April 12th, 2018
Здесь мы представляем изысканные протокол эффективно раскрыть биотинилированным декстрана Амин (BDA) маркировки с флуоресцентных окрашивания метода через взаимные нейронные пути. Это подходит для анализа тонкой структуры из BDA маркировки и отличает его от других нервных элементов под конфокальный лазерный сканирующий микроскоп.
Общая цель этого видео — продемонстрировать усовершенствованный протокол применения высокомолекулярного BDA для изучения оптимальной нейронной маркировки в центральной нервной системе. Эта мера может помочь ответить на ключевые вопросы в области нейронных сетей. Визуализируя фреймовую структуру нейронной маркировки через нейронные цепи.
Основным преимуществом данной методики является то, что она дает возможность запустить локальные нейронные цепи и их химические характеристики. Подготовьте один микролитровый микрошприц, оснащенный стеклянной микропипеткой, и испытайте его, набрав жидкий парафин. После обезболивания крысы по утвержденному протоколу подтвердите глубокую анестезию отсутствием реакции на пощипывание хвоста.
Затем выбрейте макушку головы животного электрической бритвой и потрите место операции 10% повидон-йода, а затем 70% этанола. Закрепите крысу в стереотаксическом устройстве, вставив тупые ушные планки в уши и поместив верхние резцы крысы в держатель рта. Нанесите на глаза офтальмологическую мазь.
Используйте стерильные хирургические перчатки и простыни для поддержания стерильных условий. Снова очистите кожу головы в месте операции, используя 70% этанол. Сделав сагиттальный разрез на коже скальпелем, вдоль сагиттального шва, с помощью стерильных аппликаторов с ватным наконечником соскребите мышцу и надкостницу с черепа.
Используя заранее определенные координаты из атласа, определите место проведения трепанации черепа. Выполните трепанацию черепа с помощью сверла с заусенцами и сверлом с круглым наконечником, чтобы просверлить на глубину около одного миллиметра, пока мозговые оболочки не станут видны. Иссекайте твердую мозговую оболочку с помощью микрощипцов, чтобы обнажить кору головного мозга над местом инъекции.
Излейте жидкий парафин из микрошприца, а затем наберите 10% раствор BDA. Установите шприц в аппарат для микроинъекций и подключите микронасос. Под стереомикроскопом манипуляций с аппаратом для микроинъекций.
Введите наполненную стеклянную микропипетку в ВПМ через кортикальную поверхность головного мозга, на глубину до 5,8 миллиметров. Затем с помощью микронасоса впрыскайте под давлением 100 нанолитров 10% BDA в VPM в течение трех минут. Через пять минут медленно извлеките пипетку.
Зашить рану стерильной нитью, затем поместить крысу в теплую зону восстановления, пока она не придет в сознание и полностью не восстановится. После усыпления крысы с помощью ножниц и щипцов откройте грудную полость крысы и получите доступ к сердцу. Введите внутривенный катетер в левый желудочек по направлению к аорте, а затем откройте правое предсердие.
Сначала перфузируйте 0,9% физиологическим раствором при физиологической температуре в течение одной-двух минут, пока кровь, выходящая из сердца, не станет прозрачной. Затем добавьте от 250 до 300 миллилитров 4% параформальдегида в 0,1 молярного фосфатного буфера. После этого зафиксируйте рассеченный мозг в 4%-ном параформальдегиде в течение двух часов при комнатной температуре.
Затем перевести мозг на 30%-ную сахарозу в 0,1 моляра PBS и криопротектор на три дня при четырех градусах Цельсия. Через три дня, когда мозг погрузится в раствор, разделите мозг на три блока в корональном направлении с помощью мозговой матрицы. Центральный блок содержит вентральное заднемедиальное ядро таламуса в первичной соматосенсорной коре.
Смонтируйте центральный блок мозга на стадии замораживания скользящего микротома для разреза в корональной плоскости и разреза на 40 мкм при замораживании. Соберите срезы в шестилуночную чашку, содержащую 0,1 моляра PBS. Начните окрашивание с полоскания участков в 0,1 моляра PBS в течение примерно одной минуты с покачиванием.
Затем переложите срезы в смешанный раствор стрептавидина-AF594 в зеленом флуоресцентном красителе Ниссля AF500/525 в 0,1 моляра PBS, содержащем 0,3% Triton X-100, и инкубируйте в течение двух часов при комнатной температуре. После окрашивания промыть срезы трижды в 0,1 моляре PB с раскачиванием. Закрепите срезы на предметных стеклах микроскопа с помощью стандартных гистохимических методов.
Просушите срезы на воздухе около часа. Нанесите 50% глицерина в дистиллированной воде на грудные срезы и накройте их перед съемкой предметных стекол. На этой репрезентативной микрофотографии красным цветом показано место инъекции BDA вентрального заднемедиального ядра таламуса на фоне зеленого окрашивания по Нисслю.
Здесь показана торесцентная BDA-маркировка, включающая аксоны таламилакортикола в четвертом слое и корковые таламические нейроны в пятом и шестом слоях. Для сравнения, эта микрофотография демонстрирует, что традиционное BDA-мечение стандартной процедурой авидин-биотинпероксидазы обнаруживает схожую схему нейронного мечения с тщательным BDA-мечением. На этом снимке с увеличенным увеличением массивного участка, меченного BDA, антероградно помеченные аксональные арборы показаны красным цветом.
Здесь подробно показано тело нейронных клеток с ретроградной меткой, дендриты и дендритные шипы. После освоения трепанация черепа и стереотаксическая инъекция могут быть выполнены за 20-30 минут, если они выполнены правильно. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как применять высокомолекулярную BDA для оживления нейронных связей и подробной структуры нейронного мечения.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Это видео демонстрирует усовершенствованный протокол применения биотинизированного декстрана амина высокой молекулярной массы (BDA) для изучения метки нейронов в центральной нервной системе. Метод позволяет получить подробное представление о нервных цепях и их химических характеристиках.