-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Измерение прогрессирующее неврологическое инвалидности в мышиной модели множественного склероза
Измерение прогрессирующее неврологическое инвалидности в мышиной модели множественного склероза
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Measuring Progressive Neurological Disability in a Mouse Model of Multiple Sclerosis

Измерение прогрессирующее неврологическое инвалидности в мышиной модели множественного склероза

Full Text
11,564 Views
08:11 min
November 14, 2016

DOI: 10.3791/54616-v

Francesca Gilli1, Darlene B. Royce1, Andrew R. Pachner1

1Department of Neurology,Geisel School of Medicine at Dartmouth

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

В этой статье представлен оптимизированный протокол тестирования для теста производительности Rotarod, используемого для измерения прогрессирующей неврологической инвалидности у мышей, инфицированных TMEV.

Общей целью этой процедуры является оценка прогрессирующих неврологических нарушений у мышей с хроническими демиелинизирующими заболеваниями. Для этого мы предлагаем рекомендации по параметрам тестирования, подходящим для изучения долгосрочной неврологической инвалидности в модели прогрессирующего рассеянного склероза на основе вируса Тейлерса с использованием теста Ротарода. Эта процедура обеспечивает исходный уровень, на основе которого можно оценить релевантность мышиной модели для прогрессирующей демиелинизации и ее полезность для тестирования методов лечения, направленных на лечение прогрессирующих неврологических заболеваний, таких как рассеянный склероз.

Преимущество этого оптимизированного теста по сравнению с традиционной визуальной системой оценки заключается в том, что он генерирует объективную переменную для количественной оценки долгосрочного влияния терапии и экспериментальных процедур на двигательные функции. Демонстрировать эту процедуру будет Дарлин Ройс, техник из лаборатории нейроиммунологии в Дартмуте. Чтобы оценить исходную координацию равновесия и двигательный контроль, начните протокол адаптации за пять дней до заражения TMEV, сначала позволив мышам акклиматизироваться в комнате для тестирования в течение как минимум 30 минут.

Пока мыши акклиматизируются, установите Rotarod с параметрами обучения DPI минус пять. Затем возьмите мышь за хвост и положите ее на стержень лицом в сторону от оператора. Если мышь падает или прыгает, поместите ее обратно на свою полосу на Ротароде, пока все мыши не встанут на свои места.

После загрузки всех четырех мышей нажмите кнопку ввода, чтобы начать эксперимент. Убедитесь, что таймеры запускаются автоматически, и наблюдайте за оборотами в минуту на дисплее для каждой полосы. Затем, по мере падения каждого животного с прута, записывайте скорость вращения стержня в момент падения, а также продолжительность времени, в течение которого животное оставалось на стержне.

После того, как все мыши упадут, используйте салфетку, чтобы удалить любые фекальные боли и мочу из стержня, так как присутствие мочи и фекального материала может повлиять на способность мышей правильно держать стержень. После трехминутного отдыха дайте мышам вторую, а затем третью попытку, в которой максимальное время за одну попытку составляет 240 секунд. Проводите в общей сложности три испытания в течение каждого дня тестирования.

Наконец, верните мышей в их домашнюю клетку. В четвертый день, третий день, второй и отрицательный один PI установите Ротарод с соответствующими параметрами протокола обучения и повторите эксперимент Ротарод. Начните с перемещения клеток с самками мышей SJL в возрасте от четырех до шести недель из стойки в удобное рабочее место.

Используйте ушные пробивки, чтобы пометить мышей, чтобы можно было индивидуально оценить клиническое и гистологическое заболевание. Затем наберите 30 микролитров заражающего материала TMEV в PBS в иглу инсулинового шприца 29 калибра. Подготовьте газовый аппарат для анестезии, обеспечив наличие достаточного количества кислорода и изофлурана в течение всей процедуры.

Поместите животное в индукционную камеру и закройте крышку. Через несколько минут извлеките животное из камеры, и испытайте мышь, зажав подушечку лапы, чтобы обеспечить достаточную анестезию. Затем очистите место инъекции 70% изопропиловым спиртом и введите 30 микролитров заражающего ТМЭВ вещества в правое полушарие головного мозга путем произвольной инъекции.

Наконец, верните мышь в клетку, когда она станет полностью бдительной и подвижной. На седьмой день после заражения предварительно установите Ротарод с соответствующими экспериментальными параметрами и повторите полное тренировочное упражнение Ротарод с соответствующими параметрами экспериментального протокола. После третьего испытания каждый день взвешивайте каждую мышь и записывайте массу тела в листе данных.

Тестируйте мышей два раза в неделю в течение следующих шести недель таким же образом. Через шесть недель тестируйте мышей один раз в неделю по одному и тому же экспериментальному протоколу в среднем в течение 150 экспериментальных дней. Затем проанализируйте исходные данные и выразите их в виде неврологического функционального индекса, или NFI.

Чтобы определить индивидуальное значение NFI, рассчитайте базовый порог производительности каждой мыши как среднее значение всех времен работы от 15 до 45 дней после заражения. Чтобы можно было оценить двигательную активность в результате прогрессирующей демиелинизации и исключить любые дефициты, вызванные ранним энцефалитом. Затем рассчитайте значение NFI как среднее арифметическое трех последних средних значений времени работы, деленное на базовый порог производительности мыши.

Наконец, рассчитайте скорректированный NFI путем деления значения NFI на среднее значение NFI, полученное фиктивной группой в этот конкретный день. На этом рисунке показано, что у инфицированных TMEV мышей наблюдалось значительно повышенное неврологическое дефицит с течением времени по сравнению с контрольными мышами. Хроническая инфекция двумя разными штаммами TMEV негативно повлияла на время работы мышей.

Обе группы мышей, инфицированных TMEV, имели значительно более низкие значения NFI, чем у фиктивных мышей. Кроме того, не было никакой разницы при сравнении прогрессирования инвалидности у мышей, инфицированных штаммом BeAn, и у мышей, инфицированных штаммом DA во все моменты времени. После этой процедуры можно использовать традиционные методы визуальной оценки, такие как тест на выпрямляющий рефлекс, чтобы быстро оценить общее состояние здоровья мышей.

После своего развития этот метод проложил путь исследователям в области рассеянного склероза и нейродегенеративных заболеваний, чтобы проверить эффективность методов лечения и других вмешательств в отсрочке прогрессирующей инвалидности. После просмотра этого видео вы должны иметь хорошее представление о том, как оценить долгосрочную прогрессирующую инвалидность у мышей. Эта процедура полезна не только для выявления прогрессирующей неврологической инвалидности в модели вируса Тейлера, но также полезна для выявления нарушений в других мышиных моделях нейродегенеративных заболеваний.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neuroscience выпуск 117 прогрессирование инвалидности рассеянный склероз модель вируса Theiler в демиелинизирующие заболевания Rotarod неврологический индекс

Related Videos

Измерение моторной координации у мышей

10:07

Измерение моторной координации у мышей

Related Videos

102.2K Views

Клинические испытания и удаления спинного мозга у мышей на боковой амиотрофический склероз (ALS)

12:35

Клинические испытания и удаления спинного мозга у мышей на боковой амиотрофический склероз (ALS)

Related Videos

28.7K Views

Рассеянный склероз характеристик Испытания (MSPT): Ipad-инструмент инвалидности Оценка

11:35

Рассеянный склероз характеристик Испытания (MSPT): Ipad-инструмент инвалидности Оценка

Related Videos

58.8K Views

Быстрый Фенотипическая Неврологические система подсчета очков для оценки прогрессирования заболевания в SOD1-G93A мышиной модели СЛА

06:49

Быстрый Фенотипическая Неврологические система подсчета очков для оценки прогрессирования заболевания в SOD1-G93A мышиной модели СЛА

Related Videos

20.9K Views

Биолюминесценции и ближней инфракрасной области визуализации неврита зрительного нерва и мозга Воспаление в EAE модели рассеянного склероза у мышей

08:05

Биолюминесценции и ближней инфракрасной области визуализации неврита зрительного нерва и мозга Воспаление в EAE модели рассеянного склероза у мышей

Related Videos

9.7K Views

Сагиттальная плоскость кинематической походка анализа мышей C57BL/6, подвергается MOG35-55 индуцированной Экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит

13:02

Сагиттальная плоскость кинематической походка анализа мышей C57BL/6, подвергается MOG35-55 индуцированной Экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит

Related Videos

9.2K Views

В естественных условиях Электрофизиологические измерения потенциал действия соединения мышц от передних конечностей в моделях мыши дегенерации двигательного нейрона

06:35

В естественных условиях Электрофизиологические измерения потенциал действия соединения мышц от передних конечностей в моделях мыши дегенерации двигательного нейрона

Related Videos

20.6K Views

Использование MouseWalker для количественной оценки локомоторной дисфункции в мышиной модели травмы спинного мозга

07:28

Использование MouseWalker для количественной оценки локомоторной дисфункции в мышиной модели травмы спинного мозга

Related Videos

4.2K Views

Оценка воспаления, демиелинизации и повреждения аксонов центральной нервной системы при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите

08:17

Оценка воспаления, демиелинизации и повреждения аксонов центральной нервной системы при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите

Related Videos

5.6K Views

Моделирование рассеянного склероза у лиц обоих полов: экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит, индуцированный MOG35-55

05:44

Моделирование рассеянного склероза у лиц обоих полов: экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит, индуцированный MOG35-55

Related Videos

2.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code