1. Sikker Restraint og skånsom håndtering av dyr er en viktig del av eksperimentelle prosedyrer Denne videoen er laget for å være et supplement til hands-on opplæring av institusjonen. Alltid være sikker på at IACUC eller etikkutvalg godkjenning er på plass før du begynner på eksperimentell prosedyre. Hver person som arbeider på en protokoll bør kjenne detaljene i prosedyrer godkjent for at protokollen, og eventuelle andre som de arbeider. Nærmer gnager med tillit og håndtere dyrene forsiktig, men bestemt. Både altfor røff behandling og tentative tilnærminger kan føre biter eller riper på fører eller skader dyret. Når du håndterer dyr, er det alltid mulighet for utilsiktet utslipp eller dyret blir droppet. De fleste av disse manipulasjoner er best utført over en arbeidsflate, slik at hvis dyret mistes eller rømming, det er ikke skadet og kan være lett gjenerobret. Følg din institusjotusjonelle politikk om dyr som kontakt med gulvet. Aldri håndtere dyr ved spissen av halen, da dette kan resultere i en degloving skade av halen. Vær spesielt forsiktig med store rotter eller gravide mus. Bruk alltid den andre hånden til å støtte kroppen som du løfter i halen. Skarpe nåler fungerer best når du gir injeksjoner. Selv nåler for laboratorium gnagere blir noen ganger brukt for flere injeksjoner, er ikke å anbefale for en rekke årsaker, minst av dem er at den lille måleren ofte brukes innebærer at nålene kjedelig raskt. Å være bitt eller klort er alltid en mulighet når du arbeider med dyr. Hvis arbeider med et stoff eller en mikroorganisme som kan forårsake skader på mennesker, ta ekstra forholdsregler, for eksempel manipulere dyr eller agenter i avtrekksskap eller Sikkerhetskabinetter. Milde tilnærminger og akklimatisering til håndtering før du prøver en prosedyre kan betale seg i dyr som er mindre stresset av håndtering. Praksis tilbakeholdenhet før du prøver sammensatte administrasjon og praksis administrere stoffer for å kontrollere dyr før forsøksdyr. Praktisere disse teknikkene instills regelmessig tillit og tillit fører til bedre håndtering, mindre stresset dyr, og bedre vitenskapelige resultater. Med noen håndtering teknikk, hvis dyret er trassig, prøv en annen teknikk. Dyret (og handler) kan også ha nytte av å sette dyret tilbake i buret og prøver igjen senere. 2. Manuell Restraint Enhånds mus tilbakeholdenhet Løft en mus ved haleroten og plassere den på buret lokket, vaier bar buret toppen, eller en lignende grov overflate. Enhånds mus tilbakeholdenhet utføres vanligvis med den ikke-dominerende hånd, forlater den dominerende hånd fri for bruk. En alternativ metode tillater teknikeren å bruke sin lab frakk eller uniform ermet dekker underarmen å plasseredyr før tilbakeholdenhet. Brette haleroten mellom 3. og 4. finger, mens forsiktig trekke tilbake på halen. Dette vil føre til at musen til å ta tak i overflaten med alle fire poter og dra fremover. Ikke gripe mus ved tuppen av halen, spesielt hvis suspendering hele kroppsvekten etter halen sin. Dette kan føre til en skade degloving der huden av halen glir av. Neste, fast grep musen av scruff med samme hånd som holder halen. Gripe med pekefingeren og tommelen nær bunnen av hodet og forlenge grep ned musen rygg ved å innlemme midten og ringfinger. Pass på å bruke akkurat nok trykk, eller fasthet, til huden rundt halsen for å hindre musen fra å snu eller vri ut av tilbakeholdenhet, men ikke dra i huden så tett at dyret ikke kan puste. Kontroll av hodet er avgjørende. Dersommusen kan bevege på hodet, kan det nå førers fingre og kan bite. Dette kan skje når uerfarne handlers gripe musen for langt nedover ryggen, snarere enn rett bak skallen. Mus tilbakeholdenhet tohånds Løft en mus ved haleroten og sted på buret lokket, wire bar lokket eller ru overflate. En alternativ metode tillater teknikeren å bruke sin lab frakk eller uniform ermet dekker underarmen å plassere dyret før tilbakeholdenhet. Trekk forsiktig bakover på halen og musen vil gripe overflaten med fire poter og trekk fremover. Neste, med den andre hånden raskt og godt tak i musen ved nakkeskinnet (se enhånds tilbakeholdenhet ovenfor). Med halen i den ene hånden og Scruff i den andre, løfte musen og brette haleroten mellom håndflaten og 3. eller 4. finger av hånden holder Scruff. Som med én hånd metode, ta fatt i Scruff å hindre musen fra å vri eller snu mens ikke fatte så fast at dyret ikke kan puste. Dersom musen er motstandsdyktig mot scruffing, kan lett trykk på musen tilbake la hånden til å flytte opp for en bedre forståelse. Rotte tilbakeholdenhet; scruffing Rotte scruffing er vanligvis utføres tohånds og bare i mindre rotter. Det er ikke en vanlig brukt teknikk fordi rotter er mindre akseptere av scruffing enn mus, men det er nyttig i enkelte blodprøverør situasjoner. Grip rotte etter halen med den ikke-dominerende hånd og trekk forsiktig bakover på en ru overflate (som beskrevet ovenfor for mus). Vær nøye med å gripe nær haleroten, som Rotta hale hud kan komme av hvis gripes nær tuppen. Hold halen fast i hånden og nærmer seg Scruff av rotte bakfra. For example, hvis rotta halen er i handlers 'venstre hånd, ikke nærmer rotta fra nesen til Scruff den med høyre hånd. I stedet kommer over venstre hånd, og nærmer seg Scruff bakfra. Bruke milde press på baksiden av rotte, over skulderbladene, tar tak i Scruff nær bunnen av skallen mellom fingrene og håndflaten. Kontroll av hodet er viktig å hindre biter. Rotte biter kan forårsake alvorlige skader. Rotter kan vocalize når behersket på denne måten. Rotte tilbakeholdenhet, over skulderen grep Grip rotte etter halen med den dominerende hånden og trekk forsiktig bakover på en ru overflate (som beskrevet ovenfor for mus). En alternativ metode tillater teknikeren å bruke sin lab frakk eller uniform ermet dekker underarmen å plassere dyret før tilbakeholdenhet. Vær nøye med å gripe nær haleroten, som Rotta hale hud can kommer av hvis grep nær spissen. Plasser den ikke-dominante hånd over rotte er tilbake, nærmer bakfra. Ta tak i rotte rundt thorax med ringfingeren, pinkie, og tommelen. Rotte hode bør være mellom pekefingeren og langfingeren. Ikke komprimere thorax. Rotten kan holdes på denne måten med en side, hvis kroppen er stabilisert mot føreren. Rotte tilbakeholdenhet, under skuldrene grep Grip rotte etter halen med den dominerende hånden og trekk forsiktig bakover på en ru overflate (som beskrevet ovenfor for mus). En alternativ metode tillater teknikeren å bruke sin lab frakk eller uniform ermet dekker underarmen å plassere dyret før tilbakeholdenhet. Vær nøye med å gripe nær haleroten, som Rotta hale hud kan komme av hvis gripes nær tuppen. Plasser den ikke-dominante hånd over rpå er tilbake, nærmer bakfra. Ta tak i rotte rundt thorax, rett under skulderbladene. Rotte underarmene bør være forsiktig presset opp med tommelen og pekefingeren. Underarmene skal krysse under rotte hake, og hindrer den fra å bite. Ikke komprimere thorax. Rotten kan holdes på denne måten med en side, hvis kroppen er stabilisert mot føreren. Decapicone En Decapicone er en fleksibel, kjegleformet stykke tynn plast med et hull i den ene enden. Hullet er liten nok slik at mus eller rotte kan få sin nese ut av hullet, men ikke resten av kroppen. Å begrense dyr, plasser mus eller rotte i en Decapicone av riktig størrelse. Skyv dyret forover inntil dens nese stikker fra hullet i Decapicone. Enten holde posen lukket rundt halen, eller bruke en vri slips å forsegle dyret i kjeglen. Advantage av en Decapicone er at den tynne plast tillater injeksjoner gjennom materialet. Ulempen er at materialet ikke puste og dyr kan bli overopphetet. Bare holde et dyr i et Decapicone så lenge som det tar for å utføre prosedyren. Akryl / stiv plast restrainer Plast tilbakeholdenhet enheter er spesielt nyttig når dyrets hale må åpnes. Disse kan kjøpes kommersielt eller gjort i laboratoriet. Størrelsen bør være passende for dyret å dempes – dyret bør ikke være i stand til å snu i tilbakeholdenhet. Plasser dyret holdematerialet enheten ved først forsiktig tilbakeholdende dyret, deretter slippe den, med hodet først, ved åpningen av enheten. Det kan hjelpe å sikte enheten oppover over buret, som gnagere vil ofte rykke opp til en sikker struktur, som en tube. Plasser lukking på enden avenhet, være forsiktig så du ikke skader dyrets hale, føtter, eller testiklene. Minimere tid brukt i restrainers siden dyr kan overopphetes. Dyr kan begrenses på andre måter i tillegg, for eksempel ved å pakke i en liten håndkle, eller ved ganske enkelt cupping en hånd over dyret. Teknikkene kan justeres for å møte behovene til dyret og arbeideren. Alltid passe på å unngå biter og riper, og sikre dyr fra utilsiktet utslipp eller fall fra høyder. 3. Sammensatte Administrasjon Metoder Dette er på ingen måte en uttømmende liste og andre ruter er mulig. Denne protokollen søker å illustrere de mest brukte ruter. Andre ruter kan kreve anestesi av dyret og post-administrering smertelindring. Uansett administrasjon metoden som brukes, være sikker på at alle materialer er forberedt før besøksforbud dyr. Vandige materialer er lettere å injisere enn tykkere materialer, slik som olje-based forbindelser. Injiser alltid tykkere forbindelser svært sakte for å unngå løsner fra sprøyten. Generelle nål og sprøyte bruk hensyn. Oppbevar og kast sprøyter og nåler riktig. Hvis du er ny til å bruke sprøyter og nåler, praksis håndtere sprøyten og injisere før du prøver å injisere et dyr. Ideelt sett vil det være i stand til trygt manipulere sprøyten med en hånd, mens den andre for beherskelse av dyret. En stødig hånd minimerer nål bevegelse som minimerer vevsskade. Nåler har et punkt, en skråkant, en aksel, og et knutepunkt. Sprøytene har en spiss, en tønne, og et stempel (Figur 1 a og b). Nåler er dimensjonert etter gauge og lengde. Jo større måle antallet er, desto mindre nålen. Små nåler er svært utsatt for dulling (fra en Burr forming på spissen) og bør ikke brukes for å pierce multi-dose hetteglass (Figur 1 c). Alltid velge denkorteste nål som vil arbeide for å administrere forbindelsen. Nålen er festet til spissen av sprøyten ved navet. Noen sprøyter har låsing tips. Alltid være sikker på at sprøyten er godt festet til nålen. Nåler er beste inn i dyret med skråkant opp, spesielt for intravenøse injeksjoner. Aldri oppsummering nåler for hånd. Dette er en vanlig årsak til nålestikkskader. Avhende sprøyter riktig i merket sharps beholdere. Hvis nåler må recapped, enheter er tilgjengelig (figur 1 d). Intranasal (IN) Begrense dyret som beskrevet ovenfor. Ved hjelp av en sprøyte eller pipetten, plassere en liten mengde av materialet som skal inhaleres ved svelget av dyret. Se for materialet til å forsvinne inn i svelget. Gjenta om nødvendig til ønsket volum er administrert. Intramuskulær (IM) Beherske the dyr som beskrevet ovenfor. Sørge for at en av dyrets bakbena er gratis og stabilisert for injeksjon. Restraint kan ta to personer. Dersom dyret kan sparke under injeksjonen, vil muskelskade fra nålen resultere. Nålen bør settes vinkelrett på huden til dyret. Bruke en riktig størrelse sprøyte og nål, sette nålen omtrent skråkant-dyp og injisere materialet i dyrets quadriceps (foran låret) eller sideveis lår muskelmasse. Ikke injiser inn i bakre muskelmasse som det er mulig å ødelegge sciatic nerve. Hvis dyr er å få flere IM injeksjoner, alternative ben. Intraperitoneal (IP) Begrense dyret som beskrevet ovenfor. Tips dyrets nese mot gulvet, utsette magen for injeksjon. Lokaliser dyrets midtlinjen og mentalt dele magen inn kvadranter (figur 2). Den laverekvadranter, spesielt dyrets nedre høyre kvadrant, er de riktige steder for intraperitoneale injeksjoner. Nedre høyre kvadrant er valgt på grunn av mangel på anatomisk viktige strukturer. Bruke en riktig størrelse sprøyte og nål, injiserer materialet inn i dyret. Hvis dyr er å motta gjentatte IP injeksjoner, veksle injeksjonsstedet. Subkutan (SC, SQ) Begrense dyret som beskrevet ovenfor. Dyret skal sikres løst nok til at huden kan mobiliseres. Hvis dyr skal håndteres rutinemessig etter SC injeksjon, ikke bruk scruff (nakken). I stedet bruker huden på dorsal rumpe eller flanke. Hvis dyr er å få flere SC injeksjoner, alternative områder av injeksjon. Ta tak i huden og dra det forsiktig oppover, gjør en "telt". Hvis du utfører injeksjon solo, før nålen og forsiktig tent huden oppover med nålen for å bekrefte at nålen er i det subkutane plass. Ved hjelp av en passende størrelse sprøyte og nål, sett inn kanylen i en 30-45 ° vinkel inn tented hud, og injisere stoffet. Injiser parallelt til og bort fra fingrene som holder huden oppover. Hvis injeksjonen er vellykket, vil en liten hevelse under huden bli sett. Etter injeksjon, trykk bestemt å forhindre tilbakestrømning av materialet. Intradermal (ID) For intradermale injeksjoner, blir dyrene ofte barbert slik at huden kan bli sett. Beherskelse av dyret for flere intradermale injeksjoner kan være vanskelig. I så fall kan kjemisk sedasjon være nødvendig. Områdene for ID injeksjoner er de samme som for SC. Sett inn et passende størrelse nål inn i huden på en 15-30 ° vinkel. Nålen vil ikke bli satt inn veldig langt og injeksjonen bør møtes med rebistand. En alternativ tilnærming er å forsiktig klemme huden ved siden av injeksjonsstedet og stikk nålen på en svært spiss vinkel. Dette er nyttig i mus, siden det hindrer dem fra å bevege seg under innsprøytningsprosessen. Hvis injeksjonen er vellykket, vil en liten bleb bli sett. Det vil være blekere enn huden rundt. Etter injeksjon, trykk bestemt å forhindre tilbakestrømning av materialet. Intravaskulær (IV) Den venstre og høyre lateral halevenen er den vanligste vaskulær atkomstvei brukt i mus og rotter. Andre vaskulære atkomstveier er mulig i mus og rotter, men generelt krever sedasjon og post-injeksjon smertelindring. For en halevenen injeksjon, holde dyret i en Decapicone eller plast gnager restrainer. Plasser dyrets hale under en lampe, eller på en beskyttet oppvarming enhet. Dette vil fremme vasodilatasjon, noe som åpner for enklere injeksjon. Ikke overopphetes dyret. For store hannrotter, kan rengjøring av huden skalaer av halen tillate for bedre visualisering av venen. Rengjøring bør være forsiktig slik at huden ikke blir slitt. Hold dyrets hale av spissen med den ikke-dominerende hånd. Dette vil rette halen. Roter halen ¼ slå å plassere halevenen dorsally for enklere injeksjon. Dyret har to laterale halevenen og en ventral hale arterie (Figur 3). Tilnærming halen med nålen på en 15-20 ° vinkel. Start ved den distale delen av halen. Venene er grunt og nålen skal ikke settes inn mye utover fas. Hvis injeksjonen er begynt så distalt som mulig, er det mer uskadet vene for å forsøke injeksjonen bør første prøve mislykkes. Injisere stoffet. En vellykket injeksjon vil resultere i at materialet går inn i venen utenmotstand og blanchering av halevenen for varigheten av injeksjonen. Ikke aspirer før injisering, da dette vil kollapse venen. Milde press på venepunksjon området etter injeksjon vil hindre blødning. I et mislykket injeksjon, vil materialet ikke strømme lett. I stedet, vil halen huden forvelle eller materialet ikke kan injiseres i det hele tatt. Intragastrisk administrasjon (oral gavage) Bare utføre gavage på behersket, våken dyr. Anestesi eller sedasjon øker risikoen for aspirasjon (material utilsiktet kommer ned i lungene). Velg en passende størrelse peroralt inntak nål for bruk. Disse nålene har ball tips på slutten for å hindre deres passasje inn i luftrøret. Lengden som trengs kan bestemmes ved å holde den beherskede dyret opp og måle fra munnviken. Ballen spissen av foring nålen skal nå til dyrets siste ribbe (<strong> figur 4). Kanyletykkelse bestemmes av vekten av dyret. Begrense dyret slik at dens hode og kropp er i en rett, vertikal linje. Dette retter spiserøret, noe som åpner for enklere passering av fôring nål. Sette ballen nålespissen inn i dyrets munn, over tungen. Når nålen er på plass, ta nålen og sprøyten opp, trykke forsiktig mot ganen, slik at dyrets nese er mot taket. Hos rotter kan nålen må omdirigeres litt som den passerer på baksiden av halsen. Noen spenning på nålen indikerer behovet for å justere plasseringen Fortsette å passere nålen inntil den forutbestemte avstand er nådd. Nålen skal gå lett, og dyret skal ikke gispe eller flaskehalser. Administrer stoffet. Den skal renne inn i magen. Hvis det er motstand eller dyr gisper, choker, eller blir blå, umiddelbart stoppe og fjerne behovetle. Dyr som har aspireres kan kreve eutanasi, avhengig av forbindelsen som administreres. 4. Representant Resultater Når dyr blir behandlet på riktig måte, det er et minimum av stress for både dyr og handler. Handlers ikke bli bitt eller klort, og dyr blir behandlet humant og kompetent. Forbindelsene administreres via den riktige ruten med minimal skade på vev og så lite ubehag for dyret som mulig. Hvis etterforskerne er ny på håndtering av dyr, som arbeider med en liten utstoppet dyr kan være nyttig. Det finnes også dyr simulatorer tilgjengelig noen teknikker, for eksempel Koken rotte. For mange etterforskere, er det liten sjanse til å få kjennskap til sprøyter før du jobber med dyr. Et representativt utvalg av en kanyle og sprøyte er illustrert i figur 1A og 1B. Før injeksjon dyr for første gang, detkan være nyttig å øve injisere før du jobber med dyr. Svært fine nåler, som for eksempel 28 og 30 g, er lett å skade. Hvis trekke stoffer fra multi-use hetteglass, bruke en større nål for det formålet, og deretter erstatte det med mindre gauge nål for injeksjon. En burred nål sett i figur 1C. Grunnleggende forholdsregler bør tas når du arbeider med nåler, som ikke recapping brukte sprøyter for hånd. Figur 1D viser en nål recapper i bruk. Dette kan være nyttig for undersøkere som trenger å fjerne nåler til for eksempel, ekspress blod fra en sprøyte uten hemolyse sett når blodet er skjøvet gjennom en nål. Figurene 2 og 3 illustrerer landemerker for intraabdominal injeksjon og den typiske strukturen av halen, illustrerer de mål for injeksjon. Figur 4 gir eksempler på riktig størrelse av tilførsel med sonde nåler. Gavage nåler bør nå fra munningen av ennimal til rett under det siste ribbeinet. Figur 1. A) Nål og B) syringe deler, merket. C) Burr på p. skyldes gjentatt plassering av nålen til en multi-hetteglass. D) Nål recapper i bruk. Figur 2. Kvadrantene av ventrale abdomen. Bare sprøyte inn i de to nederste kvadrantene, fortrinnsvis høyre nedre kvadrant. Figur 3. Skjematisk av halen i tverrsnitt, som illustrerer forholdet av arteriene og venene til benete og tendenous strukturer. Figur 4. Gavage nål sizing hos rotter. A) gavage nålen for long. B) Hensiktsmessig størrelse gavage nål. C) gavage nål måling for kort, D) for den siste palpating ribbein å bestemme egnet gavage p. Mus Rotte Rute Anbefalt volum Anbefalt gauge og lengde på nål Anbefalt volum Anbefalt gauge og lengde på nål Intranasalt en 5-25 ul N / A 5-25 ul N / A Intramuskulær 1,2 0,00005 ml / g <23 g, 0,5 til 0,75 i 0,1 ml / kg <21 g, 0,5 til 0,75 i Intraperitoneal 1,2 0,02 ml / g <21 g, 0,75 til 1 i 10 ml / kg <21 g, 0,75 til 1 i Subkutan 1,2 0,01 ml / g <22 g, 0,5 til 1 i 5 ml / kg <22 g, 0,5 til 1 i Intradermal en 0,05-0,1 ml <26 g, 0,5 i 0,05-0,1 ml <26 g, 0,5 i Intravenøs 1,2 0.005 ml / g -0.025 ml / g * <25 g, 0,75 til 1 i 5 ml/kg-20 ml / kg * <23 g, 0,75 til 1 i Oral sonde 1,2 0,01 ml / g 20-22 g fôring nål 5-10 ml / kg 16-20 g fôring nål * Det første nummeret er volumet gitt som en intravenøs bolus over ca 1 minutt. Den andre er volumet som kan gis som en langsom infusjon over 5-10 minutter. <sTrong> Tabell 1. Anbefalte doser og pinnenr for ulike ruter av sammensatte administrasjon i mus og rotter.