June 6th, 2025
Это исследование представляет многоуровневую структуру, охватывающую от ДНК до функции белка и нейронного поведения. В нем представлен новый подход к исследованию предсказанных патогенных мутаций в субъединице рецептораГАМК А , предполагая, что эпилептогенные мутации и проксимальные мутации, прогнозируемые как патогенные, могут оказывать аналогичное воздействие на модель пирамидального нейрона CA1.
Наше исследование основано на идее о том, что эпилептогенные и проксимально предсказанные мутации в субъединицах рецептора ГАМК-А могут аналогичным образом влиять на модель пирамидального нейрона CA1. Мы исследуем это с помощью многоуровневой структуры. Лабораторные эксперименты необходимы для открытия истины, но они не могут полностью охватить разнообразие и сложность жизни на всех уровнях — от молекул до организмов. Просто существует слишком много возможностей, вот в чем проблема.
Наш протокол и результаты проложили путь к вычислительной среде, которая может быть использована для изучения влияния полиморфизмов, таких как полиморфизмы субъединиц рецептора ГАМК-А, на нейронную функцию.
Наше исследование поднимает новые вопросы о том, в какой степени прогнозируемые патогенные варианты и эпилептогенные мутации демонстрируют схожие свойства, и как эти взаимосвязи могут быть эффективно зафиксированы и смоделированы.
В настоящее время наше внимание сосредоточено на функции микросхемы энторинальной коры и гиппокампа. Мы будем изучать животные модели in vivo и модели вычислительных микросхем для изучения контроля перегородки на этой схеме, особенно при нейропсихиатрических расстройствах.
[Рассказчик] Для начала откройте исходный файл Excel, содержащий генетические данные, и удалите ненужные столбцы из файла, оставив только четыре столбца: GRCh38Chromosome, GRCh38Location, Name и Protein, прежде чем сохранить файл как data1.xlsx в рабочем каталоге, относящемся к программному обеспечению R. Для дальнейшей очистки и форматирования данных откройте программное обеспечение R и RStudio. Затем откройте скрипт R Data_GABAA R. Установите рабочий каталог и загрузите необходимые библиотеки, нажав кнопку «Выполнить». Загрузите файл данных и начните очистку данных для столбцов, требующих этого процесса. Далее очистите и объедините данные в одну колонку, разделенную одним пробелом. Создайте новый фрейм данных для объединенных выходных данных и добавьте нужный идентификатор варианта ансамбля транскриптов. Запишите результат в новый файл Excel с именем data1output.xlsx. Чтобы построить биофизическую модель ГАМКергического синапса на многокомпонентном пирамидальном нейроне гиппокампа, основанном на проводимости, установите Brian 2 и импортируйте необходимые пакеты. Спроектируйте модель на основе проводимости, определив кинетику стробирования ионных каналов, пассивные и активные параметры, а также постсинаптическую проводимость. Используйте модифицированные проводимости типа Ходжкина-Хаксли для пирамидальных нейронов гиппокампа. Отрегулируйте распределение плотности потенциал-зависимых натриевых каналов для сомы, начального сегмента аксона, узлов Ранвье и дендритов. Установите проводимость натриевых и калиевых каналов равной нулю в миелинизированных сегментах. Встроенная кинетика стробирования ионных каналов для потенциал-зависимых натриевых и калиевых каналов. Введите синаптические токи как сумму всех глутаматергических и ГАМКергических синапсов в одном отсеке. Включайте в глутаматергический ток как быстрый ток, опосредованный рецептором AMPA, так и медленный ток, опосредованный рецептором NMDA. Включайте в ГАМКергический ток только быстрый ГАМК-рецептор-опосредованный ток. Предположим, что при каждом пресинаптическом всплеске в синапс выделяется постоянное количество глутамата. Таким образом, активация рецепторов зависит от времени спайка, а общая проводимость рецепторов, G-AMPA и G-NMDA, отражает количество глутамата, которое выделяется каждым событием. Задайте морфологические параметры, используя экспериментально измеренный диаметр сомы и нейритов, а также длину каждого нейритного компартмента и паттерны ветвления. Сведите реальную морфологию нейронов к многокомпонентной модели, разделив клетку на несколько компартментов, которые точно сохраняют основную ветвящуюся структуру и поддерживают двустороннюю симметрию. Определите биофизические параметры для модели ГАМКергического синапса путем оценки контрольных измерений дикого типа, полученных ранее, и импортируйте их для использования в модели. Определите константы времени нарастания и деактивации для постсинаптического тока, опосредованного рецептором ГАМК-А. Проектирование топологии модели нейрона и присвоение морфологических и биофизических параметров, что включает в себя уточнение пространственного расположения и взаимосвязей компартментов на основе ранее полученной морфологической и ветвящейся информации. Назначьте соответствующие морфологические параметры, такие как длина и диаметр сегмента, а также биофизические параметры каждому отсеку модели. Создайте пресинаптическое действие с помощью SpikeGeneratorGroup. Подключите генератор спайков к целевому отсеку модельного нейрона с помощью класса Synapses для моделирования синаптических связей. Установите постоянный постоянный ток 0,85 наноампера и поместите электрод на сому, чтобы имитировать подпороговую активность, вызванную базовой нагрузкой ионным током в данный момент времени. Чтобы создать записывающие мониторы, записывайте трассировки напряжения из целевых отсеков с помощью StateMonitor. Наконец, постройте сеть и запустите ее. Нейронные линии спайков при одиночном дистальном глутаматергическом входе и соматическом ингибировании ГАМКергических ингибиторов выявили исходы возбуждения рецепторов дикого типа и мутантных ГАМК-А. Мутация бета-3N110D нарушила ингибирование, заставляя нейроны блокироваться на возбуждающем входе Glu-S1 после четвертого пресинаптического всплеска с короткой постсинаптической задержкой. Мутация гамма-2K328M также нарушила ингибирование с возбуждением нейронов, происходящим вокруг пятого шипа Glu-S1, и с более длительной постсинаптической задержкой, чем бета-3N110D. При двойном синаптическом входе мутация гамма-2P302L вызывала возбуждение, почти синхронизированное с медиальным апикальным входом Glu-S2, что, вероятно, отражает запоздалое суммирование от Glu-S1. Мутация бета-3T288N продемонстрировала аналогичную картину с шипами, выровненными по входам Glu-S2, и вторым шипом, появляющимся почти синхронно. Мутация бета-3N110D в условиях двойного входа вызывала спайки почти на всех возбуждающих входах, за исключением первых двух, с заметно сокращенными интервалами между шипами. Мутант гамма-2К328М показал сопоставимую схему срабатывания, но не реагировал на второй и третий возбуждающие входы. В условиях тройного возбуждения мутанты как бета-3N110D, так и гамма-2K328M реагировали почти на все пресинаптические спайки, запуская пары шипов в ответ на кумулятивный возбуждающий драйв.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Это исследование представляет многоуровневую модель, охватывающую от ДНК до функции белка и нейронного поведения. Оно предлагает новый подход к исследованию предсказанных патогенных мутаций в субъединице рецептора GABA A, предполагая, что эпилептогенные мутации и проксимальные мутации, предсказанные как патогенные, могут производить схожие эффекты на модель пирамидального нейрона CA1.
Accurate identification and classification of GABAA receptor subunit missense variants is critical for de-risking early-stage epilepsy target validation and improving predictive confidence in neuronal disease models. This multiscale framework enables biopharma teams to estimate the functional impact of novel or rare variants, supporting translational continuity from genetic discovery to neuronal phenotype. Integrating variant effect prediction with neuron-level simulation informs portfolio triage and prioritization of disease-relevant targets.
This framework bridges early genetic discovery, variant prioritization, and neuron-level functional modeling, supporting workflows from target validation through preclinical research.