 핵 및 수지상 단백질의 오염은 서양 블로팅에 의해 검출되지 않았으며, 우리의 방법은 차체및 원원에서 축축을 효율적으로 분리했다는 것을 보여줍니다.
이 프로토콜의 장점 중 하나는 모든 프로세스가 3D 프로토콜을 사용하여 4주 및 2D 프로토콜을 사용하여 5-6주 안에 수행될 수 있는 축축산 번들을 갖춘 MNO의 급속한 분화 및 생성입니다. 이것은 전형적으로 배아 줄기 세포 및 iPS 세포17에서 MN으로 분화하기 위하여 전형적으로 3-4 주가 걸리는 그밖 프로토콜에 비하여 짧고 축선 신장을 얻기 위하여 추가 2-4 주가 걸립니다. 3D 프로토콜은 일반적으로 2D 프로토콜에 비해 해리 단계 없이 분화 시간이 짧고 단계 수가 적고 기술 적 위험이 감소하기 때문에 2D 프로토콜보다 선호됩니다. 미세 유체 기반 조직 배양 칩은 MNS의 축축이 축축의 축축한 상호 작용과 축축 사이의 친화성을 유도하여 축축의 번들의 형성을 용이하게 마이크로 채널을 통해 다른 구획쪽으로 길게 할 수 있도록 방식으로 설계되었습니다. 간단한 실험 설정 으로 인해 여기에 설명 된 모든 프로토콜은 조직 배양 칩의 조작에 익숙한 생물 공학자뿐만 아니라 미세 유체 및 미세 제조 기술에 익숙하지 않은 생물학자 및 신경 과학자에 의해 수행 될 수 있습니다. 외부 제작 서비스를 사용하여 1단계와 2단계도 수행할 수 있습니다.
프로토콜을 수행하는 중요한 단계 중 하나는 배양 매체의 순차적 변화입니다. 소비된 매체의 요인이 MN 분화를 방해하지 않도록 분화 중에 각 단계에서 배양 배지를 완전히 변경하는 것이 좋습니다. 이 프로토콜의 또 다른 중요한 점은 미분화 된 iPS 세포를 좋은 품질로 유지하는 것입니다. 초기 iPS 세포 배양의 품질은 모터 뉴런 및 MNO를 얻기 위한 효율성에 크게 영향을 미칩니다. 또 다른 요점은 MNS의 직경이 칩 구멍의 크기(1.5mm)보다 작아야 한다는 것입니다. 더 큰 스페로이드는 챔버를 입력할 수 없으며 잠재적으로 중앙 부분에 심각한 저산소 괴사를 경험할 수 있습니다. MNS의 크기는 iPS 세포의 초기 시드 수(3D 프로토콜) 또는 모터 뉴런(2D 프로토콜)을 변경하여 제어될 수 있다. 세포의 파종 밀도는 각 iPS 세포주에 대해 최적화되어야 합니다.
마이크로그루브와 작은 모공 필터를 갖춘 구획화된 미세 유체 장치는 축축을 세포 몸과 모데라이트로부터 분리하는 데 널리 사용되어 왔습니다. 이 기술은 또한 묶인 조직에 있는 축축의 우수한 풍부와 세포 바디 및 점원에서 축축을 분리할 수 있습니다. 다른 방법에 비해, 이 방법의 한 가지 주요 한계는 두 개의 별개의 배지를 필요로 하는 두 개의 상이한 세포의 공동 배양 능력을 방해하는 조직 배양 칩의 현재 설계에서 두 개의 상이한 배양 배지를 분리할 수 없다는 것입니다. 또 다른 제한은 PDMS 칩이 조직의 크기에 미리 정해진 제한을 두었다는 것입니다. 구멍보다 큰 스페로이드는 챔버에 들어갈 수 없으며 축축산 번들은 미세 유체 채널의 너비보다 두껍게 자랄 수 없습니다.
이 방법은 다른 유형의 뉴런에 적용할 수 있습니다. 우리 그룹은 대뇌 오르가노이드 기술(18)과결합 된 수정 된 방법을 사용하여 대뇌관을 모델링 할 수있는 능력을 보여 주었다. 피질 스페로이드는 각 구획과 축축에 자발적으로 각 스페로이드쪽으로 회기길, 그리고 그 후에 자발적으로 형성된 축축물 번들로 도입되었다. 그 결과, 2개의 피질 구엽은 축축물 번들을 통해 연결될 수 있고, 조직은 1장으로 얻어질 수 있었다. 이것은 접근이 신경 세포 모형에 관계없이 축축 묶음 조직을 형성하는 것이 매우 다재다능하다는 것을 보여줍니다. 본 프로토콜에서, 인간 iPS 세포는 사용되었지만, 인간 적인 ES 세포 및 인간 신경 줄기 세포를 포함하는 다른 줄기 세포는 제시된 프로토콜에 대한 수정과 함께 사용될 수 있다. 뉴런의 3D 스페로이드는 다양한프로토콜(19,20)에의해 생성될 수 있다. 축축물 번들로 조직을 만드는 이 방법은 3D MN 스페로이드를 만들기 위한 다른 분화 프로토콜과 미래에 잠재적으로 결합될 수 있다. 또한, 축축 묶음의 두께와 길이는 단순히 향후 개발을 위해 조직 배양 칩의 마이크로 채널의 폭과 높이를 변경하여 제어될 수 있다.
우리는 이 프로토콜이 약물 검사 및 검열에 사용될 수 있고 축축근의 발달 그리고 질병의 근본적인 기계장치의 이해에 기여할 수 있다고 믿습니다.

척추 운동 뉴런(MN)은 골격 근육에 축축을 확장하여 신체 움직임을 조절합니다. 그들의 축축궤적 궤적은 발달 과정에서 고도로 조직되고 규제됩니다. 축 사 확장 및 지침 에 많은 연구에도 불구 하 고1,조직 축 하 번 들 형성에 대 한 메커니즘은 여전히 조사. 운동 신경의 축삭은 종종 근위축성 측삭 경화증 (ALS)2와같은 신경 퇴행성 질환에 의해 손상되지만 축삭 파시클에 손상의 병리학 적 메커니즘은 제대로 이해되지 않습니다. 따라서, 축축 묶음 형성 및 회귀를 재구성하는 생리학적 및 병리학적 모델이 현장에서 요구된다.
인간 줄기세포 유래 모터뉴런은 ALS3과같은 발달 및 질병을 이해하기 위한 유망한 플랫폼이다. 인간 유도만능 줄기세포(iPS 세포)는 환자 유래 세포를 이용한 질병을 모델링하는 데 사용될 수 있다. 현재까지 만능 줄기세포로부터 MN으로의 다양한 분화 방법은4,5,6로보고되었다. 그러나, 2차원 배양에서 뉴런의 축축은 임의로 지향되며 축축이 조밀한 축축산 상호작용을 통해 단방향적으로 조립되는 신경 개발 내의 생체 내 미세환경에서 회수하지않는다. 이 문제점을 극복하기 위하여는, 인간 iPS 세포8에서운동 신경을 닮은 3차원 조직을 생성하는 기술을 개발하고, 모터 신경 오르가노이드(MNO)로 조직을 명명했습니다. MNO는 운동 뉴런 스페로이드(MNS)와 스페로이드에서 확장된 축삭 근막에 위치한 세포 체로 구성됩니다. 근막의 축삭은 단방향 지향적이며, 이는 운동 신경 개발의 축삭과 유사합니다. 따라서 MMO는 이전에 개발된 다른 뉴런 배양 방법에 의해 수행되지 않은 생리적 축축미세 환경을 독특하게 제공합니다.
이 프로토콜에서는, 우리는 개발된 칩에 있는 조직 배양 칩 제조, 급속한 운동 신경 신경 분화 및 모터 신경 organoid 대형을 위한 방법을 기술합니다. 우리의 조직 배양 칩은 매우 간단하며, 그것은 단지 스페로이드를 수용하기위한 구획을 포함, 축축묶을 형성하기위한 마이크로 채널, 축축단을 하우징하기위한 구획. 이 장치는 종종 크기9,10에의해 축축과 세포 체를 분리하는 데 사용되는 마이크로 그루브 또는 마이크로 포어 필터를 포함한 복잡한 구조를 포함하지 않습니다. 따라서 포토리소그래피 설정을 사용할 수 있는 경우 이 프로토콜에 설명된 단계를 수행하여 장치를 쉽게 조작할 수 있습니다.
인간 iPS 세포의 신속한 분화는 유도 및 패터닝 인자(SB431542, LDN-193189, 망막산(RA), 그리고 매끄러운 고뇌스트(SAG) 및 가속 인자(SU5402 및 DAPT)의 최적화된 조합으로 달성된다. SU5402와 DAPT의 조합은 말초 뉴런과 신경 문장세포(11)의분화를 가속화하는 것으로 보고되었다. 이 프로토콜에서는 독자가 필요에 가장 적합한 방법을 결정할 수 있도록 MMO를 생성하는 세 가지 방법을 제공합니다. 분화된 MNS가 조직 배양 칩으로 직접 전달될 수 있기 때문에 스페로이드(3D 방법)를 형성한 후 인간 iPS 세포의 분화를 수행하는 것이 좋습니다. 대안적으로, 인간 iPS 세포는 단층 (2D) 배양에서 모터 뉴런으로 분화한 다음 이전에 보고된 대로 3차원 운동 뉴런 스페로이드로 생성될 수있다 8. 우리는 프로토콜을 업데이트하고, 이 프로토콜에 설명된 3차원 분화 방법으로, 2D에서 3D로의 전환을 피할 수 있고 MMO는 짧은 분화 시간, 적은 단계 및 해리 단계 없이 기술적 위험을 감소시켰습니다. 시판되는 뉴런은 또한 분화의 시간을 줄이기 위해 MNS를 생성하는 데 사용할 수 있습니다.
MNO를 생성하기 위해, 우리는 조직 배양 칩에 MNS를 배양. 축축은 스페로이드에서 길게 게이트하고 축축이 모여 단방향으로 정렬되는 마이크로 채널로 확장됩니다. 이는 이러한 프로토콜에 의해 유일하게 달성되는 마이크로채널에서 축축물의 단단히 조립된 단방향 번들 조직의 축소 상호 작용 및 자발적인 형성을 용이하게 하는 반면, 자발적인 번들 형성 또는 유도축방향만으로는 다른프로토콜(12,13,14)에의해 달성될 수 있다. 일반적인 실험에서는, 몇몇 세포는 마이크로 채널로 스페로이드에서 밖으로 이동하고 대부분의 세포는 가까운 스페로이드를 유지합니다. 이 방법을 사용하면 축축을 세포 체에서 분리하기 위해 크기에 의존하는 물리적 장벽(예: 마이크로그루브 또는 마이크로포어 필터)을 사용하지 않고 스페로이드에서 자발적으로 분리할 수 있습니다.
결과 MNO는 형태학, 생화학 적 및 물리적 분석을 포함한 다양한 검사를 받을 수 있습니다. 세포 체및 확장축축묶음은 절단에 의해 물리적으로 분리될 수 있으며, 다운스트림 실험, 예를 들어 생화학적 분석 등을 위해 별도로 분석될 수 있다. RNA와 단백질을 포함하는 생물학 물질은 RT-PCR 및 서쪽 얼룩을 포함하여 정규 생화확적인 분석을 위한 단지 몇몇 축축 묶음에서 격리될 수 있습니다. 여기서는 축슨 파종의 기전과 질병을 연구하기 위한 매력적인 생리적 및 병리학적 모델을 제공하는 iPS 세포로부터 모터 신경 오르가노이드를 생성하는 프로토콜을 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>(Tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl)-1-trichlorosilane</td><td>Sigma</td><td>440302</td><td></td></tr><tr><td>16% Paraformaldehyde (formaldehyde) 수용액</td><td>전자 현미경 과학</td><td>15710</td><td></td></tr><tr><td>200&micro; l 와이드 보어 피펫 팁</td><td>BMBio</td><td>BMT-200WRS</td><td></td></tr><tr><td>6웰 플레이트</td><td>Violamo</td><td>2-8588-01</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>ICT</td><td>AT104</td><td></td></tr><tr><td>B-27 Supplement (50X)</td><td>Gibco</td><td>17504044</td><td></td></tr><tr><td>소 혈청 알부민</td><td>Sigma</td><td>A6003</td><td></td></tr><tr><td>Brain-derived neurotrophic factor (BDNF)</td><td>Wako</td><td>020-12913</td><td></td></tr><tr><td>CO2 인큐베이터</td><td>Panasonic</td><td>MCO-18AIC</td><td></td></tr><tr><td>Cryostor CS10</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>07959</td><td></td></tr><tr><td>DAPT</td><td>Sigma</td><td>D5942</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Sigma</td><td>D8437</td><td></td></tr><tr><td>Fluo-4 AM</td><td>Dojindo Laboratories</td><td>CS22</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>성장 인자 감소 Matrigel (기저막 매트릭스)</td><td>Corning</td><td>354230</td><td></td></tr><tr><td>HB9 항체</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-22542</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Wako</td><td>085-09355</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Sigma</td><td>14533</td><td></td></tr><tr><td>iCell motor neuron (상업적으로 이용 가능한 인간 iPS 세포 유래 운동 뉴런)</td><td>Cellular Dynamics</td><td>R1051</td><td></td></tr><tr><td>이소프로필 알코올(IPA)</td><td>Wako</td><td>166-04836</td><td></td></tr><tr><td>녹아웃 세럼 교체용</td><td>Gibco</td><td>10828028</td><td></td></tr><tr><td>LDN193189</td><td>Sigma</td><td>SML0559</td><td></td></tr><tr><td>MEA 프로브</td><td>Alpha MED Scientific inc</td><td>MED-P5004A</td><td></td></tr><tr><td>MEM 비필수 아미노산 용액(100x)(NEAA)</td><td>Sigma</td><td>M7145</td><td></td></tr><tr><td>현미경 유리</td><td>Matsunami</td><td>S9111</td><td></td></tr><tr><td>mTeSR Plus</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>05825</td><td></td></tr><tr><td>N2 supplement</td><td>Wako</td><td>141-08941</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal medium</td><td>Gibco</td><td>21103049</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-streptomycin</td><td>Gibco</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Photoresist SU-8 2100</td><td>Microchem</td><td>#SU-8 2100</td><td></td></tr><tr><td>Prime surface 96U</td><td>스미토모 베이클라이트</td><td>MS-9096U</td><td></td></tr><tr><td>ReLeSR (passaging 시약)</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>05872</td><td></td></tr><tr><td>레티노산</td><td>Wako</td><td>186-01114</td><td></td></tr><tr><td>SAG</td><td>시그마</td><td>SML1314</td><td></td></tr><tr><td>SB431542</td><td>Wako</td><td>192-16541</td><td></td></tr><tr><td>실리콘 웨이퍼</td><td>SUMCO</td><td>PW-100-100</td><td></td></tr><tr><td>Silpot 184 w/c kit</td><td>Dow Toray</td><td>Silpot 184 w/c kit</td><td></td></tr><tr><td>Smi32 항체</td><td>Biolegend</td><td>801701</td><td></td></tr><tr><td>SU5402</td><td>Sigma</td><td>SML0443</td><td></td></tr><tr><td>SU-8 Developer</td><td>Microchem</td><td>Y020100</td><td></td></tr><tr><td>Synapsin I 항체</td><td>Millipore</td><td>Ab1543</td><td></td></tr><tr><td>TrypLE Express liquid without phenol red (dissociation solution)</td><td>Gibco</td><td>12604-021</td><td></td></tr><tr><td>Tuj1 항체</td><td>Biolegend</td><td>801202</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632</td><td>Wako</td><td>030-24021</td><td></td></tr></tbody></table>

3차원 모터 신경 오르간성 생성

Three-Dimensional Motor Nerve Organoid Generation

축삭의 매심은 신경계에서 관찰되는 주요 구조 적분 중 하나입니다. 축 하 매심의 중단 개발 및 신경 퇴행 성 질환을 일으킬 수 있습니다. 축축의 수많은 연구가 수행되었지만, 축축기의 형성과 기능 장애에 대한 우리의 이해는 여전히 강력한 3차원 체외 모델의 부족으로 인해 제한됩니다. 여기서, 우리는 미세유체계 조직 배양 칩에서 인간 유도만능 줄기(iPS) 세포로부터 모터 신경 오르가노이드(MNO)의 신속한 생성을 위한 단계별 프로토콜을 설명한다. 첫째, 방법에 사용되는 칩의 제조가 설명된다. 인간 iPS 세포로부터, 운동 신경 세포 (MNS)가 형성된다. 다음으로, 차별화된 MNS는 칩으로 전달된다. 그 후, 축삭은 자발적으로 스페로이드에서 자라서 칩에 장착된 마이크로채널 내의 근막으로 조립되어 스페로이드에서 확장된 축삭 뭉치를 운반하는 MNO 조직을 생성한다. 다운스트림 분석을 위해, MMO는 형태학적 분석을 위해 고정되거나 생화학 적 분석을 위해 해부될 칩에서 꺼내질 수 있을 뿐만 아니라 칼슘 이미징 및 다중 전극 어레이 기록을 위해 제거될 수 있다. 이 프로토콜로 생성된 MMO는 약물 검사 및 스크리닝을 용이하게 할 수 있으며 축축기 근막의 근본적인 발달 및 질병 메커니즘에 대한 이해에 기여할 수 있습니다.

운동 뉴런은 3D 분화절차(도 4 및 도 5)에서12-14일 이내에 분화되었다. 중요한 것은, 세포의 60% 이상이 분화 중에 모터 뉴런 마커 HB9를 발현하였다. 면역히스토케는 MNS내 세포의 약 80%가 SMI32 양성 운동 뉴런이었다는 것을 밝혔다. HB9 및 SMI32는 확립된 초기 단계 모터 뉴런마커(15,16)이다. HB9 및 SMI32의 발현은 모터 뉴런의 세포 정체성을 보장하기 위해 확인되어야 하는 주요 매개 변수입니다. MNS를 배양 칩에 도입한 후 축축은 채널로 확장되고 축축묶음이 형성됩니다. 물리적 가이드역할을 하는 마이크로채널로 인해 축축은 MNS로부터 길게 문어축되어 축산작용(그림6A)에의해 번들을 형성한다. MNO의 생성을 확인하기 위해서는 현미경 관찰에 의해 축축 묶음의 형성을 확인하는 것이 필수적이다. 성공적인 MNO는 50 μm보다 넓은 축축 묶음과 채널의 번들에서 분리된 축록새가 거의 없습니다. 축축의 초기 신장은 스페로이드의 도입 후 24시간 후에 관찰될 수 있다. 다음 3-4 일 이내에 축축은 마이크로 채널의 중앙에 도달한 다음 추가 10 일 이내에 다른 쪽 끝에 도달합니다(그림 6A). 결과적으로, 축축은 칩에서 2-3주 만에 직선 및 단방향 번들을 조립하고 형성했으며, 그 후 뉴런 활동이 관찰되었다.
모터 신경 오르가노이드는 생물학적 분석을 위해 현미경 유리로부터 PDMS를 분리하여 칩으로부터 수집될 수있다(도 6B). 축삭 번들 및 세포 체는현미경(도 6B)하에서수술용 칼 또는 트위저를 사용하여 절단하여 해부및 격리될 수 있다. RNA와 단백질을 포함하는 이 생물학 물질은 RT-PCR 및 서쪽 블로팅과 같은 일반적인 생화확적인 소사에 사용될 수 있습니다. MNOs의 축축번에서 핵 또는 수지상 제조 자 단백질은 서부 블로팅(도 6C)에서검출되지 않습니다.
칼슘 표시기(Fluo-4AM)와 함께 신경 활성을 조직 배양 칩에 포획할 수 있다. 스페로이드 및 축축전의 모터 뉴런의 자발적인 활성은 MNO 내에서 관찰되었다. 또한, 신경 활동은 다중 전극 어레이 시스템을 사용하여 관찰되었다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61544/61544fig01.jpg"> 그림 1: PDMS 조직 배양 칩의 치수. (A)조직 배양 칩의 포토마스크. (B)조직 배양 칩내 마이크로채널의 치수. 모터 뉴런 스페로이드를 유지하기위한 베이스 챔버의 직경은 2mm이고 챔버 위의 PDMS의 구멍은 1.5 mm입니다. 두 챔버를 연결하는 마이크로 채널의 폭과 높이는 모두 150 μm입니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61544/61544fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61544/61544fig02.jpg"> 그림 2: 운동 뉴런 분화의 회로도 그림. (A)분화 단계는 신경 유도, 운동 신경 혈통으로 패터닝 및 운동 뉴런의 성숙을 포함했다. (B)iPS 세포로부터 운동 뉴런 스페로이드(MNS)를 생성하는 두 가지 옵션: 3D 프로토콜, 및 모터 뉴런의 해리 단계를 가진 2D 프로토콜. 모터 신경 오르가노이드 (MNO)는 두 프로토콜에 의해 얻을 수 있습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61544/61544fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61544/61544fig03.jpg"> 그림 3: 지하 막 매트릭스 코팅 및 모터 뉴런 스페로이드 도입을 위한 단계별 프로토콜. (A)조직 배양 칩의 채널에서 지하 막 매트릭스 코팅. (B)MNS가 칩의 구멍에 도입. (C)지친 매체의 포부에 의한 배양 배지 변화. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61544/61544fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61544/61544fig04.jpg"> 그림 4: 2D 및 3D 모터 뉴런 분화. (A)대표 3D MNS 분화(3D 프로토콜)의 시간 과정. MNS의 크기는 시간이 지남에 따라 점차 증가했습니다. 스케일 바: 500 μm. (B) -D2, D0, D1, D6, D12(2D 프로토콜)에 2D 분화의 시간 과정. 스케일 바: 500 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61544/61544fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61544/61544fig05.jpg"> 그림 5: 운동 뉴런의 특성화. (A)(왼쪽) SMI-32 항체 및 DAPI로 염색된 MNS의 저온절. (중간) 지하 멤브레인 매트릭스 코팅 표면에 보충된 MNS의 위상 대비 이미지입니다. 축 하 신장 관찰 되었다. (오른쪽) Synapsin I와 Tuj1 항체로 염색된 MNS의 축축. 스케일 바: 500 μm(왼쪽 및 중간) 및 50μm(오른쪽). (B)Tuj 및 HB9 항체로 면역염색된 2D 모터 뉴런의 대표적인 이미지. 스케일 바: 200 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61544/61544fig05large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61544/61544fig06.jpg"> 도 6: 배양 칩에서 생성된 모터 신경 오르가노이드(MNO)의 특성화. (A)D32에 축축및 두꺼운 축축 묶음 형성의 대표적인 이미지. 스케일 바: 500 μm. (B)SMI-32 및 DAPI에 의한 모터 신경 오르가노이드(MNO)의 면역염색. 축삭과 세포 체는 물리적으로 절단에 의해 격리될 수 있습니다. 스케일 바: 1mm.(C)축축및 세포 체로부터 단백질의 순도는 서양 블로팅에 의해 정량화된다. MAP2, 수지상 마커, 축 산 단백질에서 검출 되지 않은 반면, 축 산 마커 Tau1 축 산 단백질에 농축. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61544/61544fig06large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

이 프로토콜은 조직 배양 칩에서 스페로이드에서 확장 된 축축의 강력한 번들의 자발적인 조립을 통해 인간 iPS 세포 유래 모터 신경 오르가노이드를 제조하는 포괄적 인 절차를 제공합니다.

A fascicle of axons is one of the major structural motifs observed in the nervous system. Disruption of axon fascicles could cause developmental and ...

이 프로토콜은 신체 외부의 인간 iPS 세포에서 유래한 운동 신경 오가노이드를 사용하여 축삭 다발의 발달 및 질병의 기저에 있는 메커니즘에 대한 연구를 용이하게 합니다. 단순히 뉴런 스페로이드와 맞춤형 미세배양 칩을 배양함으로써 단방향 축삭 다발을 자발적으로 생성하고 다양한 다운스트림 실험에 사용할 수 있습니다. 운동 신경 오가노이드는 이전의 체외 시스템보다 더 많은 생리학적 모델을 제공함으로써 LS를 포함한 운동 신경 질환에 대한 약물의 스크리닝 및 테스트를 용이하게 할 수 있습니다.흄 후드에서 적절한 PPE를 착용하고 SU-8 2100 3ml를 아세톤 세정된 실리콘 웨이퍼에 분배하고 웨이퍼를 스핀 코터 중앙에 놓습니다. 웨이퍼를 진공으로 고정하고 웨이퍼 표면을 가로 질러 SU-8을 균일하게 코팅하기 위해 10 초 동안 분당 500 회전으로 웨이퍼를 회전 한 다음 초당 300 회전의 가속도로 분당 1, 500 회전으로 웨이퍼를 회전시켜 웨이퍼에 150 미크론 두께의 포토 레지스트 층을 얻습니다. 소프트 베이킹 후 포토마스크를 마스크 얼라이너에 놓고 웨이퍼를 자외선에 60초 동안 노출시킵니다.핫 플레이트에서 베이킹한 후 궤도 셰이커에서 교반하면서 포토레지스트 현상액에서 10-20분 동안 웨이퍼를 현상하고 공정 중에 현상 용액을 한 번 변경합니다. 조직 배양을 위해 칩의 하단 층을 준비하려면 새로 준비된 PDMS를 원하는 두께로 웨이퍼에 붓고 진공 챔버에서 혼합물의 가스를 제거합니다. PDMS를 섭씨 60도에서 최소 3시간 동안 오븐에서 경화시킵니다.냉각 후 블레이드를 사용하여 웨이퍼에서 경화된 PDMS를 절단한 다음 베이킹과 함께 경화되지 않은 PDMS를 사용하여 PDMS 하단 층에 매체 저장소를 접착하여 조립된 PDMS 조직 배양 칩을 얻습니다. 운동 신경 오가노이드 형성을 위해 PDMS 칩을 준비하려면 70% 에탄올이 함유된 페트리 접시에 칩과 76 x 52mm 현미경 유리를 최소 1시간 동안 멸균합니다. 배양이 끝나면 젖은 현미경 유리에 칩을 놓습니다.밤새 건조시킨 후 칩이 유리에 부착되어야 합니다. DMEM/F12에 희석된 기저막 매트릭스의 30마이크로리터 방울을 채널 입구의 한쪽 면에 놓고 입구의 다른 쪽에서 용액을 흡입하여 마이크로 채널 표면을 매트릭스로 코팅합니다. 그런 다음 PDMS 칩을 코팅 용액과 함께 페트리 접시에 실온에서 1시간 동안 배양합니다.3D iPS 세포가 운동 뉴런으로 분화되도록 유도하기 위해 100마이크로리터의 공급기 및 무혈청 Y-27632가 보충된 96웰 U-바닥 플레이트의 적절한 수의 웰에 웰당 10배에서 4번째 iPS 세포를 파딩합니다. 다음날, 각 웰의 상층액을 10마이크로몰 SB431542과 100나노몰 LDN-193189가 보충된 100마이크로리터의 KSR 배지로 교체합니다. 2일차와 3일차에는 상등액을 10마이크로몰 SB431542, 100나노몰 LDN-193189, 5마이크로몰 DAPT, 5마이크로몰 SU5402, 마이크로몰 레티노산 1개, 마이크로몰 평활 작용제 1개가 보충된 KSR 배지 100마이크로리터로 교체합니다.4일과 5일째에 상층액을 10마이크로몰 SB431542, 100나노몰 LDN193189, 5마이크로몰 DAPT 5개, 마이크로몰 SU5402 5개, 마이크로몰 레티노산 1개, 마이크로몰 평활 작용제 1개가 보충된 KSR 배지 75%와 N2 배지 25%의 혼합물로 교체합니다. 6일과 7일째에 상층액을 50%의 KSR 배지와 50%의 N2 배지의 혼합물로 교체하고 5개의 마이크로몰 DAPT, 5개의 마이크로몰 SU5402, 1개의 마이크로몰 레티노산 및 1개의 마이크로몰 평활 작용제로 보충합니다. 8일과 9일째에 상층액을 KSR 배지 25%와 N2 배지 75%의 혼합물로 교체하고 5개의 마이크로몰 DAPT, 5개의 마이크로몰 SU5402, 1개의 마이크로몰 레티노산 및 1개의 마이크로몰 평활 작용제를 보충합니다.10일과 11일에 상층액을 5마이크로몰 DAPT 5개, 마이크로몰 SU5402 5개, 마이크로몰 레티노산 1개, 마이크로몰 평활 작용제 1개가 보충된 N2 배지로 교체합니다. 12일째에 각 웰의 상등액을 웰당 밀리리터당 20나노그램의 뇌 유래 신경 영양 인자로 보충된 100마이크로리터의 성숙 배지로 교체합니다. 운동 신경 오가노이드 형성을 유도하기 위해 PDMS 칩의 코팅 용액을 1밀리리터당 20나노그램의 뇌 유래 신경 영양 인자로 보충된 150마이크로리터의 성숙 배지로 교체하고 광경 마이크로피펫 팁을 사용하여 96웰 플레이트의 한 웰에서 칩의 마이크로채널 입구로 운동 뉴런 스페로이드를 부드럽게 추가합니다.매체 증발을 방지하기 위해 접시의 조직 배양 칩 근처에 멸균수가 담긴 작은 저장소를 놓고 접시를 섭씨 37도 및 5% 이산화탄소 인큐베이터에 넣습니다. 2-3일에 한 번씩 배지 저장소 중앙에서 소진된 배양 배지의 절반을 뇌 유래 신경 영양 인자 밀리리터당 20나노그램이 보충된 새로운 성숙 배지로 교체하십시오. 축삭돌기는 운동 뉴런 타원체에서 채널로 성장하여 2-3주에 걸쳐 자발적으로 단일 다발로 조립되어 운동 신경 오가노이드를 형성합니다.운동 뉴런은 3D 분화 절차에서 12-14일 이내에 분화합니다. 중요한 것은 분화 과정에서 세포의 60% 이상이 운동 뉴런 마커 HB9를 발현하고 운동 뉴런 스페로이드에 있는 세포의 약 80%가 SMI32 양성이라는 것입니다. 물리적 가이드 역할을 하는 마이크로채널을 통해 축삭은 운동 뉴런 스페로이드에서 뻗어 나와 스페로이드에 도입된 후 24시간 이내에 축삭-축삭 상호 작용에 의해 다발을 형성합니다.축삭돌기는 다음 3-4일 이내에 미세채널의 중심에 도달했고, 추가로 10일 후에 미세채널의 다른 쪽 끝으로 확장되었습니다. 현미경 유리에서 PDMS를 분리하여 생물학적 분석을 위해 칩에서 운동 신경 오가노이드를 수집할 수 있습니다. 그런 다음 축삭돌기와 세포체를 절개하고 수술용 칼이나 핀셋을 사용하여 현미경으로 분리할 수 있습니다.운동 신경 오가노이드의 축삭돌기 다발에서 수지상 마커 단백질은 웨스턴 블로팅에 의해 검출되지 않습니다. 스페로이드가 배양 칩 내의 바닥으로 완전히 떨어졌는지 확인하는 것이 중요합니다. 우리는 부위를 조사하고 바닥이 칩에서 스페로이드의 위치를 결정하는 데 도움이 될 수 있음을 보여주었습니다.분리된 축삭돌기는 다양한 추가 방법을 검사할 수 있습니다. 많은 양의 축삭돌기를 얻어 상당한 물질이 필요한 생화학적 분석에 사용할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 비디오는 미세유체 장치를 사용하여 신경근 접합부의 형성을 보여줍니다. 신경 전구 세포와 근육 전구 세포는 장치 내의 다른 웰에 파종되고 각각 운동 뉴런과 근관으로 성숙하도록 방치됩니다. 부피와 화학적 구배의 생성은 활성 신경근 접합부의 발달로 이어집니다.

미세유체 소자(microfluidic device)를 이용한 신경근접합부 생성

이 동영상은 먼저 인간 유도 만능 줄기세포를 특수 배지에서 배양하여 스페로이드를 형성한 다음, 특정 억제제를 사용하여 운동 뉴런으로 분화하고, 마지막으로 미세유체 칩으로 배양하여 축삭을 확장하고 운동 신경 오가노이드를 형성하는 방법을 보여줍니다.

미세유체 칩을 이용한 인간 iPSC 유래 운동 신경 오가노이드 개발

이 비디오는 파킨슨병 연구를 위한 모델을 제공하기 위해 인간 배아 줄기 세포(hESC)를 도파민 뉴런으로 분화하는 방법을 보여줍니다. hESC는 마이크로웰 플레이트의 신경 유도 매체에서 배양되어 3D 신경구를 형성합니다. 그런 다음 이들은 도파민 전구 뉴런으로의 분화를 촉진하기 위해 신경 유도 배지에서 배양됩니다. 뉴런의 최종 성숙은 공기-액체 계면 조건의 배양 삽입물에서 발생하여 성숙한 도파민 뉴런으로 구성된 3D 오가노이드가 생성됩니다.

인간 배아 줄기 세포에서 도파민 신경 세포 오가노이드 생성

이 연구는 1) 인간 에서독점적으로 인간 신경 유기 체 내 인간 교모세포종 개발 및 2) 뉴런 도파민성 연구를 위한 관련 및 정확한 모델로 두 개의 특정 인간 신경 오르가노이드를 도출하는 프로토콜을 소개하고 기술합니다. 3차원 오르가노이드를 생성하는 분화.

뇌암과 신경 퇴행성 질환을 연구하기위한 인간의 신경 오르가노이드

당사는 인간 원발성 메소포스트 유래 근투와 인간 유도만능 줄기 세포 유래 모터 뉴런을 공동 배양하여 상업적으로 이용 가능한 미세유체 장치에서 인간 모터 유닛을 생성하는 방법을 설명하며, 이로 인해 기능적으로 활성 신경 근육 접합이 형성된다.

미세 유체 장치에서 기능성 신경 근육 접합을 갖춘 인간 모터 유닛 생성

여기에서 우리는 인간 유도한 다능성 줄기 세포 (iPSCs)에서 두뇌 유기체를 생성하기 위한 프로토콜을 기술합니다. 다량의 뇌 오르가노이드와 고품질의 뇌 오르가노이드를 얻기 위해, 우리는 집에서 만든 미니 생물 반응기를 사용합니다.

집에서 만든 미니 생물 반응기에서 유도 만능 줄기 세포에서 뇌 오르간성 생성

이 연구에서, 우리는 표준 피더가없는 hPSC 배양물을 사용하여 간단하면서도 견고한 피질 오가노이드 배양 시스템에 대한 상세한 기술을 제공합니다. 이것은 시험관 내에서 뇌 노화의 측면을 모델링하는 오가노이드를 생성하기위한 신속하고 효율적이며 재현 가능한 프로토콜입니다.

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배우세요 인간 iPS 세포로 3차원 모터 신경 오르간성을 생성하는 방법을 PDMS 마이크로플루이딕 칩을 사용하여. 이 기술은 축삭 발달 연구와 모터 뉴런 질환의 약물 스크리닝에 활용됩니다.

3차원 모터 신경 오르간성 생성

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