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Realizando Subretinal Injeções em roedores para entregar epitélio pigmentar da retina células em ...
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Performing Subretinal Injections in Rodents to Deliver Retinal Pigment Epithelium Cells in Suspension

Realizando Subretinal Injeções em roedores para entregar epitélio pigmentar da retina células em suspensão

Full Text
17,874 Views
06:04 min
January 23, 2015

DOI: 10.3791/52247-v

Peter D. Westenskow1,2, Toshihide Kurihara1, Stephen Bravo1, Daniel Feitelberg1, Zack A. Sedillo2, Edith Aguilar1, Martin Friedlander1,2

1Department of Cell and Molecular Biology,The Scripps Research Institute, 2Lowy Medical Research Institute

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Aqui apresentamos um protocolo aceito pela comunidade em formato multimídia para injeção sub-retina de um bolus de células RPE em ratos e camundongos. Essa abordagem pode ser usada para determinar potenciais de resgate, perfis de segurança e capacidades de sobrevivência de células RPE enxertadas após implantação em modelos animais de degeneração retiniana.

Transcript

O objetivo geral deste procedimento é injetar pigmento retiniano, epitélio ou células RPE no espaço sub-retiniano de roedores, minimizando o trauma. Isso é feito primeiro usando uma agulha afiada para fazer um buraco no olho de um animal calmo. Em seguida, as células são injetadas no espaço sub-retiniano usando uma agulha romba.

Na etapa final, o olho é revestido com hidratante para mantê-lo hidratado. Em última análise, as modalidades de histologia e imagem in vivo podem ser usadas para monitorar a eficácia da injeção. Embora o método que mostramos hoje tenha sido especificamente adaptado para a entrega de células RPE no espaço sub-retiniano, a técnica em si é amplamente aplicável à entrega de uma variedade de outros tipos de células e produtos químicos no espaço sub-retiniano para serem usados em uma variedade de estudos pré-clínicos.

Geralmente, os indivíduos que são novos nesse método terão dificuldades porque é difícil ver o quão bem a injeção foi executada. As demonstrações visuais desse método são críticas, pois as etapas de injeção são difíceis de aprender sem vê-las realizadas. Pessoalmente.

Cerca de uma hora antes da injeção, pré-aqueça uma solução de dissociação de células sem tripsina, PBS estéril e meios de cultura a 37 graus Celsius, desmonte e coloque os componentes de uma seringa com uma agulha romba de calibre 33 em água fervente. Em seguida, retire as células RPE da solução de dissociação celular por cinco a oito minutos. A 37 graus Celsius, raspando suavemente para liberar quaisquer células que ainda estejam presas e, em seguida, dilua as células em 15 mililitros de meio de cultura para inativar a enzima, transfira as células dissociadas para um tubo de 15 mililitros e, após a contagem, gire as células e ressuspenda o pellet em duas vezes 10 elevado à quinta célula por microlitro em pré-aquecimento estéril.

O PBS então transfere as células para um tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro e carrega a seringa esterilizada com 0,5 microlitros de células para injeção imediata para injetar as células Após a confirmação da sedação pelo dedo do pé, aperte, coloque o roedor anestesiado de lado de forma que o olho que será injetado fique voltado para cima. Em seguida, sob um microscópio de dissecação, segure a cabeça do animal com dois dedos logo acima da orelha e pela mandíbula e estique suavemente a pele paralela às pálpebras para que o olho saia ligeiramente da órbita. Em seguida, segurando-o em um ângulo.

Para evitar tocar na lente e tomar cuidado para evitar vasos, use a agulha afiada de calibre 30 para fazer um orifício imediatamente abaixo das injeções de limbo. Trabalhe melhor com duas pessoas para que uma pessoa possa passar o injetor, a agulha cega e a seringa, permitindo que o injetor mantenha o foco no olho do mouse. Agora retraia a agulha afiada descartável do olho, mantendo o aperto na cabeça.

Tomando cuidado para lembrar exatamente onde está o orifício e montar a seringa pré-carregada. Equipado com a agulha romba em um micro manipulador, insira a ponta da agulha romba através do orifício. Tomando cuidado, novamente, para não tocar na lente e empurre suavemente a agulha pelo olho até sentir resistência.

Mantendo todos os movimentos no mínimo. Injete cuidadosamente as células RPE lentamente no espaço sub-retiniano. Ocorrerá descolamento de retina do EPR.

No entanto, uma injeção mais limpa minimiza o descolamento e melhora muito as chances de recolocação, depois retraia a seringa lentamente e aplique gotas hidratantes para os olhos para manter os olhos hidratados, monitorando o animal até que esteja totalmente recuperado. As células RPE podem ser entregues no espaço sub-retiniano de roedores de forma rápida e consistente. Usando esta técnica.

Embora não seja necessário, os traumas podem ser bastante minimizados usando um micro manipulador. Com essa configuração, quando realizada de forma limpa, a fluorescência das células RPE marcadas pode ser detectada usando um oftalmoscópio de varredura confocal e o descolamento de retina induzido pode ser visualizado usando um sistema de tomografia de coerência óptica. A oftalmoscopia de varredura confocal foi usada para capturar essas imagens ao redor de todo o local da injeção imediatamente após a injeção sub-retiniana.

Observe que o descolamento que é o mais profundo, mas não grave, nas imagens centrais Uma vez dominado, a injeção real pode ser realizada em cinco minutos se for feita corretamente Ao participar deste procedimento, é importante trabalhar com cuidado e manter os movimentos desnecessários ao mínimo. Depois de assistir a este vídeo, esperamos que você tenha uma boa compreensão e apreciação da técnica de injeção sub-retiniana em roedores. Esperamos que esta seja uma maneira eficaz de entregar células, ao mesmo tempo em que minimiza o desconforto e o trauma para os olhos dos roedores.

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Medicina Edição 95 epitélio pigmentado da retina injecções sub-retinianas medicina translacional degeneração macular relacionada com a idade a entrega à base de células

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