January 18th, 2019
Aqui nós apresentamos um protocolo para murino na vivo rotulagem das proteínas de superfície celular glomerular com biotina. Este protocolo contém informações sobre como perfundir os rins do rato, isolar glomérulos e executar endógena imunoprecipitação da proteína de interesse.
Este método pode ajudar a responder a perguntas-chave no campo da nefrologia sobre o papel do tráfico de proteínas superficiais celulares na doença renal proteinúrica e não proteinúrica. As principais vantagens dessa técnica são que facilita o estudo do tráfico de proteínas superficiais celulares in vivo e que mais de uma proteína pode ser analisada por experimento. Embora este método possa fornecer informações sobre o tráfico de superfície celular glomerular, também pode ser aplicado a outros sistemas de órgãos que são perfumados e são acessíveis por técnicas de isolamento.
Comece confirmando a falta de resposta ao aperto do dedo do dedo do dedo do dedo e desinfetando o lado ventral do mouse anestesiado com isopropílico de 70%. Faça um corte mediano através da pele da pelve para o esterno e use pinças para remover a pele da fáscia abdominal. Corte a pele em ambos os lados da linha média abdominal e faça um médio através da camada muscular abdominal da bexiga para o xiphoide.
Use a tesoura e fórceps para dividir os músculos em quatro quadrantes e use dois grampos cirúrgicos para fixar os dois quadrantes superiores em direção ao pescoço dos animais. Coloque o animal sob um microscópio dissecando e use uma troca estéril para afastar os órgãos viscerais. Usando uma tesoura fina, corte o ligamento frênico hepático.
Usando pinças cirúrgicas finas, coloque uma sutura ao redor da artéria mesentórica hepática branial das artérias renais. E ao redor da aorta, proximal às artérias renais, na glândula suprarrenal. Liberte a aorta distal da fáscia, gordura e outros tecidos.
Em seguida, fixar a veia cava e a aorta no auge da bifurcação e colocar outra sutura ao redor da aorta distal das artérias renais. Use pinças para apertar a sutura aórtica proximal, atenuando o fluxo sanguíneo e cortando um pequeno orifício metade do diâmetro da aorta na aorta, distal às artérias renais. Insira um cateter de 10 centímetros ligado a uma seringa de 10 mililitros contendo cinco mililitros de PBS gelado mais cálcio e magnésio na aorta.
E conserte o cateter com as ligaduras preparadas. Então comece a perfundar os rins a uma taxa de fluxo de dois mililitros por minuto. Usando uma tesoura fina para fazer um buraco na veia renal nas artérias renais e apertando a sutura ao redor das artérias hepáticas e mesentóricas.
Após todo o volume de PBS ter sido entregue substitua o perfusato por cinco mililitros de PBS gelado mais cálcio e magnésio suplementados com 0,5 miligramas por biotina mililitro para rotulagem superficial. Continue perfunde os rins a uma taxa de fluxo de dois mililitros por minuto. Quando todo o volume for entregue, conecte uma seringa contendo cinco mililitros de PBS gelado mais cálcio e magnésio suplementados com glicina de 100 milimolars ao cateter.
Sacie o glomeruli com todos os cinco mililitros da solução glicina a uma taxa de fluxo de dois mililitros por minuto. Em seguida, perfunde os rins com cinco mililitros de PBS gelado mais cálcio e magnésio suplementados com 200 microliters de contas magnéticas por mililitro a uma taxa de fluxo de dois mililitros por minuto. A embolização do glomeruli com as contas magnéticas marrons será visível na superfície dos rins.
Quando todas as contas tiverem sido entregues, remova a cápsula dos rins e colde os rins no hilum. Coloque os rins em um prato de cultura celular de 10 centímetros contendo 15 mililitros de PBS mais cálcio e magnésio. Use uma nova lâmina de dois gumes para cortar os rins nos menores pedaços possíveis.
Transfira o tecido para um tubo de dois mililitros contendo um mililitro de colagenase A por 30 minutos a 37 graus Celsius, misturando a solução de tecido suavemente antes e depois da digestão com uma ponta de pipeta de 1000 microliter modificada. No final da incubação, filtrar o tecido digerido através de um coador de células de 100 mícrons. Use um raspador de células e PBS gelado mais cálcio e magnésio para amassar o tecido restante através do coador celular.
Traga o volume final da suspensão de célula única renal até 50 mililitros com PBS gelado fresco mais cálcio e magnésio e colete as células renais por centrifugação. Remova o supernasce e suspenda novamente a pelota com pouco menos de 1,5 mililitros de PBS gelado mais cálcio e magnésio enquanto o vórtice e transfira a suspensão glomerular em um novo tubo de dois mililitros. Para lavar o glomeruli, coloque o tubo em um ímã para agregar o glomeruli.
Após um minuto, use uma pipeta de 1000 microliter para remover o supernatante. E remova o tubo do ímã. Adicione um mililitro de PBS mais cálcio e magnésio aos tecidos.
Pipeta o glomeruli para cima e para baixo uma vez e vórtice das células. Devolva o tubo ao ímã e lave o glomeruli novamente como apenas demonstrado. Até que uma pureza amostra tenha atingido pelo menos 90% por análise de microscópio leve em uma ampliação de 40 a 100 X.
Em seguida, coletar o glorificado de contas magnéticas por centrifugação. Para alcançar uma pureza superior a 95%, o glomeruli precisava ser lavado completamente como demonstrado. A perfusão de biotina facilita a rotulagem dos laços capilares em rins de camundongos perfusados não controlados.
A precipitação imunológica da fração de biotina de extratos glomerulares revela que as proteínas transmembranas glomerulares nephrin e podocalyxina são imunoprecipitadas com a biotina, mas não com a fração de controle. A coloração da fração imunoprecipitada com streptavidin confirma ainda mais a presença de neferin biotina na biotina perfumada, mas não controla animais perfusados. A cadherina endotelial de proteína endotelial e a molécula de adesão intracelular dois também são imunoprecipitadas dentro da fração de biotina.
Na fase inicial da nefrite nefrotóxica uma expressão reduzida da nefrina da superfície celular é observada em animais de nefrrite nefrotóxica em comparação com os controles. De fato, a análise densitoótica mostra uma redução significativa da nefrina biotina em animais de nefrêrite nefrotóxica em comparação com os controladores. A análise quantitativa da razão nefrina total para actina não revela diferenças significativas entre o controle e os camundongos nefrortoxicos.
Além disso, quantidades iguais de podocitos são observadas em nefrite neftóxica nefortoxixic e animais de controle. No final da nefrite nefrotóxica tardia, os animais nefróticos nefrotóxicos exibem uma recuperação da expressão nefríria sem diferenças significativas na nefrina da superfície celular medida entre o controle e os camundongos nefrotóxicos neftóxicos e uma redução total da nefrínia em animais nefóticos neforfróxicos. Além disso, o número de podocyte é reduzido em comparação com os animais de controle.
Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de manter as seringas livres durante sua conexão, a fim de evitar a embolia do ar do glomeruli e trabalhar sob condições frias de gelo uma vez que a perfusão renal tenha começado. Após este procedimento, outros métodos como o isolamento do RNA glomeruli e da proteína podem ser realizados para responder a perguntas adicionais sobre expressão proteica ou interações em rins saudáveis e doentes.
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Este artigo apresenta um protocolo para marcação in vivo de proteínas de superfície celular glomerular em camundongos usando biotina. Detalha os passos para perfusão de rins de camundongos, isolamento de glomérulos e realização de imunoprecipitação.