April 17th, 2019
Prezentujemy protokoły do badania rozwoju serca myszy za pomocą mikroskopii epifluorescencyjnej na pełnych zarodkach myszy wypreparowanych z komorowych specyficznych dla komór MLC-2v-tdPomidorowych myszy reporterowych. Metoda ta pozwala nam bezpośrednio uwidocznić każdy etap powstawania komory podczas rozwoju serca myszy bez pracochłonnych metod histochemicznych.
Za pomocą tej metody możemy bezpośrednio badać tworzenie się rurki serca, pętle i tworzenie się pełnej komory bez dalszych eksperymentalnych manipulacji zarodkiem myszy. Chociaż jako przykładu używamy myszy MLC-2v-tdTomato, ta prosta metoda może być szeroko stosowana z innymi fluorescencyjnymi liniami myszy reporterowych. Główną zaletą tego protokołu jest to, że jest bardzo prosty i nie wymaga żadnych skomplikowanych technik ani sprzętu.
Można go wykonać w zwykłych warunkach laboratoryjnych. Po kryciu samicy z samcami myszy, zarówno MLC-2v-tdTomato w wieku od 8 do 10 tygodni, codziennie rano sprawdzaj tamy pod kątem zatyczek pochwowych. Połóż ciężarne matki, poddane eutanazji w różnych dniach po stosunku, w pozycji leżącej i spryskaj brzuch 70% etanolem.
Użyj ostrych nożyczek chirurgicznych i kleszczy, aby otworzyć jamę brzuszną poprzez nacięcie zarówno skóry, jak i ściany brzucha. Po zlokalizowaniu obustronnych rogów macicy w grzbietowej części jamy brzusznej, należy oddzielić całą macicę za pomocą ostrych nożyczek chirurgicznych i kleszczy, aby ostrożnie przeciąć nad jajowodami po obu stronach. Umieść całą wypreparowaną macicę na 10-centymetrowej szalce Petriego z lodowatym PBS.
Za pomocą ostrych nożyczek chirurgicznych i kleszczy ostrożnie oddziel każdy worek owodniowy wzdłuż rogu macicy. Za pomocą pęsety przenieś każdy zarodek na 35-milimetrową płytkę hodowlaną wypełnioną lodowatym PBS. Za pomocą ostrych nożyczek chirurgicznych i kleszczy otwórz worek owodniowy i odsłoń każdy zarodek, odcinając pępowinę, a następnie wytnij jak najwięcej dodatkowych tkanek embrionalnych, nie uszkadzając zarodków.
Pod mikroskopem preparacyjnym z oświetlaczem mikroskopu światłowodowego odetnij głowę zarodka i przenieś ją do 1,5 mililitrowej probówki ze 100 mikrolitrami buforu A w celu późniejszego genotypowania w celu skorelowania z wynikami obrazowania epifluorescencyjnego. Za pomocą cienkich kleszczy otwórz klatkę piersiową zarodka. Ostrymi nożyczkami chirurgicznymi i kleszczami usuń serce z płuc i naczyń krwionośnych.
Użyj pęsety, aby przenieść wypreparowane serce embrionalne na 35-milimetrową płytkę hodowlaną z PBS. Umieść płytkę z sercami embrionalnymi myszy pod epifluorescencyjnym mikroskopem preparacyjnym. Użyj cienkich kleszczy, aby ustawić embrionalne serca tak, aby rozwijające się komory były skierowane w stronę egzaminatora.
Dostosuj ostrość za pomocą obiektywu 0,63x w trybie jasnego pola. Rób ekspozycje w jasnym polu i rób wiele zdjęć. Aby zobrazować ekspresję tdTomato, wyłącz oświetlacz mikroskopu światłowodowego i ustaw filtr na czerwoną fluorescencję.
W razie potrzeby dostosuj ostrość obrazu, dostosuj jasność i kontrast, wykonaj ekspozycję z czerwonej jarzeniówki i zrób wiele zdjęć. W celu genotypowania zarodków należy gotować wcześniej wyizolowane próbki głów w buforze A w temperaturze 100 stopni Celsjusza przez 30 minut. Wirować przez dwie minuty przy 11, 360 razy G. Przenieść 20 mikrolitrów supernatantu do nowej 1,5 mililitrowej probówki z 20 mikrolitrami buforu B i wymieszać.
Użyj 4,5 mikrolitra zmieszanego supernatantu jako matrycy DNA i połącz go z 0,5 mikrolitra każdego z 10 mikromolowych starterów do przodu i do tyłu, 10 mikrolitrami 2x wstępnie zmieszanej polimerazy i buforu reakcyjnego, a następnie dodaj wodę do całkowitej objętości 20 mikrolitrów. Przeprowadź PCR zgodnie z opisem w manuskrypcie. Załaduj zakończoną reakcję do drabinki DNA 100 par zasad na 1% żelu agarozowym i uruchom pod napięciem 140 woltów w buforze 1x TAE przez 25 minut.
Umieść gotowy żel na transiluminatorze UV i włącz światło UV, aby zidentyfikować prążki DNA. MLC-2v jest uważany za najwcześniejszy marker specyfikacji komory komorowej podczas rozwoju serca. U myszy reporterowych MLC-2v-tdTomato stosunkowo słaba ekspresja tdTomato w liniowej rurze serca przy E8,0 staje się silniejsza przy E8,5, jak pokazano przy użyciu obrazowania epifluorescencyjnego zarodków w całości.
Korzystając z obrazowania epifluorescencyjnego całego wypreparowanego serca, można łatwo określić tworzenie się komór podczas rozwoju serca myszy. W wypreparowanym sercu z całego zarodka myszy w E10.5 ekspresję reporterową MLC-2v-tdTomato wykazano w komorowej części serca, a nie w drodze dopływu, drodze odpływu lub przyszłych przedsionkach. W E12,5 do E13,5 tdTomato reporter ulega ekspresji wyłącznie w komorach czterokomorowego serca.
Podobny specyficzny dla komór wzorzec ekspresji wykazano w wypreparowanym zarodku myszy przy E16,5. Po pełnym obrazowaniu określono genotyp zarodków za pomocą dwóch zestawów starterów do genotypowania PCR, potwierdzając homozygotyczne zarodki z allelem knock-in tdTomato, heterozygotyczne i zarodki typu dzikiego. Ta metoda jest dość prosta i prosta do wykonania.
Kluczowym krokiem jest wypreparowanie embrionalnych serc. Zrozumienie anatomii serca podczas rozwoju serca jest niezbędne do skutecznego odizolowania serca od całego zarodka.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
W tym artykule przedstawiono protokoły dotyczące badania rozwoju serca myszy z wykorzystaniem mikroskopii epifluorescencyjnej całego preparatu na myszach z wbudowanym reporterem MLC-2v-tdTomato. Metoda umożliwia bezpośrednią wizualizację etapów formowania komór sercowych bez użycia skomplikowanych technik histochemicznych.