-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Мышиные Hind Лимб длинных трубчатых костей Вскрытие и костного мозга Изоляция
Мышиные Hind Лимб длинных трубчатых костей Вскрытие и костного мозга Изоляция
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
Murine Hind Limb Long Bone Dissection and Bone Marrow Isolation

Мышиные Hind Лимб длинных трубчатых костей Вскрытие и костного мозга Изоляция

Full Text
88,960 Views
07:17 min
April 14, 2016

DOI: 10.3791/53936-v

Sarah R. Amend1, Kenneth C. Valkenburg1, Kenneth J. Pienta1

1Department of Urology,Johns Hopkins University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for the dissection of hind limb long bones from laboratory mice and a rapid technique for bone marrow isolation using centrifugation. The method aims to facilitate downstream analyses related to bone marrow biology and immunology.

Key Study Components

Area of Science

  • Bone marrow biology
  • Cancer metastasis
  • Immunology

Background

  • The dissection of long bones is crucial for studying bone-related diseases.
  • Bone marrow isolation is essential for various cellular analyses.
  • Standardized techniques improve reproducibility in research.
  • Quick procedures save time in experimental workflows.

Purpose of Study

  • To provide a systematic approach for long bone dissection.
  • To enable efficient bone marrow collection for analysis.
  • To maintain the integrity of bone and marrow for downstream applications.

Methods Used

  • Positioning the mouse and preparing for dissection.
  • Step-by-step dissection of femur and tibia.
  • Isolation of bone marrow using centrifugation.
  • Visual verification of marrow extraction.

Main Results

  • The technique can be completed in about seven minutes.
  • Bone marrow integrity is preserved for histological analysis.
  • Suitable for various downstream applications, including cell culture.
  • Standardized parameters allow for accurate quantitation in research.

Conclusions

  • This rapid dissection and isolation technique is effective and efficient.
  • It supports further studies on bone marrow cell populations.
  • Mastery of the technique enhances research capabilities in related fields.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this dissection technique?
The main advantage is its speed and standardization, allowing for quick and reproducible results.
How long does the procedure take?
The entire procedure can be completed in about seven minutes when performed correctly.
What applications can the isolated bone marrow be used for?
The isolated bone marrow is suitable for various analyses, including histomorphometry and cell culture.
Is the procedure sterile?
Yes, the bone marrow isolation procedure is designed to be fairly sterile.
What should be done if the tibial epiphysis is intact?
If the tibial epiphysis is intact, scissors should be guided up the tibia shaft to remove the condyles and epiphysis.
Can this technique be used for other types of analyses?
Yes, after isolation, other methods like FACS can be performed to study bone marrow cell populations.

Здесь мы представляем протокол рассечения длинных костей задних конечностей (бедренных и большеберцовых костей) лабораторной мыши. Далее мы описываем быструю технику выделения костного мозга из этих костей, в которой используется центрифугирование для удаления костного мозга из пространства костного мозга.

Общей целью этой процедуры рассечения длинных костей и выделения костного мозга является быстрое и систематическое удаление длинных костей и сбор костного мозга для дальнейшего анализа. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы, связанные с биологией костного мозга, метастазированием рака и иммунологией. Основным преимуществом данной методики является то, что процесс рассечения проходит быстро и стандартизировано, процедура выделения костного мозга достаточно стерильна, начинают с позиционирования мыши в положении лежа на спине.

Затем приколите все четыре подушечки лап ниже голеностопного сустава и опрыскайте мышь 70% этанолом, тщательно обливая ноги. Затем сделайте небольшой разрез справа от средней линии в нижней части живота чуть выше бедра и продлите разрез вниз по ноге и за голеностопный сустав. Оттяните кожу.

Затем разрежьте четырехглавую мышцу, прикрепленную к проксимальному концу бедренной кости, чтобы обнажить переднюю сторону бедренной кости, и вырвите мышцу из ноги штифтом под углом 45 градусов от доски. Приложив ножницы к задней стороне бедренной кости, отрежьте подколенные сухожилия от коленного сустава. Затем оттяните назад мышцы кожи и подколенного сухожилия, прикрепленные к проксимальному концу бедренной кости, чтобы обнажить заднюю сторону кости, и выведите мышцы подколенного сухожилия из ноги, расположив штифт под углом 45 градусов.

С помощью щипцов возьмитесь за дистальный конец бедренной кости чуть выше коленного сустава. Затем направьте лезвия ножниц по обе стороны бедренного стержня к тазобедренному суставу. Дойдя до головки бедренной кости, поверните ножницы, перемещая верхнее лезвие прямо над головкой бедренной кости, чтобы вывихнуть бедренную кость.

Теперь возьмитесь щипцами за верхнюю часть бедренного стержня и отрежьте мягкие ткани от головки бедренной кости, чтобы освободить бедренную кость от вертлужной впадины. Затем потяните всю кость ноги, включая бедренную кость, колено и большеберцовую кость, вверх и в сторону от тела, и осторожно отрежьте соединительную ткань и мышцы, прикрепляющие ногу к коже. Когда вся соединительная ткань будет удалена, перенатяните голеностопный сустав и поверните ножницы, как только что было показано, чтобы вывих большеберцовой кости.

Взявшись за дистальный конец большеберцовой кости и стараясь не разорвать сухожилия, потяните большеберцовую кость вверх и в сторону от тела и штифтовой доски. Затем удалите любую оставшуюся соединительную ткань, прикрепленную к длинной кости в колене, и любую дополнительную мышцу или соединительную ткань, прикрепленную к бедренной кости и большеберцовой кости. Чтобы подготовить длинную кость к выделению костного мозга, возьмитесь за бедренную кость так, чтобы коленная чашечка была обращена в сторону, а головка бедренной кости — вниз.

Перенапрягите коленный сустав и поверните ножницы, чтобы вывихнуть большеберцовую кость от бедренной кости. Затем удалите всю соединительную ткань, удерживающую бедренную и большеберцовую кости вместе. Затем возьмитесь за бедренную кость передней стороной наружу и головкой бедренной кости вниз и направьте ножницы вверх по бедренному стержню к мыщелкам.

Аккуратно вращайте ножницами вперед и назад, чтобы удалить мыщелки, надколенник и эпифиз, обнажив метафиз. Затем с помощью щипцов, ножниц и салфеток Kimwipes удалите любые дополнительные мышцы или соединительную ткань, прикрепленную к бедренной кости. Затем возьмитесь за большеберцовую кость передней стороной наружу и концом лодыжки вниз.

Если эпифиз большеберцовой кости не поврежден, проведите ножницы вверх по стволу большеберцовой кости к мыщелкам и осторожно вращайте ножницы вперед и назад, чтобы удалить мыщелки и эпифиз, обнажив метафиз большеберцовой кости. Затем удалите все дополнительные мышцы или соединительную ткань, прикрепленные к большеберцовой кости, как показано только что. Чтобы собрать костный мозг, сначала протолкните иглу 18 калибра через дно микроцентрифужной пробирки объемом 0,5 миллилитров.

Затем поместите длинные косточки в трубку коленным концом вниз и закройте крышку. Поместите микроцентрифужную пробирку объемом 0,5 мл в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 мл и центрифугируйте пробирки при давлении больше или равном 10 000 g в микроцентрифуге в течение 15 секунд. Убедитесь, что костный мозг был выведен из костей при визуальном осмотре.

Кости должны казаться белыми, а в большой трубке должна быть видна крупная гранула. Затем выбросьте кости в микроцентрифужную пробирку объемом 0,5 миллилитра и поддержите костный мозг в соответствующем растворе для желаемого последующего анализа. Этот метод быстрой диссекции подходит для ряда последующих анализов, включая гистоморфометрию и гистологию.

Действительно, как показала эта репрезентативная гистоморфометрическая 3D-реконструкция с помощью микрокомпьютерной томографии, как губчатая кость, так и кортикальная оболочка сохраняются, что позволяет точно количественно оценить стандартизированные структурные параметры для гистоморфометрии кости. В этом репрезентативном гистологическом срезе формальной, неподвижной и декальцинированной голени, окрашенной H и E, можно наблюдать за поддержанием целостности как кальцинированной кости, так и клеточного костного мозга для гистологического анализа. Кроме того, костный мозг, выделенный с помощью этой процедуры, подходит для многих последующих применений, включая первичную клеточную культуру остеокластов или остеобластов.

После освоения техника может быть завершена примерно за семь минут, от длительного рассечения кости до изоляции костного мозга, если она выполнена правильно. Пытаясь провести процедуру, важно помнить о положении мыши для облегчения вскрытия. После этой процедуры могут быть выполнены другие методы, такие как FACS или другие процессы с отдельными клетками, чтобы ответить на дополнительные вопросы, касающиеся изменений в популяциях клеток костного мозга.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как быстро вскрыть длинные кости мышей и изолировать костный мозг методом центрифугирования.

Explore More Videos

Immunology выпуск 110 кость костный мозг мышь рассечение кости биологии биологии рака иммунологии

Related Videos

Забор костного мозга из задних конечностей мышей

03:38

Забор костного мозга из задних конечностей мышей

Related Videos

13.1K Views

Выделение и культивирование стромальных клеток костного мозга из большеберцовой кости мыши

04:00

Выделение и культивирование стромальных клеток костного мозга из большеберцовой кости мыши

Related Videos

2.1K Views

Костном мозге бедра Стремление в живых мышей

07:10

Костном мозге бедра Стремление в живых мышей

Related Videos

39.5K Views

Остеокластов Вывод из костного мозга мыши

06:17

Остеокластов Вывод из костного мозга мыши

Related Videos

25.1K Views

Выделение и внутривенное введение мышиных костного мозга моноцитов

09:21

Выделение и внутривенное введение мышиных костного мозга моноцитов

Related Videos

24.9K Views

Изоляция, культура и дифференцировки клеток стромы костного мозга и остеокластов прародителей от мышей

08:07

Изоляция, культура и дифференцировки клеток стромы костного мозга и остеокластов прародителей от мышей

Related Videos

32.9K Views

Поколение большого числа миелоидного прародителями и дендритных клеток прекурсоров из мышиных костного мозга с помощью Роман ячейку Сортировка стратегия

09:05

Поколение большого числа миелоидного прародителями и дендритных клеток прекурсоров из мышиных костного мозга с помощью Роман ячейку Сортировка стратегия

Related Videos

9.7K Views

Влияние антитела анти c-fms на формирование остеокластов и распространение остеокластов прекурсоров в пробирке

07:51

Влияние антитела анти c-fms на формирование остеокластов и распространение остеокластов прекурсоров в пробирке

Related Videos

6.4K Views

Выделение прародителей мегакариоцитов мыши

10:30

Выделение прародителей мегакариоцитов мыши

Related Videos

7.6K Views

Ортотопическая задних конечностей трансплантации у крыс

14:03

Ортотопическая задних конечностей трансплантации у крыс

Related Videos

12.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code