May 13th, 2012
Этот метод позволяет осуществлять мониторинг клеток в реальном времени и количественных измерений различных параметров миграции клеток, таких как скорость, перемещение и скорость. В отличие от традиционных методов, это реальный подход время не на основе конечных количественных измерений миграции, вместо этого она позволяет осуществлять мониторинг и расчет различных параметров непрерывно.
Общая цель данного эксперимента заключается в количественном измерении миграции клеток в режиме реального времени с помощью видеопокадровой микроскопии. Это достигается путем предварительного покрытия коллагеном шестилуночной культуральной пластины, а затем незначительного засеивания представляющих интерес клеток на покрытую пластину. В качестве второго шага с помощью наконечника пипетки в планшете создается рана, обеспечивающая достаточное пространство для миграции.
Затем настраивается микроскоп и через равные промежутки времени делаются снимки с использованием системы контроля температуры, что позволяет непрерывно наблюдать за мигрирующими клетками в режиме реального времени. В конечном счете, протокол отслеживания частиц используется для оценки различий в средней скорости и общем смещении тестовых и контрольных ячеек. Основное преимущество этого метода перед существующими методами, такими как анализ миграции в камере избегания, заключается в том, что он не основан на количественных измерениях миграции конечных точек.
Вместо этого он позволяет непрерывно отслеживать и рассчитывать различные параметры. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области биологии рака, например, как определенные гены или лекарства влияют на миграцию опухолевых клеток? За два дня до процедуры добавьте по 1,5 миллилитра коллагена, разведенного в opti media, в каждую лунку шестилуночного планшета для культивирования, а затем инкубируйте планшет в течение ночи при четырех градусах Цельсия за сутки до процедуры.
Ресуспендируйте интересующие клетки в двух миллилитрах DMEM плюс FBS на лунку и перенесите клетки в каждую лунку пластины, покрытой коллагеновым покрытием ENC, инкубируя клетки в течение ночи при температуре 37 градусов Цельсия. В день проведения процедуры. Используйте наконечник для пипетки, чтобы создать рану в культивируемых клетках за ночь, и промойте каждую лунку PBS, чтобы удалить любой мусор, образовавшийся в результате раны.
Добавьте DMEM плюс FBS в промытые лунки, а затем проверьте под микроскопом, чтобы убедиться, что образовалось чистое раневое пространство. После включения камеры микроскопа и аппарата для визуализации живых клеток расположите пластину над предметным столиком микроскопа. Закройте пластину новой камерой контроля окружающей среды с живыми клетками и установите термостат на 37 градусов Цельсия и углекислый газ на 5%.
Выберите управление фокусировкой, нажав F в круге кнопки. В окне набора фильтров выберите настройки, чтобы направить путь света на I элемент. Выберите подходящий фильтр для Яркого освещения поля, а затем нажмите на кнопку Открыть Яркость.
Чтобы открыть затвор светлого поля. Теперь выберите фильтр яркого поля на револьверной головке и просмотрите образец через окуляр, чтобы найти подходящие поля и сфокусировать образец. Затем переместите революцию фильтра, чтобы изменить путь света к камере Для захвата изображения в программном обеспечении для слайдбука нажмите на управление фокусировкой, выберите XY, чтобы выбрать различные положения через I-образную часть, а затем нажмите «Установить», чтобы зафиксировать в каждом месте.
Для захвата изображения вручную настройте фокус изображения камеры, которое просматривается на экране, а затем используйте инструменты в окне управления фокусом для настройки положения области по оси Z. Для достижения наилучших результатов сосредоточьтесь на плоских ячеистых выступах вблизи контакта с пластиной, чтобы облегчить фокусировку. Используйте ползунок, чтобы отрегулировать время экспозиции в подходящем диапазоне для фокусировки.
Если выбрано несколько положений XY, отрегулируйте фокус для каждого отдельного положения, выбрав управление фокусировкой. Затем xy, затем точка посещения. В альбоме слайдов выберите графику камеры в строке меню, выберите тип съемки, а затем выполните интервальную съемку, чтобы выбрать продолжительность эксперимента.
В раскрывающемся меню введите желаемую задержку между началом одной временной точки и началом следующей. В полях интервала третье поле будет автоматически вычисляться из введенных вручную значений. В разделе Захват нескольких XY выберите многоточечный список для экспериментов с более чем одним положением XY.
Наконец, назовите файл, чтобы сохранить файл, перейдите в раздел «Управление захватом» и выберите «Дополнительно», затем спулируйте. Затем захватите в память и сохраните в буферный файл после каждой временной точки. Начните с клика по изображению.
В строке меню слайдбука выберите импорт из раскрывающегося меню, а затем нажмите на катушку слайдбука. Выберите нужные файлы сборника слайдов, созданные в ходе эксперимента по миграции, для различных полей и временных точек. Откройте первый файл, затем выберите маску в строке меню и выберите протокол отслеживания частиц из выпадающего меню.
В меню отслеживания частиц выберите протокол ручного отслеживания частиц. Появится окно с точками времени начала и окончания Чтобы проанализировать случайную миграцию, выберите маску, а затем протокол отслеживания частиц. Опять же, чтобы определить координаты для центра объекта, выберите центр области.
Затем нажмите «Отслеживать» и продолжите. Теперь выберите желаемую статистику для каждого пути, такую как смещение и средняя скорость. Как показано здесь, нажмите Рассчитать, чтобы просмотреть статистику.
В этом окне показан пример анализа случайной миграции, количественно выраженного в терминах скорости. На графике Вискерса в этом эксперименте наблюдалось увеличение средней скорости в клетках M-D-A-M-B 2 31 с сбитым геном-супрессором опухолей. По сравнению с контрольной клеткой M-D-A-M-B 2 31 здесь случайная миграция клеток с первого рисунка анализировалась с точки зрения смещения клеток.
Опять же, в группе полного нокдауна гена-супрессора опухоли наблюдалось повышенное смещение клеток по сравнению с контрольной группой M-D-A-M-B 2 31. Клетки в этой покадровой видеомикроскопии фильма контроля MDA MB 2 31 клетки были усажены на коллаген на ночь. Затем изображения были сделаны с интервалом в один час в общей сложности 18 часов во время случайной миграции.
Обратите внимание, как клетки со временем удаляются от своих исходных положений. В этом фильме была зафиксирована и проанализирована миграция тестовых клеток M-D-A-M-B 2 31 после ночного посева на коллаген. Обратите внимание, что тестовые клетки более мигрируют по сравнению с контрольными клетками в предыдущем фильме.
После этой процедуры могут быть выполнены другие методы, такие как клеточная инвазия и dynas, чтобы ответить на дополнительные вопросы, например, какова роль клеток в метастазировании рака после его развития? Этот метод проложил путь исследователям в области клеточной биологии к изучению миграции клеток с использованием изолированных линий раковых клеток.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Этот метод позволяет осуществлять мониторинг миграции клеток в реальном времени, предоставляя количественные измерения таких параметров, как скорость, смещение и величина скорости. В отличие от традиционных методов, этот подход непрерывно отслеживает эти параметры, а не полагается на измерения в конечной точке.
Real-time quantitative analysis of cell migration enables biopharma R&D teams to de-risk target validation by providing continuous, parameter-rich data on cellular motility. This approach supports predictive confidence in early discovery by distinguishing mechanistic effects of genetic or pharmacological perturbations on migration dynamics. The method’s reproducibility and scalability facilitate cross-functional alignment between discovery biology and preclinical teams.
The method integrates into the discovery continuum from target validation through lead optimization, offering quantitative migration readouts that inform hit-to-lead progression.