Name: Amostragem, Identificação e Caracterização de Liberação de Microplásticos da Mamadeira de Alimentação de Bebês de Polipropileno durante o Uso Diário (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-07-24T14:45:00.000+00:00
Duration: 5 min 48 s
Description: Aprenda um protocolo confiável para quantificar microplásticos liberados de mamadeiras de polipropileno durante o uso diário. Este método utiliza microscopia óptica, espectroscopia Raman e AFM para identificação precisa.

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Os autores apreciam a Enterprise Ireland (número de subvenção CF20180870) e a Science Foundation Ireland (números de bolsas: 20/FIP/PL/8733, 12/RC/2278_P2 e 16/IA/4462) para apoio financeiro. Também reconhecemos o apoio financeiro da Bolsa de Estudos da Escola de Engenharia do Trinity College Dublin e do China Scholarship Council (201506210089 e 201608300005). Além disso, agradecemos a ajuda profissional da Profª Sarah Mc Cormack e equipes técnicas (David A. McAulay, Mary O'Shea, Patrick L.K. Veale, Robert Fitzpatrick e Mark Gilligan etc.) do Trinity Civil, Structural and Environmental Department e AMBER Research Centre.

1. Preparação para água quente
<ol><li>Para todo o hardware que entrar em contato com as amostras, use vidro limpo feito de borossilicato 3.3 para evitar qualquer contaminação potencial. Limpe completamente todos os vidros. Atenção: Arranhões pré-existentes ou manchas de imperfeição em vidros podem liberar partículas durante o processo de aquecimento e agitação. Sugerimos que os usuários verifiquem os vidros e evitem o uso do vidro riscado. Nossa comparação de vidros feitos de diferentes copos (como refrigerante-limão e borossilicato) mostrou que o borossilicato 3.3 libera a menor quantidade de partículas de vidro (pode ser rastreado pela espectroscopia de Raman), e recomendamos o uso de vidros borossilicato 3.3 em todos os testes.</li>
	<li>Despeje 360 mL de água DI em um copo de vidro. Cubra o béquer com um disco de vidro limpo. Em seguida, mova-o para um novo forno de micro-ondas e aqueça por 2,5 minutos com potência total do forno. Depois de tremer suavemente para remover quaisquer gradientes de temperatura potenciais devido ao aquecimento irregular, a temperatura da água dentro do béquer é de 70 °C e está pronta para a preparação da amostra.</li>
	<li>Prepare 95 °C de água para esterilização BFB, derramando 1 L de água DI em vidros e aquecendo em forno micro-ondas por 14 minutos. Atenção:Nunca use chaleiras de plástico para preparar água quente. A chaleira de plástico em si libera milhões de PMs na água quente durante o processo de ebulição13.</li>
</ol>2. Liberação de MP durante a preparação da fórmula
NOTA: Seguindo cuidadosamente o processo padrão de preparação da fórmula (limpeza, esterilização e mistura) recomendado pela OMS21, os MPs liberados dos BFBs durante a preparação da fórmula são imitados nas seguintes 3 etapas.
<ol><li>Colete produtos BFB novinhos em estoques de farmácias e limpe-os cuidadosamente depois de remover o produto de suas embalagens. Lave cada BFB usando água detergente (repita 3 vezes na temperatura ambiente-RT) e água destilada (repetida 3 vezes, RT). Por fim, enxágue o BFB 3 vezes usando água DI no RT. Atenção: Não limpe o BFB usando sônicação. Embora a sônica seja amplamente utilizada em laboratórios para mistura e limpeza, a sônica de BFB pode danificar severamente a superfície da garrafa e causar liberação de MP de produtos PP dentro de 1 minuto.</li>
	<li>Mergulhe o BFB em 95 °C de água DI (seção 1.3) para esterilizar a garrafa. Para evitar a flutuação do BFB, pressione levemente o exterior do BFB usando uma pinça de aço inoxidável e certifique-se de que todo o corpo da garrafa mergulhe na água.<ol>
<li>Depois de 5 minutos, tire a garrafa e mova-a para um disco de vidro limpo. Durante a etapa de secagem de ar, inverta a garrafa no disco de vidro até que não haja evidência de gotículas.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Despeje 180 mL de água DI quente (70 °C, da Seção 1.2, correspondente às diretrizes da OMS) na garrafa seca a ar. Em seguida, cubra a garrafa imediatamente usando uma placa de vidro Petri e coloque-a em uma cama tremendo.<ol>
<li>Para simular o processo de mistura de fórmulas, agite a garrafa a uma velocidade de 180 rpm por 60 segundos. Depois de tremer, mova a garrafa para uma placa de vidro limpa e deixe esfriar.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Preparação amostral para identificação e quantificação da MP
<ol><li>Sonicate e enxágue completamente todas as partes do filtro de vidro (diâmetro de 25 mm, funil de vidro, base de suporte de vidro fritado e frasco receptor) usando água DI.<ol>
<li>Coloque um pedaço de filtro de membrana policarbonato-PC revestido a ouro (tamanho de poros de 0,8 μm, espessura da camada de revestimento au de 40 nm) no meio da base de vidro.</li>
		<li>Monte o funil de vidro e o grampo de aço inoxidável para fixar o filtro de membrana. Por fim, conecte o filtro de vidro montado a uma bomba de vácuo(Figura 2). Atenção: Para garantir que a membrana grude suavemente na superfície da base de vidro é importante manter a base de vidro molhada. Se necessário, 1-2 gotas de água DI devem ser lançadas na superfície da base de vidro antes de colocar o filtro de membrana.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Misture cuidadosamente a amostra de água resfriada no BFB (da Seção 2.3) e, em seguida, transfira uma certa quantidade da amostra de água para o funil de vidro usando uma pipeta de vidro. Ligue a bomba de vácuo para permitir que a amostra de água se estetre lentamente através do filtro de membrana.<ol>
<li>Após a filtragem, lave o interior do funil de vidro usando água DI para garantir que não haja partículas grudados no funil. Atenção: Para evitar a sobreposição das partículas na superfície do filtro de membrana, é importante escolher cuidadosamente o volume correto de água que passa pelo filtro. Os BFBs liberam um grande número de partículas, de modo que 3-5 filtros de membrana são necessários para filtrar todo o volume da amostra de água.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Desconecte a bomba de vácuo e desmonte o filtro de vidro. Em seguida, retire cuidadosamente o filtro de membrana usando uma pinça de aço inoxidável e mova-o para um vidro de cobertura limpa. Fixar o filtro de membrana no vidro da tampa usando um pequeno pedaço de fita de papel. Armazene imediatamente a amostra em uma placa de vidro limpo.</li>
</ol>4. Preparação da amostra para caracterização da topografia afm
<ol><li>Prepare uma bolacha de silicone limpa. Solte uma amostra de água de 50 μL (da Seção 2.3) na superfície do wafer de silício e seque-a em um forno a uma temperatura de cerca de 103 °C. Repita este processo se o nível de MP na amostra de água estiver baixo.</li>
	<li>Depois de 1 hora de secagem, mova o wafer para uma placa de vidro limpa e deixe esfriar em um dessecador.</li>
	<li>Depois que o wafer esfriar, armazene a amostra em uma placa de petri de vidro seco e limpa.</li>
</ol>5. Identificação e quantificação de MP usando espectroscopia de Raman
<ol><li>Calibrar o sistema Raman usando uma correção de ordem zero e um wafer de silício. Certifique-se de que a localização máxima do wafer de silício está em 520,7 cm-1 e que a intensidade máxima é superior a 6000 a.u. quando a intensidade do laser está em 100%.</li>
	<li>Configure os parâmetros do sistema Raman para obter alto espectro de MP de sinal para ruído, evitando a queima de PMs. Defina o sistema da seguinte forma: laser de excitação de 532 nm, remova o raio cósmico, intensidade laser de 10% (potência laser de 0,18 mW), resolução espectral de 1,5 cm-1, tempo de exposição de 10-20 segundos, acúmulos de 10-40 vezes e alcance espectral de 200-3200 cm-1. A Figura 3 mostrou espectros típicos de PMs com tempos de acumulação de 1 s a 400 s. Atenção: Não teste partículas usando 100% laser diretamente para evitar a queima rápida (pode ser queimado em 1 minuto se a partícula for pequena). Use baixa intensidade (10-50%) para realizar o teste primeiro.</li>
	<li>Coloque a amostra do filtro (da Seção 3.3) no meio da fase amostral de Raman. Escolha quatro pontos representativos (2 vagas estão na área intermediária, enquanto outras 2 vagas estão próximas à borda da área de trabalho, Figura 3C) no filtro de membrana para realizar o teste (área de teste total em torno de 1,5 mm2).</li>
	<li>Observe e fotografe as partículas na superfície do filtro de membrana usando um microscópio óptico (100x) seguido de identificação química usando espectroscopia de Raman.<ol>
<li>Compare o espectro Raman obtido com o espectro de polímero padrão de referência (a partir de material a granel de BFB e publicação anterior22).</li>
		<li>Determine a propriedade química das partículas utilizando os picos intensivos na faixa de 2780-2980, 1400-1640 e 709-850 cm-1, correspondentes às vibrações de alongamento dos grupos CH/CH2/CH3 e C-C associados a materiais polímeros(Figura 3).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Analise o tamanho e a quantidade dos PMs identificados usando ImageJ.<ol>
<li>Obtenha a concentração de PMs na amostra de água com base na área testada, área de trabalho total (227 mm2) e o volume amostral filtrado conhecido.</li>
		<li>Classifique os MPs confirmados em 5 grupos em termos do tamanho: 0,8-5 μm, 5-20 μm, 20-50 μm, 50-100 μm e > 100 μm.</li>
		<li>Por fim, determine a quantidade de PMs em um litro de amostra de água com base no volume da amostra filtrada, número de PMs registrados e área testada do filtro de membrana.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. Caracterização topográfica mp usando AFM
<ol><li>Equipar o sistema AFM (NT-MDT) com um teste de modo de toque. Calibrar o sistema usando um padrão de altura de passo (SHS). Configure o sistema dentro das condições ideais de trabalho: a taxa de digitalização é de 1 Hz, o tamanho da varredura é de 10-50 μm, a frequência de ajuste é de cerca de 160 kHz, e a linha de varredura é de 512 pixels.</li>
	<li>Fixar o wafer de silício (da Seção 4.3) no estágio amostral AFM. Observe e fotografe as partículas-alvo na superfície do wafer de silício, seguidas pela identificação química usando o método na Seção 5.</li>
	<li>Mude o sistema para o modo AFM (a espectroscopia de Raman e a AFM são montadas em um sistema) e teste a topografia de PMs identificados.</li>
	<li>Analise os dados 3d usando o software Gwyddion 2.54. Use a opção de perfil para obter as dimensões de partículas e alturas médias, enquanto a visualização 3D para obter estrutura 3D.</li>
</ol>

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</ol>

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Embora o estudo dos PMs em água marinha e doce tenha sido amplamente divulgado e o protocolo padrão relevante tenha sido desenvolvido17, o estudo de produtos plásticos de uso diário é uma importante área de pesquisa emergente. As diferentes condições ambientais vivenciadas pelos produtos plásticos domésticos significam que são necessários cuidados extras e esforços para obter resultados confiáveis. O protocolo de estudo deve ser consistente com os cenários reais de uso diário. Por exemplo, a sônic...

A maioria dos tipos de plásticos não são biodegradáveis, mas podem se dividir em pequenos pedaços devido a processos químicos e físicos como oxidação e atrito mecânico1,2. Peças plásticas menores que 5 mm são classificadas como microplásticos (MPs). Os PMs são onipresentes e encontrados em quase todos os cantos do mundo. Tornaram-se uma preocupação global devido ao risco potencial para humanos e animais selvagens3,4. Até o momento, foram encontrados acúmulos significativos de PMs em peixes, aves, insetos5,6, bem como mamíferos (camundongos, no intestino, rim e fígado7,8). Estudos descobriram que a exposição e o acúmulo de PMs podem danificar o metabolismo lipídico dos camundongos7,8. Uma avaliação de risco com foco em peixes descobriu que os PMs submicrínidos podem penetrar na barreira do sangue para o cérebro e causar danos cerebrais9. Deve-se notar que até o momento todos os resultados de risco de MP foram obtidos a partir de estudos em animais, enquanto o risco específico à saúde humana ainda é desconhecido.
Nos últimos 2 anos, as preocupações com a ameaça do MP à saúde humana aumentaram substancialmente com a confirmação dos níveis de exposição humana aos PMs. O acúmulo de PMs foi encontrado no cólon humano10, a placenta de gestantes11 e fezes adultas12. Uma determinação precisa dos níveis de liberação de MP é crucial para identificar fontes de exposição, avaliar o risco à saúde e avaliar a eficiência de quaisquer medidas de controle potenciais. Nos últimos anos, alguns estudos de caso relataram que os plásticos de uso diário (ou seja, a chaleira de plástico13 e os copos de uso único14) podem liberar quantidades extremamente altas de PMs. Por exemplo, copos de papel descartáveis (com interiores laminados com filmes de polietileno-PE ou copolímero), lançaram aproximadamente 250 MPs do tamanho de mn e 102 milhões de partículas sub-micron em cada mililitro de líquido após exposição a 85-90 °C de água quente14. Um estudo de recipientes de alimentos de polipropileno (PP) informou que até 7,6 mg de partículas plásticas são liberadas do recipiente durante um único uso15. Níveis ainda mais elevados foram registrados a partir de sacos de chá feitos de tereftalato de polietileno (PET) e nylon, que liberaram aproximadamente 11,6 bilhões de MPs e 3,1 bilhões de MPs nano-tamanho em um único copo (10 mL) da bebida16. Dado que esses produtos plásticos de uso diário são projetados para a preparação de alimentos e bebidas, a liberação de altas quantidades de PMs é provável e seu consumo é uma ameaça potencial à saúde humana.
Estudos sobre a liberação de MP de produtos plásticos domésticos (ou seja, a chaleira plástica13 e os copos de uso único14) estão em estágio inicial, mas espera-se que esse tema receba cada vez mais atenção dos pesquisadores e do público em geral. Os métodos exigidos nesses estudos são significativamente diferentes daqueles utilizados em estudos de temperatura ambiente marinho ou de água doce, onde já existem protocolos bem estabelecidos17. Em contrapartida, estudos envolvendo o uso diário de produtos plásticos domésticos envolvem temperatura muito mais alta (até 100 °C), com, em muitos casos, repetidas pedalando de volta à temperatura ambiente. Estudos anteriores apontaram que plásticos em contato com água quente podem liberar milhões de MPs16,18. Além disso, o uso diário de produtos plásticos pode, com o tempo, alterar as propriedades do próprio plástico. Por isso, é crucial desenvolver um protocolo de amostragem que imita com precisão os cenários de uso diário mais comuns. A detecção de partículas de micro-tamanho é outro grande desafio. Estudos anteriores apontaram que os PMs liberados de produtos plásticos são menores que 20 μm16,19,20. A detecção desses tipos de MPs requer o uso de filtros de membrana lisa com pequeno tamanho de poros. Além disso, é necessário distinguir os PMs de possíveis contaminantes capturados pelo filtro. Espectroscopia raman de alta sensibilidade é usada para análise de composição química, que tem a vantagem de evitar a necessidade de alta potência laser que é conhecida por destruir facilmente pequenas partículas20. Assim, o protocolo deve combinar procedimentos de manuseio sem contaminação com o uso de filtros de membrana ideais e para um método de caracterização que permita a identificação rápida e precisa da MP.
O estudo aqui relatado se concentrou na mamadeira de amamentação à base de PP (BFB), um dos produtos plásticos mais utilizados no dia a dia. Verificou-se que um alto número de PMs são liberados do BFB plástico durante a preparação da fórmula18. Para um estudo mais aprofundado da liberação de MP a partir de plásticos diários, o método de preparação e detecção da amostra para BFB é detalhado aqui. Durante a preparação da amostra, o processo padrão de preparação da fórmula (limpeza, esterilização e mistura) recomendado pela OMS21 foi cuidadosamente seguido. Ao projetar os protocolos em torno das diretrizes da OMS, garantimos que a liberação da MP dos BFBs imitasse o processo de preparação da fórmula do bebê utilizado pelos pais. O processo de filtro foi projetado para coletar com precisão os MPs liberados dos BFBs. Para a identificação química dos PMs, as condições de trabalho para espectroscopia de Raman foram otimizadas para obter espectros limpos e facilmente identificados de PMs, evitando ao mesmo tempo a possibilidade de queima das partículas-alvo. Finalmente, foi desenvolvido o procedimento de teste ideal e a força aplicada para permitir um mapeamento preciso da topografia tridimensional dos PMs utilizando microscopia de força atômica (AFM). O protocolo (Figura 1) detalhado aqui fornece um método confiável e econômico para a preparação e detecção de amostras de MP, que pode beneficiar substancialmente estudos futuros de produtos plásticos.

<table><tbody><tr><td>NANOSENSORS</td><td>PPP-NCSTAuD-10</td> <td>do modilhão do AFM</td> Para <td>obter a topografia tridimensional da</td></tr><tr><td>nova</td><td>NT-MDT</td> do<td>microscópio atômico da força</td> dos <td>MPs dos PP Para obter a topografia tridimensional da</td></tr><tr><td>fada</td><td>detergente</td> dos MPs <td>dos PP Original 1015054</td><td>Para limpar o produto brand-new</td></tr><tr><td>Filtro de membrana Gold-coated do policarbonato-PC</td><td></td><td>0.8um25mmOuro</td><td>Para coletar microplásticos na água e se beneficiar do teste Raman</td></tr><tr><td>Software Gwyddion</td><td>Gwyddion</td><td>Gwyddion2.54</td><td>Para determinar a topografia de MPs</td></tr><tr><td>Software</td><td>ImageJ US National Institutes of Health</td><td>Não, gratuito para uso</td><td>Para determinar o tamanho de MPs</td></tr><tr><td>Forno de microondas</td><td>De'longhi, Itália</td><td>815/1195</td><td>Preparação de água quente</td></tr><tr><td>Microscópio óptico, x100</td><td>Mitutoyo, Japão</td><td>46-147</td><td>Para encontrar e observar a espectroscopia Raman de pequenos MPs</td></tr><tr><td></td> Sistema <td>Raman confocal</td><td>Renishaw</td> InVia <td>Para determinar quimicamente o leito de agitação PP-MPs-SSL2</td></tr><tr><td></td><td>Stuart, Reino Unido</td><td>51900-64</td><td>Para imitar o processo de mistura durante a preparação da amostra</td></tr><tr><td>Esferas microplásticas de poliestireno padrão</td><td>Polysciences, Europa</td><td>64050-15</td><td>Para validar a robustez de protocolo atual</td></tr><tr><td>Pipeta Tansfer com ponta de vidro</td><td>Macro, Marca</td><td>26200</td><td>Para transferir amostra de água para filtro de vidro</td></tr><tr><td>Limpador ultrassônico</td><td>Witeg, Alemanha</td><td>DH. WUC. D06H</td><td>Para limpar a vidraria</td></tr><tr><td>Bomba de vácuo</td><td>ILMVAC GmbH</td><td>105697</td><td>Para filtrar a amostra de água</td></tr></tbody></table>

amostragem, identificação e caracterização de liberação de microplásticos da mamadeira de alimentação de bebês de polipropileno durante o uso diário

Sampling, Identification and Characterization of Microplastics Release from Polypropylene Baby Feeding Bottle during Daily Use

Os microplásticos (PMs) estão se tornando uma preocupação global devido ao potencial risco à saúde humana. Estudos de caso de produtos plásticos (ou seja, copos de uso único de plástico e chaleiras) indicam que a liberação de MP durante o uso diário pode ser extremamente alta. Determinar precisamente o nível de liberação da MP é um passo crucial para identificar e quantificar a fonte de exposição e avaliar/controlar os riscos correspondentes decorrentes dessa exposição. Embora os protocolos de medição dos níveis de MP em água marinha ou doce tenham sido bem desenvolvidos, as condições experimentadas pelos produtos plásticos domésticos podem variar amplamente. Muitos produtos plásticos são expostos a altas temperaturas frequentes (até 100 °C) e são resfriados de volta à temperatura ambiente durante o uso diário. Por isso, é crucial desenvolver um protocolo de amostragem que imita o cenário real de uso diário para cada produto em particular. Este estudo se concentrou em mamadeiras de alimentação de bebês amplamente utilizadas à base de polipropileno para desenvolver um protocolo econômico para estudos de liberação de MP de muitos produtos plásticos. O protocolo aqui desenvolvido permite: 1) a prevenção da contaminação potencial durante a amostragem e detecção; 2) implementação realista de cenários de uso diário e coleta precisa dos PMs liberados de mamadeiras de alimentação de bebês com base nas diretrizes da OMS; e 3) determinação química econômica e mapeamento de topografia física de PMs liberados de mamadeiras de alimentação de bebês. Com base neste protocolo, o percentual de recuperação utilizando MP de poliestireno padrão (diâmetro de 2 μm) foi de 92,4-101,2% enquanto o tamanho detectado foi de cerca de 102,2% do tamanho projetado. O protocolo aqui detalhado fornece um método confiável e econômico para a preparação e detecção de amostras de MP, que pode beneficiar substancialmente estudos futuros de liberação de MP de produtos plásticos.

Para validar este protocolo, a amostra de água foi preparada adicionando esferas microplásticas de poliestireno padrão (diâmetro de 2,0 ± 0,1 μm) à água DI. A quantidade de MP adicionada correspondeu a 4.500.000 partículas/L, o que é semelhante ao nível de liberação de MP de BFBs. Seguindo as seções de protocolo 2-3, os PMs foram coletados com sucesso (Figura 4A) e a taxa de recuperação foi de 92,4-101,2%. Esta taxa de recuperação é comparável a um estudo anterior sobre os PMs<sup class="xre...

Este estudo detalhou um protocolo confiável e econômico para coleta e detecção de microplásticos a partir do uso diário de produtos plásticos.

Amostragem, Identificação e Caracterização de Liberação de Microplásticos da Mamadeira de Alimentação de Bebês de Polipropileno durante o Uso Diário

Microplastics (MPs) are becoming a global concern due to the potential risk to human health. Case studies of plastic products (i.e., plastic single-use ...

Os microplásticos estão se tornando uma preocupação global devido ao potencial risco à saúde humana. Este estudo se concentrou em mamadeiras de alimentação de bebês amplamente utilizadas à base de polipropileno para desenvolver um protocolo econômico adequado para um estudo de MP de muitos produtos plásticos. Este protocolo fornece os detalhes da preparação da amostra, identificação e caracterização.Pode beneficiar substancialmente estudos futuros de microplásticos liberados de produtos plásticos. Microplásticos liberados durante a preparação da fórmula. Mergulhe a mamadeira de alimentação do bebê em 95 graus Celsius de água desionizada para esterilizar a garrafa.Para evitar que a garrafa flutuasse, pressione-a ligeiramente usando uma pinça de aço inoxidável para garantir que todo o corpo da garrafa esteja imerso na água. Depois de cinco minutos, leve a garrafa para fora e mova-a para um disco de vidro limpo para aguardar a secagem de ar. Após a secagem do ar, despeje 180 mililitros de 70 graus Celsius de água desionizada na garrafa.Em seguida, cubra a garrafa imediatamente usando uma placa de vidro Petri e coloque-a em uma cama tremendo. Para estimular o processo de mistura de fórmulas, agite a garrafa a uma velocidade de 180 rpm por 60 segundos. Depois de tremer, mova a garrafa para uma placa de vidro limpa e deixe esfriar.Preparação amostral para identificação e quantificação de microplásticos. O filtro de membrana é fundamental para a captura, visualização e detecção de microplásticos. Usamos o filtro de membrana de policarbonato revestido de ouro para capturar microplásticos.Coloque um pedaço de filtro de membrana no meio de uma base de vidro. Em seguida, monte o funil de vidro e o grampo de aço inoxidável para fixar o filtro de membrana e conecte o filtro de vidro com uma bomba de vácuo depois de agitar suavemente a amostra de água resfriada na mamadeira de amamentação do bebê. Em seguida, transfira uma certa quantidade de amostra de água para o funil de vidro usando uma pipeta de vidro.Ligue a bomba de vácuo para permitir que a amostra de água se estetre lentamente através do filtro de membrana. Após a filtragem, lave o interior do funil de vidro usando água desionizada para garantir que não haja partículas grudadas no funil. Desconecte a bomba de vácuo e desmonte o filtro de vidro.Em seguida, retire cuidadosamente o filtro de membrana usando uma pinça de aço inoxidável e mova-o para um vidro de cobertura limpa. Armazene a amostra em uma placa de vidro limpo de Petri imediatamente. Identificação e quantificação de microplásticos.Retire cuidadosamente a amostra da placa de vidro Petri e coloque a amostra do filtro no meio da fase amostral de Raman. Escolha as manchas representativas no filtro de membrana. Observe e fotografe as partículas na superfície do filtro de membrana usando um microscópio óptico.Configure o sistema Raman e teste essas partículas uma a uma usando laser de excitação de 532 nanômetros com 10% de intensidade. Compare o espectro Raman obtido com espectro padrão referenciado. A espectroscopia AFM e Raman são montadas em um sistema.Assim, mude o sistema para o modo AFM e teste a topografia de partículas microplásticas interessantes. Resultados dos testes de microplásticos. Para validar este protocolo, as esferas padrão de microplásticos de poliestireno foram adicionadas à água DI e testadas utilizando o protocolo desenvolvido.Os microplásticos PS foram coletados e detectados com sucesso. A partícula dentro da caixa vermelha foi confirmada como um típico microplástico de poliestireno. Seguindo o protocolo, a taxa de recuperação de microplásticos foi de 92 a 101% Portanto, o protocolo desenvolvido é confiável para o teste de mamadam alimentar do bebê.O protocolo foi usado para testar microplásticos liberados de oito produtos populares de mamadeira para bebês, e descobriu que os níveis liberados pelos microplásticos variavam de 1,3 milhão a 16,2 milhões de partículas por litro durante a preparação da fórmula. A imagem topográfica 3D mostrou ainda que a textura superficial dos microplásticos liberados é rica em colisões e vales de nano porte, o que pode aumentar substancialmente sua capacidade de absorção. conclusão. O estudo mostrou que os produtos plásticos que são utilizados diariamente são fontes muito importantes para a exposição microplástica humana.O protocolo aqui detalhado fornece um método confiável e econômico para a preparação e detecção de amostras de microplásticos, que pode beneficiar substancialmente estudos futuros de liberação de microplásticos de produtos plásticos.

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Research

JoVE Journal

Environment

Ambiente

O protocolo seguinte descreve a metodologia para: amostragem microplásticos à superfície do mar, a separação de identificação microplástico e química das partículas. Este protocolo está em linha com as recomendações para monitorização microplásticos publicados pelo MSFD Subgrupo Técnico sobre lixo marinho.

Protocolo para Microplásticos Amostragem na superfície do mar e análise de amostras

Os microplasticos atuam como vetor de contaminantes orgânicos potencialmente tóxicos com efeitos imprevisíveis. Este protocolo descreve uma metodologia alternativa para avaliar os níveis de pesticidas organoclorados adsorvidos em pellets de plástico e a identificação da estrutura química do polímero. O foco é a extração de fluido pressurizado e a espectroscopia infravermelha de infravermelho de reflectância total atenuada.

Extração de Pesticidas Organoclorados de Pelotização de Plástico e Análise de Tipo de Plástico

A maioria das pesquisas de microplástico até à data ocorreu em sistemas marinhos onde níveis de sólidos suspensos são relativamente baixos. Foco agora está mudando para sistemas de água doce, que podem caracterizar cargas de alta de sedimentos e detritos flutuantes. Este protocolo aborda coletando e analisando amostras de microplástico de ambientes aquáticos que contêm altas cargas de sólidos suspensas.

Amostragem, classificação e caracterização Microplastics em ambientes aquáticos com cargas de sedimentos suspensos altos e grandes destroços flutuantes

Mostramos a formação e caracterização dimensional de micro e nanoplásticos (MPs e NPs, respectivamente) utilizando um processo stepwise de moagem mecânica, moagem e análise de imagens.

Formação de Micro e Nano-Plásticos de Filmes plásticos agrícolas para emprego em estudos de pesquisa fundamental

Aqui é apresentado um método para extrair microplásticos do solo e identificar seus tipos de polímeros. O método foi otimizado para execução, aplicabilidade e custo-benefício. Ele estabelece uma base científica para padronizar o método analítico para identificar microplásticos em solos.

Separação e identificação de microplásticos convencionais de solos agrícolas

Um método para quantificar micro e nanoplásticos originários de tereftalato de adipato de polibutileno no solo usando espectroscopia de ressonância magnética nuclear é descrito aqui. Essa técnica melhora a metodologia existente porque se estende à quantificação de nanoplásticos e pode ser facilmente adaptada para o processamento de amostras ambientais a granel.

Quantificação de Micro e Nanoplásticos à Base de Polibutileno Adipato Tereftalato do Solo Usando Espectroscopia de Ressonância Magnética Nuclear de Prótons

Aqui, apresentamos um protocolo que mostra um substrato opticamente transparente e plano para a captura e análise simplificadas de partículas contaminantes na água potável. Aqui é apresentado o Silicon Nanomembrane Analysis Pipeline (SNAP): um pipeline flexível para a captura, quantificação e identificação de partículas em meios líquidos.

Análise Multimodal de Microplásticos em Água Potável usando um Pipeline de Análise de Nanomembrana de Silício

Aqui, fornecemos uma descrição detalhada da amostragem de águas subterrâneas de um poço para análise de microplásticos usando um sistema de amostragem patenteado desenvolvido para esse fim. O protocolo detalha os métodos de amostragem de microplásticos de poços, bem como a separação e identificação química de microplásticos.

Amostragem e identificação de microplásticos em águas subterrâneas

Os animais selvagens são comumente parasitados por uma ampla gama de helmintos. Os quatro principais tipos de helmintos são "lombrigas" (nematóides), "vermes de cabeça espinhosa" (acantocéfalos), "vermes" (trematódeos) e "tênias" (cestóides). Aqui descrevemos como os helmintos são coletados de um animal vertebrado e como eles são preservados e taxonomicamente identificados.

Coleta e identificação de helmintos da vida selvagem

Nematóides entomopatogênicos são vermes que vivem no solo que parasitam uma grande variedade de insetos. Demonstramos métodos de amostragem utilizados para o isolamento destes nematóides do solo utilizando duas técnicas: a iscagem inseto ea armadilha Branco modificado, para a recuperação de nematóides de amostras de solo e cadáveres de insetos infectados, respectivamente.

Amostragem do solo e isolamento de nematóides entomopatogênicos (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Aprenda um protocolo confiável para quantificar microplásticos liberados de mamadeiras de polipropileno durante o uso diário. Este método utiliza microscopia óptica, espectroscopia Raman e AFM para identificação precisa.

Amostragem, Identificação e Caracterização de Liberação de Microplásticos da Mamadeira de Alimentação de Bebês de Polipropileno durante o Uso Diário (Vídeo) | JoVE Journal

Amostragem, Identificação e Caracterização de Liberação de Microplásticos da Mamadeira de Alimentação de Bebês de Polipropileno durante o Uso Diário

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