-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
ODELAY: крупномасштабный метод многопараметрического количественного определения роста дрожжей
ODELAY: крупномасштабный метод многопараметрического количественного определения роста дрожжей
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
ODELAY: A Large-scale Method for Multi-parameter Quantification of Yeast Growth

ODELAY: крупномасштабный метод многопараметрического количественного определения роста дрожжей

Full Text
8,749 Views
11:19 min
July 3, 2017

DOI: 10.3791/55879-v

Thurston Herricks1, Fred D. Mast1,2, Song Li1, John D. Aitchison1,2

1Institute for Systems Biology, 2Center for Infectious Disease Research

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

The ODELAY method allows for the quantification of growth phenotypes in individual yeast cells as they develop into colonies on solid media through time-lapse microscopy. This technique facilitates the observation and measurement of population heterogeneity among genetically identical cells.

Key Study Components

Area of Science

  • Microbiology
  • Genetics
  • Systems Biology

Background

  • Population heterogeneity can significantly affect growth outcomes in microbial colonies.
  • Understanding growth phenotypes is crucial for insights into genetic and environmental influences.
  • Time-lapse microscopy provides a dynamic view of cell growth and interactions.
  • ODELAY offers a high-throughput approach to studying colony-forming microorganisms.

Purpose of Study

  • To measure and quantify growth phenotypes of individual yeast cells.
  • To explore the effects of genetic perturbations on cell growth.
  • To investigate drug interactions and their impact on microbial growth.

Methods Used

  • Preparation of agar molds for yeast culture.
  • Time-lapse microscopy for observing cell growth.
  • Automated dilution protocols for standardizing cell concentrations.
  • Use of liquid handling robots for high-throughput sample processing.

Main Results

  • Successful assembly and use of agar molds for yeast growth.
  • Quantification of growth phenotypes revealed significant population heterogeneity.
  • Demonstrated the ability to observe genetic and drug interaction effects on growth.
  • High-throughput methodology increased efficiency in data collection.

Conclusions

  • ODELAY is an effective method for studying yeast growth phenotypes.
  • The technique enhances understanding of microbial population dynamics.
  • Future applications may extend to other colony-forming microorganisms.

Frequently Asked Questions

What is ODELAY?
ODELAY is a method for quantifying growth phenotypes of individual yeast cells using time-lapse microscopy.
How does ODELAY improve research in microbiology?
It allows for direct observation and quantification of population heterogeneity among yeast cells.
What are the main advantages of using time-lapse microscopy?
Time-lapse microscopy provides dynamic insights into cell growth and interactions over time.
Can ODELAY be applied to other microorganisms?
Yes, it can potentially be adapted for use with other colony-forming microorganisms.
What role do genetic perturbations play in this study?
Genetic perturbations are analyzed to understand their effects on growth phenotypes in yeast colonies.
How is high-throughput achieved in this method?
High-throughput is achieved through automated dilution protocols and liquid handling robots.

Мы представляем метод количественного определения фенотипов роста отдельных дрожжевых клеток при их превращении в колонии на твердой среде с использованием временной микроскопии, называемой одноклеточной удвоенной оценкой живых массивов дрожжей (ODELAY). Неоднородность гетерогенности генетически идентичных клеток, растущих в колонии, может быть непосредственно обнаружена и количественно определена.

Общая цель ODELAY заключается в измерении фенотипов роста отдельных клеток, растущих в колонии с высокой пропускной способностью. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы микробиологии, генетики и системной биологии, такие как влияние генетических возмущений и лекарственных взаимодействий на фенотипы роста любого колониеобразующего микроорганизма. Основное преимущество ODELAY заключается в том, что он позволяет исследователю непосредственно наблюдать и количественно оценивать популяционную гетерогенность среди большого числа особей.

Перед сборкой формы для агара очистите акриловые формы с 70% этанолом и высушите их с помощью принудительного воздуха. Есть три нижние части и две вертикальные части. Чтобы начать сборку формы для агара, возьмите три нижние детали и соберите их так, чтобы две одинаковые части слипнулись с третьей частью.

Используйте два небольших зажима для связывания, чтобы зажать базовые части с каждой стороны. Поместите стойки в форму, убедившись, что лазерная кривая расположена правильно. Поместите очищенное и высушенное предметное стекло на форму и удерживайте его на месте, поместив второе предметное стекло с другой стороны.

Зажмите узел более крупным связующим зажимом. Зажмите оба предметных стекла более крупными связующими зажимами, убедившись, что каждый верхний зажим переплета соприкасается со стеклянным предметным стеклом, перекрывающим акрил. Перед заполнением собранной формы расплавленным агаром убедитесь, что края запечатаны пипетированием около 70 микролитров расплавленного агарового материала вдоль внутренней стороны формы.

Заполните форму, не задерживая пузырьки воздуха внутри, медленно пипетируя расплавленный агар по краю формы. После того, как форма будет заполнена, дайте ей остыть при температуре окружающей среды около 23 градусов Цельсия в течение 40-60 минут. Следующим этапом является отделение пресс-формы.

Начните со снятия нижнего зажима для связующего. Затем снимите нижнюю часть формы, которая состоит из трех прослоенных частей. Удерживайте слайды, сжимая их, а затем осторожно снимите зажимы для переплета.

Поместите форму на край столешницы так, чтобы сторона формы с синей точкой была обращена вверх. Поместите оба больших пальца под акрил, а первые пальцы сверху по направлению к внутреннему краю формы и медленно и осторожно надавите большими пальцами вверх на форму, как бы поворачивая прокладку формы вокруг ее нижнего края. Применяйте постоянное, но медленно увеличивающееся давление.

Разрыв и пузырь воздуха должны появиться вдоль линии, где верхнее стекло закрывает распорку формы. Увидев начальную линию прорыва, продолжайте нажимать вверх обоими большими пальцами и прилагайте постоянное давление. Агар должен начать отламываться от стекла.

Продолжайте поворачивать форму вверх. Когда стекло поступит совершенно свободно, возьмите его и полностью выньте из формы. Затем удалите другую формовочную деталь аналогичным движением, чтобы освободить кусок, не перемещая агар.

Поместите предметные стекла в стерильную коробку для чаевых с небольшим количеством стерильной воды высокой чистоты на дне. Закройте коробку и храните при температуре 4 градуса Цельсия в течение ночи для использования на следующий день. Начните эту процедуру с подготовки штаммов в 96-луночном планшете, как описано в текстовом протоколе.

Использование планшетного ридера для измерения оптической плотности на 600 нанометрах каждой культуры. Затем используйте автоматический протокол разведения для разбавления культур в планшете до оптической плотности на 600 нанометров примерно 0,1. После того, как программа разбавления настроена, загрузите пластины, трубки и наконечники на деку робота для работы с жидкостями, как указано на схеме деки.

Нажмите кнопку воспроизведения, чтобы запустить программу разбавления. Выберите правильное количество насадок по 50 микролитров и правильное количество насадок по 300 микролитров. Когда разбавление будет завершено, снимите пластину для разбавления с робота и культивируйте пластину при температуре 30 градусов Цельсия, поддерживая влажность, чтобы предотвратить высыхание пластины в течение пяти-шести часов.

Примерно за один-два часа до полной инкубации культуральной тарелки включают инкубационные камеры для микроскопа и позволяют им уравновеситься при температуре 30 градусов Цельсия. Разбавьте культуру во второй раз до оптической плотности на 600 нанометрах от 0,01 до 0,02, используя тот же протокол автоматического разбавления. Накройте пластину для разбавления металлическим уплотнением морозильной камеры и проведите ультразвуковую обработку на ледяной бане в течение 30 секунд, плавая пластиной в ледяной воде.

Промаркируйте четыре пластины с плоским дном 96 лунок как одну, две, три и четыре. Перенесите по 150 микролитров каждой ультразвуковой культуры с планшета для разбавления на планшеты с плоским дном, следуя этой схеме. Скважины от A1 до D6 в скважины C4 до F9 первой пластины.

Скважины от A7 до D12 в скважины C4 до F9 второй пластины. Скважины от E1 до H6 в скважины C4 - F9 третьей пластины. И скважины от E7 до H12 в скважины C4 до F9 четвертой пластины.

Чтобы начать эту процедуру, правильно поместите агарозное стекло в камеру затвора. Затем положите на стол 96 пластин с плоским дном в порядке их квадранта. Листы первая, вторая, третья и четвертая слева направо.

Разложите кончики в четырех пустых коробках для чаевых так, чтобы внутренние 24 лунки каждой коробки для чаевых были заняты кончиками. В пятую коробку поместите наконечник в положение C10 и наконечники с отрезанным концом в положения A1, A12, H1 и H12. Эти четыре отрезанных наконечника обеспечат устойчивость зажима пластины наконечника.

Поместите первый пробойник в начальную точку программы обнаружения роботизированного управления, чтобы пробить отверстие в агарозе, которое позже будет использовано для выравнивания исходной координаты. Поместите первую пластину на робота для работы с жидкостями, чтобы определить первый квадрант. Снимите крышку и продолжите программу удаления кровянистых выделений.

Убедитесь, что все пятна присутствуют. Высыпьте использованные наконечники в контейнер биологической опасности И поместите новые наконечники на робота. Подождите около 30 секунд, пока пятна высохнут примерно до одного миллиметра в диаметре, а затем продолжайте программу.

Поменяйте Пластину Один на Пластину Два и продолжайте программу обнаружения. Когда все четыре квадранта будут обнаружены и пятна высохнут, установите на место крышку камеры скольжения и переверните прибор. Поместите предметное стекло на верхнюю сторону камеры предметного стекла.

Сначала загрузите в микроскоп слайдовую камеру. Покадровая микроскопия выполняется путем запуска специально разработанного сценария. Нажмите на кнопку спуска затвора, чтобы открыть затвор проходящего света, а затем на кнопку фокусировки, чтобы запустить высокую скорость камеры.

Нажмите на Go Origin и переместите сцену, чтобы найти отметку начала координат, которая была пробита на агаре, затем переместитесь немного вправо, чтобы сосредоточиться на ячейках, обнаруженных в области E7. Вернитесь к исходному пуансону и центрируйте его в поле зрения. Установите начало координат в это значение, нажав кнопку "Set". Переместитесь в положение H18 и сфокусируйтесь с помощью ближайшего к этому месту винта с шестигранной головкой.

Затем перейдите в положение L7 и сфокусируйтесь с помощью ближайшего к этому месту винта с шестигранной головкой. Наконец, перейдите в положение E7 и сфокусируйтесь с помощью ближайшего к этому месту винта с шестигранной головкой. Проверьте фокусировку в центре и по краям в точках E12, H12 и L12 отрегулируйте диапазон автофокусировки, если значения z, указанные значением z, больше плюса или минуса диапазона автофокусировки.

Нажмите кнопку «Сброс», а затем нажмите ODELAY. Выберите каталог для сохранения данных. Микроскоп будет собирать данные в течение 48 часов или до тех пор, пока программа не будет закрыта.

Эти репрезентативные покадровые изображения показывают рост дрожжевых клеток на твердой среде через ноль часов, три часа, шесть часов и девять часов после появления кровянистых выделений. Здесь показан репрезентативный набор данных, сравнивающий два штамма дрожжей после обработки изображений с интервальной съемкой. Относительно равномерное время удвоения отражает хорошо подготовленный агарозный слайд, однако время задержки значительно варьируется из-за неоптимальных настроек автофокуса.

Здесь показан более согласованный набор данных, в котором все времена удвоения хорошо перекрываются, а времена задержки кажутся постоянными. После освоения настройки ODELAY можно выполнить за три-четыре часа, если она выполнена правильно. Наиболее важными шагами для повторяемых измерений ODELAY являются последовательная подготовка среды и предотвращение механической деформации среды при разделении стекол.

ODELAY является очень чувствительным анализом. Например, он может наблюдать дефекты роста чувствительных к температуре штаммов дрожжей при комнатной температуре, тогда как обычно используемые точечные анализы требуют культивирования дрожжей при температуре 37 градусов по Цельсию для выявления дефекта роста. Несмотря на то, что ODELAY был разработан для дрожжей, этот метод применим к любому колониеобразующему организму, включая патогены, для изучения широкого спектра условий окружающей среды и генетических условий для понимания поведения микроорганизмов.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как проводить ODELAY для измерения фенотипов роста одноклеточных микроорганизмов, образующих колонии на твердых средах. Не забывайте, что работа с микроорганизмами может быть опасной, и всегда следует соблюдать меры предосторожности, такие как ношение средств индивидуальной защиты, подходящих для изучаемых организмов.

Explore More Videos

Cellular Biology Issue 125 Скорость роста время запаздывания пропускная способность оценка пригодности дрожжи анализ фенотипа

Related Videos

Количественные живой клетки флуоресцентной микроскопии Анализ деления дрожжевой

06:52

Количественные живой клетки флуоресцентной микроскопии Анализ деления дрожжевой

Related Videos

20.9K Views

Количественный анализ рабочих процессов Фитнес

11:39

Количественный анализ рабочих процессов Фитнес

Related Videos

15K Views

Приобретение флуоресценции интервальной съемки бутонизации дрожжей и анализ Одноклеточный динамики с использованием ПРОТЕЗОВ

17:01

Приобретение флуоресценции интервальной съемки бутонизации дрожжей и анализ Одноклеточный динамики с использованием ПРОТЕЗОВ

Related Videos

13.4K Views

Временная Количественная оценка МАРК индуцированной экспрессии в единичных дрожжевых клеток

07:59

Временная Количественная оценка МАРК индуцированной экспрессии в единичных дрожжевых клеток

Related Videos

8.9K Views

Репортер основе анализа роста для систематического анализа белка деградации

07:47

Репортер основе анализа роста для систематического анализа белка деградации

Related Videos

11.1K Views

Определение на основе экономического роста и биохимическая Подтверждение генетическим требованиям белка деградации в Saccharomyces Cerevisiae

10:57

Определение на основе экономического роста и биохимическая Подтверждение генетическим требованиям белка деградации в Saccharomyces Cerevisiae

Related Videos

10.2K Views

Применение pHluorin для количественного, Kinetic и высокой пропускной способностью анализа эндоцитоза у почкующихся дрожжей

10:02

Применение pHluorin для количественного, Kinetic и высокой пропускной способностью анализа эндоцитоза у почкующихся дрожжей

Related Videos

11.4K Views

Точный, высокой пропускной способности анализ роста бактерий

09:00

Точный, высокой пропускной способности анализ роста бактерий

Related Videos

25.1K Views

Пивоваренные дрожжи Экспоненциальный рост кинетика в культуре партии для анализа дыхания и ферментативным метаболизма

07:38

Пивоваренные дрожжи Экспоненциальный рост кинетика в культуре партии для анализа дыхания и ферментативным метаболизма

Related Videos

44.3K Views

Высокая пропускная способность Live Imaging микроколоний для измерения неоднородности в росте и экспрессии генов

12:52

Высокая пропускная способность Live Imaging микроколоний для измерения неоднородности в росте и экспрессии генов

Related Videos

5.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code