March 30th, 2022
Его-меточная очистка, диализ и активация используются для повышения выхода растворимой, активной матриксной металлопротеиназы-3 каталитического домена экспрессии белка у бактерий. Белковые фракции анализируются с помощью гелей SDS-PAGE.
Этот подробный протокол описывает высокоэффективный и экономически эффективный метод экспрессии бактерий для рекомбинантного каталитического домена MMP-3 в E.Coli, который может быть применен к другим терапевтическим мишеням MMP. E.coli не имеет сложной системы сворачивания белка и посттрансляционной обработки. Этот метод использует штамм клеток R2DP для усиления экспрессии эукариотического белка в E.coli.
Перепроизводство специфических MMP приводит к нескольким заболеваниям, таким как рак, сердечно-сосудистые и нейродегенеративные заболевания. Активные растворимые ММП необходимы для разработки терапевтических средств, ингибирующих ММП. Инокулируют одну изолированную колонию трансформанта каталитического домена pET His-tag pro MMP-3 из пластины, устойчивой к ампициллину хлорамфениколу LB, в пяти миллилитрах устойчивой среды LB ампициллина хлорамфеникола при 37 градусах Цельсия.
Сохраните аликвоты из каждой культуры и подготовьте 40% запасов глицерина. Привить однолитровую колбу, содержащую 500 миллилитров lb ампициллина хлорамфеникола, устойчивую к среде, до оптической плотности от 0,05 до 0,1 при 600 нанометрах с ночной культурой. Измерьте оптическую плотность на 600 нанометров в нескольких временных точках, обычно в течение трех-четырех часов, пока она не упадет между 0,4 и 0,6.
Индуцировать культуры с одним молярным запасом IPTG до конечной концентрации одного миллимоляра. Насиживайте в шейкере с температурой 37 градусов в течение дополнительных трех-четырех часов. Центрифугируйте клетки в конических бутылках по 250 миллилитров при 13 000 г и четырех градусах Цельсия в течение 10 минут, повторяя до тех пор, пока культуры не будут полностью гранулированы.
Добавьте три миллилитра лизисного буфера на грамм гранулы и повторно суспендируйте гранулу путем вихря или пипетирования. Добавьте 1,25 миллилитра массой 10% по объему дезоксихолата натрия на один литр культуры. Добавьте 10 микролитров ДНКазы I на один литр культуры.
Встряхните при комнатной температуре в течение 30 минут при 150 об/мин. Центрифуга в течение 10 минут при 13 000 G и четырех градусах Цельсия. Выбросьте супернатант.
Повторно суспендировать гранулу по 100 миллилитров на литр культуры включения тела буфера путем пипетки вверх и вниз. Храните образцы на льду во время обработки ультразвуком, чтобы предотвратить перегрев. Обрабатывайте каждый образец ультразвуком в течение шести циклов по 15 секунд, выход пять и 50% импульс.
Центрифугируйте образцы в течение 10 минут при 13 000 G и четырех градусах Цельсия. Проверьте гранулу. Если гранула компактная, откажитесь от супернатанта.
Повторно суспендируйте каждую гранулу из однолитровой культуры и пяти миллилитров солюбилизационного буфера. Инкубируйте в течение не менее 30 минут на льду, чтобы позволить белкам солюбилизироваться. Центрифугируйте клетки в течение 10 минут при 13 000 G в четыре градуса Цельсия.
Если гранула образуется после центрифугирования, перелейте супернатант в отдельную коническую трубку объемом 50 миллилитров. Повторно суспендируйте гранулу еще в пяти миллилитрах буфера солюбилизации на один литр культуры путем пипетирования вверх и вниз. Центрифуга в течение 10 минут при 13 000 G и четырех градусах Цельсия.
Далее потяните супернатанты. Выбросьте гранулу или храните ее при минус 80 градусах Цельсия для дополнительной обработки ультразвуком. Заготовьте против буфера промывки HT и запишите A280 первой фракции промывки.
Повторяйте с другими фракциями до тех пор, пока A280 не приблизится к исходному уровню. Немедленно элюируют помеченные His белки, добавляя пять миллилитров буфера элюирования HT. Соберите проточную фракцию от 0,5 до одного миллилитра в микрофьюжных пробирках с маркировкой HT elution.
Измерьте A280 фракции элюирования. Если A280 больше 0,3 миллиграмма на миллилитр, разбавьте фракцию буфером равновесия HT. Погрузите элюированные фракции MMP в диализную трубку в один литр диализного буфера и перемешайте трубку и ее содержимое на магнитном перемешивании в течение не менее восьми часов при четырех градусах Цельсия.
Переложите на один литр диализа буфер два и перемешайте трубку и ее содержимое на магнитном перемешивании в течение не менее восьми часов при четырех градусах Цельсия. Далее перекладывают на один литр диализного буфера три и перемешивают трубку и ее содержимое на магнитном перемешивании в течение не менее восьми часов при четырех градусах Цельсия. Перенесите образец в соответствующий контейнер и пометьте его как набранный MMP.
Осмотрите трубку на наличие осадка. На один миллилитр аликвоты одного миллиграмма на миллилитр MMP добавьте 50 микролитров 20 миллимолярных APMA, чтобы достичь конечной концентрации APMA в один миллимоляр. Если образуется осадок, центрифугируйте его с максимальной скоростью в течение 10 минут при четырех градусах Цельсия.
Храните супернатант в 1,5-миллилитровой микрофьюжной трубке с маркировкой активированный MMP. Выбросьте осадок в контейнер, маркированный для отходов APMA. SDS-PAGE был запущен для сравнения фракций элюирования очистки His-tag каталитического домена His-tag pro MMP-3 из клеток BL21 DE3 в ячейках R2DP.
Первые восемь элюционных фракций помеченного His каталитического домена MMP и клеток BL21 DE3 показали меньше белка, чем в каталитическом домене MMP с меткой His в клетках R2DP. Показаны индуцированные, реконвертированные, концентрированные, активированные и обессоленные фракции клеток MMP3 CD и R2DP. При активации молекулярная масса активированного диапазона MMP-3 CD составляет примерно 20 килодалтонов, в отличие от помеченного Гисом зимогена, который остается на уровне около 30 килодалтонов.
При центрифугировании клеточных лизатов гранулы могут быть не компактными. Когда это произойдет, больше увлажняйте ультразвуком и дольше центрифугируйте. При реконцентрации белка может произойти осаждение.
Растворите его в буфере солюбилизации и повторите процесс. Процедура, описанная здесь, предоставляет подробный метод растворимой экспрессии активных человеческих MMP, который в конечном итоге может быть использован для понимания молекулярного механизма ферментативной активности MMP. Альтернативные методы очистки белка, такие как FPLC, могут быть выполнены для очищенных белков MMP.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Этот протокол описывает эффективный метод экспрессии каталитического домена рекомбинантного ММП-3 в E. coli с использованием клеточной линии R2DP для повышения выхода белка. Процесс включает очистку с использованием His-тега, диализ и активацию для получения растворимого, активного белка, пригодного для терапевтических применений.