RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/56106-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Эта работа представляет собой новый протокол обработки и визуализации для толстого трехмерного анализа поперечного сечения ткани, который позволяет полностью использовать конфокальные методы визуализации. Этот протокол сохраняет антигенность и представляет собой надежную систему для анализа гистологии кожи и, возможно, других типов тканей.
Общая цель этого гистологического и визуализирующего протокола состоит в том, чтобы представить надежную систему, которая сохраняет эпитолическую антигенность и структурную целостность кожи, что позволяет в полной мере использовать методы конфокальной визуализации. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы, требующие изучения природы любого типа клеток в сложной трехмерной архитектуре ткани. Основное преимущество этой методики по сравнению со стандартными гистологическими методиками заключается в том, что она надежна и проста в выполнении.
Кроме того, протокол прекрасно дополняет трехмерный анализ в конфокальной микроскопии. Начните с обрезки кожи, собранной с дорсальной медиальной области мыши, на прямоугольные кусочки. Каждая деталь должна иметь размер, чтобы поместиться на дне криоформы.
Здесь демонстрируется площадь спинной кожи площадью в один квадратный сантиметр, которая укладывается в криомолд размером 22 на 30 на 20 миллиметров. После фиксации прижмите промытую кожу ко дну заполненной OCT формы так, чтобы она лежала заподлицо с дном. Отметьте ориентацию волосяного фолликула на криоформе, так как от этого зависит ориентация криостатического среза.
Перенесите криоблоки на металлическую пластину в морозильную камеру при температуре минус 80 градусов, чтобы предотвратить всплытие и вывих ткани. Следите за процессом замораживания, чтобы сохранить ориентацию кожи на дне криоформы, так как невидимые пузырьки воздуха могут привести к тому, что кожа поднимется к поверхности криоформы. Начните с фиксации замороженного криоблока на стадии криостата с ориентацией волосяного фолликула, как указано на криомолде вдоль плоскости разрезания.
Правильная настройка точной ориентации волосяного фолликула на криостате имеет решающее значение, так как на этом этапе определяется плоскость сечения, в которой образуются срезы кожи с неповрежденными волосяными фолликулами по всей длине. С помощью криостата разрежьте срез размером 100 микрон. Захватите ОКТ вокруг внедренного кусочка кожи с помощью щипцов и перенесите участок из криостата в 100-миллиметровую культуру, наполненную PBS.
При комнатной температуре PBS растворит ОКТ, оставив срезы кожи, с которыми легко работать щипцами. После разрезания с помощью щипцов перенесите плавающие участки кожи в лунку 12-луночного планшета, содержащего 2,5 миллилитров PBS. Начните иммунофлуоресцентное мечение с добавления 500 микролитров PB-буфера в меченые микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 миллилитров.
Осторожно с помощью щипцов перенесите срезы кожи из 12-луночной пластины в пробирки для блокировки. Убедитесь, что все срезы кожи полностью погружены в воду. Поместите микроцентрифужные пробирки на коромысло пилы со скоростью 10 колебаний в минуту или менее в течение одного часа при комнатной температуре.
Промаркируйте отдельные микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 миллилитра для каждого среза кожи и добавьте 500 микролитров PB-буфера, содержащего соответствующее количество первичного антитела. После одного часа блокировки переложите срезы кожи в свежеподготовленные пробирки, содержащие антитела. Инкубируйте ломтики при температуре четыре градуса Цельсия в течение ночи на низкой скорости на коромысле.
На следующий день переложите срезы в 1,5-миллилитровые микроцентрифужные пробирки, содержащие 500 микролитров PBS, и промойте в течение часа при комнатной температуре на качалке. Затем переложите срезы в отдельные микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 миллилитров, содержащие 500 микролитров PB-буфера с соответствующей концентрацией вторичных антител и DAPI. Инкубировать при комнатной температуре в течение одного часа с укачиванием, при желании образцы могут храниться до четырех дней при четырех градусах Цельсия до дальнейшей обработки.
Перед визуализацией перенесите срезы кожи в отдельные микроцентрифужные пробирки, содержащие 500 микролитров PBS, для промывания вторичных антител и DAPI. Затем поместите крышку размером 22 на 50 миллилитров на темный фон под препарирующий микроскоп. Затем используйте пипетку объемом 1 000 микролитров с отрезанным концом наконечника, чтобы добавить одну каплю 100% глицерина на покровное стекло.
Перенесите срез кожицы из микроцентрифужной пробирки на каплю глицерина. Затем, глядя в препарирующий микроскоп, с помощью заостренных щипцов осторожно размотайте скрученные скручивающиеся участки кожи, возвращая им естественную форму, плавая в глицерине. Не стоит форсировать неестественное выпрямление среза, так как это может привести к повреждению тканей.
Как только вся длина секции будет правильно ориентирована и расплющена на покровном листе. Закрепите ткань на обычном предметном стекле микроскопа, этот шаг еще больше расправит срез кожи. Визуализируйте участки кожи, закрепленные глицерином, в течение следующих двух дней.
На этом изображении показан классически полученный криосекция кожи толщиной 10 микрон, помеченная интегрином альфа шесть и интегрином альфа восемь, для визуализации эпидермального компартмента и директорных мышц пили соответственно. Это 3D-сечение ткани толщиной 100 микрон было помечено таким же образом. На показанном рисунке показаны максимальные проекции большого стека z.
Детали обоих изображений сравниваются параллельно, в классических замороженных срезах большинство волосяных фолликулов, визуализированных с помощью интегрина альфа 6, не были разрезаны по всей длине, создавая преимущественно неполные волосяные фолликулы на секцию, по сравнению с горизонтальными целыми срезами. Интактные волосяные фолликулы и неповрежденные мышцы пили были количественно оценены как в классическом, так и в горизонтальном домашнем срезах. Один участок для биологической репликации был количественно определен, как видно на рисунке, весь участок горы имеет более высокую долю интактных фолликулов и мышц арректора пили.
После освоения эта техника криосекции может выполняться со скоростью более 15 секций в минуту, при этом при правильном монтаже образцы могут быть идеально ориентированы. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как обрабатывать и анализировать толстые срезы тканей в трехмерной среде.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
11:31
Related Videos
17.2K Views
11:49
Related Videos
21.5K Views
10:59
Related Videos
14.7K Views
13:58
Related Videos
22.1K Views
10:18
Related Videos
16.7K Views
08:52
Related Videos
10.6K Views
11:19
Related Videos
10.7K Views
06:19
Related Videos
17.2K Views
07:35
Related Videos
13K Views
08:01
Related Videos
1.3K Views