Name: Isolamento de Neural Stem / células progenitoras da Região Periventricular do rato adulto e Medula Espinhal Humano (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 26 s
Description: Aprenda a isolar células-tronco/progenitoras neurais da região periventricular da medula espinhal de ratos adultos e humanos. Este protocolo detalha dissociação enzimática e formação de neuroesferas para pesquisa em neurociência e medicina regenerativa.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Os autores gostariam de agradecer o apoio da Spinal Cord Injury Ontario, do Fundo de Pesquisa e Inovação Ontário-China, da Fundação do Hospital Geral e Ocidental de Toronto e da Fundação Incorporada de Serviços Médicos. Os autores agradecem ao Dr. Tasneem Zahir pelo aconselhamento especializado em cultura NSPC da medula espinhal humana, e aos Drs. Cindi Morshead e Iris Kulbatski por seus conselhos especializados no isolamento do NSPC da medula espinhal de ratos.

Todos os procedimentos com animais são aprovados pelo Comitê Animal Care da University Health Network, Toronto ON Canadá, em conformidade com as políticas estabelecidas no Guia para o Cuidado e Uso de Animais Experimentais preparados pelo Canadian Council on Animal Care. Para a colheita de tecido da medula espinhal humana, a aprovação foi obtida a partir da Investigação Conselho de Ética University Health Network e do Trillium Gift of-Life Foundation, que supervisiona a doação de órgãos em Ontário, Canadá. 1. Preparação da dissecção Buffers e Meios de Cultura <ol><li> Para o isolamento da medula espinal de rato, a preparação de 100 ml de tampão de dissecção (1x PBS + 0,6% de glucose + 2% de penicilina-estreptomicina) e refrigerar. Para medula espinhal humana preparar 100 ml de tampão de dissecção (1x HBSS + 0,6% de glicose + 2% de penicilina-estreptomicina) e leve à geladeira. </li><li> Preparação de 100 ml de meio isento de soro (SFM) e aquecer a 37 ° C. Para preparar SFM, adiciona-se 2 mM de L-glutamina, 100 ug / ml-penicilina estreptomicina, 2% B27, e 10% de mistura de hormona-Neurobasal Um meio. Para preparar a mistura de hormona, fazer uma diluição 1: meio / F12 1 DMEM contendo 0,6% de glucose, 3 mM de NaHCO3, 5 mM de HEPES, 25 ng / ml de insulina, 100 ng / ml de apo-transf errina, putrescina 10 pM, 30 nM de selénio, e 20 nM de progesterona. </li><li> Prepara-se o enriquecida em factor de crescimento de EFH meios seletivos (SFM para adicionar 20 ng / ml de EGF, 20 ng / ml de bFGF, e 2 ug / ml de heparina) e aquecer a 37 ° C. Certifique-se de que EFH humano contém fatores de crescimento recombinantes humanos (ver Tabela de Materiais). </li></ol> 2. Colheita e dissecção de rato adulto Periventricular Spinal Cord Tissue <ol><li> Esterilizar instrumentos de dissecação em etanol e lave em soro fisiológico estéril, ou instrumentos de autoclave com antecedência. Submeter rato (6-8 semanas de idade) de uma injecção letal de pentobarbital de sódio (1 cc a 65 mg / ml) ou sobredose de anestésico (ou seja, 4% de isofluorano) de acordo com um protocolo aprovado pela instituição animal. Douse a parte traseira do rato com etanol a 70% e remover a pele na superfície dorsal com grandes tesouras de dissecação. </li><li> Segurando a tesoura perpendiculares à superfície dorsal, transversalmente cortar a coluna vertebral acima dos membros posteriores. Use tesouras pequenas para cortar longitudinalmente o músculo dorsal que se sobrepõe à coluna vertebral em direcção rostral para expor os processos espinhosos. </li><li> Começando na extremidade caudal exposto, inserir fórceps ou um pequeno instrumento de corte de osso romba extradurally para o aspecto lateral do canal vertebral no espaço entre a medula espinal e da coluna vertebral. Faça pequenos cortes na lâmina (arcos ósseos esquerda e direita dos processos espinhosos de cada lado das vértebras) e cuidadosamente descascar a lâmina para expor a medula espinhal (Figura 1A-D). Assegurar o ângulo das pás é raso e paralelo ao cabo de modo a medula espinhal subjacente não é danificado. </li><li> Continue laminectomy na direção rostral para exposum e da medula espinhal torácica e cervical. </li><li> Gentilmente extirpar a medula espinhal da coluna vertebral com uma pinça sem corte e uso microtesoura para cortar cuidadosamente as raízes para liberar o cabo. Coloque a medula espinal excisada numa placa de Petri contendo tampão de 4 ° C dissecção estéril de rato (descrito acima no ponto 1.1). Lave o tecido em tampão C dissecação 4 ° preparados na hora e usando uma tesoura cortar a medula espinhal transversalmente em 1 centímetro segmentos (Figura 1E). </li><li> Para cada segmento de tecido, usar uma mão para segurar o tecido com uma pinça fina. Com a outra mão, usar cuidadosamente microtesouras para remover as meninges sobrejacente, matéria branca, e a maior parte da matéria cinzenta com o auxílio de um escopo de dissecação. Em alternativa, usar uma pinça fina (Dumont # 4) para descascar a maior parte da matéria cinzenta e branca, deixando apenas a região periventricular da medula espinal que inclui o ependyma e uma pequena quantidade de matéria cinzenta circundante (Figura 1F-H).</li><li> A piscina do tecido periventricular dissecado em um prato de 10 centímetros estéril Petri contendo tampão dissecção rato frio. </li></ol> 3. Colheita e Dissecção da Human Adulto Periventricular Spinal Cord Tissue Nota: O tecido da medula espinal humano é colhido a partir de doadores de transplante de órgãos adultos (dadores variaram na idade de 2 a 60 anos de idade) após os outros órgãos foram removidos para o transplante de órgãos. O Trillium Gift of-Life Program obtém consentimento para a remoção de tecido para fins de pesquisa de familiares do paciente e notifica a nossa equipa de colheita em uma forma oportuna de tal modo que temos sido capazes de colher os cabos dentro de 2 horas de pinçamento aórtico. Doadores adultos masculinos e femininos com sorologia negativa e não há infecções são aceitos. <ol><li> Tecido colheita de uma forma estéril na sala de operação através de uma abordagem anterior usando a mesma exposição anterior já dissecados para remoção de órgãos pelo órgão transpequipa de colheita lant. </li><li> Expor a coluna vertebral anterior através de retração com grandes propagadores de costela e grandes afastadores de remo dos restantes tecidos e órgãos, incluindo os grandes vasos sanguíneos. </li><li> Utilize uma serra de esterno montado com uma lâmina longa para cortar através dos discos intervertebrais nas extremidades rostral e caudal do comprimento desejado da coluna vertebral a ser ressecado. Ângulo da serra cerca de 45 ° medial para cortar uma calha triangular a partir da parte lateral dos corpos vertebrais apenas evitando o canal espinhal. </li><li> Retirar em bloco os aspectos medial dos corpos vertebrais dos segmentos desejados com o auxílio de osteï¿½omos curvas e malho tendo o cuidado de evitar o corte através da dura-máter. Em seguida, levante suavemente a dura coberta medula espinal com pinças dentadas e agudamente inciso as extremidades rostrais e caudais do cabo. Use a tesoura e pinça para longas transecto bilateralmente as raízes individuais. </li><li> Colocar o segmento excisado da medula espinhal em 4 °; C tampão estéril (1x HBSS + 0,6% de glucose + 2% de penicilina-estreptomicina) num tubo de ensaio grande para o transporte para a sala de cultura do tecido. </li> <li> Nota: Em geral, uma 3 - segmento de 6 cm de medula espinal do torácica superior e / ou no meio-para-baixo nível torácico é removido na sala de operações sob condições estéreis, assim que possível após a interrupção da circulação e colocados em tampão estéril frio . O tempo decorrido entre a cessação da circulação e remoção da medula espinhal varia com o tempo necessário para colher os órgãos visados ​​para doação e variou entre 45 minutos e 2 horas. Se o coração e pulmões também foram removidos, a dissecção pode ser feita muito rostral para a colheita de uma porção da medula cervical inferior bem. </li><li> Dissecar o tecido da medula espinal humana, logo que possível após a colheita, geralmente no prazo de 3 horas. Remover a dura-máter e meninges outros com uma pinça. Lavar o tecido da medula espinhal em tampão C dissecção 4 ° frescos ecortado transversalmente em segmentos de 1 centímetro. </li><li> Com o auxílio de um escopo de dissecação, excisar as meninges sobrejacente, matéria branca, e a maior parte da massa cinzenta usando uma pinça, uma pinça fina e microtesouras para cada segmento de tecido. A piscina do tecido periventricular dissecados, que inclui o ependyma e uma pequena quantidade de matéria cinzenta em redor, em um prato de 10 centímetros estéril Petri contendo tampão dissecação humana frio. </li></ol> 4. Isolamento e Cultura de rato adulto e NSPCs da Medula Espinal Humanos <ol><li> Execute as seguintes etapas assepticamente numa câmara de fluxo laminar. <ol><li> Picar o rato dissecado ou tecido periventricular humana em um milímetro 3 peças com microtesoura. </li><li> Enzimaticamente dissociar o tecido moído com enzimas proteolíticas, utilizando o kit de dissociação de papaína como indicado na tabela de materiais / reagentes. Nota: Os componentes de reagentes incluem 4 frascos; Frasco 1: Solução Salina Equilibrada de Earle (EBSS), Frasco 2: contend papaínag de L-cisteína e EDTA, Frasco 3: desoxirribonuclease I (ADNase), Frasco 4: inibidor de protease ovomucóide com albumina de soro bovino (BSA). Nota: Nota: A papaína é uma protease sulfidrilo que tem larga especificidade para substratos proteicos. A papaína aqui é derivado do látex da planta Carica papaya e degrada a maior parte dos substratos proteicos mais ampla do que as proteases pancreáticas. Durante o processo de dissociação há algum dano celular, causando ADN a ser libertado para o meio de dissociação que vai aumentar a viscosidade e tornar difícil a pipetagem. Assim, a DNase é incluída no procedimento de isolamento de células para digerir o DNA, sem danificar as células intactas. Ovomucoids glicoproteína são inibidores da protease utilizados para inibir a actividade da papaína, após o passo de dissociação. </li></ol></li><li> Na primeira utilização, reconstituir a mistura de inibidor de albumina de ovomucóide (4 frasco) com 32 mL de EBSS (frasco 1), e, em seguida, armazenar a 4 ° C e usado para isolamentos subsequentes.Nota: Isto produz uma solução a uma concentração eficaz de 10 mg de inibidor de ovomucóide e 10 mg de albumina por ml. </li><li> Adiciona-se 5 mL de EBSS (frasco 1) para um frasco de papaína (frasco 2), obtendo-se uma solução a 20 unidades de papaina / ml em 1 mM de L-cisteína com EDTA 0,5 mM. Verificar que a solução de papaína aparece clara, após dissolução completa, de outra forma colocar o frasco num banho de água a 37 ° C durante 10 minutos até que a papaína esteja completamente dissolvido para assegurar a actividade total da enzima. </li><li> Adicionar 500 mL de EBSS (frasco 1) para um frasco de ADNase (frasco 3) e misturar delicadamente como ADNase cisalhamento é sensível à desnaturação. Adicionar 250 ul da solução de ADNase para o frasco contendo a papaína, resultando numa concentração final de aproximadamente 20 unidades / mL de papaína e 0,005% de DNase. Guardar o equilíbrio do frasco ADNase para usar mais tarde. </li><li> Colocar o rato picada ou tecido humano na solução de papaína como foi preparada na etapa 4.4 acima. Para o isolamento de tecido humano, o tecido dividido igualmente entre dois picadafrascos de papaína (cerca de 0,2 g / frasco). </li><li> Incubar a 37 ° C com agitação constante sobre uma plataforma basculante para dissociar o tecido em solução de papaína activada. Incubar tecido de rato durante 45 min a 1 h, e os tecidos humanos durante 1 a 2 horas, dependendo da quantidade de tecido moído, cerca de 0,2-0,4 g, respectivamente. </li><li> Tritura-se a mistura com uma pipeta de 10 ml a dissociar quaisquer pedaços de tecido restantes para se obter uma suspensão de células turva. Transferir a suspensão de célula (não incluem quaisquer pedaços de tecido não dissociado) em um tubo de 15 ml estéril e centrifugar a 300 xg durante 5 min à temperatura ambiente. </li><li> Ressuspender as células peletizadas em meio contendo ovomucóide, um inibidor da papaína. <ol><li> Preparar a solução de ovomucóide por mistura de 2,7 mL de EBSS (1 frasco) com 300 ul da solução de inibidor de albumina-ovomucóide reconstituído (frasco 4) em um tubo de 15 ml. Adicione 150 ml de solução de ADNase (frasco 3) guardados no passo 4.4 acima. </li><li> Descartar o sobrenadante a partir deas células sedimentadas e imediatamente ressuspender o sedimento de células na mistura albumina-inibidor ADNase diluída. </li></ol></li><li> Células intactas a partir de membranas celulares separadas por centrifugação através de um único passo de gradiente de densidade descontínuo. <ol><li> Prepara-se o gradiente de densidade descontínuo, adicionando 5 ml de solução de albumina-inibidor (vial 4) para um tubo de 15 ml, e usando uma pipeta de 5 ml, e suavemente camada lentamente a suspensão de células (preparado como descrito acima no passo 4.8) na parte superior de a solução de albumina-inibidor. </li><li> Centrifugar a 70 xg durante 6 minutos à temperatura ambiente. </li><li> Nota: A interface entre as duas camadas do gradiente deverá ser claramente visível, embora mistura mínima neste limite não afecta o resultado. Fragmentos de membrana permanecem na interface e células dissociadas sedimentar no fundo do tubo. </li></ol></li><li> Para as células de rato, descartar o sobrenadante e ressuspender o sedimento de células em 1 ml de meio de rato EFH (pré-aquecido a 37 ° C).Contagem de densidade de células vivas com um hemocitómetro e as células em placa num frasco de cultura T25, a uma densidade de 10 células / ul em EFH. O rendimento típico de células a partir de tecido de rato é cerca de 2 x 10 6 células, com cerca de 80% viability.If culturas clonais são desejadas células de sementes, com uma densidade de menos de 10 células / ul. Incubar os frascos a 37 ° C em 5% de CO 2 e permitir que as culturas a crescer em repouso durante uma semana para evitar a agregação das esferas. </li><li> Para células humanas, descartar o sobrenadante e ressuspender o sedimento celular em 10 ml de meio de EFH humano (pré-aquecido a 37 ° C). Filtra-se a suspensão de células através de um coador de células de 40 um seguido de nylon com 30 ml de EFH para remover fragmentos de mielina e células de membrana. Centrifuga-se a 300 xg durante 5 minutos e ressuspender o sedimento de células em 1 ml de meio de EFH. </li><li> Contagem de densidade de células vivas com um hemocitómetro e as células humanas placa em placas de cultura de 6 poços a uma densidade de 10 5 células / poço num volume totalde 5 ml de EFH / poço. O rendimento típico de células a partir de tecido humano é de cerca de 1 x 10 6 células, com cerca de 70% de viabilidade. Poços do pré-revestimento com um substrato aderente tal como Matrigel (ver nota abaixo). Dilui-se a uma razão de 40 ul de Matrigel: 1 ml de SFM. </li><li> Nota: Em alternativa, podem ser utilizados outros substratos aderentes, tais como poli-D-lisina / laminina, fibronectina, ou colagénio. </li><li> Incubar as placas a 37 ° C em 5% de CO 2 e permitir que as culturas a crescer em repouso durante uma semana. </li></ol> 5. Passaging de rato adulto e NSPCs medula espinhal humanos <ol><li> Rato NSPCs irá formar pequenas neuroesferas cerca de 70 um de diâmetro dentro de 1 semana de sementeira inicial; NSPCs passagem de rato semanais por recolha da suspensão de células, centrifugação a 300 xg durante 5 min, e triturando mecanicamente a pelete de células a dissociar as neuroesferas. </li><li> Semente as células dissociadas em frascos T25 contendo rato fresco meio EFH. Alternativamente,usar 50% de meio condicionado para rato passaging. O rendimento típico de NSPCs rato no passaging é de cerca de 5 x 10 6 células, o que aumenta exponencialmente com o número de passagens. </li><li> Para as culturas humanas, uma semana após o plaqueamento inicial, substituir metade do meio de cultura fresco com EFH duas vezes por semana para permitir que as células aderem ao substrato. Geralmente, 1-2 semanas mais tarde, uma vez que as células tenham anexado ao substrato, substituir todo o volume do meio de cultura duas vezes por semana com EFH fresco. </li><li> Células subcultura antes de atingir confluência entre 4-8 semanas. <ol><li> Subcultura de células destacando as células a partir do substrato enzimaticamente (ver Tabela de Materiais) com 2 ml de enzima por poço incubado durante cerca de 10 min a 37 ° C. Recolhe suspensão de células, centrifugar a 300 xg durante 5 min, e ressuspender cuidadosamente a pelete de células em 1 ml de meio de EFH acabado de fazer. </li><li> Contagem de células vivas com um hemocitómetro e as células placa em placas de cultura de 6 poços (pré-co-ATED como acima no passo 4.12) a uma densidade de 10 5 células / poço num volume total de 5 ml de EFH / poço. O rendimento típico de NSPCs humanos no passaging é de cerca de 2 x 10 6 células e, geralmente, isso vai dobrar com passagem. Geralmente, manter culturas com 50% de meio condicionado de EFH 2 - 3 vezes por semana entre passaging. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Gage, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+neural+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mammalian neural stem cells.</a> Science. 287, 1433-1438 (2000).</li>
<li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+neurons+and+astrocytes+from+isolated+cells+of+the+adult+mammalian+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system.</a> Science. 255, 1707-1710 (1992).</li>
<li>Gritti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipotential+stem+cells+from+the+adult+mouse+brain+proliferate+and+self-renew+in+response+to+basic+fibroblast+growth+factor%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Multipotential stem cells from the adult mouse brain proliferate and self-renew in response to basic fibroblast growth factor.</a> J Neurosci. 16, 1091-1100 (1996).</li>
<li>Morshead, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cells+in+the+adult+mammalian+forebrain%3A+a+relatively+quiescent+subpopulation+of+subependymal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Neural stem cells in the adult mammalian forebrain: a relatively quiescent subpopulation of subependymal cells.</a> Neuron. 13, 1071-1082 (1994).</li>
<li>Weiss, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipotent+CNS+stem+cells+are+present+in+the+adult+mammalian+spinal+cord+and+ventricular+neuroaxis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Multipotent CNS stem cells are present in the adult mammalian spinal cord and ventricular neuroaxis.</a> J Neurosci. 16, 7599-7609 (1996).</li>
<li>Martens, D. J., Seaberg, R. M., van der Kooy, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+infusions+of+exogenous+growth+factors+into+the+fourth+ventricle+of+the+adult+mouse+brain+increase+the+proliferation+of+neural+progenitors+around+the+fourth+ventricle+and+the+central+canal+of+the+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">In vivo infusions of exogenous growth factors into the fourth ventricle of the adult mouse brain increase the proliferation of neural progenitors around the fourth ventricle and the central canal of the spinal cord.</a> Eur J Neurosci. 16, 1045-1057 (2002).</li>
<li>Kulbatski, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oligodendrocytes+and+radial+glia+derived+from+adult+rat+spinal+cord+progenitors%3A+morphological+and+immunocytochemical+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22J+Histochem+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Oligodendrocytes and radial glia derived from adult rat spinal cord progenitors: morphological and immunocytochemical characterization.</a> J Histochem Cytochem. 55, 209-222 (2007).</li>
<li>Akesson, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+culture+and+neuronal+survival+after+intraspinal+transplantation+of+human+spinal+cord-derived+neurospheres%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Long-term culture and neuronal survival after intraspinal transplantation of human spinal cord-derived neurospheres.</a> Physiol Behav. 92, 60-66 (2007).</li>
<li>Dromard, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+human+spinal+cord+harbors+neural+precursor+cells+that+generate+neurons+and+glial+cells+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Adult human spinal cord harbors neural precursor cells that generate neurons and glial cells in vitro.</a> J Neurosci Res. 86, 1916-1926 (2008).</li>
<li>Mothe, A. J., Zahir, T., Santaguida, C., Cook, D., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem%2Fprogenitor+cells+from+the+adult+human+spinal+cord+are+multipotent+and+self-renewing+and+differentiate+after+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Neural stem/progenitor cells from the adult human spinal cord are multipotent and self-renewing and differentiate after transplantation.</a> PLoS One. 6, e27079(2011).</li>
<li>Huettner, J. E., Baughman, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+culture+of+identified+neurons+from+the+visual+cortex+of+postnatal+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Primary culture of identified neurons from the visual cortex of postnatal rats.</a> J Neurosci. 6, 3044-3060 (1986).</li>
<li>Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+expansion+of+the+adult+mouse+neural+stem+cells+using+the+neurosphere+assay%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation and expansion of the adult mouse neural stem cells using the neurosphere assay.</a> J Vis Exp. , (2010).</li>
<li>Reynolds, B. A., Rietze, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cells+and+neurospheres--re-evaluating+the+relationship%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Neural stem cells and neurospheres--re-evaluating the relationship.</a> Nat Methods. 2, 333-336 (2005).</li>
<li>Singec, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+the+actual+sensitivity+and+specificity+of+the+neurosphere+assay+in+stem+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Defining the actual sensitivity and specificity of the neurosphere assay in stem cell biology.</a> Nat Methods. 3, 801-806 (2006).</li>
<li>Louis, S. A., Azari, H., Sharififar, S., Vedam-Mai, V., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural-colony+forming+cell+assay%3A+an+assay+to+discriminate+bona+fide+neural+stem+cells+from+neural+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Neural-colony forming cell assay: an assay to discriminate bona fide neural stem cells from neural progenitor cells.</a> J Vis Exp. , (2011).</li>
<li>Louis, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enumeration+of+neural+stem+and+progenitor+cells+in+the+neural+colony-forming+cell+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Enumeration of neural stem and progenitor cells in the neural colony-forming cell assay.</a> Stem Cells. 26, 988-996 (2008).</li>
<li>Conti, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Niche-independent+symmetrical+self-renewal+of+a+mammalian+tissue+stem+cell%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Niche-independent symmetrical self-renewal of a mammalian tissue stem cell.</a> PLoS Biol. 3, e10(2005).</li>
<li>Pollard, S. M., Conti, L., Sun, Y., Goffredo, D., Smith, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adherent+neural+stem+%28NS%29+cells+from+fetal+and+adult+forebrain%5BTitle%5D)+AND+%22Cereb+Cortex%22%5BJournal%5D)">Adherent neural stem (NS) cells from fetal and adult forebrain.</a> Cereb Cortex. 16, Suppl 1. i112-i120 (2006).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

Durante a dissecção da medula espinal do tecido cuidados devem ser tomados para não danificar a medula espinhal durante a realização da laminectomia. É mais fácil isolar o tecido periventricular quando os segmentos da medula espinal estão intactos. Os segmentos de tecido deve ser totalmente imersa em tampão de dissecação e as meninges que recobrem e substância branca pode ser cortada como tiras longitudinais com microtesoura. Alternativamente, uma pinça fina pode ser usada para descascar a substância branca de distância...

NSPCs são células multipotentes comprometidos com a linhagem neural que podem se auto renovar e expandir rapidamente in vitro. Nós nos referimos a essas células como uma população mista de células estaminais / progenitoras neurais uma vez que eles exibem propriedades de células-tronco multipotentes auto-renovação e progenitores mais restritas. NSPCs são encontradas tanto no cérebro fetal e adulto e na medula espinal 1,2. No adulto, NSPCs são normalmente quiescentes e residir dentro nichos específicas, incluindo a zona subventricular alinhando os ventrículos laterais de 2-4, e a região periventricular torno do canal central da medula espinal 5,6. Normalmente, NSPCs são cultivadas como neurospheres livre flutuação ou monocamadas como aderentes em meio isento de soro suplementado com EGF e bFGF, mitogens que selecionam para as populações de células estaminais / progenitoras. O ensaio neuroesfera originalmente desenvolvido por Reynolds e Weiss 2, é mais vulgarmente utilizado para a cultura eexpandir as células-tronco neurais. NSPCs mostram multipotência quando eles são plaqueadas em crescimento isento de factor de meio contendo soro, diferenciar-se em neurónios, astrócitos e oligodendrócitos. Multipotentes, NSPCs auto-renovação podem ser isoladas e cultivadas a partir da medula espinal roedor adulto quando o tecido cultivado inclui regiões do canal central 6,7. Uma vantagem potencial na utilização NSPCs gerados a partir da medula espinal adulta em oposição a geração de células a partir de outras regiões é que estas células de tecidos específicos mais se assemelham células na medula espinal que são perdidas ou danificadas após a lesão ou doença. Trabalhos anteriores mostraram que neuroesferas derivadas da medula espinal adulto humano não podia ser propagada a longo prazo ou passadas para gerar números suficientes de células de 8,9. No entanto, com modificações em condições de cultura, nós informamos a expansão e transplante de NSPCs derivadas de medula espinhal humanos adultos, o que demonstra que a auto-renovaçãoe NSPCs multipotentes podem ser isolados a partir da medula espinal humano adulto de 10 doadores de transplante de órgãos. Em primeiro lugar, a remoção da maior parte da matéria branca durante a dissecção e a cultura destas células em um substrato aderente em meio de crescimento enriquecido com factor seleccionado para a proliferação de adultos humanos NSPCs da medula espinal. Neste protocolo, descrevemos a colheita da medula espinhal de ratos adultos e de dadores humanos de transplante de órgãos, a dissecção do tecido periventricular, e o isolamento, e expansão da cultura NSPCs.

<table><tbody><tr><td>1x PBS</td><td>Life Technologies</td><td>#10010023</td><td>Tampão de dissecação</td></tr><tr><td>1x HBSS</td><td>Life Technologies</td><td>#14175095</td><td>Tampão de dissecação</td></tr><tr><td>D-glicose</td><td>Sigma</td><td># G-6152</td><td>Prepare solução estoque de glicose a 30% para tampão de dissecação e mistura hormonal</td></tr><tr><td>Penicilina-Estreptomicina</td><td>Life Technologies</td><td>#15140-148</td><td>Tampão de dissecção e meio de cultura</td></tr><tr><td>Neurobasal-A&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>#10888-022</td><td>Meio</td></tr><tr><td>de cultura L-glutamina, 200 mM</td><td>Life Technologies</td><td>#25030-081</td><td>Meio de cultura</td></tr><tr><td>B27</td><td>Life Technologies</td><td>#12587010</td><td>Meio de cultura</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies</td><td>#11885084</td><td>Mistura hormonal</td></tr><tr><td>F12</td><td>Life Technologies</td><td>#21700-075</td><td>Mistura hormonal</td></tr><tr><td>NaHCO 3</td> <td>Sigma</td> <td># S-5761</td><td>Prepare 7,5% NaHCO 3 solução de estoque para mistura hormonal</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>#H9136</td><td>Prepare 1M HEPES solução de estoque para mistura hormonal</td></tr><tr><td>Insulina</td><td>Sigma</td><td>#I-5500</td><td>Mistura hormonal</td></tr><tr><td>Apo-transferrina</td><td>Sigma</td><td>#T-2252</td><td>Mistura hormonal</td></tr><tr><td>Putrescina</td><td>Sigma</td> <td># P7505</td><td>Hormônio mix</td></tr><tr><td>Selenium</td><td>Sigma</td><td>#S-9133</td><td>Mix hormonal</td></tr><tr><td>Progesterona</td><td>Sigma</td><td>#P-6149</td><td>Mix hormonal</td></tr><tr><td>EGF, mouse</td><td>Sigma</td><td>#E4127</td><td>Prepare 100 &mu; g/ml de existências em B27 e alíquota; EFH médio</td></tr><tr><td>EGF, Sigma recombinante humano#E9644</td><td></td><td></td> <td>Prepare 100 &mu; g/ml de existências em B27 e alíquota; EFH medium</td></tr><tr><td>bFGF, Sigma humano recombinante</td><td></td><td>#F0291</td><td>Prepare 100 &mu; g/ml de existências em B27 e alíquota; EFH médio&nbsp;</td></tr><tr><td>Heparina, 10.000 U</td><td>Sigma</td><td>#H3149</td><td>Preparar estoques de 27,3 mg/ml em mistura hormonal e alíquota; </td></tr><tr><td>Kit de dissociação de papaína</td> média EFH <td>Worthington Biochemicals</td><td>#LK003150</td><td>Contém EBSS, papaína, DNase, inibidor de protease ovomucoide com</td></tr><tr><td>BSA Pentobarbital de Sódio</td><td>Bimeda - NBA; MTC Animal Health Inc</td><td>DIN 00141704</td><td></td></tr><tr><td>Tissue Forceps: Addisons</td><td>Fine Science Tools</td><td>#11006-12&nbsp;</td><td>Ponta padrão serrilhada; micro-ponta também disponível</td></tr><tr><td>Fórceps fino: Dumont # 4</td><td>Ferramentas de ciências finas</td> <td># 11241-30</td><td></td></tr><tr><td>Microtesouras</td><td>Ferramentas de ciências finas</td> <td># 15024-10</td><td>Vannas</td></tr><tr><td>Rongeurs</td> de cabo redondo <td>Bausch & Lomb</td><td>N1430</td><td></td></tr><tr><td>Placas de Petri de 10 mm&nbsp;</td><td>Nunc</td><td>1501</td><td></td></tr><tr><td>T25 Frascos de cultura</td><td>Nunc</td><td>156367</td><td></td></tr><tr><td>40 &mu; m filtro de células de nylon</td><td>VWR</td><td>CA21008-949</td><td></td></tr><tr><td>placas de 6 poços</td><td>Nunc</td><td>CA73520-906</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel, fator de crescimento reduzido (100x)</td><td>Corning</td><td>354230</td><td>Descongele de acordo com as instruções e congele alíquotas; use diluído na proporção de 40 &mu; l Matrigel: 1 ml SFM</td></tr></tbody></table>

isolamento de neural stem / células progenitoras da região periventricular do rato adulto e medula espinhal humano

Isolation of Neural Stem/Progenitor Cells from the Periventricular Region of the Adult Rat and Human Spinal Cord

Rato adulto e medula espinhal células humanas neuronais estaminais / progenitoras (NSPCs) cultivadas em meio de crescimento enriquecido com fator permite a proliferação de multipotentes, e células-tronco neurais expansíveis auto-renovação. Em condições de soro, estes NSPCs multipotentes vai diferenciar, gerando neurônios, astrócitos e oligodendrócitos. O tecido colhido é enzimaticamente dissociada em uma solução de papaína-EDTA e depois dissociados mecanicamente e separado através de um gradiente de densidade descontínuo para produzir uma suspensão de célula única que é banhado em meio neurobasal suplementado com factor de crescimento epidérmico (EGF), factor de crescimento de fibroblastos básico (bFGF ), e heparina. Rato adulto NSPCs medula espinhal são cultivadas como neurospheres livre flutuação e adulto humanos NSPCs da medula espinhal são cultivadas como culturas aderentes. Sob estas condições, adultos NSPCs medulares proliferam, expressam marcadores de células precursoras, e pode ser continuamente aumentada passagem. Estas células pode be estudada in vitro em resposta a vários estímulos, e factores exógenos pode ser usada para promover a restrição de linhagem para examinar a diferenciação de células estaminais neurais. Multipotentes NSPCs ou sua progénie também podem ser transplantadas em vários modelos animais para avaliar a reparação regenerativa.

Rato adulto células da medula espinhal crescidas em cultura em suspensão em meio EFH irá formar pequenas neurospheres (colônias de células indiferenciadas) dentro de uma semana de plaqueamento inicial. Em culturas primárias, a maioria das células plaqueadas morrerão de crescimento e factor de células estaminais que respondem irão proliferar e são seleccionados de EFH no meio. Por passagem 3, não haverá numerosas neuroesferas livre flutuação de cerca de 100 um de diâmetro (Figura 2A). As neuroesferas são...

A medula espinhal de mamíferos adultos contém células-tronco neurais/progenitoras (NSPCs) que podem ser isoladas e expandidas em cultura. Este protocolo descreve a coleta, isolamento, cultura e passagem de NSPCs geradas a partir da região periventricular da medula espinhal adulta do rato e de doadores de transplante de órgãos humanos.

Isolamento de Neural Stem / células progenitoras da Região Periventricular do rato adulto e Medula Espinhal Humano

Adult rat and human spinal cord neural stem/progenitor cells (NSPCs) cultured in growth factor-enriched medium allows for the proliferation of ...

O objetivo geral deste procedimento é isolar células-tronco neurais da região paraventricular da medula espinhal de rato adulto ou humana. Isso é realizado primeiramente por meio da coleta da medula espinhal por laminectomia. O segundo passo consiste em cortar a medula espinhal transversalmente em segmentos de um centímetro e dissecar a região paraventricular de cada segmento da medula espinhal.Em seguida, o tecido picado é cortado em pedaços de um milímetro e então dissociado enzimaticamente. O passo final é separar células intactas por centrifugação através de um gradiente de densidade descontínuo e semear a suspensão celular. Por fim, a formação de neuroesferas e o crescimento de células-tronco neurais podem ser avaliados por microscopia de imunofluorescência.Hoje vou demonstrar como isolar células-tronco neurais da região paraventricular da medula espinhal de rato adulto. Essas células podem então ser usadas para ajudar a responder perguntas fundamentais no campo das células-tronco neurais, como quais fatores exógenos promovem a restrição de linhagem ou como essas células respondem a diversos estímulos ou estresses. Para começar, prepare o cultivo, os meios e os tampones de dissecação conforme descrito no protocolo textual complementar.Em seguida, após uma overdose de anestésico, esterilize a pele da rata e use tesouras grandes de dissecação para remover a superfície dorsal, expondo a coluna vertebral. Mantenha as tesouras de dissecação perpendiculares à superfície dorsal e realize um corte transversal. Corte a coluna vertebral acima dos membros posteriores.Em seguida, utilize tesouras menores para cortar longitudinalmente o músculo dorsal que recobre a coluna vertebral em direção rostral, expondo as apófises espinhosas a partir da extremidade do coccix exposta. Insira um pequeno instrumento rombo de corte ósseo extraoralmente no aspecto lateral do canal espinhal, no espaço entre a medula espinhal e a coluna vertebral. Posicione a lâmina superficialmente e paralelamente à medula.Em seguida, faça pequenos cortes na lâmina e retire cuidadosamente a lâmina para expor a medula espinhal. Esse ângulo evita danos à medula espinhal subjacente. Continue removendo a lâmina na direção rostral.Para expor a medula espinhal torácica e cervical usando pin&ccedil;as de disseca&ccedil;&atilde;o rombas, levante suavemente a medula espinhal da coluna vertebral e corte as ra&iacute;zes com tesoura microcir&uacute;rgica. Para liberar a medula, coloque a medula espinhal ressecada em uma placa de Petri contendo tamp&atilde;o de disseca&ccedil;&atilde;o para rato est&eacute;ril e gelado. Lave o tecido com o tamp&atilde;o de disseca&ccedil;&atilde;o gelado e use tesoura para cortar transversalmente a medula espinhal em segmentos de um cent&iacute;metro. Para cada segmento de tecido, use pin&ccedil;as finas para segurar o tecido com uma m&atilde;o e, com a outra m&atilde;o, use tesoura microcir&uacute;rgica para remover cuidadosamente a subst&acirc;ncia branca junto com a maior parte da subst&acirc;ncia cinzenta, deixando somente a regi&atilde;o periventricular da medula espinhal.Puxe o tecido periventricular dissecado para uma placa de Petri estéril de 10 centímetros contendo tampão de dissecção para rato gelado. Para iniciar o isolamento de células-tronco neurais de rato, use tesoura microcirúrgica para picar o tecido periventricular dissecado em pedaços de um milímetro cúbico. Em seguida, prepare o tampão de dissociação enzimática adicionando primeiro cinco mililitros de solução salina equilibrada de Earl a um frasco de papaína de um kit de dissociação com papaína.Coloque o frasco a 37 graus Celsius durante 10 minutos para que a papaína se dissolva completamente e a solução fique transparente. Em seguida, adicione 500 microlitros de solução salina balanceada de Earl ao frasco contendo o DNA do kit de dissociação. Após misturar suavemente, adicione 250 microlitros da solução de DNA ao frasco contendo papaína e misture suavemente.Em seguida, adicione o tecido picado, aproximadamente 0,2 gramas, ao frasco e coloque o frasco em uma plataforma agitadora a 37 graus Celsius por 45 minutos a uma hora. Após a incubação, pipete a mistura com uma pipeta de 10 mililitros para dissociar quaisquer fragmentos de tecido remanescentes, obtendo uma suspensão celular turva. Transfira a suspensão celular para um tubo cônico estéril de 15 mililitros e centrifugue a 300 Gs por cinco minutos.À temperatura ambiente durante a centrifugação, prepare a solução de OVO moid misturando 2,7 mililitros de solução salina balanceada de Earl com 300 microlitros da solução reconstituída de inibidor de albumina OVO MOID. Em um tubo cônico de 15 mililitros, adicione 150 microlitros da solução de DNA previamente preparada à solução de oval moid e misture invertendo o tubo, descarte o sobrenadante das células em pellet e ressuspenda imediatamente o pellet celular na mistura diluída de inibidor de DNA e albumina. Em seguida, prepare um gradiente de densidade descontínuo adicionando cinco mililitros de solução de inibidor de albumina a um tubo de 15 mililitros e, usando uma pipeta de cinco mililitros, sobreponha suave e lentamente a suspensão celular à solução de inibidor de albumina.Centrifugue a amostra a 70 ×g durante seis minutos à temperatura ambiente. Após a conclusão, descarte o sobrenadante e ressuspenda o pellet celular em um mililitro de meio EFH pré-aquecido para ratos, preparado conforme descrito no protocolo textual complementar. Conte a densidade de células viáveis com um hemocitômetro e plaque as células em um frasco de cultura T25 numa densidade de 10 células por microlitro em EFH.Incube os frascos a 37 graus Celsius em 5% de dióxido de carbono e deixe os cultivos crescerem sem perturbação por uma semana para evitar a agregação de esferoides. É mostrada aqui uma seção transversal da medula espinhal de rato que foi corada com azul de luxol rápido, bem como hematina e eosina para evidenciar os limites entre a substância branca e a cinzenta. O contorno pontilhado indica o tecido periventricular remanescente dissecado que foi isolado neste protocolo a partir desta região.Neuroesferas como as mostradas aqui crescerão em suspensão, livres, em cultura com alta magnificação. Microspículas podem ser vistas protrudindo das neuroesferas, que proliferam conforme demonstrado pela coloração positiva para KI 67, na qual as neuroesferas foram dissociadas e semeadas em poços revestidos com Matrigel. Além disso, elas expressarão principalmente nestina, que é um marcador para células precursoras neurais.Após este procedimento, fatores exógenos podem ser adicionados às células cultivadas para promover a diferenciação. As células-tronco neurais adultas ou sua progênie também podem ser transplantadas em diversos modelos animais para avaliar sua capacidade de reparo regenerativo. Espero que este vídeo seja útil e desejo boa sorte em seus experimentos.

isolation-neural-stemprogenitor-cells-from-periventricular-region

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Este vídeo apresenta um método para isolar células-tronco neurais/progenitoras do tecido periventricular da medula espinhal em ratos adultos. A técnica inclui incubar os fragmentos de tecido em uma solução contendo enzimas proteolíticas para romper a matriz extracelular e liberar as células. Posteriormente, as células liberadas são plaqueadas em um meio contendo fatores de crescimento específicos que aumentam a proliferação do tronco neural / progenitor e promovem a agregação em neuroesferas...

Isolamento de células-tronco progenitoras neurais da região periventricular da medula espinhal de um rato adulto

Matrizes de fibrina que contêm factores de crescimento foram utilizados para reter as células estaminais neurais enxertados em locais de completa a transecção da medula espinal. Células enxertadas encheu completamente a cavidade lesão e diferenciado em vários tipos de células neurais, incluindo neurônios que se estenderam axônios em acolhimento medula espinhal através de longas distâncias.

Promoção da sobrevivência e diferenciação de células-tronco neurais com fibrina e Fator de Crescimento Cocktails após Spinal Cord Injury grave

Células-tronco neurais colhidas a partir do cérebro de adultos estão aumentando utilizado em aplicações que vão desde a pesquisa básica do desenvolvimento do sistema nervoso para explorar potenciais aplicações clínicas em medicina regenerativa. Isso faz com que o controle rigoroso das condições de isolamento e cultivo utilizados para cultivar essas células críticas a soar os resultados experimentais.

Crescer a partir de células-tronco neurais convencionais e não convencionais Regiões do cérebro adulto de roedores

Este protocolo descreve um método de desbastamento mecânico novela que permite a expansão de células progenitoras e estaminais neurais agregados esféricos sem dissociação de uma única suspensão de células. Manter contato célula / célula permite um crescimento rápido e estável por mais de 40 passagens.

Um Método de Expansão cGMP-aplicável para Agregados de Neural Humano-tronco e células progenitoras derivadas de células-tronco pluripotentes ou tecido cerebral do feto

Aqui, descrevemos um protocolo detalhado para a produção simultânea de culturas de células precursoras neurais, quer como monocamadas aderentes ou neuroesferas, a partir da zona subventricular e giro dentado de ratinhos adultos individuais.

Um rato, duas culturas: isolamento e cultivo de células-tronco neurais Adulto de as duas zonas neurogênica Individual Ratos

A lesão medular é uma condição traumática que causa grave morbidade e mortalidade elevada. Neste trabalho, descrever em detalhes um modelo contusão de lesão medular em ratos, seguido por um transplante de células-tronco neurais.

Neural Stem Cell Transplantation em Experimental contusão Model of Spinal Cord Injury

O estabelecimento de sistemas de cultura para a expansão de células-tronco neurais adultas (aNSCs) permite o exame e a aplicação de aNSCs para terapia. A zona subcalosa (SCZ) foi recentemente reconhecida como uma nova região formadora de neuroblastos em camundongos adultos. Aqui, são descritos métodos para o isolamento, expansão e diferenciação de SCZ-aNSCs.

Isolamento e Cultura de células estaminais adultas neurais do Subcallosal Zona Rato

As células do estroma da marrow (MSCs) com potencial neural existem dentro da medula óssea. Nosso protocolo enriquece essa população de células por meio de pré-condicionamento hipóxico e, posteriormente, as direciona para se tornar células maduras de Schwann.

Pré-condicionamento hipóxico de células progenitoras derivadas da medula como fonte para a geração de células maduras de Schwann

Aqui, vamos demonstrar o desempenho de um modelo de lesão medular mínima em um rato adulto que poupa o nicho central canal habitação endógena células tronco neurais (NSCs). Mostramos como o ensaio de neurosphere pode ser usado para quantificar a ativação e migração de NSCs definitivos e primitivos, após lesão.

Um ensaio de Neurosphere para avaliar a ativação de células-tronco neurais endógena em um modelo do rato da lesão medular mínima

Aqui, apresentamos uma nova técnica microcirúrgica para o isolamento de células-tronco neurais da Eminência ganglionar embrião de rato E13 .

Isolamento e cultura de células-tronco neurais embrionárias de rato

Um método para o isolamento de células-tronco neurais e células progenitoras de oligodendrócitos do cérebro de ratos vivos é apresentado aqui em detalhes experimentais. Permite múltiplas coletas dessas células dos mesmos animais sem comprometer seu bem-estar.

Método "Brain Milking" para o Isolamento de Células-Tronco Neurais e Células Progenitoras de Oligodendrócitos de Ratos Vivos

Aprenda a isolar células-tronco/progenitoras neurais da região periventricular da medula espinhal de ratos adultos e humanos. Este protocolo detalha dissociação enzimática e formação de neuroesferas para pesquisa em neurociência e medicina regenerativa.

Isolamento de Neural Stem / células progenitoras da Região Periventricular do rato adulto e Medula Espinhal Humano

Explorar mais vídeos