August 25th, 2018
Tutaj prezentujemy protokół skutecznego izolowania pierwotnych ludzkich keratynocytów z tkanek skóry dorosłych. Metoda ta upraszcza konwencjonalną procedurę poprzez zastosowanie inhibitora ROCK Y-27632 w pożywce do inokulacji w celu spontanicznego oddzielenia komórek naskórka od komórek skóry właściwej.
Ogólnym celem tego filmu jest przedstawienie nowej, prostej metody izolowania i hodowli pierwotnych ludzkich komórek naskórka z dorosłej tkanki skórnej. Ta zaawansowana metoda jest bardziej odpowiednia do wytwarzania dużej liczby komórek naskórka o wysokim potencjale zarówno do zastosowań laboratoryjnych, jak i klinicznych. Umyj chusteczkę PBS przed ważeniem.
Zważ tkankę skórną za pomocą wagi elektronicznej. Płucz tkankę skóry 70% etanolem przez 30 sekund. Inkubować tkankę w PBS z antybiotykami dwa razy przez pięć minut za każdym razem.
Przenieś tkankę do innego sterylnego naczynia i dokładnie homogenizuj za pomocą ostrzy skalpela. Dodawaj 200 mikrolitrów PBS co pięć minut, aby tkanka była mokra. Przenieś homogenizowaną tkankę do 50-mililitrowej probówki.
Dodaj 10 mililitrów mieszaniny enzymów na każdy gram tkanki skórnej. Enzymy dokładnie wymieszać z homogenizowanymi tkankami. Inkubować mieszaninę w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza, wstrząsając.
Następnie dodaj 1/5 objętości 0,25% trypsyny. Kontynuuj inkubację przez 30 minut w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Dodać roztwór Dnazy I do mieszaniny w stosunku jeden do 100.
Następnie inkubuj przez kolejne pięć minut. Zatrzymaj proces trawienia, dodając taką samą objętość pożywki neutralizującej. Pipetować roztwór w górę i w dół około 20 razy.
Przefiltruj zdysocjowane komórki przez sitko o średnicy 100 mikrometrów, aby usunąć resztki tkanek. Wirować przy 200 g przez pięć minut. Obserwuj granulki na dnie tuby.
Usunąć supernatanty i przemyć osad komórkowy 10 mililitrami pożywki neutralizującej. Następnie odwirować przy 200 g przez pięć minut. Zawiesić osad komórkowy w pożywce do inokulacji za pomocą 10-mikromolowego inhibitora ROCK.
Płytka dwa razy od 10 do szóstych komórek w 100-milimetrowym naczyniu hodowlanym. Po trzech dniach zastąp pożywkę inokulacyjną pożywką keratynocytów bez surowicy. Zmieniaj podłoże co dwa dni.
Gdy komórki osiągną około 80% gęstości, przepuść komórki. Umyj komórki PBS. Jeśli to konieczne, trypsynizuj przez dwie minuty i umyj komórki PBS, aby usunąć zanieczyszczone komórki skóry.
Dodać taką samą objętość pożywki neutralizującej. Wirować przy 200 g przez pięć minut. Na koniec usunąć supernatanty i ponownie zawiesić osad komórkowy.
Wyizolowane keratynocyty z tkanek skóry ludzkiej inkubowano oddzielnie dwiema metodami. Konwencjonalna metoda to dwuetapowe trawienie, które obejmuje dwudniową procedurę. Natomiast nowa metoda to jednoetapowe trawienie, które trwa około trzech godzin.
Trzeciego dnia możemy łatwo znaleźć wiele klastrów komórkowych hodowanych nową metodą, podczas gdy zjawisko to nie występuje przy użyciu metody konwencjonalnej. W piątym dniu zaobserwowano, że nowa metoda wytworzyła większą ilość komórek pierwotnych. Aby przetestować stan różnicowania hodowanych keratynocytów, przeanalizowaliśmy marker komórek podstawnych K5 i końcowy marker różnicowania Loricrin.
Odkryliśmy, że 90% wszystkich komórek było K5 dodatnich, ale mniej niż 10% komórek wyrażało lorycynę w trzecim pasażu, co wskazuje, że są to niezróżnicowane keratynocyty. Sprawdziliśmy ekspresję wimentyny, która ulega ekspresji w fibroblastach skóry, aby zbadać zanieczyszczenie komórek skóry właściwej podczas izolacji. Odkryliśmy, że około 3% komórek skóry właściwej pojawiło się w początkowym pasażu, ale tylko około 0,02% komórek skóry właściwej zostało wykrytych w trzecim pasażu, co wskazuje na wysoką czystość komórek naskórka po pasażu.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten artykuł przedstawia uproszczony protokół izolacji pierwotnych ludzkich keratynocytów z dorosłych tkanek skóry. Metoda wykorzystuje inhibitor ROCK Y-27632, aby ułatwić separację komórek naskórka od komórek skóry właściwej.
Isolating high-purity primary human keratinocytes from adult skin remains a bottleneck in dermatology and regenerative medicine R&D due to low yield and contamination risks. This simplified one-step enzymatic method with ROCK inhibitor Y-27632 improves epidermal cell recovery and stemness, enabling scalable production for target validation and preclinical modeling. The approach reduces procedural complexity and time, supporting reproducible assay development and translational continuity from discovery to lead optimization.
The method fits within the discovery continuum by supplying validated primary human keratinocytes for early target validation, enabling assay development for screening campaigns, and supporting preclinical evaluation of dermatological therapeutics.