-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Одновременное Электрофизиологические Запись и Micro-инъекции агенты, ингибирующие в мозге грызунов
Одновременное Электрофизиологические Запись и Micro-инъекции агенты, ингибирующие в мозге грызунов
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Simultaneous Electrophysiological Recording and Micro-injections of Inhibitory Agents in the Rodent Brain

Одновременное Электрофизиологические Запись и Micro-инъекции агенты, ингибирующие в мозге грызунов

Full Text
8,341 Views
07:52 min
July 7, 2015

DOI: 10.3791/52271-v

Jimmy Lai1, Marc-André Legault1, Sébastien Thomas1, Christian Casanova1

1École d'optométrie,Université de Montréal

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Здесь мы создаем стеклянную пипетку с двойными функциями: ингибирование глубоких структур мозга с помощью микроинъекций лекарств и мониторинг их эффектов в реальном времени с помощью одновременных электрофизиологических записей.

Transcript

Общая цель этой процедуры заключается в создании доступной инъекционной дороги для микроинъекции нейротрансмиттеров в верхний колликулус крысы при одновременном мониторинге активности нейронов в нескольких единицах. Это достигается путем создания стеклянной пипетки с использованием стеклянного капилляра и вертикального съемника микропипетки. Вторым шагом является вставка серебряной проволоки в капилляр с отрезком проволоки, выступающим из неконического конца.

Далее с помощью клея создается плотное прилегание между стеклянной пипеткой и иглой для подкожных инъекций. Заключительные шаги заключаются в заполнении пипетки раствором ГАМК цвета «Чикаго» небесно-голубого цвета, прикрепленным к микрошприцу, наполненному минеральным маслом и прикрепленному к микроинжектору. В конечном счете, эта конструкция инъекции с доступными и недорогими частями может быть использована для инактивации глубоких структур мозга при одновременной регистрации нейронной активности инактивированной области до, во время и после инъекции препарата.

Есть несколько преимуществ этого метода по сравнению с другими существующими методами, такими как импульсы давления на основе газа и системы впрыска с фотическим впрыском. Один из них заключается в том, что это экономически эффективный метод, который позволяет осуществлять функциональный контроль над доставкой лекарств, что ограничивает повреждение тканей, вызванное чрезмерным введением лекарств. Еще одним преимуществом этой системы является возможность комбинированной записи, которая позволяет эффективно контролировать временную составляющую нейронной деактивации.

Чтобы подготовить записывающие инъекционные пипетки, сначала потяните семисантиметровый капилляр с внешним диаметром в один миллиметр для вертикальной модели полицейского. Семерка 20 или аналогичная единица. Установите нагреватель на 18, а соленоид на один, надев перчатки, вручную сломайте наконечник, чтобы сделать отверстие, и проверьте под микроскопом, что внутренний диаметр составляет от 30 до 40 микрометров.

Измерьте это с помощью линейки видоискателя. Он будет производить относительно низкое сопротивление от 0,3 до 0,6 мегаом. Затем с неконического конца вставьте в пипетку серебряную проволоку длиной около семи сантиметров и оставьте один-два сантиметра свисающим из пипетки.

Согните эту лишнюю проволоку ортогонально капилляру. Далее возьмите иглу для подкожных инъекций 30 калибра и нанесите на вал гибкий пластичный клей. Затем медленно введите иглу в пипетку.

Насколько это возможно. Добавьте еще клея, чтобы создать уплотнение в месте соединения между пипеткой и иглой. Кончиком пипетки вверх дайте сборке высохнуть в течение примерно 12 часов.

После обезболивания и помещения крысы в стереотаксическую рамку, нанесите офтальмологическую мазь, побрейте ее голову начисто. После применения местного анестетика и подтверждения хирургической плоскости анестезии приступайте к надрезу волосистой части головы по срединной полосе с использованием лезвия скальпеля номер 10. При этом обнажаются коронарные и сагиттальные швы.

Затем с помощью хирургического шпателя определите анатомические референсы лямбда и bgma. Отрегулируйте положение головы так, чтобы эти ориентиры находились на одном уровне в одной горизонтальной плоскости. Затем ноль, тонкая жесткая указка, похожая на стеклянную трубку на bgma.

Затем отрегулируйте положение трубки в интересующем вас месте, используя координаты из bgma. С помощью шарпи нарисуйте квадрат вокруг целевой области для трепанации черепа. Теперь с помощью хирургической стерилизованной бормашины медленно удалите кость по отметинам.

Начните с использования как можно меньшего давления и продолжайте двигать сверло, чтобы избежать повреждения тканей головки из-за трения, когда кость стала тонкой, осторожно удалите квадратный участок пинцетом. Дора MA не нужно удалять, так как инъекция проникнет в нее в дальнейшем. Орошайте открытую кору головного мозга спинномозговой жидкостью.

Приготовьте инъекцию путем предварительного наполнения минерального маслом шприца объемом от пяти до 10 микролитров. Далее приготовьте интересующее лекарственное средство с красителем в физиологическом растворе. Здесь 0,5% чикагской небесной голубизны смешивается с 300 микромолярной гамк.

Теперь наполните пипетку для инъекций, сначала загрузив приготовленным раствором шприц объемом в один миллилитр, а затем с помощью шприца загрузите пипетку. При извлечении шприца поддерживайте легкое давление на поршень, чтобы вакуум не удалял раствор с пути инъекции. Проверьте наличие утечки жидкости в возможных местах утечки.

Промокните лишнюю жидкость и еще раз проверьте ее на герметичность. Теперь прикрепите микрошприц с минеральным маслом к инъекционной дорожке. Затем сотрите излишки раствора.

С помощью марли. Проверьте наконечник для инъекции. Через него должна быть возможность пропускать через него небольшие капли раствора, иначе он блокируется или теперь надежно закрепить инжектор в микронасосной системе.

Затем переместите положение инжекционной дороги в целевые координаты и опустите электрод в верхний колус, который может быть идентифицирован путем регистрации визуальных вызванных потенциалов. Пока электрод опущен, приложите небольшое положительное давление, применяя низкую скорость впрыска, чтобы избежать засорения. Прервите инъекцию, когда структура будет достигнута.

После введения инъекции накройте обнаженную кору теплым агаром для предотвращения высыхания. После окончательной установки электрода подождите 30 минут, чтобы обеспечить стабилизацию тканей, окружающих электрод. Затем вводите от 400 до 800 нанолитров раствора со скоростью 40 нанолитров в минуту до активации нейронной активности в верхнем колюсе, электрод должен показать уменьшение спайков во время инъекции ингибирующего раствора.

Визуально вызванные потенциалы были получены в верхнем колусе. После 300-миллисекундной вспышки в контралатеральный глаз после инъекции гамк, спайковая активность в ответ на вспышку подавлялась на 45-60 минут. Во время этой процедуры важно проверить наличие утечек во время загрузки и убедиться, что раствор лекарственного препарата свободно протекает через наконечник для инъекции.

Explore More Videos

Неврология выпуск 101 Внеклеточные записи виртуальные поражения обратимы инактивации ГАМК лидокаин микроинъекции

Related Videos

Одновременное МРТ и электрофизиологии в мозг грызунов

08:22

Одновременное МРТ и электрофизиологии в мозг грызунов

Related Videos

13.6K Views

Одновременное электроэнцефалография, в режиме реального времени измерения концентрации лактата и Optogenetic Манипуляция активности нейронов в коры головного мозга грызунов

10:45

Одновременное электроэнцефалография, в режиме реального времени измерения концентрации лактата и Optogenetic Манипуляция активности нейронов в коры головного мозга грызунов

Related Videos

20.5K Views

Микроинъекция препарата с электрофизиологической регистрацией в мозг крысы

03:28

Микроинъекция препарата с электрофизиологической регистрацией в мозг крысы

Related Videos

487 Views

Электрофизиологические записи активности мозга in vivo из нескольких участков у крыс

04:42

Электрофизиологические записи активности мозга in vivo из нескольких участков у крыс

Related Videos

604 Views

Метод микродисковой матрицы для электрофизиологической записи из нескольких областей мозга

04:49

Метод микродисковой матрицы для электрофизиологической записи из нескольких областей мозга

Related Videos

418 Views

Одновременная электроэнцефалографическая регистрация и регистрация потенциала локального поля у крысы под наркозом

04:17

Одновременная электроэнцефалографическая регистрация и регистрация потенциала локального поля у крысы под наркозом

Related Videos

336 Views

Ингибирование нейронной активности и ее выявление с помощью электрофизиологии у крысы

06:36

Ингибирование нейронной активности и ее выявление с помощью электрофизиологии у крысы

Related Videos

191 Views

Внеклеточной Запись нейрональной активности в сочетании с микроионофоретическое Применение нейроактивный веществ у бодрствующих мышей

11:19

Внеклеточной Запись нейрональной активности в сочетании с микроионофоретическое Применение нейроактивный веществ у бодрствующих мышей

Related Videos

10.3K Views

Параллельная запись совместно локализованных электроэнцефалография и потенциал местных полевых грызунов

08:31

Параллельная запись совместно локализованных электроэнцефалография и потенциал местных полевых грызунов

Related Videos

12.6K Views

Запись и модуляция активности эпилептиформный ломтиками грызунов мозга в сочетании с микроэлектродные массивы

10:24

Запись и модуляция активности эпилептиформный ломтиками грызунов мозга в сочетании с микроэлектродные массивы

Related Videos

15K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code