RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Начните с седалищного нерва, изолированного от мыши.
Нейроны внутри нерва были трансфицированы для экспрессии флуоресцентных цитоплазматических белков.
Нерв был раздавлен, чтобы вызвать травму, на которую был наложен шов.
Поврежденные сегменты аксонов на участке вырождаются, а рекрутированные макрофаги очищаются от обломков.
Шванновские клетки пролиферируют, образуя направляющие пути и секретируя нейротрофические факторы, способствующие росту аксонов. Аксоны проходят по этим дорожкам, регенерируя нерв.
Зафиксируйте нерв, чтобы сохранить клеточные структуры, затем удалите все прикрепленные ненейрональные ткани.
Промойте буфером для устранения остатков фиксаторов.
Расположите нерв на предметном стекле микроскопа, нанесите монтажную среду и установите покровное стекло.
Расплющите нерв, чтобы расположить аксоны в одной фокальной плоскости для визуализации.
С помощью эпифлуоресцентного микроскопа проследите аксоны от места раздавливания до их дистальных концов, чтобы
измерить продолжительность регенерации.
Отделите DRG вместе с нервными корешками и седалищным нервом, осторожно с помощью микроножниц и микрощипцов под микроскопом для вскрытия.
Затем переведите седалищный нерв непосредственно в 4% PFA на ночь при четырех градусах Цельсия. Чтобы визуализировать и измерить меченные флуоресценцией сенсорные аксоны под микроскопом для препарирования, осторожно снимите прикрепленную ткань и мембрану на неподвижном седалищном нерве с помощью микроножниц и микрощипцов. Затем промойте нерв PBS три раза.
Далее поместите седалищный нерв на предметное стекло и держите его прямо. Добавьте 80 микролитров раствора против выцветания вокруг нерва, затем наложите на него покровную крышку. Расплющите всю смонтированную ткань с нажимом.
После этого поместите сплющенную ткань под инвертированный эпифлуоресцентный микроскоп, оснащенный аксессуаром для получения мозаики и обработки изображений. При измерении длины регенерированных аксонов проследите все идентифицируемые флуоресцентно меченые аксоны в седалищном нерве от места раздавливания до дистальных концов аксонов.
Related Videos
09:55
Related Videos
9.9K Views
08:20
Related Videos
9K Views
09:43
Related Videos
2.6K Views