February 26th, 2017
Descrevemos aqui como executar uma microinjeção de uma única célula de Lucifer Yellow visualizar comunicação celular via gap-junções em células vivas, e fornecer algumas dicas úteis. Esperamos que este trabalho irá ajudar a todos para avaliar o grau de acoplamento celular devido à junções comunicantes funcionais. Tudo o descrito aqui pode ser, em princípio, adaptado para outros corantes fluorescentes com peso molecular inferior a 1.000 Daltons.
Olá, meu nome é Anael. Trabalho na Fundação Oswaldo Cruz no Laboratório de Comunicação Celular. Estudamos aqui os receptores P2 e a injeção de gap no contexto do sistema imunológico e do fígado.
Hoje, vou apresentar a vocês a microinjeção de células. As injeções de gap desempenham alguns papéis fisiológicos como transmissão de sinapses, contrações cardíacas e outros. Para esta técnica, podemos estudar se as injeções de gap são funcionais ou não.
Ok, vamos ver os componentes básicos da configuração de microinjeção. Aqui temos o microscópio de fluorescência invertida onde veremos as células. Esta é uma câmera CCD para gravar os resultados.
Temos aqui o gerador de corrente que introduziremos o corante na célula. Em seguida, temos o suporte onde o microeletrodo está conectado. E o micro-manipulador que está conectado ao suporte e permite o movimento do microeletrodo nos três eixos, Z, Y e X.Antes de iniciar o experimento, temos que fazer o microeletrodo.
Usamos este capilar de vidro borossilicato e este equipamento denominado polar. Anexamos o capilar de borossilicato aqui. Este filamento de tungstênio vamos aquecer para fazer dois microeletrodos.
Agora, o aquecimento do filamento de tungstênio e a onda aqui vamos puxar para baixo para fazer os dois microeletrodos. Fácil. Nosso primeiro passo é preencher o microeletrodo com o corante. Uma dica aqui é que você tem que preencher apenas a ponta com alguns microlitros para fazer o experimento.
Não é necessário preencher tudo. Nota com mais detalhes. Preencha apenas a ponta.
Vamos começar um experimento. Temos aqui as células na placa de Petri, em uma solução de sódio. O fio de prata conectado ao gerador de corrente.
Agora temos que conectar os microeletrodos no estágio principal. Aqui no estágio principal, temos outro fio de prata também conectado ao gerador de corrente. Uma vez que o microeletrodo é conectado, podemos colocá-lo dentro do banho.
Observe que a ponta da pipeta está tocando cuidadosamente o banho. Este procedimento é feito com muito cuidado para evitar a colisão da ponta no fundo da placa de Petri. Uma vez dentro do banho, podemos ir ao microscópio para procurar a sombra da micropipeta.
Recomendamos que comecemos a olhar na lente de ampliação. Quando encontramos a sombra da pipeta, podemos mover o microeletrodo em direção à célula usando o micromanipulador. Uma vez que está muito perto da célula, podemos fazer um teste para verificar se o microeletrodo não está obstruído.
Como veremos a seguir. Aqui estamos vendo a micropipeta e ajustando a micropipeta muito perto da célula. Podemos ver o movimento celular à direita e à esquerda.
Em seguida, mudamos para o filtro, filtro de fluorescência. Podemos aplicar pulso hiperpolarizante para testar se a ponta da pipeta não está obstruída. Como a micropipeta está dentro da célula, podemos aplicar pulso hiperpolarizante para carregar a célula com o corante.
Usamos aqui o corante amarelo solto e livre. Depois de carregar a célula com o corante, se as células vizinhas estiverem conectadas por injeções de lacuna, esperamos alguns minutos e veremos as células vizinhas brilhando pela difusão do corante por essas injeções de lacuna. Em nosso experimento, podemos ver cinco células, marcadas com estrelas, mostrando fluorescência.
Aqui há um bom exemplo de um experimento de microinjeção em células epiteliais tímicas, em A e B.In as figuras C e D, mostra uma microinjeção em célula tímica inerte de amarelo livre solto e outro corante, não permeável à injeção de gap mostrada na inserção. A linha de células epiteliais tímicas figura E e F microinjetada com amarelo livre solto e na inserção amarelo livre solto e um bloco de injeção de lacuna. Os resultados mostram que o amarelo livre solto não se espalhou para as células vizinhas.
Em seguida, vemos uma microinjeção em células epiteliais tímicas, na presença de dexametasona e a quantificação em B. A dexametasona aumentou o grau de acoplamento, como mostra a figura B. De 100 injeções, o número de três ou quatro células conectadas foi mais frequente na presença dessa droga. Espero poder ajudar os iniciantes a fazer essa importante técnica para o estudo da comunicação celular. Obrigado e tchau.
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Este artigo descreve a técnica de microinjeção em célula única de Lucifer Yellow para visualizar a comunicação celular através de junções gap em células vivas. Fornece dicas práticas para pesquisadores avaliarem o acoplamento celular devido a junções gap funcionais.
Single-cell microinjection enables direct assessment of gap junction functionality, a key mechanism in cellular communication relevant to drug target validation in neuroscience, immunology, and tissue engineering. By visualizing real-time dye diffusion, researchers can evaluate compound effects on intercellular coupling, supporting mechanistic de-risking in early discovery. This approach provides quantitative, functional readouts that improve target confidence and inform go/no-go decisions in preclinical pipelines.
The method fits within early discovery to assess target effects on cellular communication before progressing to phenotypic screening or lead optimization.