Name: Geïnduceerde differentiatie van M cel-achtige cellen in menselijke stamcel-afgeleide Ileal Enteroid monolayers (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 34 s
Description: Leer de geïnduceerde differentiatie van M-cellen in menselijke stamcel-afgeleide ileale monolagen. Dit protocol maakt onderzoek naar darmhomeostase en immuunafweer mogelijk met QRTPCR en immunofluorescentie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd gesteund door NIAID U19AI131126 aan Dr. Isberg (Tufts University School of Medicine) en Dr. Kaplan (Tufts University); (JM is project 2 Leader) en NIAID R21AI128093 aan JM. ACF werd deels ondersteund door NIAID T32AI007077. SEB en MKE werden ondersteund door NIAID U19AI116497-05. We bedanken leden van het Mecsas Lab, het ng Lab en Dr. Isberg aan de Tufts University School of Medicine voor nuttige discussies. <span style="font-size: 11pt; line-height: 115%; font-family: Calibri, sans-serif; color: black; background-image: initial; background-position: initial; background-size: initial; background-repeat: initial; background-attachment: initial; background-origin: initial; background-clip: initial;">De confocale beeldvorming werd uitgevoerd in het Tufts centrum voor neurowetenschappelijk onderzoek, P30 NS047243.

Alle hier beschreven methoden zijn goedgekeurd door de Tufts University IBC en IRB.
1. inducerende M celdifferentiatie in humaan Ileal Enteroid-afgeleide monolayers
Opmerking: Dit protocol maakt gebruik van ileale-enteroïden afgeleid van menselijk weefsel biopsie. Raadpleeg de gepubliceerde protocollen voor methoden over hoe te groeien en doorgang deze cellen18,24. De volgende methoden voor de ontwikkeling van monolagen werden aangepast van zou et al.24. Methoden voor het induceren van M cellen in ileale enteroid-afgeleide culturen werden aangepast uit eerdere rapporten21,22,23. Al het werk wordt uitgevoerd in een steriele weefselcultuur en incubaties zijn in de afzuigkap of weefselkweek incubator zoals aangegeven. Zie de tabel met materialen die nodig zijn om ileale enteroid monolagen en verschillende media te bereiden.
<ol><li>Groei van de ileale-enteroïden gedurende 4-10 dagen in de extracellulaire matrix (ECM) (Zie tabel met materialen) (Figuur 1), afhankelijk van hun intrinsieke groeisnelheid, voordat zaaien op trans putten.</li>
	<li>Coating trans well membranen
	<ol>
<li>Plaats het gewenste aantal trans putten in een 24-putplaat die een twee kamer systeem creëert.</li>
		<li>Verdun ECM 25-voudige in koude steriele fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS) en voeg 100 μL koude verdunde oplossingen toe aan elke bovenste kamer op het membraan. Opmerking: De ecu-en verdunde ECM-oplossing moeten op ijs worden gehouden tot vlak voor de toevoeging.</li>
		<li>Bedek de 24-put plaat met deksel en plaats de plaat in een kweek van weefselkweek bij 37 °C gedurende 2 uur om de ecu-stolling op het membraan mogelijk te maken.</li>
		<li>Na 2 uur, verwijder de plaat uit de incubator en plaats in een weefselcultuur kap. Gebruik steriele pincet om elke trans well te omkeren om de resterende oplossing zachtjes te verwijderen. Laat de membranen aan de lucht drogen in de kap met het deksel open terwijl cellen worden verzameld (stappen 1.3.1-1.3.11).</li>
	</ol></li>
	<li>Dissociëren van de ileale-enteroïden in afzonderlijke cellen
	<ol><li>Verwijder de plaat van de ileale-enteroïden uit de incubator en verwijder voorzichtig de kweekmedia van elke put door vacuüm aspiratie of met een pipet. Opmerking: Een goed van ileale enteroïden bevattende ongeveer 100 gezonde cysten is voldoende om zaad 1.5-2 putten.</li>
		<li>Voeg 500 μL ijskoud 0,5 mM ethyleendiaminetetraazijnzuur (EDTA) toe aan elke put met ileale-enteroïden die in de ECM zijn opgehangen om de ECM op te splitsen. Pipetteer krachtig op en neer met een P1000 pipet die is ingesteld op 500 μL om de ecu op te splitsen, waardoor ileale-enteroïden in de oplossing worden gebracht. Om de ontbinding van de ECM te verbeteren, schud na het pipetteren de plaat gedurende 30 minuten krachtig op 4 °C.</li>
		<li>Verzamel de oplossing van elk goed in 15 mL conische buizen. Opmerking: Verzamel tot 10 putjes per 15 mL conische buis voor optimale enkelvoudige celverzameling.</li>
		<li>Pellet de cellen in een centrifuge bij 140 x g en 4 °c gedurende 5 min. pellet moet zichtbaar zijn, maar kan gemakkelijk worden gedemonveerd, dus Verwijder langzaam het supernatant door vacuüm aspiratie of met een pipet. Opmerking: Als u bezorgd over het verlies van pellets en cellen, gebruik een pipet en sla het supernatant in een aparte buis.</li>
		<li>Om nauwe junctie verbanden te verteren en de ileale-enteroïden in afzonderlijke cellen op te splitsen, moet de pellet in 500 μL kamertemperatuur trypsine per elke 5 putjes die in stap 1.3.3 worden verzameld, worden hervat. Gebruik een P1000 om de klontjes op en neer te scheiden en de buisjes in een waterbad van 37 °C gedurende 5 min. of minder te inbroed. Opmerking: Optimalisatie is nodig om de juiste hoeveelheid tijd te bepalen die nodig is om de buizen te inbroed, zodat de cellen worden afgebroken, maar niet overdreven trypsinized tot het punt dat ze sterven. Gebruik Trypan Blue in stap 1.3.9 om ervoor te zorgen dat de cellen levensvatbaar zijn na behandeling met trypsine.</li>
		<li>Voeg 1 mL Advanced DMEM/F12 toe met 10% foetaal runderserum (FBS) per 500 μL trypsine om de trypsine te deactiveren.</li>
		<li>Pipetteer op en neer met een P1000 ingesteld op 500 μL ten minste 50 keer tegen de zijkant van de conische buis om resterende klonters in afzonderlijke cellen verder te scheiden.</li>
		<li>Plaats een 40 μm-celzeef over een conische 50 mL en voeg 1 mL Advanced DMEM/F12 toe met 10% FBS om de celzeef nat te maken. Pipetteer de suspensie van één cel van de 15 mL conische op de zeef. Was de zeef met 1 mL Advanced DMEM/F12 met 10% FBS.</li>
		<li>Breng de cellen die door de cel zeef van de 50 mL conische in een nieuwe conische buis van 15 mL. Tijdens de centrifugeren stap 1.3.10, de cellulaire pellet zal gemakkelijker worden gezien in een 15 mL conische buis. Tel de cellen met behulp van een hemocytometer. Gebruik Trypan Blue om te controleren of cellen nog in leven zijn. Meestal wordt > 95% levensvatbaarheid waargenomen.</li>
		<li>Terwijl het tellen van de cellen, centrifugeer de cellen in de nieuwe 15 mL buis op 400 x g en kamertemperatuur voor 5 min. celpellet moet zichtbaar zijn. Verwijder voorzichtig het supernatant met een pipet en spaar het supernatant opnieuw in het geval dat de pellet wordt afgekeurd.</li>
		<li>Aangepaste volledige groeimedia voorbereiden25 (mcmgf + media) aangevuld met 10 μM Y-27632. Respendeer de cellen van gepileerde met 2,5 x 105 cellen/200 μL in mcmgf +. Zie opmerkingen in discussie over het optimaliseren van het zaaien nummer van cellen. Opmerking: MCMGF + media is geavanceerde DMEM/F12 met 75% L-Wnt3a airconditioning media, 10% R-spondin geconditioneerde media, 5% Noggin geconditioneerde media, 1x B27 supplement, 1x N2 supplement, 1 mM N-Acetylcysteïne, 50 ng/mL muis recombinant EGF, 500 nM A-8301, 10 nM [Leu15]-gastrine 10 mM HEPES, 2 mM GlutaMAX, en 1x Penicillaire/streptomycine (optioneel).</li>
		<li>Zorg ervoor dat de met ECM gecoate membranen die in stap 1,2 zijn bereid volledig zijn gedroogd, zoals beoordeeld door het oog. Was de bovenste kamer met 200 μL MCMGF +. Voeg 200 μL celoplossing toe aan elke bovenste kamer.</li>
		<li>Voeg 700 μL MCMGF + met 10 μM Y-27632 toe aan elke onderste kamer. Plaats de plaat in een incubator voor weefselkweek van 37 °C met 5% CO2.</li>
		<li>Na 1 dag van de groei, verwijder de media uit de bovenste kamer en vervang met 200 μL van verse MCMGF +, om te voorkomen dat de groei van meerdere cellagen.</li>
	</ol></li>
	<li>Medium vervangen
	<ol>
<li>Zodra monolagen zijn ~ 80% Confluent, meestal tussen dagen 1-3 na het zaaien, vervangen basolaterale media met differentiatie media (DM) voor controle putten (zie stap 1.4.2 voor meer informatie) of met m Cell media voor m Cell inductie putten (zie stap 1.4.3 voor meer informatie). Vervang de media in de bovenste kamer door DM voor beide condities. Opmerking: DM is geavanceerde DMEM/F12 met 5% Noggin geconditioneerde media, 1x B27 supplement, 1x N2 supplement, 1 mM N-Acetylcysteïne, 50 ng/mL muis recombinant EGF, 500 nM A-8301, 10 nM [Leu15]-gastrine I, 10 mM HEPES buffer, 2 mM GlutaMAX en 1x Penicillaire/streptomycine (optioneel ). M Cell media is DM aangevuld met 200 ng/mL RANKL en 50 ng/mL TNFα.</li>
		<li>Voor controle putten die geen M-cellen mogen bevatten, voeg 200 μL DM toe aan de bovenste kamer en 700 μL DM naar de onderste kamer.</li>
		<li>Om M-cellen te induceren, voeg 200 μL DM toe aan de bovenste kamer en 700 μL M-celmedia in de onderste kamer.</li>
		<li>Vervang de media elke 2 dagen. Vervang DM in de bovenste en onderste kamers voor controle putten. Vervang DM in de bovenste kamer en M-celmedia in de onderste kamer voor M-celputten. Opmerking: Overdag 7 post Cell-seeding, M cellen worden volledig geïnduceerd in de monolayers.</li>
	</ol></li>
</ol>2. verifiëren van M-celdifferentiatie door qRT-PCR
Opmerking: Voer het volgende werk uit op een steriele RNAse vrije tafelruimte. Zie tabel met materialen voor een lijst met voorkeurs materialen voor QRT-PCR.
<ol><li>Verwijder de media uit de bovenste en onderste kamers en was de bovenste kamer 2x zachtjes met 300 μL kamertemperatuur PBS.</li>
	<li>Voeg 300 μL Trizol toe aan elke bovenste kamer. Incuberen bij kamertemperatuur gedurende 5 min. Let op: Draag handschoenen en oogbescherming bij het gebruik van Trizol om contact met de huid te vermijden zoals aangegeven in de instructies van de fabrikant.</li>
	<li>Ondertussen, label microcentrifuge buizen voor elk goed en voeg 700 μL Trizol toe aan elke buis.</li>
	<li>Verzamel cel homogenaat door pipetteren op en neer 3x zachtjes met een P1000 en breng de inhoud over in de bijbehorende microcentrifuge buis. Vortex voor 5 s te mengen.</li>
	<li>Houd de monsters nog 3 min bij kamertemperatuur. Dan bewaren bij-80 °C gedurende maximaal één maand.</li>
	<li>Volg de standaard qRT-PCR-methodologie voor RNA-isolatie, DNase-behandeling, omgekeerde transcriptie en qRT-PCR-reacties. Raadpleeg de grondstof lijst in de Inhoudsopgave.</li>
</ol>3. verifiëren van M-celdifferentiatie door immunofluorescentie
Opmerking: Houd altijd de onderste kamer van de plaat gevuld met PBS, zodat de membranen NAT blijven. Deze procedure wordt uitgevoerd op de Bank. Zie tabel met materialen voor een lijst van voorkeurs materialen voor immunofluorescentie.
<ol><li>Verwijder de media uit de bovenste kamer en was 2x zachtjes met 300 μL kamertemperatuur PBS. Voeg 100 μL kamertemperatuur 4% PFA in PBS toe aan de bovenste kamer. Bedek de plaat met folie en laat 25 minuten staan bij kamertemperatuur. Verwijder 4% PFA. Let op: 4% PFA moet naar behoren worden afgevoerd als gevaarlijk chemisch afval.</li>
	<li>Was de bovenste kamer 3x met 300 μL kamertemperatuur PBS. Op dit punt kunnen monsters gedurende maximaal een maand vóór de kleuring op 4 °C blijven. Eenmaal bevlekt moeten monsters binnen een week worden gevisualiseerd voor afbeeldingen van de beste kwaliteit.</li>
	<li>Inbroed de monolagen met 100 μL van 5% boviene serum albumine (BSA) opgelost in PBS gedurende 30 minuten in het donker bij kamertemperatuur om de monolagen te blokkeren.</li>
	<li>Bereid de GP2 Primary antilichaam oplossing in 1% BSA in PBS bij een verdunning van 1:100. Voeg 100 μL per put toe. Vlek gedurende 1 uur bij kamertemperatuur in het donker. Verwijder de oplossing. Opmerking: Permeabiliseer de monolagen niet voordat primaire vlek voor GP2 optreedt, omdat optimale primaire GP2-oppervlakte kleuring van M-cellen wordt bereikt zonder permeisatie.</li>
	<li>Was de bovenste kamer 3x maal met 300 μL kamertemperatuur PBS.</li>
	<li>Bereid secundaire vlek oplossing van fluorescently gelabeld geit anti-muis IgG bij 1:200, phalloidin bij 1:100 en DAPI in 1% BSA + 0,1% Triton in PBS. Voeg 100 μL per put toe. Vlek gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur in het donker. Opmerking: Triton wordt toegevoegd aan de secundaire vlek oplossing om de cellen tijdens deze stap te permeabiliseren voor een goede phalloidin vlek.</li>
	<li>Was 3x met 300 μL PBS.</li>
	<li>Plaats een druppel montage oplossing van 5 μL (tabel met materialen) op een glazen glijbaan. Verwijder de put van de 24 goed plaat en inverteren. Snijd het membraan voorzichtig van de put met behulp van een scalpel. Plaats het membraan met de cellen naar boven gericht op de druppel van de montage oplossing op de glazen glijbaan. Voeg 10 μL montage oplossing toe aan de bovenkant en het midden van het membraan en plaats een afdekplaat bovenop om het membraan tussen de glazen glijbaan en de dekglaasje te dichten.</li>
	<li>Droog de glaasjes bij kamertemperatuur in het donker gedurende 24 uur. gekleurde dia's moeten worden gevisualiseerd op confocale Microscoop binnen 1 week na de kleuring.</li>
</ol>

<ol><li>Kraehenbuhl, J. P., Neutra, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epithelial+M+cells%3A+differentiation+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Cell+and+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Epithelial M cells: differentiation and function.</a> Annual Review of Cell and Developmental Biology. 16, 301-332 (2000).</li>
<li>Neutra, M. R., Frey, A., Kraehenbuhl, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epithelial+M+cells%3A+gateways+for+mucosal+infection+and+immunization%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Epithelial M cells: gateways for mucosal infection and immunization.</a> Cell. 86 (3), 345-348 (1996).</li>
<li>Nakamura, Y., Kimura, S., Hase, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((cell-dependent+antigen+uptake+on+follicle-associated+epithelium+for+mucosal+immune+surveillance%5BTitle%5D)+AND+%22Inflammation+and+Regeneration%22%5BJournal%5D)">cell-dependent antigen uptake on follicle-associated epithelium for mucosal immune surveillance.</a> Inflammation and Regeneration. 38, 15(2018).</li>
<li>Clark, M. A., Hirst, B. H., Jepson, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((M-cell+surface+beta1+integrin+expression+and+invasin-mediated+targeting+of+Yersinia+pseudotuberculosis+to+mouse+Peyer%27s+patch+M+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">M-cell surface beta1 integrin expression and invasin-mediated targeting of Yersinia pseudotuberculosis to mouse Peyer's patch M cells.</a> Infection and Immunity. 66 (3), 1237-1243 (1998).</li>
<li>Jensen, V. B., Harty, J. T., Jones, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+of+the+invasive+pathogens+Salmonella+typhimurium%2C+Listeria+monocytogenes%2C+and+Shigella+flexneri+with+M+cells+and+murine+Peyer%27s+patches%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Interactions of the invasive pathogens Salmonella typhimurium, Listeria monocytogenes, and Shigella flexneri with M cells and murine Peyer's patches.</a> Infection and Immunity. 66 (8), 3758-3766 (1998).</li>
<li>Jones, B. D., Ghori, N., Falkow, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salmonella+typhimurium+initiates+murine+infection+by+penetrating+and+destroying+the+specialized+epithelial+M+cells+of+the+Peyer%27s+patches%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Salmonella typhimurium initiates murine infection by penetrating and destroying the specialized epithelial M cells of the Peyer's patches.</a> Journal of Experimental Medicine. 180 (1), 15-23 (1994).</li>
<li>Marra, A., Isberg, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Invasin-dependent+and+invasin-independent+pathways+for+translocation+of+Yersinia+pseudotuberculosis+across+the+Peyer%27s+patch+intestinal+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Invasin-dependent and invasin-independent pathways for translocation of Yersinia pseudotuberculosis across the Peyer's patch intestinal epithelium.</a> Infection and Immunity. 65 (8), 3412-3421 (1997).</li>
<li>Ohno, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+M+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Intestinal M cells.</a> Journal of Biochemistry. 159 (2), 151-160 (2016).</li>
<li>Kerneis, S., Bogdanova, A., Kraehenbuhl, J. P., Pringault, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conversion+by+Peyer%27s+patch+lymphocytes+of+human+enterocytes+into+M+cells+that+transport+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Conversion by Peyer's patch lymphocytes of human enterocytes into M cells that transport bacteria.</a> Science. 277 (5328), 949-952 (1997).</li>
<li>Gullberg, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+specific+markers+and+particle+transport+in+a+new+human+intestinal+M-cell+model%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+and+Biophysical+Research+Communications%22%5BJournal%5D)">Expression of specific markers and particle transport in a new human intestinal M-cell model.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 279 (3), 808-813 (2000).</li>
<li>Giannasca, P. J., Giannasca, K. T., Leichtner, A. M., Neutra, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+intestinal+M+cells+display+the+sialyl+Lewis+A+antigen%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Human intestinal M cells display the sialyl Lewis A antigen.</a> Infection and Immunity. 67 (2), 946-953 (1999).</li>
<li>Jang, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+villous+M+cells%3A+an+antigen+entry+site+in+the+mucosal+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Intestinal villous M cells: an antigen entry site in the mucosal epithelium.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (16), 6110-6115 (2004).</li>
<li>Beloqui, A., Brayden, D. J., Artursson, P., Preat, V., des Rieux, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+human+intestinal+M-cell-like+model+for+investigating+particle%2C+antigen+and+microorganism+translocation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">A human intestinal M-cell-like model for investigating particle, antigen and microorganism translocation.</a> Nature Protocols. 12 (7), 1387-1399 (2017).</li>
<li>Martinez-Argudo, I., Jepson, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salmonella+translocates+across+an+in+vitro+M+cell+model+independently+of+SPI-1+and+SPI-2%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiology%22%5BJournal%5D)">Salmonella translocates across an in vitro M cell model independently of SPI-1 and SPI-2.</a> Microbiology. 154 (Pt 12), 3887-3894 (2008).</li>
<li>Lee, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+lab-to-lab+variability+in+Caco-2+permeability+assays%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Pharmaceutics+and+Biopharmaceutics%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of lab-to-lab variability in Caco-2 permeability assays.</a> European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 114, 38-42 (2017).</li>
<li>Mabbott, N. A., Donaldson, D. S., Ohno, H., Williams, I. R., Mahajan, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfold+%28M%29+cells%3A+important+immunosurveillance+posts+in+the+intestinal+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunology%22%5BJournal%5D)">Microfold (M) cells: important immunosurveillance posts in the intestinal epithelium.</a> Mucosal Immunology. 6 (4), 666-677 (2013).</li>
<li>Sato, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+Lgr5+stem+cells+build+crypt-villus+structures+in+vitro+without+a+mesenchymal+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche.</a> Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).</li>
<li>Sato, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+expansion+of+epithelial+organoids+from+human+colon%2C+adenoma%2C+adenocarcinoma%2C+and+Barrett%27s+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium.</a> Gastroenterology. 141 (5), 1762-1772 (2011).</li>
<li>Knoop, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RANKL+is+necessary+and+sufficient+to+initiate+development+of+antigen-sampling+M+cells+in+the+intestinal+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">RANKL is necessary and sufficient to initiate development of antigen-sampling M cells in the intestinal epithelium.</a> Journal of Immunology. 183 (9), 5738-5747 (2009).</li>
<li>Taylor, R. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphotoxin-independent+expression+of+TNF-related+activation-induced+cytokine+by+stromal+cells+in+cryptopatches%2C+isolated+lymphoid+follicles%2C+and+Peyer%27s+patches%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Lymphotoxin-independent expression of TNF-related activation-induced cytokine by stromal cells in cryptopatches, isolated lymphoid follicles, and Peyer's patches.</a> Journal of Immunology. 178 (9), 5659-5667 (2007).</li>
<li>de Lau, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peyer%27s+patch+M+cells+derived+from+Lgr5%28%2B%29+stem+cells+require+SpiB+and+are+induced+by+RankL+in+cultured+%26%2334%3Bminiguts%26%2334%3B%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Biology%22%5BJournal%5D)">Peyer's patch M cells derived from Lgr5(+) stem cells require SpiB and are induced by RankL in cultured &#34;miniguts&#34;.</a> Molecular and Cellular Biology. 32 (18), 3639-3647 (2012).</li>
<li>Rouch, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+Functional+Microfold+%28M%29+Cells+from+Intestinal+Stem+Cells+in+Primary+Human+Enteroids%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Development of Functional Microfold (M) Cells from Intestinal Stem Cells in Primary Human Enteroids.</a> PloS One. 11 (1), e0148216(2016).</li>
<li>Wood, M. B., Rios, D., Williams, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TNF-alpha+augments+RANKL-dependent+intestinal+M+cell+differentiation+in+enteroid+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology%3A+Cell+Physiology%22%5BJournal%5D)">TNF-alpha augments RANKL-dependent intestinal M cell differentiation in enteroid cultures.</a> American Journal of Physiology: Cell Physiology. 311 (3), C498-C507 (2016).</li>
<li>Zou, W. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Intestinal+Enteroids%3A+New+Models+to+Study+Gastrointestinal+Virus+Infections%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Human Intestinal Enteroids: New Models to Study Gastrointestinal Virus Infections.</a> Methods in Molecular Biology. , (2017).</li>
<li>Kozuka, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+Characterization+of+a+Human+and+Mouse+Intestinal+Epithelial+Cell+Monolayer+Platform%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Development and Characterization of a Human and Mouse Intestinal Epithelial Cell Monolayer Platform.</a> Stem Cell Reports. 9 (6), 1976-1990 (2017).</li>
<li>Barker, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+stem+cells+in+small+intestine+and+colon+by+marker+gene+Lgr5%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Identification of stem cells in small intestine and colon by marker gene Lgr5.</a> Nature. 449 (7165), 1003-1007 (2007).</li>
<li>Mantis, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+adherence+of+IgA+to+murine+Peyer%27s+patch+M+cells%3A+evidence+for+a+novel+IgA+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Selective adherence of IgA to murine Peyer's patch M cells: evidence for a novel IgA receptor.</a> Journal of Immunology. 169 (4), 1844-1851 (2002).</li>
<li>Rios, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antigen+sampling+by+intestinal+M+cells+is+the+principal+pathway+initiating+mucosal+IgA+production+to+commensal+enteric+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunology%22%5BJournal%5D)">Antigen sampling by intestinal M cells is the principal pathway initiating mucosal IgA production to commensal enteric bacteria.</a> Mucosal Immunology. 9 (4), 907-916 (2016).</li>
<li>Miller, H., Zhang, J., Kuolee, R., Patel, G. B., Chen, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+M+cells%3A+the+fallible+sentinels%3F%5BTitle%5D)+AND+%22World+Journal+of+Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Intestinal M cells: the fallible sentinels?</a> World Journal of Gastroenterology. 13 (10), 1477-1486 (2007).</li>
<li>Heijmans, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ER+stress+causes+rapid+loss+of+intestinal+epithelial+stemness+through+activation+of+the+unfolded+protein+response%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">ER stress causes rapid loss of intestinal epithelial stemness through activation of the unfolded protein response.</a> Cell Reports. 3 (4), 1128-1139 (2013).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Om monolagen te ontwikkelen die goed differentiëren in de belangrijkste intestinale celtypen en M-cellen, is het essentieel om op de hoogte te zijn van verschillende factoren. Ileal-enteroïden moeten worden geoogst uit ECM-culturen die ongedifferentieerd zijn en een hoog percentage van Lgr5 + stamcellen hebben. Visueel moet het merendeel van de ileale-enteroïden in de ECM-culturen niet worden verduisterd en multilobular, en moet LGR5 expressie in deze culturen worden gedetecteerd door QRT-PCR-analyse. Kwaliteitscontrole van geconditioneerde media is essentieel voor de verspreiding van niet-gedifferentieerde culturen in de loop van de tijd en moet worden voltooid voor elke batch geconditioneerde media die wordt geproduceerd. Kwaliteitscontrole kan worden voltooid door een nieuwe batch media te testen op sommige ECM-culturen en de morfologie van de ileale-enteroïden te vergelijken met een vorige media batch in de loop van een week. LGR5 expressie moet relatief vergelijkbaar blijven in de ileale enteroid culturen die in de nieuwe batch media worden geteeld ten opzichte van de vorige batch.
Tijdens de bereiding van de ileale-enteroïden voor het zaaien als monolagen is het belangrijk om de celoplossing krachtig te Pipetteer na incubatie met trypsine om de ileale-enteroïden in afzonderlijke cellen op te splitsen. Celklonters kunnen leiden tot meerlaagse vorming wanneer ze voor monolayers worden gesempt. Daarnaast is het essentieel om het aantal cellen dat nodig is om een monolaag te vormen, te bepalen voor elke afzonderlijke ileale enteroid lijn die wordt verkregen. Typisch, deze waarde kan variëren van 2,5 x 105 – 5,0 x 105 cellen/goed maar hangt af van de mate van Cystic tot niet-Cystic ileale enteroids in culturen en varieert voor elke afzonderlijke ileale enteroid lijn. Uit ervaring, ileale-enteroïden gekweekt in ECM die lijken minder Cystic vereisen hogere celseeding dichtheid om monolagen te bereiken. Het is raadzaam om de bovenste kamer te wassen na 1 dag van de groei door zachtjes pipetteren van de media op en neer 2-3 keer en vervangen door nieuwe groeimedia. Dit proces spaanders cellen die zijn geland op de top van andere cellen verminderen van de kans op meerlaagse vorming. Overschakelen van de media in de bovenste kamer van groeimedia naar M Cell media wanneer de monolagen zijn ~ 80% Confluent, die meestal optreedt op dag 2 na seeding, helpt bereiken goede M celdifferentiatie. Toevoeging van Rankl/tnfα aan de bovenste kamer tijdens M-celinductie leidt niet tot de ontwikkeling van een groter aantal M-cellen per monolaag en kan daarom buiten de media van de bovenste kamer worden gelaten. Trans putten van verschillende poriegroottes kunnen in dit protocol worden gebruikt zonder de ontwikkeling van M-cellen te beïnvloeden; de dichtheid van de celseeding moet echter worden geoptimaliseerd voor mensen met een grotere poriegrootte. Collageen IV kan worden vervangen door ECM als een kelder membraan proteïne coating voor trans putten of goed platen die beter geschikt voor bepaalde toepassingen kunnen zijn.
Ileal enteroid-afgeleide monolagen op trans Wells bieden een tweekamer systeem dat het mogelijk maakt om gedefinieerde apicale en basolaterale oppervlakken te creëren, zodat de 4-5 verschillende soorten epitheel intestinale cellen kunnen polariseren om oppervlak markeringen op elke zijde ten opzichte van de in de darm gevonden. Aanvullende factoren kunnen aan beide zijden worden toegevoegd, zoals deeltjes, infectieuze agentia of andere celtypen. Tot op heden blijven echter enkele beperkingen bestaan. Zoals beschreven, dit systeem is een statisch systeem dat geen fysiologische stroming, intestinale contracties, en intestinale inhoud ontbreekt. Daarnaast is de villus-crypt-architectuur verloren gegaan door de vorming van een platte monolayer. Deze systemen missen Peyer's patch gebieden, immuuncellen en stromale cellen. Of het gebrek aan immuun en stromale cellen die nauw onder M cellen wonen beïnvloedt de invaginaties die niet worden waargenomen in dit systeem en andere fysiologische werking is een belangrijk toekomstig gebied van onderzoek. Dit protocol kan worden aangepast aan een 96-well plaat of een multi-well plate formaat. De procedure voor het coaten van de 96-boorput plaat met ECM en zaaien met enkelvoudige cellen van ileale-enteroïden blijft hetzelfde als voor trans putten. Titratie van de celseeding dichtheid vereist voor het verkrijgen van monolagen moet worden gedaan, maar meestal varieert van 1,0 x 105 – 3,0 x 105 cellen/goed in een 96-well plaat formaat. M-cellen worden geïnduceerd door het vervangen van de groeimedia met M-celmedia wanneer de monolagen 80% Confluent Health zijn, meestal door dagen 1-3, afhankelijk van de eerste celseeding dichtheid.
Deze methode van het differentiëren van M cellen van ileale-enteroïden in vitro biedt significante verbeteringen ten opzichte van de CaCO-2-methode. De ileale-enteroïden zijn primaire cellen en ten minste 4-5 epitheelcellen zijn aanwezig in het systeem. Bovendien, ileale enteroid lijnen afgeleid van verschillende mensen kunnen worden bestudeerd om te onderzoeken hoe genetica of ziekte staat beïnvloeden M celontwikkeling en gedrag. Extra manipulatie van de ileale-enteroïden tijdens M-celdifferentiatie zal een beter begrip van M-celontwikkeling mogelijk maken, inclusief het karakteriseren van M-celprecursor cellen. Tot slot, aangezien de moleculaire mechanismen van M-cel fagocytose en transcytose nog steeds niet volledig worden begrepen3,29, biedt dit model de mogelijkheid om antigeen-en deeltjes opname door M-cellen te bestuderen en te visualiseren.

M (microfold) cellen zijn gespecialiseerde intestinale epitheliale cellen gevonden in de eerste plaats in de follikel geassocieerde epitheel (FAE) van de darm bovenliggende kleine lymfoïde gebieden genoemd Peyer's patches1. M-cellen hebben korte onregelmatige apicale microvilli en zijn diep invaginated op hun basolaterale kant, waardoor immuuncellen nauw kunnen verblijven in hun cellichaam2. Deze unieke morfologie stelt M-cellen in staat om antigeen van het apicale lumen van de darm te proeven en deze rechtstreeks aan de onderliggende immuuncellen te leveren2. Op deze manier zijn M-cellen belangrijk voor immuun surveillance in de darm, maar kunnen ze ook worden misbruikt door pathogenen voor binnenkomst in de lamina propria1,2,3,4,5, 6,7.
De studie van M-cellen is gehinderd door verschillende factoren. Eerste, M cellen zijn te vinden op een lage frequentie in de muis en de menselijke darm8. In gekweekte cellen systemen, M cel-achtige cellen zijn geïnduceerd om te differentiëren door coculturing een gepolariseerde adenocarcinoom cellijn, CaCO-2, met ofwel b lymfocyten van muis Peyer patches of de b Cell lymfoom cellijn, Raji B9,10 . Dit resulteert in een subset van CaCO-2-cellen die de M-celmarkeringen sialyl Lewis a antigen en UEA-1 in het gepolariseerde epitheel9,10uitdrukken. (Deze markers worden ook uitgedrukt in Goblet cellen in intestinale weefsels, dus tegenwoordig worden minder vaak gebruikt als definitieve M cel markeringen11,12.) Dit CaCO-2-M-celsysteem is gebruikt om de opname van deeltjes en bacteriën translocatie13,14te bestuderen. Echter, CaCO-2 cellen zijn een gevestigde cellijn van een grote intestinale adenocarcinoom met de verstorende factor dat verschillende bronnen van CaCO-2 cellen verschillende fenotypes tussen Labs15weergeven. Verder kunnen ze de transcriptie niveaus van echte M-cellen niet volledig recapituleren, omdat ze geen uitdrukking hebben van de momenteel bekende M-celmarkeringen GP2 en SpiB16. Daarom zijn aanvullende en fysiologisch relevante cultuur modellen nodig om M-celontwikkeling en-functies te kunnen bestuderen.
In de afgelopen tien jaar, het gebied van enteroid-afgeleide modelsystemen van de darm is snel vooruitgang van de eerste ontdekking dat intestinale stamcellen afgeleid van menselijke intestinale biopsie kunnen zichzelf propageren en Self-renew in cultuur 17 , 18. belangrijk is dat het verwijderen van stamcel bevorderende factoren uit de groeimedia deze stamcel culturen kan onderscheiden in de vele celtypen die in de darm18worden aangetroffen. Bovendien, recent werk suggereert het belang van Rankl-rang signalering in M celontwikkeling in de darm19,20. De rang receptor is een lid van de TNF familie van receptoren die wordt uitgedrukt op epitheliale precursor cellen in de darm19 terwijl Rankl (de rang receptor ligand) wordt vrijgegeven door stromale cellen van de Peyer patches20. Aangezien de epitheliale celtypen aanwezig in ileale-enteroïden geen Rankl produceren, kan M celdifferentiatie in ileale enteroid culturen worden geïnduceerd door de toevoeging van Rankl aan de cultuur media21,22. Opname van TNFα in de cultuur media helpt bij de ontwikkeling van M-cellen in ileale-enteroïden23. Hier beschrijven we de methoden voor het induceren van differentiatie van M-cellen in intestinale monolagen afgeleid van menselijke ileale-enteroïden. Onze methodes zijn deels gebaseerd op wijzigingen van de volgende protocollen21,22,23.

<table><tbody><tr><td>[Leu15]-Gastrin I</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G9145</td><td>MCMGF+ en DM ingredient Oplosmiddel: PBS Stock Concentratie: 10 &micro;M Eindconcentratie: 10 nM</td></tr><tr><td>0.5 M EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>15575020</td><td>Voor het breken van ECM Oplosmiddel: PBS Stock Concentratie: 0.5 M Eindconcentratie: 0.5 mM</td></tr><tr><td>40 &micro;m cel zeef</td><td>Corning</td><td>352340</td><td>Voor het uitsluiten van klonten van enkele cellen Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>A-8301</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>SML0788-5MG</td><td>MCMGF+ en DM ingredient Oplosmiddel: DMSO Stock Concentratie: 500 &micro;M Eindconcentratie: 500 nM</td></tr><tr><td>Advanced DMEM/F12</td><td>Invitrogen</td><td>12634-028</td><td>MCMGF+ en DM basaal medium Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 geit anti-muis IgG</td><td>Thermo Fisher</td><td>A-11005</td><td>Voor secundaire kleuring Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie: 1:200</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 Phalloidin</td><td>Invitrogen</td><td>A22287</td><td>Optionele secundaire kleuring voor F-actine Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie: 1:100</td></tr><tr><td>B27 Supplement</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td>MCMGF+ en DM ingredient Oplosmiddel: Stock Concentratie: 50x Eindconcentratie: 1x</td></tr><tr><td>Bovien Serum Albumine</td><td>Chem-Impex</td><td>00535</td><td>5% voor blokkeringsoplossing Oplosmiddel: PBS Stock Concentratie: Eindconcentratie: 0.01</td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Fisher Scientific</td><td>C298-500</td><td>Voor RNA isolatie Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>Circle dekglasjes</td><td>Thomas Scientific</td><td>1157B50</td><td>Voor het monteren van membraan op glasplaat Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>DAPI (4',6-diamidino-2-fenylindole)</td><td>Thermo Fisher</td><td>62247</td><td>Voor secundaire kleuring Oplosmiddel: PBS Stock Concentratie: 100x Eindconcentratie: 1x</td></tr><tr><td>DEPC Behandelde RNAse vrije H2O</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP561-1</td><td>Voor RNA isolatie Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>DNA Verwijderingskit</td><td>Invitrogen</td><td>AM1906</td><td>Voor RNA isolatie Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>Ethyl Alcohol, 200 proof</td><td>Sigma Aldrich</td><td>EX0276-4</td><td>Voor RNA isolatie Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>Feather Scalpels</td><td>VWR</td><td>100499-580</td><td>Voor het snijden van membraan uit transwells Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>Fetal bovien serum (FBS)</td><td>Gibco</td><td>26140079</td><td>Voor het inactiveren van trypsine Oplosmiddel: Advanced DMEM/F12 Stock Concentratie: 1 Eindconcentratie: 0.1</td></tr><tr><td>Glasplaatjes</td><td>Mercedes Scientific</td><td>MER 7200/90/WH</td><td>Voor het monteren van membraan op glasplaat Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Invitrogen</td><td>35050-061</td><td>MCMGF+ en DM ingredient Oplosmiddel: Stock Concentratie: 200 mM Eindconcentratie: 2 mM</td></tr><tr><td>GP2 Antilichaam</td><td>MBL International</td><td>D277-3</td><td>Oppervlakte kleuring voor M cellen Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie: 1:100</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Invitrogen</td><td>15630-080</td><td>MCMGF+ en DM ingredient Oplosmiddel: Stock Concentratie: 1 M Eindconcentratie: 10 mM</td></tr><tr><td>Human Serum IgA</td><td>Lee BioSolutions</td><td>340-12-1</td><td>Voor functionele analyse van M cellen Oplosmiddel: PBS Stock Concentratie: 1 mg/mL Eindconcentratie: 10 &micro;g</td></tr><tr><td>L-Wnt3a geconditioneerd media</td><td>Cell line van ATCC</td><td>CRL-2647</td><td>Zie ATCC Productblad voor L Wnt&shy;3A (ATCC CRL2647) voor geconditioneerd media protocol; MCMGF+ ingredient Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie: 75% in MCMGF+ 0% in DM</td></tr><tr><td>Matrigel, GFR, fenol vrij</td><td>Corning</td><td>356231</td><td>Extracellulaire Matrix (ECM) Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie:</td></tr><tr><td>Muis recombinant EGF</td><td>Invitrogen</td><td>PMG8043</td><td>MCMGF+ en DM ingredient Oplosmiddel: PBS Stock Concentratie: 50 &micro;g/mL Eindconcentratie: 50 ng/mL</td></tr><tr><td>N2 Supplement</td><td>Invitrogen</td><td>17502-048</td><td>MCMGF+ en DM ingredient Oplosmiddel: Stock Concentratie: 100x Eindconcentratie: 1x</td></tr><tr><td>N-acetylcysteïne</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9165-5G</td><td>MCMGF+ en DM ingredient Oplosmiddel: H2O Stock Concentratie: 500 mM Eindconcentratie: 1 mM</td></tr><tr><td>Noggin geconditioneerd media</td><td>Cell line gift van Dr. Gijs van den Brink (Universiteit van Amsterdam)</td><td></td><td>Ref 30 voor geconditioneerd media protocol; MCMGF+ en DM Ingrediënt Oplosmiddel: Stock Concentratie: Eindconcentratie: 5% in MCMGF

geïnduceerde differentiatie van m cel-achtige cellen in menselijke stamcel-afgeleide ileal enteroid monolayers

Induced Differentiation of M Cell-like Cells in Human Stem Cell-derived Ileal Enteroid Monolayers

M (microfold) cellen van de darmfunctie voor het vervoer van antigeen van de apicale lumen naar de onderliggende Peyer patches en lamina propria waar immuuncellen wonen en daarom bijdragen aan mucosale immuniteit in de darm. Een volledig begrip van hoe M-cellen differentiëren in de darm en de moleculaire mechanismen van antigeen-opname door M-cellen ontbreekt. Dit komt omdat M-cellen een zeldzame populatie van cellen in de darm zijn en omdat in vitro-modellen voor M-cellen niet robuust zijn. De ontdekking van een zelf-vernieuwend stamcel kweek systeem van de darm, genaamd enteroïden, heeft nieuwe mogelijkheden geboden voor het kweken van M-cellen. Enteroïden zijn voordelig ten opzichte van standaard gekweekte cellijnen omdat ze kunnen worden gedifferentieerd in verschillende belangrijke celtypen gevonden in de darm, met inbegrip van Goblet cellen, Paneth cellen, enteroendocrine cellen en enterocyten. De cytokine RANKL is essentieel in de ontwikkeling van M-cellen, en toevoeging van RANKL en TNF-α aan cultuur media bevordert een subset van cellen van ileale-enteroïden om onderscheid te maken in M-cellen. Het volgende protocol beschrijft een methode voor de differentiatie van M-cellen in een transwell epitheel gepolariseerd monolaag-systeem van de darm met behulp van menselijke ileale-enteroïden. Deze methode kan worden toegepast op de studie van M-celontwikkeling en-functie.

Ileale-enteroïden die in ECM worden geteeld, worden visueel geanalyseerd en door qRT-PCR voor hun relatieve gezondheidstoestand en differentiatie toestanden als een middel voor kwaliteitscontrole voor ileale enteroid culturen en voor gebruik in monolagen. Ongedifferentieerde ileale-enteroïden die in ecu worden geteeld, lijken helder en cystic in morfologie, wat duidt op de aanwezigheid van veel stamcellen (Figuur 1a). Na verloop van tijd, ongedifferentieerde ileale-enteroïden geteeld in groeimedia kunnen nemen op een tussenliggende fenotype waar sommige Cystic verschijnen en sommige lijken ondoorzichtig (Figuur 1b). Onze ongedifferentieerde monsters lijken vaak op die in Figuur 1b in plaats van Figuur 1a. Deze tussenliggende culturen bevatten meer terminaal gedifferentieerde enterocyten zoals gemeten door uitdrukking van de enterocyte marker, sucrase isomaltase (SI), en vermoedelijk geëxtrudeerde dode enterocyten in het lumen dragen bij aan hun dichte uiterlijk. Ileal-enteroïden kunnen in deze intermediaire toestand worden gebruikt voor de ontwikkeling van monolagen, maar het moet in gedachten worden gehouden dat de hoeveelheid intestinale stamcellen in de culturen laag kan zijn, en sommige gedifferentieerde celtypen kunnen aanwezig zijn (zie bijvoorbeeld qRT-PCR- gehalten in niet-gedifferentieerde monsters die zijn geteeld in ecu die lijken op Figuur 1b in Figuur 2). Ter vergelijking, ileale enteroids gekweekt met differentiatie media in ECM voor 5 + dagen zal uniform verduisterd en lobulair en culturen met deze morfologie zijn niet goed kandidaten voor zaaien monolagen (figuur 1c).
Expressie van stamcel genen en genen van intestinale celdifferentiatie kan worden geanalyseerd door qRT-PCR als een andere manier om de gezondheidstoestand van ileale-enteroïden die in ECM worden geteeld te beoordelen en hun differentiatie capaciteiten, eenmaal als monolagen op trans putten. De uitdrukking van een stamcel gen, LGR5, een enterocyte gen, si, een Goblet celgen, MUC2, en een Paneth celgen, lyz, wordt vergeleken tussen ongedifferentieerde ileale enteroid culturen die in ECM worden geteeld en gedifferentieerde ileale enteroid monolagen in de aanwezigheid of afwezigheid van Rankl/tnfα (Figuur 2). Hoewel de waarden kunnen verschillen tussen experimenten, expressie van LGR5 moet afnemen na differentiatie van monolagen18,26. LGR5 expressie wordt meestal niet gedetecteerd in de gedifferentieerde ileale monolagen zonder Rankl en tnfα op dag 7. Omgekeerd, expressie van markers van differentiatie van specifieke celtypen, zoals si en MUC2, toenemen na differentiatie18. De uitdrukking van Lyz neemt over het algemeen af na differentiatie in onze culturen. Als de ileale enteroid culturen die worden gebruikt voor het maken van monolagen meer op Figuur 1b lijken dan Figuur 1a, kunnen stijgingen van de intestinale differentiatie markeringen bescheiden na differentiatie zijn omdat deze eerste culturen heterogeen zijn in intestinale celtypen en hebben een hoger basaal niveau van si en MUC2. Differentiatie in monolagen komt echter nog steeds voor als beoordeeld door verlies van LGR5 expressie en microscopie (zie hieronder). Bovendien vermindert de toevoeging van RANKL en TNFα aan de differentiatie media het verlies van LGR5 expressie (Figuur 2). Parallel, de uitdrukking van si en MUC2 zijn iets lager dan in de gedifferentieerde toestand ontbreekt Rankl en tnfα hoewel hun niveaus boven de ongedifferentieerde voorwaarde toenemen.
M celdifferentiatie in monolagen wordt zowel door QRT-PCR als door immunofluorescentie bepaald met behulp van twee M cel-specifieke markers, inclusief celoppervlak glycoproteïne 2 (GP2) en transcriptiefactor spib21. De uitdrukking van de GP2 en spib is upregulated in de ileale-enteroid-afgeleide monolagen in de aanwezigheid van Rankl en tnfα en wordt niet gedetecteerd in niet-Rankl-en tnfα-behandelde monsters (Figuur 3). Expressie van deze markers kan ook worden genormaliseerd naar een stukje van kleine darmweefsel22, indien beschikbaar. Dit maakt de vouw verandering van deze m celmarkeringen te vergelijken met weefsel dat m cellen heeft in plaats van het beheersen van monolagen die geen uitdrukking van deze markers hebben en maakt standaardisatie tussen experimenten in één Lab. M-cellen worden ook gedetecteerd door de oppervlakte uitdrukking van de GP2 door immunofluorescentie (Figuur 4). Typisch, in een confluente monolayer, worden 1 tot 5 M cellen waargenomen in een gegeven Microscoop veld bij 40X vergroting door dag 6 tot en met 8 na seeding in monsters behandeld met RANKL en TNFα (Figuur 4a-D). Er wordt geen GP2-uitdrukking gezien in de onbehandelde monsters (figuur 4e). De orthogonale weergave van het XZ-vlak met een phalloidin-sonde toont actine-structuren rond elke cel en de GP2-uitdrukking op het apicale oppervlak van M-cellen (Figuur 4F-G). Dit model aan de lage frequentie van M cellen gevonden in de darm van de mens1,2,8. Om M-cellen te zuiveren en te isoleren voor verder onderzoek, kunnen M-cellen worden gekleurd met behulp van de GP2-oppervlakte uitdrukking en gesorteerd met behulp van FACS voor de GP2 +-cellen.
M-cellen binden aan en transporteren antigeen van de intestinale lumen naar de immuuncellen die zich onder het epitheel2bevinden. Secretoire Iga geproduceerd in de darm bindt aan bacteriën en kan binden aan het apicale oppervlak van M cellen ter vergemakkelijking van het transport van de microben27,28. Om te bepalen of de M-cellen die in dit model zijn ontwikkeld, in staat zijn om te binden aan IgA, wordt humaan serum IgA toegevoegd aan de bovenste kamer, toegestaan om te binden voor 1 h, en vervolgens worden de monolagen bereid voor immunofluorescentie analyse. De aanwezigheid van IgA op M-cellen wordt gevisualiseerd met behulp van een fluor-geconjugeerd secundair antilichaam dat de zware keten van humaan serum IgA herkent. M-cellen die zijn behandeld met IgA voor 1 uur hebben IgA gebonden aan het apicale oppervlak (figuur 5a), terwijl m-cellen in controle putten die alleen werden behandeld met het secundaire antilichaam voor Iga geen detecteerbaar signaal hebben (Figuur 5b). Verder bindt IgA zich specifiek aan het apicale oppervlak van M-cellen en is het niet gebonden aan cellen die de GP2-oppervlakte vlek missen. Bovendien hebben M-cellen karakteristieke kortere dichte actine op hun apicale oppervlak2. Om de morfologie van de M-cel in dit model te analyseren, worden ileale-enteroid-afgeleide monolagen gedurende 7 dagen geteeld en geoogst voor immunofluorescentie analyse van F-actin met phalloidine. Metingen van de intensiteit van actine pixels worden berekend voor M-cellen en voor niet-M-cellen die direct naast elke M-cel worden gebruikt met ImageJ-software (Figuur 6a). De actin-intensiteit wordt verlaagd op de GP2 + M-cellen in dit model en een representatief beeld wordt weergegeven in Figuur 6b. Over het algemeen hebben de M-cellen die zijn ontwikkeld in dit ileale enteroid-afgeleide monolaag-model karakteristieke genexpressie, morfologie en sommige M-celfuncties van humane intestinale M-cellen, zoals binding aan Iga.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig01.jpg"> Figuur 1: representatieve morfologie van menselijke ileale-enteroïden in ECM na splitsing van één week. A) heldere en cystische ongedifferentieerde ileale-enteroïden. B) intermediair fenotype met enkele Cystic ileale enteroids en enkele ondoorzichtige lobulaire ileale-enteroïden. C) verduisterd en lobulaire gedifferentieerde ileale-enteroïden. Beelden genomen door de lens van een optische lichtmicroscoop met 4x vergroting met behulp van een iPhone7 camera. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig01large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig02.jpg"> Figuur 2: relatieve expressie van stamcel-en differentiatie markeringen van menselijke ileale-enteroïden die in ecu worden geteeld of worden gedifferentieerd als monolagen. Ileal-enteroïden werden gedurende 7 dagen geteeld in ecu (ongedifferentieerd) of gekweekt en gedifferentieerd als monolagen zonder (gedifferentieerd) of met RANKL en TNFα (gedifferentieerd + R/T). Ileal enteroid culturen of monolagen werden geoogst in trizol voor RNA-extractie. Genexpressie werd bepaald door qRT-PCR en wordt uitgedrukt ten opzichte van Gapdh. Gegevens zijn gemiddeld 3 onafhankelijke putten van ileale-enteroïden of monolagen per aandoening. Foutbalken geven aan dat SEM. ND niet is gedetecteerd. Statistische significantie werd bepaald op Log-getransformeerde waarden met behulp van One-way ANOVA met Dunnett de meervoudige vergelijkingstest vergeleken met de ongedifferentieerde. * * p < 0,01, * * * p < 0,001 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig02large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig03.jpg"> Figuur 3: relatieve expressie van M-cel-specifieke markers GP2 en spib van humane ileale-enteroid-afgeleide monolayers. Rankl/tnfα behandelde en niet-behandelde humane ileale enteroid-afgeleide monolagen werden na 7 dagen na het zaaien in trizol voor RNA-extractie geoogst. Genexpressie werd bepaald door qRT-PCR en wordt uitgedrukt ten opzichte van Gapdh. Gegevens zijn gemiddeld 6 onafhankelijke monolagen per aandoening. Foutbalken geven aan dat SEM. ND niet is gedetecteerd. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig03large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig04.jpg"> Figuur 4: immunofluorescentie van de GP2-expressie van het oppervlak op M-cellen in humane ileale-enteroid-afgeleide monolagen na verloop van tijd. RANKL/TNFα behandelde en niet-behandelde humane ileale enteroid-afgeleide monolagen werden vastgesteld in 4% PFA en gekleurd voor immunofluorescentie op verschillende aangegeven dagen na het zaaien. Afbeeldingen werden geanalyseerd met behulp van ImageJ-software. DAPI = blauw; Glycoproteïne 2 (GP2) = rood. (a-D) Rankl/tnfα behandelde monolagen op verschillende dagen na de seeding. E) niet-behandelde monolaag die op dag 7 na het zaaien wordt geoogst. (F-G) Orthogonaal xz-vlak van monolagen op dag 7 na seeding overgelegd met phalloidin-sonde voor F-actin. Phalloidin = cyaan. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig04large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig05.jpg"> Figuur 5: Iga bindt specifiek aan het apicale oppervlak van M-cellen. RANKL/TNFα-behandelde humane ileale-enteroid-afgeleide monolagen werden gedurende 7 dagen geteeld en vervolgens (a) behandeld met 10 μg humaan serum Iga voor 1 uur of (B) met een mock behandeld met PBS alleen (geen Iga-controle). Na 1 h werden monolagen 2x in PBS gewassen, werden opgelost in 4% PFA, permeabel met 0,1% tritonx-100, en gekleurd voor immunofluorescentie. Afbeeldingen werden geanalyseerd met behulp van ImageJ-software en zijn representatief voor 3 onafhankelijke experimenten. DAPI = blauw; Glycoproteïne 2 (GP2) = rood; Antilichamen tegen humaan serum IgA = groen; Phalloidin = cyaan. Zwarte pijlen duiden IgA gebonden aan apicale oppervlak van M cel. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig05large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig06.jpg"> Figuur 6: M-cellen hebben een verminderde actine-intensiteit in vergelijking met aangrenzende niet-M-cellen. RANKL/TNFα-behandelde humane ileale enteroid-afgeleide monolagen werden gedurende 7 dagen geteeld en vervolgens vastgesteld op 4% PFA en werden bevlekt voor immunofluorescentie. (A) met IMAGEJ werden GP2 + M-cellen geschetst met behulp van de FreeHand Selection Tool en metingen van het gebied en de geïntegreerde dichtheid werden genomen in het Phalloidin-kanaal. Dezelfde analyse werd vervolgens voltooid voor elke aangrenzende niet-M-cel die de M-cel buren. De onbewerkte geïntegreerde dichtheid werd gedeeld door het gebied van elke individuele cel voor normalisatie. De gemiddelde geïntegreerde dichtheid/oppervlakte werd berekend voor elke aangrenzende niet-M-cellen voor elke M-cel. Beelden werden geanalyseerd van 3 onafhankelijke experimenten; elke stip is een M-cel of gemiddelde van naburige cellen. Foutbalken geven SD aan. statistische significantie werd bepaald op Log-getransformeerde waarden met behulp van een gekoppelde t-test. p = 0,0001 (B) representatief beeld van xz-vlak vanaf plot in A. afbeeldingen werden geanalyseerd met behulp van imagej-software. DAPI = blauw; Glycoproteïne 2 (GP2) = rood; Phalloidin = cyaan. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig06large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>

Dit protocol beschrijft hoe de differentiatie van M cellen in menselijke stamcel afgeleide ileale monolagen en methoden om hun ontwikkeling te beoordelen induceren.

Geïnduceerde differentiatie van M cel-achtige cellen in menselijke stamcel-afgeleide Ileal Enteroid monolayers

M (microfold) cells of the intestine function to transport antigen from the apical lumen to the underlying Peyer&#8217;s patches and lamina propria where ...

Een volledig begrip van de rol die de M-cellen spelen in darmhomeostase en immuunafweer ontbreekt, vanwege de zeldzaamheid van M-cellen in de darm. Geïnduceerde differentiatie van M-cellen in door menselijke darmstamcellen afgeleide culturen zal de studie van M-celontwikkeling en -functies mogelijk maken. Om de Transwell membranen te coaten, plaats je het gewenste aantal Transwells in een 24 putplaat, waardoor een tweekamersysteem ontstaat.Verdun de extracellulaire matrix, of ECM, 25 keer in koud steriel fosfaat gebufferde zoutoplossing. Voeg vervolgens 100 microliter koude verdunde oplossing toe aan elke bovenste kamer op het membraan. Bedek de 24 put plaat met een deksel, en plaats de plaat in een weefsel cultuur incubator op 37 graden Celsius gedurende twee uur om de ECM stolling op het mem.Na twee uur, verwijder de plaat uit de couveuse, en plaats in een weefsel cultuur kap. Met behulp van steriele pincetten, omkeren elke Transwell om voorzichtig te verwijderen resterende oplossing. Laat de membranen aan de lucht drogen in de kap met het deksel open terwijl de cellen worden verzameld.Verwijder de plaat van ileal enteroïden uit de couveuse en verwijder voorzichtig de kweekmedia uit elke put door vacuümaspiratie of met een pipet. Om de ECM te breken, voeg 500 microliter ijskoude 0,5 millimolar EDTA toe aan elke put met ileale enteroïden die in ECM zijn opgehangen. Pipet op en neer krachtig met een P1000 pipetter set op 500 microliters te breken ECM, waardoor het vrijgeven van ileal enteroids in de oplossing.Verzamel de oplossing van elke put in 15 milliliter conische buizen. Pellet de cellen in een centrifuge op 140G en vier graden Celsius gedurende vijf minuten. Pellet moet zichtbaar zijn, maar kan gemakkelijk worden losgemaakt, dus langzaam verwijderen van de supernatant door vacuüm aspiratie of met een pipet.Om strakke verbindingsverbindingen te verteren en de ileal enteroïden in enkele cellen op te splitsen, resuspend de pellet in 500 microliters van kamertemperatuur trypsine per elke vijf verzamelde putten. Met behulp van een P1000 pipetter, pipet op en neer om de klonten te desaggen te desplitseren. Incubeer de buizen in een 37 graden Celsius waterbad gedurende vijf minuten of minder.Voeg een milliliter geavanceerde DMEM F-12 toe met 10% FPS per 500 microliter trypsine om de trypsine te activeren. Pipet op en neer met een P1000 ingesteld op 500 microliters ten minste 50 keer tegen de zijkant van de conische buis om verder te desaggen resterende klonten in enkele cellen. Plaats een 40 micron cel zeef over een 50 milliliter conische buis, en voeg een milliliter van geavanceerde DMEM F-12 met 10% FPS nat de cel zeef.Pipette de eencellige suspensie van de 15 milliliter conische op de zeef. Was de zeef met een milliliter geavanceerde DMEM F-12 met 10% FPS. Breng de cellen die ging door de cel zeef van de 50 milliliter conische buis in een nieuwe 15 milliliter conische buis.Tel de cellen met behulp van een hemocytometer. Centrifugeer de cellen in de nieuwe buis van 15 milliliter op 400G gedurende vijf minuten bij kamertemperatuur. De celpellet moet zichtbaar zijn.Verwijder voorzichtig de supernatant met een pipet, opnieuw het opslaan van de supernatant in het geval de pellet wordt losgemaakt. Resuspend de cel pellet in MCMGF plus met 10 micromolar Y27632. Zorg ervoor dat de ECM-gecodeerde membranen volledig zijn gedroogd, zoals beoordeeld door het oog.Was de bovenste kamer met 200 microliter van MCMGF plus. Voeg vervolgens 200 microliter celoplossing toe aan elke bovenkamer. Voeg 700 microliter MCMGF plus met 10 micromolar Y27632 toe aan elke onderste kamer.Plaats de plaat in een 37 graden Celsius weefselkweek incubator met 5%CO2. Na een dag van groei, verwijder de media uit de bovenste kamer, en vervangen door 200 microliters van verse MCMGF plus om groei van meerdere cellagen te voorkomen. Zodra monolagen zijn ongeveer 80%confluent, meestal tussen dagen een tot drie na het zaaien, vervangen basilateral media met differentiatie media voor controle putten, of met M cel media voor M cel inductie putten.Vervang de media in de bovenkamer door differentiatiemedia voor beide voorwaarden. Als u M-celdifferentiatie wilt verifiëren door QRTPCR, verwijdert u eerst de media uit de boven- en onderkamers. Was de bovenste kamer twee keer voorzichtig met 300 microliters kamertemperatuur PPS.Voeg 300 microliter TRIzol toe aan elke bovenkamer en broed vijf minuten op kamertemperatuur. Ondertussen, label micro centrifuge buizen voor elke put, en voeg 700 microliters van TRIzol aan elke buis. Verzamel celhomogenaat door voorzichtig op en neer te pipetten drie keer met een P1000, en breng de inhoud in overeenkomstige microcentrifuge buizen.Vortex voor vijf seconden te mengen. Bewaar de monsters drie minuten op kamertemperatuur en ga vervolgens verder met standaard QRTPCR-protocollen of bewaar monsters bij negatieve 80 graden Celsius. Om M-celdifferentiatie door immunofluorescentie te verifiëren, moet u eerst de media uit de bovenkamer verwijderen.Was voorzichtig twee keer met 300 microliters kamertemperatuur PBS. Voeg 100 microliter kamertemperatuur 4%PFA in PBS toe aan de bovenkamer. Bedek de plaat met folie en laat 25 minuten staan bij kamertemperatuur.Na het verwijderen van de PFA, was de bovenste kamer drie keer met 300 microliters van kamertemperatuur PBS. Incubeer de monolagen met 100 microliter van 5%BSA opgelost in PBS gedurende 30 minuten in het donker bij kamertemperatuur om de monolagen te blokkeren voordat de oplossing wordt verwijderd. Bereid GP2 primaire antilichaam oplossing in een procent BSA in PBS bij een verdunning van een tot 100, en voeg 100 microliter per goed.Vlek gedurende een uur bij kamertemperatuur in het donker, voordat u de oplossing verwijdert. Was de bovenste kamer drie keer met 300 microliter kamertemperatuur PBS. Bereid een secundaire vlekoplossing van fluorescerend gelabelde geit anti-muis IgG phalloidin en DAPI, en voeg 100 microliters per put toe.Vlek gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur in het donker. Was de putten drie keer met 300 microliter PBS. Plaats vervolgens een vijf microliter druppel montageoplossing op een glazen schuif.Haal de put uit de 24 putplaat en omk. Tijdens het verwijderen van het membraan uit de Transwell moet het membraan volledig vlak blijven. Hobbels in het membraan voorkomen een stevige afdichting op de glazen schuif en kunnen de beeldkwaliteit sterk beïnvloeden.Om succes te garanderen, zorgvuldig snijd het membraan uit de put met behulp van een scherpe scalpel. Plaats het membraan met de cellen naar boven op de druppel van de montageoplossing op de glazen schuif. Voeg 10 microliter montageoplossing toe aan de bovenkant en het midden van het membraan en plaats er een afdeksel bovenop om het membraan tussen de glazen schuif en de afslag slip te verzegelen.Droog de glijbanen op kamertemperatuur in het donker gedurende 24 uur. M-cellen worden gedetecteerd door oppervlakte-expressie van GP2 door immunofluorescenten. Typisch, in een confluent monolayer, een tot vijf M cellen worden waargenomen in een bepaalde microscoop veld op 40X vergroting door dag zes tot en met acht na het zaaien in monsters behandeld met RANKL en TNF alpha.Geen GP2 expressie wordt gezien in de onbehandelde monsters. De orthogonale weergave van het XZ-vlak bedekt met een phalloidinsonde toont actinstructuren rond elke cel en GP2-expressie op het apicale oppervlak van M-cellen. Dit model recapituleert de lage frequentie van M-cellen gevonden in de menselijke darm.Om te bepalen of de M-cellen die in dit model zijn ontwikkeld, in staat zijn om zich aan IgA te binden, wordt de aanwezigheid van IgA op M-cellen gevisualiseerd met behulp van een fluor geconjugeerd secundair antilichaam dat de zware keten van menselijk serum IgA herkent. M-cellen die een uur lang met IgA zijn behandeld, hebben IgA gebonden aan het apicale oppervlak, terwijl M-cellen in controleputten die alleen met het secundaire antilichaam tegen IgA zijn behandeld, geen detecteerbaar signaal hebben. Verder bindt IgA zich specifiek aan het apicale oppervlak van M-cellen en wordt niet gebonden bevonden aan cellen die geen GP2-oppervlaktevlek hebben.Bovendien hebben M-cellen karakteristiek kortere dichte actin op hun apicale oppervlak. Overschakelen naar RANKL TNF alpha aangevuld differentiatie media wanneer de monolagen zijn ongeveer 80%confluent, is de sleutel tot het bereiken van een goede M cel differentiatie. Deze techniek zal onderzoekers in staat stellen om vragen met betrekking tot M celontwikkeling te verkennen, evenals gastheer pathogene interacties en drugstransport studies waarbij M cellen.

induced-differentiation-m-cell-like-cells-human-stem-cell-derived

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

We beschrijven een methode om humane enteroïden te kweken uit kleine darmcrypten en colonoïden uit coloncrypten die zijn verzameld uit zowel chirurgisch weefsel als biopsieën. In dit methodologische artikel presenteren we de kweekmodaliteiten die essentieel zijn voor het succesvolle groeien en onderhouden van humane enteroïden en colonoïden.

Oprichting van Human Epithelial Enteroids en Colonoids van Whole Tissue en Biopsie

Hier presenteren we een protocol bij de menselijke cultuur-enteroid of colonoid monolayers moeten intact barrièrefunctie gastheer epitheliale-microbiota interacties op het cellulaire en biochemisch niveau studeren.

Menselijke Colonoid Monolayers studie van interacties tussen ziekteverwekkers, Commensals en Host intestinaal epitheel

Dit protocol maakt het mogelijk om menselijke pluripotente cellen te differentiëren tot darmorganoïden. Het protocol bootst de normale menselijke ontwikkeling na door cellen te differentiëren in een populatie van definitief endoderm, endoderm van de dikke darm en vervolgens darmepitheel. Dit maakt het protocol geschikt voor het bestuderen van zowel darmontwikkeling als toepassingen voor ziektemodellering.

Generatie van hiPSC-afgeleide darmorganoïden voor ontwikkelings- en ziektemodelleringstoepassingen

Hier beschrijven we de voorbereiding van van menselijke organoïden afgeleide intestinale epitheliale monolagen voor het bestuderen van de darmbarrièrefunctie, permeabiliteit en transport. Omdat organoïden de oorspronkelijke reactie van epitheelweefsel op externe stimuli vertegenwoordigen, combineren deze modellen de voordelen van uitbreidbaarheid van cellijnen en de relevantie en complexiteit van primair weefsel.

Organoïde-afgeleide epitheliale monolaag: een klinisch relevant in vitro model voor de darmbarrièrefunctie

In dit protocol beschrijven we hoe murine primaire epitheliale colon monolayers rechtstreeks uit intestinale crypten kunnen worden gegenereerd. We bieden experimentele benaderingen om samenvloeiende monolagen te genereren op doorlatende filters, confluente monolagen voor kraswondgenezing en biochemische studies, en schaarse en samenvloeiende monolagen voor immunofluorescentieanalyse.

Generatie van Murine Primaire Colon Epitheliale Monolayers uit Intestinal Crypts

Hier worden gedetailleerde methoden beschreven voor het genereren, onderhouden en karakteriseren van menselijke pluripotente stamcel-afgeleide dunne darm- en colonorganoïden. Deze methoden zijn ontworpen om de reproduceerbaarheid te verbeteren, de schaalbaarheid uit te breiden en de werktijd te verkorten die nodig is voor het plateren en passeren van organoïden.

Generatie, onderhoud en karakterisering van menselijke pluripotente stamcel-afgeleide darm- en colonorganoïden

Dit protocol biedt gedetailleerde instructies voor het vaststellen van muriene dunne darm organoïden, het isoleren van type-1 aangeboren lymfoïde cellen uit de muriene dunne darm lamina propria, en het vaststellen van 3-dimensionale (3D) co-culturen tussen beide celtypen om bi-directionele interacties tussen intestinale epitheelcellen en type-1 aangeboren lymfoïde cellen te bestuderen.

Co-cultuur van murine dunne darm epitheliale organoïden met aangeboren lymfoïde cellen

We beschrijven een protocol dat de isolatie van murine coloncrypten beschrijft voor de ontwikkeling van 3-dimensionale colonoïden. De gevestigde colonoïden kunnen vervolgens terminaal worden gedifferentieerd om de cellulaire samenstelling van het gastheerepitheel weer te geven voordat ze een ontstekingsuitdaging krijgen of worden gericht op het vaststellen van een epitheliale monolaag.

Het bestuderen van de epitheliale effecten van darmontsteking in vitro op gevestigde murine colonoïden

Enteroïden zijn in opkomst als een nieuw model voor het bestuderen van weefselfysiologie en pathofysiologie, medicijnontwikkeling en regeneratieve geneeskunde. Hier beschrijven we een 2D-enteroïde-afgeleid kweeksysteem van rundercellen dat co-kweek met relevante weefselceltypen mogelijk maakt. Dit model biedt een translationeel voordeel voor modellering van gastro-intestinaal onderzoek.

Generatie van een rundvee primair enteroïde-afgeleid tweedimensionaal monolaagkweeksysteem voor toepassingen in translationeel biomedisch onderzoek

Deze studie schetst een protocol voor het genereren van 2D-monolagen van varkensorganoïden afkomstig van de dunne en dikke darm. De groei van deze monolagen wordt gekenmerkt door toenemende TEER-waarden, wat wijst op een robuuste epitheliale integriteit. Bovendien vertonen deze monolagen fysiologische secretoire reacties in Ussing-kamerexperimenten na de toepassing van forskolin.

Tweedimensionale darmorganoïden van varkens die de fysiologische eigenschappen van de inheemse darm weerspiegelen

Leer de geïnduceerde differentiatie van M-cellen in menselijke stamcel-afgeleide ileale monolagen. Dit protocol maakt onderzoek naar darmhomeostase en immuunafweer mogelijk met QRTPCR en immunofluorescentie.

Geïnduceerde differentiatie van M cel-achtige cellen in menselijke stamcel-afgeleide Ileal Enteroid monolayers

Meer video's verkennen