-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Видео-окулография у мышей
Видео-окулография у мышей
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Video-oculography in Mice

Видео-окулография у мышей

Full Text
24,121 Views
09:43 min
July 19, 2012

DOI: 10.3791/3971-v

Marcel de Jeu1, Chris I. De Zeeuw1,2

1Department of Neuroscience,Erasmus MC, Rotterdam, The Netherlands, 2Department of Neuroscience,Royal Dutch Academy of Arts & Sciences (KNAW)

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Видео-окулография очень количественный метод для исследования глазного производительность двигателя, а также в качестве моторного обучения. Здесь мы опишем, как для измерения видео-окулография у мышей. Применение этого метода на нормальный, фармакологически обработаны или генетически модифицированных мышей, является мощным инструментом исследования для изучения основных физиологии двигатель поведения.

Transcript

Общая цель этой процедуры заключается в выполнении видео или иконографии у мышей. Это достигается путем предварительного оснащения мыши пьедесталом на его черепе, который позволяет обездвиживать его голову в специальном ограничителе головы. Вторым шагом является помещение мыши в видеоокул и калибровка системы видеослежения за зрачком.

Далее регистрируются движения глаз во время активации глазодвигательной системы с использованием большого репертуара вестибулярных и оптических кинетических стимулов. Заключительным этапом является анализ этих движений глаз. В конечном счете, иконография видео О на нормальных, фармакологически обработанных или генетически модифицированных мышах может быть использована для изучения физиологии двигательного поведения.

Хотя этот метод может дать представление о двигательной системе глаза, он также может быть применен для изучения заболеваний мозжечкового вестибулярного или глазного происхождения с использованием мышиных мутантов, которые имитируют патологии человека. Чтобы начать эту процедуру, обезболите мышь в газовой камере смесью изофа, фтора и кислорода. Затем поддерживайте анестезию, подавая газ через маску.

Далее используйте грелку и анальный термодатчик, чтобы поддерживать температуру тела мыши на уровне 37 градусов по Цельсию. Впоследствии нанесите глазную мазь для защиты глаз от пересыхания, сбрейте спинной черепной мех и очистите операционную область. После этого сделайте разрез по средней линии, чтобы обнажить дорсальную черепную поверхность черепа, очистите и высушите поверхность.

Затем нанесите каплю фосфорной кислоты из bgma на лямбду. Через 15 секунд удалите травление, затем очистите поверхность черепа физиологическим раствором и снова высушите. Нанесите каплю opti bond prime на верхнюю часть травленной черепной поверхности и продуйте воздух.

Сушите его в течение 30 секунд. Затем добавьте каплю клея opti bond поверх прайма opti bond. Высушите его с помощью ультрафиолетового излучения в течение одной минуты.

После этого покройте клеевой слой тонким слоем харизматического композита. Разъем с магнитным отверстием для винтов и местами крепления встроен в композит. Затем отверждайте композит с помощью ультрафиолетового излучения.

Опять же, при необходимости, наносим дополнительные слои композита и отверждаем их светом. Дайте мыши восстановиться в течение как минимум трех дней после операции. Следующим шагом является помещение мыши в ограничитель и фиксация ее головы к ограничителю с помощью магнита и одним винтом для крепления головки мыши и корпуса ограничителя на платформе XY.

Используя платформу XY, поместите голову мыши над центром поворотного стола, чтобы мышь можно было перемещать по осям Pitch Ya и roll. Затем расположите его голову в правильном наклоне ya и угле крена, выровняв глаз по визуальному образу глаза, созданному системой сканирования глаза. Теперь поворотный стол прикреплен к серводвигателю переменного тока.

Положение поворотного стола контролируется потенциометром, прикрепленным к оси поворотного стола. Поворотный стол закрыт цилиндрическим экраном с произвольным точечным рисунком, который также оснащен серводвигателем переменного тока. Положение цилиндрического сита контролируется потенциометром, прикрепленным к его оси.

Экран может быть освещен галогенной лампой. Движение поворотного стола и окружающего его экрана контролируется компьютером, подключенным к входному выходному интерфейсу. Сигналы положения проигрывателя и окружающего экрана фильтруются частотой среза 20 Гц, оцифровывается входным выходным интерфейсом и хранится на этом компьютере.

Глаз мыши подсвечивается тремя инфракрасными излучателями. Два закреплены на поворотном круге, а третий прикреплен к камере. Этот третий излучатель создает эталонное отражение роговицы, которое используется во время процедуры калибровки и при записи движений глаз.

Инфракрасная ПЗС-камера, оснащенная зум-объективом, крепится к поворотному столу и фокусируется на головке мыши. В центре проигрыватель. Камеру можно разблокировать и перемещать вокруг оси поворотного стола ровно на 20 градусов.

Во время процедуры калибровки. Затем видеосигнал обрабатывается системой слежения за движением глаз, которая может отслеживать зрачок и эталонное отражение роговицы в горизонтальном и вертикальном направлениях с частотой дискретизации 120 герц. Затем сигналы опорного положения роговицы, положения зрачка и размера человека оцифровываются входным выходным интерфейсом и сохраняются в том же файле, что и сигналы о положении на столе и окружающем экране, для калибровки движений глаз, регулировки положения головы мыши с камерой таким образом, чтобы видеоизображение зрачка располагалось в середине монитора, а представление эталонного значения роговицы расположен на вертикальной средней линии глаза непосредственно над зрачком.

Далее переместите камеру несколько раз на 20 градусов пика. Козырек вокруг вертикальной оси поворотного стола. Используйте положения отслеживаемого зрачка и референсного референса роговицы, записанные в крайних положениях камеры, чтобы рассчитать радиус поворота зрачка.

Повторите эти шаги много раз при различных условиях освещения, чтобы определить взаимосвязь между размером зрачка и вращением зрачка. Затем составьте кривую коррекции поворота зрачка. Теперь рассчитайте угловое положение глаза, измерив опорное положение роговицы, положение зрачка и размер зрачка.

Значение поворота зрачка может быть извлечено из кривой коррекции поворота зрачка, а угловое положение глаза может быть рассчитано с помощью следующей формулы. Здесь продемонстрирован эксперимент по движению глаз VVOR. Теперь преобразуйте положение глаз, положение стола и положение окружающего экрана в угловые позиции.

Затем дифференцируйте и отфильтруйте угловые положения глазного стола и окружающего экрана с помощью фильтра нижних частот Баттерворта. Используя частоту среза 20 Гц, удалите secod из сигнала скорости глаза, используя порог обнаружения 40 градусов в секунду. Затем усредните таблицу и сигналы скорости глаза, используя каждый отдельный цикл в испытании, подогнайте усредненные сигналы с соответствующей функцией.

Как правило, используется стимуляция синусоидальной скорости, а средние циклы сопровождаются знаковой или косинусной функцией. В этом фильме показано, как движения глаз генерируются вращением окружающего экрана, вызывая оптокинетический рефлекс, вращающий окружающий экран в диапазоне частот от 0,2 до одного герца с амплитудой 1,6 градуса. Показано, что оптическая кинетическая система мыши более эффективна в низкочастотном диапазоне, чем в высокочастотном диапазоне.

Вот еще один фильм, показывающий, как генерируются движения глаз. Вращая мышь в темноте, вызывая вестибулярный глазной рефлекс, вращается поворотный стол в диапазоне частот от 0,2 до одного герца с амплитудой 1,6 градуса. Показано, что вестибулярная система глаза мыши более эффективна в высокочастотном диапазоне, чем в низкочастотном.

Здесь показан другой фильм о том, как движения глаз генерируются вращением мыши на свету, чтобы вызвать визуально усиленный вестибулярный глазной рефлекс вращением поворотного стола в диапазоне частот от 0,2 до одного герца с амплитудой 1,6 градуса, в то время как окружающий экран хорошо освещен, показано, что мышь генерирует эффективные компенсирующие движения глаз во всем диапазоне частот. И этот фильм показывает, как моторное обучение достигалось за счет адаптивного увеличения вестибулярного глазного рефлекса. Используя парадигму обучения в противофазе, вращение поворотного стола в противофазе с окружающим экраном увеличивает усиление VOR этой мыши.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как выполнять видеоокул у мышей.

Explore More Videos

Neuroscience выпуск 65 физиологии медицины мышь мутантов ученик слежения двигатель обучения двигательной активности мозжечок olivocerebellar системы вестибулоокулярный рефлекс рефлекс оптокинетическую офтальмологии окулография

Related Videos

Оптическая когерентная томографическая визуализация для оценки увеита на мышиной модели

03:12

Оптическая когерентная томографическая визуализация для оценки увеита на мышиной модели

Related Videos

482 Views

Визуализация микроглии сетчатки in vivo на мышиной модели глаукомы

04:55

Визуализация микроглии сетчатки in vivo на мышиной модели глаукомы

Related Videos

354 Views

Визуализация сетчатки мышей in vivo с помощью оптической когерентной томографии

04:08

Визуализация сетчатки мышей in vivo с помощью оптической когерентной томографии

Related Videos

373 Views

Лазерное мышиной модели хронической гипертонией Глазные для характеристики визуальных дефектов

07:00

Лазерное мышиной модели хронической гипертонией Глазные для характеристики визуальных дефектов

Related Videos

13.3K Views

Оптическая когерентная томография: Визуализация мыши сетчатки ганглия клетки в естественных условиях

08:17

Оптическая когерентная томография: Визуализация мыши сетчатки ганглия клетки в естественных условиях

Related Videos

19.7K Views

В естественных условиях Визуализация Cx3cr1gfp/gfp  репортер мышей с спектральные домена оптическая когерентная томография и сканирование лазерная офтальмоскопия

06:19

В естественных условиях Визуализация Cx3cr1gfp/gfp репортер мышей с спектральные домена оптическая когерентная томография и сканирование лазерная офтальмоскопия

Related Videos

10.9K Views

Использование оптическая когерентная томография и оптокинетический ответ как структурная и функциональная зрительная система отсчетов в мышей и крыс

07:08

Использование оптическая когерентная томография и оптокинетический ответ как структурная и функциональная зрительная система отсчетов в мышей и крыс

Related Videos

10.3K Views

Долгосрочный сенсорные конфликт в свободно себя мышей

06:12

Долгосрочный сенсорные конфликт в свободно себя мышей

Related Videos

6.9K Views

Применение оптической когерентной томографии к мышиной модели ретинопатии

08:22

Применение оптической когерентной томографии к мышиной модели ретинопатии

Related Videos

4.7K Views

Совмещение фиброграмм оптической когерентной томографии видимого света с конфокальными изображениями той же сетчатки мыши

07:02

Совмещение фиброграмм оптической когерентной томографии видимого света с конфокальными изображениями той же сетчатки мыши

Related Videos

1.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code