-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PT

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pt_BR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Environment
Métodos de entrega Double-stranded RNA Oral para induzir a interferência do RNA no floema e inset...
Métodos de entrega Double-stranded RNA Oral para induzir a interferência do RNA no floema e inset...
JoVE Journal
Environment
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Environment
Double-stranded RNA Oral Delivery Methods to Induce RNA Interference in Phloem and Plant-sap-feeding Hemipteran Insects

Métodos de entrega Double-stranded RNA Oral para induzir a interferência do RNA no floema e insetos Hemipteran planta-sap-alimentação

Full Text
14,413 Views
10:14 min
May 4, 2018

DOI: 10.3791/57390-v

Saikat Kumar B. Ghosh1, Wayne B. Hunter2, Alexis L. Park1, Dawn E. Gundersen-Rindal1

1Invasive Insect Biocontrol and Behavior Laboratory, Agricultural Research Service,United States Department of Agriculture, 2Horticultural Research Laboratory, Agricultural Research Service,United States Department of Agriculture

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Este artigo demonstra novas técnicas desenvolvidas para entrega oral de RNA double-stranded (dsRNA) através dos tecidos vasculares das plantas para o RNA de interferência (RNAi) na seiva do floema alimentação de insetos.

O objetivo geral desses procedimentos é demonstrar um método de administração oral natural. Para dsRNAs específicos de genes, para induzir interferência de RNA in vivo e pragas de insetos. Este método pode ajudar a responder a perguntas-chave sobre como entregar biomoléculas dentro de insetos, elucidar o efeito de biopesticidas moleculares baseados em RNAi e controlar insetos no meio ambiente.

A principal vantagem desta técnica é que esta entrega através do silenciamento gênico mediado por ácido nucleico pode ser aplicada à alimentação de seiva de plantas, bem como a insetos mastigadores. Embora os métodos aqui demonstrem a entrega de RNA de fita dupla a pragas hemípteras, como o percevejo marrom marmorizado, o inseto arlequim e o psilídeo cítrico asiático. Eles podem ser aplicados a outros insetos.

Para iniciar o protocolo, selecione o percevejo marmorizado marrom do 4º Instar, ou ninfas BMSB, eclodidas da massa de ovos e deixe-as morrer de fome por 24 horas antes da alimentação com dsRNA. Em seguida, selecione feijão verde orgânico fino e certificado e lave-o com solução de hipoclorito de sódio a 0,2% por cinco minutos. Siga com três lavagens de H2O duplamente destiladas e deixe os grãos secarem ao ar.

Quando estiverem secos, corte o feijão verde da extremidade do cálice até um comprimento total de 7,5 centímetros usando uma lâmina de barbear limpa. Mergulhe o feijão verde lavado e aparado em um tubo de microcentrífuga de dois mililitros sem tampa contendo 300 microlitros de solução de controle. Faça diluições dos lac Z, JHAMT ou VGDSRNAs sintetizados in vitro, diluindo 5 microgramas ou 20 microgramas e 300 microlitros de RNAs, água livre de DNAs para produzir concentrações finais de 0,017 microgramas por microlitro ou 0,067 microgramas por microlitro, respectivamente.

Mergulhe o feijão verde lavado e aparado em um tubo de microcentrífuga de dois mililitros sem tampa, contendo 300 microlitros de solução de dsRNA. Enrole e sele as bordas dos tubos da microcentrífuga, envolvendo os grãos imersos para evitar a evaporação da solução de dsRNA e para evitar que os animais entrem no tubo da microcentrífuga. Posicione os tubos na vertical à temperatura ambiente por três horas, para permitir que a solução de dsRNA seja carregada por todo o feijão verde por ação capilar.

Coloque os tubos em recipientes de cultura de polipropileno limpos e coloque 3 ninfas BMSB de 4º Instar famintas nos vasos de cultura. Trate três insetos por vaso de cultura. Cada um contendo três feijões verdes com corante alimentar verde ou solução de dsRNA.

Manter os insetos a 25 graus Celsius e 72% de umidade relativa, sob um 16L, 8D fotoperíodo em incubadora. Permita que os insetos se alimentem do feijão verde imerso e absorvido em dsRNA por cinco dias e reabasteça-o com dietas frescas de feijão verde tratado com dsRNA após três dias. Selecione plantas ou mudas e não as regue por dois a três dias antes do uso, para deixar o solo secar até ficar úmido, mas não completamente seco.

Usando um borrifador bombeado manualmente, aplique 200 mililitros de solução de dsRNA no dossel inferior. Amostra do novo crescimento de árvores previamente cobertas após 25 a 40 dias, coletando aproximadamente 10 folhas das pontas de quatro galhos. Extraia o RNA total e analise-o por RT-PCR e qPCR para a presença do gatilho de dsRNA aplicado.

Da mesma forma, pulverize topicamente 10 mililitros de dsRNA na região inferior de uma muda ou folhagem de árvore em pequenos vasos. Selecione plantas ou mudas e não as regue por dois a três dias antes do uso, para deixar o solo secar, umedecer, mas não completamente seco. Em seguida, adicione um litro de solução de dsRNA ao solo de plantas em vasos grandes.

Adicione um litro de água após uma hora. Aplique 100 mililitros de solução de dsRNA no solo de vasos de árvores de um metro de altura em solos parcialmente secos. Deixe as plantas receberem a solução de dsRNA como um encharcamento do solo, para embeber por 30 minutos.

Em seguida, aplique um tratamento puro apenas com água para ajudar na absorção pelas raízes. Selecione mudas de frutas cítricas, plantas novas ou com aproximadamente 3,5 anos de idade para injetar dsRNA usando o stap do caule, também conhecido como método de injeções no tronco. Enrole a ponta de cobre de cada injetor quatro a seis vezes com uma tira de filme de teto de 0.6 centímetro de largura para evitar vazamentos perto da ponta.

Em seguida, encha os injetores de tronco de árvore com seis mililitros de solução de dsRNA diluída com DNAs, água livre de RNAs. Faça furos nas plantas cítricas usando uma broca de 10 mililitros e tome cuidado para não exceder dois centímetros, ou cerca de metade do diâmetro do caule. Em seguida, injete a solução no tronco da árvore e deixe o injetor no tronco por seis a 10 horas para permitir a absorção da solução de dsRNA.

Deixe os insetos se alimentarem das mudas das árvores tratadas aos 3, 10 e 30 dias após o tratamento. Despeje 30 gramas do absorvente de argila em um tubo cônico de 50 mililitros até a marca de 35 mililitros. Despeje 20 mililitros de solução de dsRNA diluída em DNAs, água livre de RNAs no tubo para molhar todo o absorvente.

Tampe o tubo cônico, incline o tubo para ajudar a remover o ar e coloque o tubo na posição vertical e deixe-o repousar por um a dois minutos enquanto as partículas de argila absorvem a solução. Adicione argila embebida em dsRNA suficiente na mistura de solo para encher um pote de um galão. Misture e vire o solo manualmente para misturar completamente a argila embebida em dsRNA no solo.

Use o solo para replantar mudas selecionadas para o tratamento com dsRNA. Regue o solo com 200 mililitros de água pura, sem dsRNA, após 30 minutos a uma hora. Siga com 100 mililitros de água pura.

Após 24 horas, coloque a planta em um cronograma normal de rega. Teste de quatro a seis folhas dos vasos de plantas tratadas com absorventes de argila e dsRNA a cada mês, pós-tratamento para dsRNA, coletando as folhas mais apicais do crescimento de novas plantas. QPCR de segmentos de feijão verde imersos em dsRNA sintetizado in vitro, específico para percevejo marrom marmorizado, ou mRNA BMSB, indicou a indução bem-sucedida de RNAi, pois a expressão dos alvos JHAMT e Vg foi significativamente reduzida in vivo.

Este método de entrega também é eficaz em outra praga de hemípteros, o inseto arlequim. Conforme indicado por seus excrementos de cor verde. Depois de assistir a essas demonstrações visuais, você deve ter uma boa compreensão de como fornecer RNA de fita dupla a insetos por meio de ingestão oral para induzir insetos de RNAi in vivo.

Os avanços feitos na tecnologia de nucelotídeos de RNAi continuam a expandir as capacidades dos pesquisadores de modular os níveis de RNA, expressão gênica e proteínas em uma ampla gama de organismos vivos. Isso vai de plantas a insetos e os microrganismos mais difíceis. Portanto, enquanto o custo de produção de RNA de fita dupla continua a diminuir e os métodos de entrega e estabilidade continuam a melhorar, o futuro das tecnologias de RNAi continuará a ser usado para resolver problemas emergentes e complexos.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Ciências ambientais edição 135 entrega percevejo marrom marmorated asiáticos citrinos psilídeos interferência do RNA ingestão Hemiptera

Related Videos

RNAi mediado por Gene Knockdown duplo e Mensuração Percepção gustativa em abelhas do mel ( Apis mellifera)

10:57

RNAi mediado por Gene Knockdown duplo e Mensuração Percepção gustativa em abelhas do mel ( Apis mellifera)

Related Videos

15.5K Views

A quitosana / RNA de interferência Nanoparticle Mediated silenciamento gênico na Doença Vector Mosquito Larvas

08:36

A quitosana / RNA de interferência Nanoparticle Mediated silenciamento gênico na Doença Vector Mosquito Larvas

Related Videos

15K Views

RNAi gatilho para o interior Anopheles gambiae As pupas

09:58

RNAi gatilho para o interior Anopheles gambiae As pupas

Related Videos

9.6K Views

Criação e Double-stranded mediada por RNA silenciamento de genes na Esconder Beetle, Dermestes maculatus

09:57

Criação e Double-stranded mediada por RNA silenciamento de genes na Esconder Beetle, Dermestes maculatus

Related Videos

11.3K Views

Uso prático da interferência do RNA: Oral entrega de RNA Double-stranded em lipossomas transportadoras para baratas

08:26

Uso prático da interferência do RNA: Oral entrega de RNA Double-stranded em lipossomas transportadoras para baratas

Related Videos

9.9K Views

Interferência de RNA em besouros aquáticos como uma poderosa ferramenta para manipular a expressão genética em pontos de tempo específicos de desenvolvimento

08:55

Interferência de RNA em besouros aquáticos como uma poderosa ferramenta para manipular a expressão genética em pontos de tempo específicos de desenvolvimento

Related Videos

8.2K Views

Método sanduíche de membrana de duas camadas para laodelphax striatellus saliva collection

06:13

Método sanduíche de membrana de duas camadas para laodelphax striatellus saliva collection

Related Videos

2.8K Views

Administração eficaz de interferência oral de RNA (RNAi) para mosquitos anofeeles gâmbias adultos

07:48

Administração eficaz de interferência oral de RNA (RNAi) para mosquitos anofeeles gâmbias adultos

Related Videos

3.8K Views

Aplicação de interferência de RNA no Nematode pinewood, Bursaphelenchus xylophilus

06:54

Aplicação de interferência de RNA no Nematode pinewood, Bursaphelenchus xylophilus

Related Videos

3.1K Views

Interferência de RNA no parasitoide de ovos, Trichogramma dendrolimi Matsumura

05:29

Interferência de RNA no parasitoide de ovos, Trichogramma dendrolimi Matsumura

Related Videos

1.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code