Name: Protocolos para obtenção de embriões somáticos e Zygotic para estudar a regulação do desenvolvimento embrionário precoce no Modelo de leguminosas Medicago truncatula (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 32 s
Description: Aprenda a obter embriões somáticos e zigóticos de Medicago truncatula para estudar a regulação genética da embriogênese em plantas. Este protocolo utiliza cultura de tecidos e PCR quantitativa para análise de expressão gênica.

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Esta pesquisa foi apoiada pelo Australian Research Council grant CEO348212 e pela University of Newcastle. A assistência do Dr. Sam Zhang é reconhecida.

1. Desenvolvimento de Embriões Zygotic <ol><li> Material Vegetal <ol><li> Cresça o Medicago truncatula tipo selvagem Jemalong ou seu próximo isogênico, altamente re-generativas genótipo Jemalong 2HA 13 (conhecido como 2HA) em uma estufa com um fotoperíodo de 14 horas e 23 ° C / 19 ° C de temperatura dia / noite. <ol><li> Pierce a superfície do revestimento de semente (com uma agulha G 23) antes de semear a semente de modo que a água pode entrar a semente e embeber em água durante a noite. Adicionar água suficiente para cobrir integralmente a semente. </li><li> Sow 3 sementes em cada vaso diâmetro 15 cm (total de 10 potes) em mistura de envasamento (areia grossa, perlita, coco-turfa (1: 1: 1) mais de 5 g de Osmocote padrão exato: fertilizante de liberação lenta) e transferir para o estufa. Manter a plântula após a germinação saudável para que haja uma planta por vaso e cercada por uma treliça para os caules das plantas para escalar. </li></ol></li></ol></li><li> Pods Colhendo <ol><li> Colete pods do wTipo de ild Jemalong ou 2HA para obter os estágios do embrião precoce apropriados como primeiro descrito 9. NOTA: As diferentes etapas pod são mostrados na Figura 1 e as correspondentes fases de embriões são mostrados na Figura 2. </li><li> Confira os diferentes estágios pod na colheita utilizando critérios conforme tabela 1. Medir o tempo decorrido a partir da fase 6 para ajudar fases distintas 6 e 7 (Tabela 2). </li></ol></li><li> Dissecando óvulos de vagens e verificar a fase de embrião <ol><li> Isolar óvulos de vagens, usando uma pinça fina sozinho ou um microscópio de dissecação estéreo e uma pinça, se necessário. Se necessário, a fase de embrião pode ser rapidamente verificados usando um microscópio composto padrão (Figura 3B). </li><li> Prepare modificado solução de Hoyer contendo 7,5 g goma arábica, 100 g hidrato de cloral, 5 ml de glicerol, 60 ml de água desionizada destilada. Dissolve-se por agitação durante 3-5 horas ou durante a noite. </li><li> Para obter mais refinarmicroscopia d limpar os óvulos dissecados em solução 15,16 modificado de Hoyer. Com cuidado, pegue os óvulos intactas e coloque em um pequeno volume de solução de Hoyer (suficiente para cobrir o óvulo) à temperatura ambiente até claro. </li><li> Ver as amostras com contraste de interferência diferencial (DIC) óptica. Capturar as imagens iwth uma câmara digital 9 (Figura 2). </li><li> Obter os óvulos mais uniformes da região central do pod e acumular o número requerido. Um exemplo é mostrado na Figura 3A. Coletar os óvulos no gelo e armazenar a temperatura requerida (ácidos -80 ° C para nucleicos), para posterior análise. NOTA: Para detalhes sobre a análise dos cortes histológicos, microscopia eletrônica de transmissão, e hibridização in situ consulte papéis 8,9. </li></ol></li></ol> 2. Somatic Desenvolvimento de embriões in vitro <ol><li> Use um M. truncatula cultivar tchapéu é capaz de formar prontamente embriões em cultura. Para este protocolo para explantes foliares usar plantas 2HA 13,17 que são 2-4 meses de idade. </li><li> Tome folhetos da última trifólio quase totalmente expandida de uma haste de alongamento. </li><li> Mantenha os trifólios sobre papel toalha úmida em uma panela de cultura para evitar a desidratação. NOTA: Uma vez que os trifólios são colhidas eles precisam para ser utilizado com o mínimo de atraso. </li><li> Preparação do meio de cultura <ol><li> Utilizar a P4 10: 5 em meio de agar (0,8% w:: v) de 4: 1 em placas de Petri de 9 centímetros. NOTA: O P4 10: 4: 1: 5 do meio consiste na forma P4 basal 18 mais 10 uM de ácido 1-naftalenoacético (NAA), 4 uM de 6-benzilaminopurina (BAP), 1 uM de ácido abscísico (ABA) e 5 uM giberélico ácido (GA). O uso de GA + ABA acelera a formação de embriões e provoca aumentos substanciais no número de embriões 14. </li><li> Certifique-se o meio basal P4 em 1 L; que consiste em sais principais (fazer Calcium-se separadamente), sais e vitaminas menores (Tabela 3), ferro quelato (certifique-se separadamente), casaminoácidos (hidrolisado de caseína), 30 g de sacarose, 8 g de ágar. </li><li> Soluções de loja de grandes sais, de cálcio, de ácidos casamino, sais menores e vitaminas a -20 ° C em aliquotas adequadas. Armazenar ferro quelato a 4 ° C. </li><li> Perfazer o ferro quelado (200x) por dissolução de 7,44 g de Na 2 EDTA • 2H 2 O em aproximadamente 900 ml de água destilada desionizada, enquanto se agitava, em seguida, levar a solução a 98-99 ° C, enquanto a adição de 1,853 g de FeSO4 • 7H 2 O. Finalmente completar a 1 L quando os ingredientes são dissolvidos. Loja em âmbar garrafas a 4 ° C colorido. </li><li> Adicione-se o meio basal P4 com as soluções de reserva como na Tabela 4. As hormonas no meio são 10 uM de NAA, 4 uM BAP, 1 uM de ABA, 5 uM GA (ver Tabela 4 e Tabela materiais específicos). Adicione o NAAe BAP antes da autoclavagem e adicionar ABA e GA após autoclavagem e arrefecimento a cerca de 55 ° C, utilizando-se esterilização por filtração com um filtro de 0,22 um ligado a uma seringa. Misture bem por agitação suave. </li><li> Ajuste a mídia para pH 5,8 com 1 M KOH antes da autoclavagem. Autoclave a 121 ° C durante 20 min. </li><li> Após autoclavagem adicionar o filtro ABA esterilizado e GA, e despeje cerca de 25 ml de mídia na estéreis nove centímetros placas de Petri numa câmara de fluxo laminar ou gabinete de risco biológico. Legal e deixar o agar conjunto com a tampa fora. Em seguida, coloque sobre a tampa e certifique-se que não há condensado na tampa. Etiqueta tal como exigido e armazenar a 4 ° C (em uma caixa de papelão para impedir tampa condensado). </li></ol></li><li> Esterilização de tecido foliar <ol><li> Trabalhar em uma capela de fluxo laminar, esterilizada por UV ou gabinete de risco biológico. </li><li> Coloque as folhas em malha a bola de um infusor de chá mola previamente autoclavada. </li><li> Imergir infusor de chá que contém as folhas em 70% (v: v) de etanol em um culpot tura durante 30 segundos. NOTA: Para todas as etapas deste procedimento utilizar 250 ml tampa de rosca potes de cultura de policarbonato que são autoclavados. </li><li> Drenar e, em seguida, transferir e imergir o tecido de folha em 1: 8 (v: v) de lixívia diluída (0,5% de cloro) durante 10 min. Homogeneizar suavemente ao longo do tempo. </li><li> Escorra a água sanitária e transferir o infusor de chá em uma panela de cultura contendo água destilada deionizada estéril. Agite suavemente e drenar o excesso de água. Repita mais uma vez com um pote de cultura fresco de água destilada deionizada estéril. </li><li> Retire as folhas do infusor de chá com uma pinça estéril para um pote de cultura fresco de água destilada deionizada estéril. Parafuso na tampa estéril e enxaguar invertendo e rodando. Deixe as folhas que flutuam na água estéril até que esteja pronto para preparar explantes. </li></ol></li><li> Preparação e chapeamento explantes <ol><li> Usando técnicas estéreis, guarnição folhetos esterilizados individuais a partir da borda com um bisturi, e cortar o retângulo restante em dois ou tree explantes rectangulares (8-10 x 3-5 mm) com o meio da veia no centro de cada explante (Figura 5A). NOTA: O tamanho do explante é bastante importante no início do primeiro dos calos. Realizar o corte em tampas estéreis a partir de recipientes de comida take-away. </li><li> Placa 6 explantes no meio de cultura solidificado com agar de 9 cm de diâmetro em placas de Petri (Figura 5B). Placa explantes lado do abaxial para baixo para manter a orientação da folha de costume. </li><li> Selar as placas de Petri com Parafilm (Figura 5C) se estenderam ao redor do prato. O tecido está agora pronto para a incubação. </li></ol></li><li> A incubação de tecidos <ol><li> Incubam-se as placas no escuro a 28 ° C numa sala de temperatura controlada ou câmara de crescimento durante todo o período de cultura. NOTA: Os explantes iniciará desdiferenciação, sofrem divisão celular, proliferação (formação de calos) e embriogênese (diferenciação). </li><li> Subcultura do EXPOSIÇÃO diferenciandonts após 3 semanas em meio fresco para. Neste subcultura transferir todo o explante usando uma espátula de aço inoxidável estéril e uma pinça, em uma câmara de fluxo laminar ou um armário de risco biológico. Como ocorre calos e o calos excede o tamanho do maior na Figura 5C, transferir 50% do calo indivíduo quando subcultura para meio fresco. </li><li> Observar os primeiros embriões em cerca de 4 semanas. Embora haja um certo grau de sincronia, recolher os diferentes estágios de embriões, durante um período de incubação de 4-8 semanas (Figura 6A, B). Recolha sob um microscópio de dissecação e processo de acordo com objetivos experimentais. </li><li> Subcultura a cada 3 semanas e remover embriões periodicamente de modo que os explantes continuará a produzir embriões durante 3 meses. </li></ol></li></ol>

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<li>Nolan, K. E., Kurdyukov, S., Rose, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+SOMATIC+EMBRYOGENESIS+RECEPTOR-LIKE+KINASE+1+%28SERK1%29+gene+is+associated+with+developmental+change+in+the+life+cycle+of+the+model+legume+Medicago+truncatula%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Bot%22%5BJournal%5D)">Expression of the SOMATIC EMBRYOGENESIS RECEPTOR-LIKE KINASE 1 (SERK1) gene is associated with developmental change in the life cycle of the model legume Medicago truncatula.</a> J. Exp. Bot. 60 (6), 1759-1771 (2009).</li>
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<li>Mantiri, F. R., Kurdyukov, S., Lohar, D. P., Sharopova, N., Saeed, N. A., Wang, X. D., VandenBosch, K. A., Rose, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+transcription+factor+MtSERF1+of+the+ERF+subfamily+identified+by+transcriptional+profiling+is+required+for+somatic+embryogenesis+induced+by+auxin+plus+cytokinin+in+Medicago+truncatula%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">The transcription factor MtSERF1 of the ERF subfamily identified by transcriptional profiling is required for somatic embryogenesis induced by auxin plus cytokinin in Medicago truncatula.</a> Plant Physiol. 146 (4), 1622-1636 (2008).</li>
</ol>

Os autores declaram que não têm interesses conflitantes.

Os protocolos descritos são relativamente simples e permitir a investigação de embriogênese legume com toda a célula contemporânea e técnicas moleculares. Reconhecemos que há vantagens e desvantagens de ambos in vivo e in vitro abordagens. Ambos permitem mais foco na embriogênese inicial em relação à cultura de sementes imaturas 19. No caso de estudos in vivo que é descrito é predominantemente o isolamento do óvulo da vagem que é adequado para muitos estudos do e...

Legumes são a terceira maior família de plantas superiores com cerca de 20.000 espécies e da (ou Fabaceae) família Leguminosae são segundo para os cereais produzidos na área colhida e produção total de 1. A soja é a terceira maior safra cultivada. Leguminosas fornecer cerca de um terço da proteína da dieta e um terço de óleo vegetal para consumo humano 2. Legumes com a sua capacidade de fixação de N 2 também contribuir para sistemas agrícolas sustentáveis. Medicago truncatula, como soja, lojas de proteína e óleo nos cotilédones de suas sementes e é um modelo legume genética e genómica com consideráveis ​​recursos genéticos e genômicos 3,4. Enquanto M. truncatula permitiu avanços na compreensão da simbiose rizóbio-leguminosa 4 tem sido cada vez mais utilizados para estudar biologia sementes de leguminosas 5-7 e embriogênese 8,9. Arabidopsis embriogénese tem sido extensivamente estudada 10,11 mas isa não leguminosa e os detalhes da embriogénese não são idênticos aos Medicago 8,10. Embriogênese Zygotic em M. truncatula tem características interessantes, com um hipófise multicelular distintivo, um suspensor endoployploid e célula de transferência basal 8. Embriogênese somática (SE) é comumente usado para regeneração de plantas 12. No modelo de leguminosa M. truncatula, a linha de semente Jemalong 2HA (2HA) foi desenvolvido a partir do pai Jemalong a ter altas taxas de embriogênese somática 13. O número de embriões produzidos recentemente tem sido substancialmente aumentada pela adição tanto de ácido giberélico (GA) e ácido abscísico (ABA) para a forma longa estabelecida 14. Neste caso GA e agir sinergicamente ABA, o que é incomum, dado que GA e ABA normalmente agem antagonicamente 14. Os embriões produzidos a partir de calo desenvolver na superfície que permite que a fase de embriogénese a ser prontamente determinada Visually e facilmente colhidas. Tendo em perto de linhas isogénicas que são embriogénicos (2HA) e não embriogénico (Jemalong) facilita a investigação de embriogénese somática e tendo tanto in vivo como em sistemas in vitro proporciona diferentes possibilidades experimentais. A compreensão dos mecanismos celulares e moleculares do desenvolvimento do embrião é essencial para a compreensão de sementes e o desenvolvimento da planta. Em leguminosas, como em outros dicotiledóneas, são os cotilédones do embrião que armazenar os produtos que são utilizados para a nutrição humana. Embriogênese inicial envolve a divisão celular rápida e padronização embrião correta. Em cerca de 8 dias após a fertilização, a M. truncatula embrião atinge estágios iniciais de cotilédones. A caracterização morfológica não é exatamente indicado por dias após a fertilização em condições de casa de vegetação. Assim, uma abordagem padronizada eficiente para indicar a fase de embriões em desenvolvimento é valioso no estudo da genética regulção da embriogênese zigótica cedo. Neste artigo, nós fornecemos dois protocolos padronizados para coletar embriões em desenvolvimento para estudos biológicos da embriogênese no modelo legume M. truncatula. O primeiro deles é coletar embriões zigóticos, associando a embriogênese e pod morfologia enquanto o segundo é embriogênese somática via explantes foliares cultura para fornecer um grande número de embriões facilmente acessados.

<table><tbody><tr><td>P4 meio</td><td>Sigma-Aldrich</td> Use Sigma-Aldrich <td></td><td>Chemicals ou outro fornecedor de grau analítico</td></tr><tr><td>Sais principais Sais</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td>menores</tr><tr><td>Vitaminas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ágar</td><td>Bacto Laboratories</td><td>214010</td><td>Ágar Bacto</td></tr><tr><td>Hormônios</td><td></td><td></td><td></td>vegetais</tr><tr><td>1- Ácido naftalenoacético</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N0640</td><td>Dissolver em pequena quantidade de 1 M NaOH</td></tr><tr><td>Ácido abscísico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A1049</td><td>Dissolver em pequena quantidade de 1 M NaOH</td></tr><tr><td>6-Benzilaminopurina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B3274</td><td>Dissolver em água MQ com aquecimento e algumas gotas 1N HCl</td></tr><tr><td>Ácido giberélico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7645</td><td>Dissolver em pequena quantidade de etanol</td></tr><tr><td>Equipamento</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscópio de dissecação estéreo</td><td>Leica</td><td>MZFLIII</td><td>Ou similar</td></tr><tr><td>Microscópio óptico</td><td>Zeiss</td><td>Axiophot</td><td>Ou similar, com ótica adequada</td></tr><tr><td>Câmera digital</td><td>Zeiss</td><td>AxioCam HRc</td><td>Ou similar</td></tr><tr><td>Folhas esterilizantes Recipiente</td><td></td><td></td><td></td></tr> de <tr><td>policarbonato com tampa de rosca de 250 mL com tampa de polipropileno</td><td>SARSTEDT</td><td>75.9922.519</td><td>Autoclavável</td></tr></tbody></table>

protocolos para obtenção de embriões somáticos e zygotic para estudar a regulação do desenvolvimento embrionário precoce no modelo de leguminosas<em&gt; medicago truncatula</em

Protocols for Obtaining Zygotic and Somatic Embryos for Studying the Regulation of Early Embryo Development in the Model Legume Medicago truncatula

No início da embriogênese a partir de uma única célula zigoto passa por rápida divisão celular e morfogênese, e é caracterizada morfologicamente por estágios de pré-globular, globulares, coração, torpedo e cotilédones. Esta evolução progressiva está sob a regulação apertada de uma rede molecular complexa. Colhendo embriões suficientes em um estágio similar de desenvolvimento é essencial para a investigação da regulação celular e molecular da embriogênese precoce. Isso não é simples, uma vez embriogênese sofre morfogênese rápido em um curto espaço de tempo por exemplo, oito dias para Medicago truncatula para chegar à fase de cotilédones cedo. Aqui, nós resolver a questão através de duas abordagens. O primeiro estabelece uma ligação entre o desenvolvimento do embrião e morfologia pod em ajudar indicar a etapa do embrião zigótico. Isto é particularmente com base no número de espirais e desenvolvimento das espinhas pod. Uma forma alternativa para complementar o s in vivotudies é através de cultura de explantes de folhas para produzir embriões somáticos. O meio inclui uma combinação de hormônio incomum - uma auxina (ácido 1-naftalenoacético), uma citocinina (6-benzilaminopurina), ácido abscísico e giberelina. As diferentes fases pode ser discernido que cresce fora do calo sem dissecção.

Para diferentes estruturas de embriogénese pod zigóticos correspondentes às diferentes fases de embriões são mostrados na Figura 1A - F enquanto os diferentes estágios embrionários são mostrados na Figura 2A - F. Ao seleccionar vagens na mesma fase, as amostras de óvulos que são bastante uniforme pode ser obtida (Figura 3A). Usando RT-qPCR embrião genes específicos podem ser facilmente detectada e os estudos do curso de tempo avaliado <...

O objetivo é ilustrar que a leguminosa modelo Medicago truncatula pode ser prontamente utilizada para investigar a regulação da embriogênese inicial da planta para complementar o modelo Arabidopsis não leguminoso. A morfologia do vagem está ligada aos estágios de embriogênese zigótica e um protocolo para coletar embriões usando cultura de tecidos também é fornecido.

Protocolos para obtenção de embriões somáticos e Zygotic para estudar a regulação do desenvolvimento embrionário precoce no Modelo de leguminosas<em&gt; Medicago truncatula</em

Early embryogenesis starting from a single cell zygote goes through rapid cell division and morphogenesis, and is morphologically characterized by ...

O objetivo geral dos procedimentos a seguir é demonstrar quantos embriões de tula-carga podem ser obtidos em diferentes estágios de desenvolvimento para investigar a regulação genética da embriogênese em plantas, o que pode ser realizado associando a morfologia da vagem aos diferentes estágios de desenvolvimento do embrião zigótico e cultivando explantes foliares para obter embriões somáticos em diversos estágios. Em última análise, a PCR quantitativa e a beta-glucuronidase podem ser utilizadas para avaliar a expressão gênica durante a embriogênese nos estágios de desenvolvimento específicos de interesse. As vantagens dessas técnicas são que a marcação individual de flores não é necessária para experimentos in vivo, e os procedimentos in vitro otimizados oferecem abordagens experimentais complementares.A demonstração visual do procedimento de cultivo é importante porque permite acompanhar com mais precisão os detalhes das manipulações. O procedimento in vivo será demonstrado por ing Wang, enquanto Kim Nolan demonstrará o procedimento in vitro. Para facilitar o desenvolvimento do embrião zigótico, perfure a superfície dos tegumentos de sementes provenientes de uma planta trinocular Monte cargo e mergulhe as sementes durante a noite, completamente cobertas com água.No dia seguinte, semeie três sementes em cada um dos 10 vasos de 15 centímetros de diâmetro, utilizando uma mistura para vasos, e transfira os vasos para uma estufa. Cultive as plantas sob um fotoperíodo de 14 horas com temperatura diurna e noturna entre 23 e 19 graus Celsius, mantendo as plântulas mais saudáveis após a germinação, de modo que haja uma planta por vaso, e circunde as plântulas com uma tela para que os caules das plantas possam trepar quando surgirem as vagens. Colete nas fases apropriadas descritas na tabela um e na figura um para obter o estágio desejado de desenvolvimento embrionário inicial.Em seguida, use pin&ccedil;as para isolar os embri&otilde;es das vagens. Alternativamente, para uma microscopia mais refinada, clarifique completamente em solu&ccedil;&atilde;o de Hoyer, sendo que os est&aacute;gios dos embri&otilde;es podem ser confirmados por meio da an&aacute;lise de imagens dos embri&otilde;es em um microsc&oacute;pio composto padr&atilde;o. Em seguida, colete o n&uacute;mero de UL necess&aacute;rio para o experimento a partir da regi&atilde;o central da vagem e armazene-os &agrave; temperatura apropriada para an&aacute;lise posterior do desenvolvimento de embri&otilde;es som&aacute;ticos.Colete in vitro folíolos da última folha jovem, quase totalmente expandida, de um caule em alongamento de um cultivar de tran atula capaz de formar embriões prontamente em cultura. Mantenha as folhas jovens sobre papel toalha úmido em um recipiente de cultura para evitar desidratação. Em seguida, trabalhando em uma cabine de segurança biológica esterilizada com UV, coloque as folhas na bola de malha de um infusor de chá de mola para autoclave.Um infusor imerso em Etanol 70% em um frasco de 250 mililitros com tampa rosqueada autoclavado. Pote de cultura de policarbonato após 30 segundos, drenar o tecido foliar e, em seguida, imergir o infusor em uma solução de hipoclorito diluída na proporção de um para oito durante 10 minutos. Com movimentos suaves ocasionais, agitar suavemente o pote e drenar a água em excesso.Em seguida, enxágue o infusor. Mais uma vez, com água desionizada fresca em uma panela nova. Agora, use pinças estéreis para transferir as folhas do infusor de chá para um novo cultivo, um recipiente com água destilada estéril desionizada, e rosqueie bem a tampa estéril.Em seguida, enxágue as folhas por inversão e agitação suave. Em seguida, deixe os folíolos flutuarem na água estéril para placação dos implantes. Corte as bordas dos folíolos individualmente esterilizados utilizando técnica estéril.Em seguida, corte o retângulo restante em dois ou três explantes retangulares de oito a dez por três a cinco milímetros, com a nervura central no centro de cada explante X. Seis explantes X por meio de cultura sólido com ágar em placas de Petri com diâmetro de nove centímetros, com o lado do selo ABA voltado para baixo para manter a orientação normal da folha.Em seguida, feche as placas de Petri com perfil e incube-as no escuro a 28 graus Celsius em uma sala com temperatura controlada. Após três semanas, utilize uma espátula e pinça de aço inoxidável esterilizadas para subcultivar os explantes diferenciados do orifício em meio fresco. Os primeiros embriões devem ser observados em cerca de quatro semanas, à medida que ocorre o calogênese e o calo ultrapassa o tamanho do maior explante mostrado aqui.Transfira apenas 50% do calo individual ao repicar para meio fresco. Finalmente, utilize um microscópio estereoscópico para coletar os diferentes estágios de embrião durante um período de incubação de quatro a oito semanas, processando os explantes de acordo com os objetivos experimentais. Após a colheita de embriões zigóticos conforme demonstrado anteriormente, estratégias a jusante, como hibridização C dois ou outras abordagens apropriadas, podem ser empregadas; de particular interesse, como demonstrado nestas imagens, a distinção entre SSIS e Spencer pode ser observada acompanhando os X plans cultivados.Entre as semanas quatro e oito, embriões somáticos em estágios definidos podem ser localizados e coletados para análise imediata. Por exemplo, estes dados ilustram como embriões no estágio inicial Olein exibem a expressão de um tipo de gene medicago Tula eoin, mas não de outro. Uma vantagem particular do sistema de embrião somático é que a transformação do calo pode ser realizada sem a necessidade de regenerar uma planta inteira.De fato, como demonstrado aqui. A beta-glucuronidase pode ser usada para visualizar a expressão gênica nas diferentes fases da embriogênese. Após assistir ao vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como selecionar e dissecar o vagem para obter os andros.Você também deve ter um bom entendimento de como preparar e semear explantes estéreis para embriogênese somática após seu desenvolvimento. Essas técnicas permitiram a investigação da regulação da transcrição nas fases iniciais da embriogênese em relação ao desenvolvimento do crescimento do embrião e ao armazenamento de nutrientes.

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

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Protocolos para obtenção de embriões somáticos e Zygotic para estudar a regulação do desenvolvimento embrionário precoce no Modelo de leguminosas Medicago truncatula (Vídeo) | JoVE Journal

Protocolos para obtenção de embriões somáticos e Zygotic para estudar a regulação do desenvolvimento embrionário precoce no Modelo de leguminosas

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