-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Genetics
Projektowanie zautomatyzowanych, wysokowydajnych, ciągłych eksperymentów wzrostu komórek przy uży...
Projektowanie zautomatyzowanych, wysokowydajnych, ciągłych eksperymentów wzrostu komórek przy uży...
JoVE Journal
Genetics
This content is Free Access.
JoVE Journal Genetics
Designing Automated, High-throughput, Continuous Cell Growth Experiments Using eVOLVER

Projektowanie zautomatyzowanych, wysokowydajnych, ciągłych eksperymentów wzrostu komórek przy użyciu eVOLVER

Full Text
12,932 Views
07:26 min
May 19, 2019

DOI: 10.3791/59652-v

Zachary J. Heins1,2, Christopher P. Mancuso1,2, Szilvia Kiriakov1,3, Brandon G. Wong1,2, Caleb J. Bashor4, Ahmad S. Khalil1,2,5

1Biological Design Center,Boston University, 2Department of Biomedical Engineering,Boston University, 3Program in Molecular Biology, Cell Biology and Biochemistry,Boston University, 4Department of Bioengineering,Rice University, 5Wyss Institute for Biologically Inspired Engineering,Harvard University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

The eVOLVER framework allows for high-throughput continuous microbial culture with dynamic control over experimental parameters. This protocol guides users in programming automated control over multiple cultures while measuring and interacting with data in real-time.

Key Study Components

Area of Science

  • Microbial culture
  • Automated feedback systems
  • Experimental design

Background

  • The eVOLVER system provides flexibility in designing culture growth experiments.
  • It allows for customization of both software and hardware components.
  • Proper setup and understanding of components are crucial for successful experiments.
  • It can be adapted for various culturing conditions, including anaerobic fermentation.

Purpose of Study

  • To demonstrate the setup and operation of the eVOLVER platform for continuous culture experiments.
  • To enable real-time monitoring and control of microbial cultures.
  • To facilitate the study of fitness variations among different microbial strains.

Methods Used

  • Preparation of media and sterilization of equipment.
  • Setup of the eVOLVER system and initialization of experiments.
  • Real-time data monitoring through an interactive dashboard.
  • Analysis of growth rates and fitness values of microbial strains.

Main Results

  • Successful automation of continuous culture experiments.
  • Real-time monitoring of optical density (OD) and temperature.
  • Quantitative fitness values derived from growth rate data.
  • Identification of performance differences among microbial variants.

Conclusions

  • The eVOLVER system enhances experimental control and flexibility.
  • Real-time data allows for immediate intervention in experiments.
  • It supports the engineering of new strains based on experimental outcomes.

Frequently Asked Questions

What is the eVOLVER framework?
The eVOLVER framework is a system for high-throughput continuous microbial culture that allows for dynamic control over experimental parameters.
How can the eVOLVER system be customized?
Users can customize both the software in Python and the hardware by modifying the smart sleeves that hold sensors for each culture.
What types of cultures can be maintained using eVOLVER?
eVOLVER is designed for aerobic culturing of bacteria and yeast but can be modified for anaerobic fermentation or mammalian cell cultures.
What is the importance of proper setup?
Proper setup ensures that all components are functioning correctly, preventing issues such as overflow or clogs that could ruin experiments.
How does real-time monitoring work in eVOLVER?
The eVOLVER dashboard allows users to monitor OD values and temperature in real-time, enabling immediate adjustments if necessary.
What can be done with samples taken from eVOLVER?
Samples can be sequenced to check for genomic alterations, which can inform the engineering of new strains or systems.
How does eVOLVER support experimental design?
eVOLVER allows researchers to apply unique selection pressures in each experiment, facilitating tailored experimental designs.

Framework eVOLVER umożliwia wysokoprzepustową ciągłą hodowlę mikroorganizmów z wysoką rozdzielczością i dynamiczną kontrolą parametrów eksperymentalnych. Protokół ten pokazuje, jak zastosować system do przeprowadzenia złożonego eksperymentu fitness, prowadząc użytkowników przez programowanie automatycznej kontroli nad wieloma indywidualnymi kulturami, mierzenie, gromadzenie i interakcję z danymi eksperymentalnymi w czasie rzeczywistym.

eVOLVER daje naukowcom swobodę eksperymentowania, możliwość definiowania własnych eksperymentów wzrostu kultury z automatycznymi informacjami zwrotnymi na temat wielu parametrów i skalowania ich do dowolnego rozmiaru. eVOLVER jest bardziej elastyczny niż inne urządzenia. Użytkownicy mogą łatwo dostosować oprogramowanie w Pythonie, a także sprzęt, modyfikując inteligentne tuleje, które trzymają czujniki dla każdej kultury.

Na pierwszy rzut oka system może wydawać się skomplikowany z wieloma komponentami i połączeniami. Wizualny przewodnik daje użytkownikom po raz pierwszy większą pewność siebie podczas samodzielnego przeprowadzania eksperymentów. Właściwa konfiguracja ma kluczowe znaczenie.

Upewnij się, że rozumiesz, do czego służy każdy komponent. Możesz więc potwierdzić, że działają. Upewnij się, że wszystko jest prawidłowo poprowadzone i szczelnie połączone.

Chociaż eVOLVER został zaprojektowany do hodowli tlenowej bakterii i drożdży w różnych warunkach, może być również modyfikowany pod kątem fermentacji beztlenowej lub utrzymywania komórek ssaków w zawiesinie. W tym filmie pokazano, jak skonfigurować, zainicjować i przeprowadzić eksperyment z ciągłą kulturą o wysokiej przepustowości przy użyciu platformy eVOLVER. Dzień przed eksperymentem przygotuj pożywkę, fiolki i inokulum zgodnie z rękopisem.

W trzech dużych zlewkach przygotuj dwie zlewki z 10% wybielaczem i jedną zlewkę z 70% etanolem. Za pomocą przełączników na urządzeniu eVOLVER włącz zasilanie pięciowoltowe w eVOLVER, odczekaj pięć sekund, a następnie włącz zasilanie 12 V. W przypadku uruchamiania kilku fiolek z tej samej butelki z pożywką, należy podłączyć wiele linii wejściowych pożywki za pomocą rozdzielaczy przewodów.

Niestandardowe rozdzielacze rur mogą być zbudowane z niższych elementów. Zanurz przewody doprowadzające pożywkę w pierwszej zlewce do wybielacza, a przewody odpływu pożywki w drugiej zlewce do wybielacza. Podłącz dolny koniec przewodów wejściowych mediów do drugiej zlewki z przewodami eflux.

Umieść linie odpływowe w pojemniku na odpady. Dodaj jeden do dwóch litrów wybielacza do pojemnika na odpady, aby wysterylizować odpady powstałe podczas eksperymentu. Korzystając z ekranu dotykowego na eVOLVER, przejdź do sekcji konfiguracji i uruchom wszystkie pompy na 20 sekund, aby napełnić przewody płynu 10% wybielaczem.

Pozostaw wybielacz w liniach na co najmniej 30 minut w celu sterylizacji. Uruchom pompy ponownie za pomocą ekranu dotykowego, aż przewody przestaną być zanurzone, przepychając powietrze przez przewody, aby usunąć jak najwięcej wybielacza. Umieść przewody doprowadzające media w zlewce etanolu, napełnij przewody etanolem, przepłucz je powietrzem.

Następnie podłącz przewody wejściowe mediów do butelek z mediami za pomocą dolnych złączy i uruchom pompy, aż media całkowicie przejdą przez przewody, wypłukując resztki etanolu. Częściowo włóż wysterylizowane fiolki do inteligentnych rękawów eVOLVER i podłącz przewody wejściowe do krótkiej słomki napływowej, a przewody odpływowe do długiej słomki eflux zgodnie z kodowaniem kolorystycznym. Dostosuj na ekranie dotykowym eVOLVER, aby uruchomić wszystkie pompy w 10-sekundowych odstępach, aby napełnić fiolki mediami.

Kontrola wzrokowa zapewnia, że pompy eflux skutecznie usuwają media przez słomki eflux, aby zapobiec przepełnieniu. Następnie wepchnij fiolki w dół, aż zostaną całkowicie zamknięte w inteligentnym rękawie. Na stronie konfiguracji interaktywnej ekranu dotykowego eVOLVER przeciągnij palcem po ekranie dotykowym lub naciśnij przycisk Zaznacz wszystko, aby wybrać wszystkie fiolki i ustawić początkowe warunki temperatury na 30 stopni Celsjusza i mieszać na 10.

Na komputerze określ urządzenie eVOLVER, na którym zostanie uruchomiony eksperyment. Upewnij się, że żądane ustawienia kalibracji zostały wybrane. Otwórz pulpit nawigacyjny eVOLVER i przejdź do strony Menedżer eksperymentów.

Jako punkt wyjścia wybierz eksperyment podstawowy w panelu Nawigator eksperymentów lub istniejący eksperyment i kliknij przycisk Klonuj. Przejdź do strony Edytor eksperymentów. Użyj paneli Selektor fiolki i Definicja parametrów, aby dostosować temperaturę do 30 stopni Celsjusza i ustawić górny i dolny próg OD dla każdej fiolki zgodnie z projektem eksperymentalnym.

Zapisz eksperyment, klikając przycisk Zapisz. Następnie kliknij strzałkę, aby wrócić do strony Menedżer eksperymentów i kliknij przycisk Odtwórz, aby uruchomić. Po zakończeniu eksperymentu przejdź do panelu Dane w czasie rzeczywistym na interaktywnym pulpicie nawigacyjnym.

Dla każdej fiolki sprawdzić, czy wartości OD utrzymują się na poziomie zerowym. Przejrzyj wykresy temperatury, aby sprawdzić, czy temperatury są na poziomie 30 stopni Celsjusza lub zbliżają się do nich. Aby przygotować inokulum, najpierw zmierz OD kultur nocnych i oblicz pożądane pełne rozcieńczenie dla kultur nocnych, zakładając objętość fiolki 25 mililitrów i pożądany początkowy OD około 0,05.

Przez otwór do pobierania próbek odpipetować obliczoną objętość inokulum lub mieszaniny inokulu. Sprawdź wykresy na desce rozdzielczej, aby zobaczyć, że OD wzrasta do 0,05. Wzrost komórek i warunki w fiolkach mogą być monitorowane w czasie rzeczywistym w trakcie trwania eksperymentu, co pozwala badaczowi interweniować w przypadku wystąpienia jakichkolwiek problemów.

eVOLVER to zautomatyzowana platforma do hodowli ciągłej, umożliwiająca wieloparametrową kontrolę warunków hodowli. Wykazano różnice jakościowe między grupami typu dzikiego, wrażliwymi na temperaturę i wrażliwymi na sól, gdy współczynniki logarytmiczne zostały wykreślone w stosunku do pokoleń interpolowanych z danych o tempie wzrostu eVOLVER. Kolor wskazuje temperaturę selekcji, a kreski rozróżniają stężenia soli.

Dopasowanie nachylenia przez liniową część każdej działki przy użyciu co najmniej trzech punktów daje ilościową wartość dopasowania, która opisuje, w jaki sposób szczep wariantowy konkuruje ze szczepem referencyjnym. Ujemne wartości dopasowania wskazują, że szczep wariantowy jest konkurencyjny przez szczep referencyjny. Zawsze sprawdzaj, czy wszystkie pompy pracują wydajnie i czy przewody płynów są wolne od zatorów.

Przepełnienie może zrujnować eksperyment i potencjalnie uszkodzić inteligentne rękawy. Próbki pobrane z eVOLVER mogą być następnie sekwencjonowane w celu sprawdzenia zmian genomowych w wyniku eksperymentu. Informacje te mogą być wykorzystane do inżynierii nowych szczepów lub systemów.

Badacze korzystający z ewolucji laboratorium lub selekcji bibliotecznej mogą łatwo zastosować unikalne naciski selekcyjne w każdym eksperymencie eVOLVER. Sterowanie sprzężeniem zwrotnym i dynamiczne środowiska są teraz również bardzo dostępne. Po eksperymencie balon na odpady będzie zawierał niewielkie ilości wybielacza i etanolu.

Skonsultuj się z koordynatorem ds. bezpieczeństwa w laboratorium, aby uzyskać informacje na temat prawidłowej utylizacji odpadów.

Explore More Videos

EVOLVER Zautomatyzowane eksperymenty Ciągły wzrost komórek Hodowla wysokoprzepustowa Hodowla tlenowa Fermentacja beztlenowa Oprogramowanie niestandardowe Dostosowywanie Pythona Przygotowanie podłoża Konfiguracja eksperymentalna Proces sterylizacji Linie płynów Gospodarka odpadami Nawigacja na ekranie dotykowym

Related Videos

Ciągła hodowla bakterii o stałej gęstości dzięki automatycznemu szacowaniu tempa wzrostu

01:22

Ciągła hodowla bakterii o stałej gęstości dzięki automatycznemu szacowaniu tempa wzrostu

Related Videos

216 Views

Adaptacyjna ewolucja bakterii przy użyciu mikrobiologicznego systemu hodowli mikrokropelek

03:42

Adaptacyjna ewolucja bakterii przy użyciu mikrobiologicznego systemu hodowli mikrokropelek

Related Videos

307 Views

Projektowanie i wykorzystanie multipleksowanych macierzy chemostatów

19:40

Projektowanie i wykorzystanie multipleksowanych macierzy chemostatów

Related Videos

24K Views

Wszechstronna, zautomatyzowana platforma do eksperymentów ze stymulacją komórek w mikroskali

12:21

Wszechstronna, zautomatyzowana platforma do eksperymentów ze stymulacją komórek w mikroskali

Related Videos

11.1K Views

Opracowanie i zastosowanie niedrogiego, zautomatyzowanego morbidostu do adaptacyjnej ewolucji bakterii pod wpływem doboru antybiotyków

10:50

Opracowanie i zastosowanie niedrogiego, zautomatyzowanego morbidostu do adaptacyjnej ewolucji bakterii pod wpływem doboru antybiotyków

Related Videos

10.2K Views

Precyzyjna, wysokoprzepustowa analiza wzrostu bakterii

09:00

Precyzyjna, wysokoprzepustowa analiza wzrostu bakterii

Related Videos

25.1K Views

Optymalizacja procesów z wykorzystaniem zautomatyzowanych mikrobioreaktorów o wysokiej przepustowości w hodowli komórek jajnika chomika chińskiego

09:28

Optymalizacja procesów z wykorzystaniem zautomatyzowanych mikrobioreaktorów o wysokiej przepustowości w hodowli komórek jajnika chomika chińskiego

Related Videos

9.4K Views

Zautomatyzowana hodowla mikroorganizmów i ewolucja adaptacyjna z wykorzystaniem systemu hodowli mikrokropelek drobnoustrojów (MMC)

08:18

Zautomatyzowana hodowla mikroorganizmów i ewolucja adaptacyjna z wykorzystaniem systemu hodowli mikrokropelek drobnoustrojów (MMC)

Related Videos

4.7K Views

Codzienne transfery, archiwizacja populacji i pomiar sprawności w długoterminowym eksperymencie ewolucji z Escherichia coli

15:00

Codzienne transfery, archiwizacja populacji i pomiar sprawności w długoterminowym eksperymencie ewolucji z Escherichia coli

Related Videos

4.5K Views

Praktyczny przewodnik po niemal ciągłej ewolucji wspomaganej przez fagi i robotykę

05:08

Praktyczny przewodnik po niemal ciągłej ewolucji wspomaganej przez fagi i robotykę

Related Videos

2.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code