फ्लोरोसेंट डाई के प्रतिगामी परिवहन शारीरिक प्रक्षेपण के आधार पर न्यूरॉन्स की एक उप जनसंख्या लेबल. लेबल एक्सोन नेत्रहीन को निशाना बनाया जा सकता है<em> Vivo में</em>, पहचान एक्सोन से कोशिकी रिकॉर्डिंग की अनुमति. इस तकनीक न्यूरॉन्स आनुवंशिक हेरफेर के माध्यम से लेबल या अलग करने के लिए मुश्किल हो जाता है नहीं किया जा सकता जब 'अंधा' का उपयोग कर रिकार्डिंग की सुविधा<em> Vivo में</em> दृष्टिकोण.
The overall goal of this method is to record single-unit responses from an identified population of neurons. In vivo electrophysiological recordings from individual neurons are critical for understanding how neural circuits function under natural conditions. Traditionally, these recordings have been performed ‘blind’, meaning the identity of the recorded cell is unknown at the start of the recording. Cellular identity can be subsequently determined via intracellular1, juxtacellular2 or loose-patch3 iontophoresis of dye, but these recordings cannot be pre-targeted to specific neurons in regions with functionally heterogeneous cell types. Fluorescent proteins can be expressed in a cell-type specific manner permitting visually-guided single-cell electrophysiology4-6. However, there are many model systems for which these genetic tools are not available. Even in genetically accessible model systems, the desired promoter may be unknown or genetically homogenous neurons may have varying projection patterns. Similarly, viral vectors have been used to label specific subgroups of projection neurons7, but use of this method is limited by toxicity and lack of trans-synaptic specificity. Thus, additional techniques that offer specific pre-visualization to record from identified single neurons in vivo are needed. Pre-visualization of the target neuron is particularly useful for challenging recording conditions, for which classical single-cell recordings are often prohibitively difficult8-11. The novel technique described in this paper uses retrograde transport of a fluorescent dye applied using tungsten needles to rapidly and selectively label a specific subset of cells within a particular brain region based on their unique axonal projections, thereby providing a visual cue to obtain targeted electrophysiological recordings from identified neurons in an intact circuit within a vertebrate CNS.
The most significant novel advancement of our method is the use of fluorescent labeling to target specific cell types in a non-genetically accessible model system. Weakly electric fish are an excellent model system for studying neural circuits in awake, behaving animals12. We utilized this technique to study sensory processing by “small cells” in the anterior exterolateral nucleus (ELa) of weakly electric mormyrid fish. “Small cells” are hypothesized to be time comparator neurons important for detecting submillisecond differences in the arrival times of presynaptic spikes13. However, anatomical features such as dense myelin, engulfing synapses, and small cell bodies have made it extremely difficult to record from these cells using traditional methods11, 14. Here we demonstrate that our novel method selectively labels these cells in 28% of preparations, allowing for reliable, robust recordings and characterization of responses to electrosensory stimulation.
एक बार में महारत हासिल है, इस तकनीक का एक कई मॉडल प्रणाली में vivo रिकॉर्डिंग में लिए व्यक्ति एक्सोन सहित पहचान की न्यूरॉन्स, लक्षित करने के लिए अनुमति देगा. इसके अलावा, इस तकनीक का एक मज़बूती से चुनौती दे विवो रिकॉर्डिंग तरीकों में पारंपरिक बनाने अद्वितीय है कि संरचनात्मक विशेषताओं के साथ न्यूरॉन्स से कील उत्पादन में रिकार्ड करने की अनुमति देता है. हम mormyrid कमजोर बिजली मछली में इला "छोटे कोशिकाओं" से रिकॉर्ड करने के लिए इस तकनीक का उपयोग किया है. "छोटे कोशिकाओं" की ट्यूनिंग गुणों का अध्ययन करने के लिए पिछले प्रयास चुनौतीपूर्ण रिकॉर्डिंग स्थितियों 11, 14 के कारण असफल रहे थे. इसी प्रकार की शारीरिक विशेषताओं के कई अलग अलग कशेरुकी श्रवण और electrosensory न्यूरॉन्स 8-10 से एकल इकाई रिकॉर्डिंग प्राप्त करने के लिए बाधाओं को पैदा करते हैं. हमारी प्रणाली में इन चुनौतियों को दूर करने के लिए हम "छोटे कोशिकाओं है कि" इला में केवल कोशिकाओं रहे हैं कि इस तथ्य का फायदा उठाया ELP के लिए परियोजना. इस प्रकार, ELP में रखा डाई की प्रतिगामी परिवहन "छोटा करने के लिए इला में लेबलिंग की सीमासेल "SOMAS और axons. axons की फ्लोरोसेंट लेबलिंग दुर्गम SOMAS के बावजूद संभव पहचान कोशिकाओं से एकल इकाई रिकॉर्डिंग बनाने, लेबल एक्सोन के बगल में सटीक इलेक्ट्रोड नियुक्ति की अनुमति दी. हम आसपास के engulfing synapses, 11 की वजह से शायद, दैहिक रिकॉर्डिंग का प्रयास किया, लेकिन असफल रहे थे , 17. हालांकि, दैहिक लेबलिंग स्पष्ट रूप से इस तकनीक को अन्य प्रकार की कोशिकाओं और अन्य सर्किट में दैहिक रिकॉर्डिंग लक्षित करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता सुझाव है कि दिखाई दे रहा था. विवो में प्रतिगामी परिवहन के माध्यम से न्यूरॉन्स के फ्लोरोसेंट लेबलिंग विट्रो 19-21 में लक्षित रिकॉर्डिंग मार्गदर्शन के लिए इस्तेमाल किया गया है . ऐसा ही एक तकनीक zebrafish के रीढ़ की हड्डी 22 में मोटर न्यूरॉन्स से vivo रिकॉर्डिंग में लक्षित के लिए इस्तेमाल किया गया था. हमारा काम लेबलिंग और रिकॉर्डिंग दोनों मस्तिष्क के भीतर विवो में किया जाता है, जिसमें इस दृष्टिकोण का एक उपन्यास विस्तार का प्रतिनिधित्व करता है. हमारा तरीका दर्शाता है कि vivo में एक प्रतिगामी टी के साथ सीएनएस क्षेत्रों की लेबलिंगदौड़ने इसी तरह चयनात्मक प्रक्षेपण न्यूरॉन्स के साथ अन्य बरकरार सर्किट का अध्ययन करने के लिए विस्तारित किया जा सकता है. उदाहरण के लिए, स्तनधारी श्रवण प्रसंस्करण में, अवर colliculus (आईसी) कई rhombencephalic संरचनाओं 23 से जानकारी के लिए एक महत्वपूर्ण रिले केंद्र के रूप में कार्य करता है. आईसी में डाई इंजेक्शन चुनिंदा इन नाभिक में से प्रत्येक से प्रक्षेपण कोशिकाओं लेबल होगा. बेहतर colliculus (एससी) दृष्टि 24 के लिए इसी तरह के एक समारोह में कार्य करता है. रीढ़ की हड्डी की तैयारी विशेष रूप से अच्छी तरह से रीढ़ की हड्डी में आसानी से पहुंचा जा सकता है, के रूप में डाई इंजेक्शन अब तक रिकॉर्डिंग साइट से हो सकता है, इस तकनीक के लिए उपयुक्त हैं, और इसे और अधिक विस्तृत संरचनात्मक जानकारी 25 प्राप्त करने के लिए चुनिंदा न्यूरॉन्स के intracellular रिकॉर्डिंग और भरने के साथ जोड़ा जा सकता है. अंत में, पथ अनुरेखण जटिल circuitry 26 मैप करने के लिए केंद्रीय तंत्रिका तंत्र में इस्तेमाल किया है एक अच्छी तरह से स्थापित तकनीक है. हमारे विधि डब्ल्यू किया गया है के रूप में इन अध्ययनों के लिए कार्यात्मक जानकारी जोड़ने के लिए उपयोग किया जा सकता हैबिल्ली दृश्य प्रांतस्था 27 में ith और कैल्शियम के प्रति संवेदनशील संकेतक.
अच्छी तरह से स्थापित है जो सर्जरी, विश्वसनीय, और नियमित रूप से विवो रिकॉर्डिंग 16 में नेत्रहीनों के लिए प्रयोग किया जाता है, कम से कम खून बह रहा है और पशु और जीवित रहने के लिए ऊतक अनुमति देने के लिए मस्तिष्क की सतह को कोई नुकसान के साथ पूरा किया जाना चाहिए. अभ्यास के साथ, सर्जरी और डाई आवेदन 30-45 मिनट में पूरा किया जा सकता है. हम सफलतापूर्वक तैयारी के 67% में "छोटे सेल" एक्सोन लेबल. हाल तैयारी केवल 1 या 2 दिखाई लेबल एक्सोन है, लेकिन कुछ के रूप में कई के रूप में 8 है. प्रयास किया 119 लेबल इकाइयों, हम 12 तैयारियाँ (तालिका 2) पर वितरित 26 इकाइयों से एकल इकाई रिकॉर्डिंग प्राप्त की. इस प्रकार, डेटा 28% की समग्र सफलता दर के लिए लेबल axons के साथ तैयारी की 41% से एकत्र किए गए थे.
डाई आवेदन के महत्वपूर्ण पहलू गहराई लेबलिंग है. टंगस्टन तार के उथले प्रविष्टि धोया ओ जा रहा डाई में परिणाम होगाप्र. पैठ बहुत गहरी है हालांकि, अगर लेबल एक्सोन को निशाना बनाने के लिए नहीं दिखाई देंगे. इसके अलावा, सेल करने के लिए कुछ यांत्रिक क्षति के लिए पर्याप्त रूप से 25, 28 के ऊपर उठाए जाने की डाई के लिए होने चाहिए. हालांकि, बहुत ज्यादा नुकसान कोशिकाओं को मार देंगे. हम ELP में लेबल एक्सोन (3 टेबल) से रिकॉर्डिंग के साथ रखा इला में डाई इंजेक्शन के माध्यम से अग्रगामी लेबलिंग सहित अन्य रंगों और अन्य तरीकों (तालिका 2) के साथ लेबलिंग का प्रयास किया. हम लेबलिंग उन्हें अनुत्तरदायी, जिससे शारीरिक क्षति के साथ कोशिकाओं के लिए सीमित था क्योंकि अग्रगामी लेबलिंग सफल नहीं था कि परिकल्पना है. इसके अतिरिक्त, पूर्व synaptic टर्मिनलों परेशान हो सकते हैं. इसके विपरीत, प्रतिगामी लेबलिंग इन चिंताओं की वजह से दोनों को कम करता है. राशि और डाई आवेदन की स्थिति का अध्ययन किया जा रहा है विशेष रूप से सर्किट के अनुसार संशोधित किया जा सकता है. अधिकतम लेबलिंग हम लेपित टंगस्टन तारों का प्रयोग कर प्राप्त है, जो सबसे बड़ी डाई एकाग्रता के साथ होता है. हालांकि, डी के साथ एक्सोन लेबलिंग के लिएयह उन्नत है के रूप में ep के अनुमानों, डाई एक टंगस्टन सुई बंद आ सकता है. इन मामलों में, दबाव इंजेक्शन अधिक उपयुक्त होगा. डाई तेज और परिवहन 2 घंटे के बाद इंजेक्शन और 6 घंटे के बाद इंजेक्शन के रूप में देर के रूप में प्रदर्शित होने के अतिरिक्त लेबल axons के रूप में जल्दी के रूप में दिखाई जा रही है हमारी तैयारी में लेबल axons के साथ, तेजी से कर रहे हैं. इस प्रकार, लेबलिंग और रिकॉर्डिंग अस्तित्व सर्जरी के साथ जुड़े तकनीकी कठिनाइयों को दूर करने, एक ही दिन में पूरा किया जा सकता है. समय डाई परिवहन के लिए आवश्यक दूरी के आधार पर प्रत्येक आवेदन के लिए अलग अलग होंगे.
एक अन्य महत्वपूर्ण पहलू इलेक्ट्रोड स्थान है. यह टिप के clogging रोकने के लिए लेबल अक्षतंतु की साइट के लिए ऊतक करे प्रवेश करने के लिए महत्वपूर्ण है. ऐसे इला में के रूप में घने ऊतक के लिए, रिकॉर्डिंग इलेक्ट्रोड पर एक लंबी, पतली टांग ऊतक आसपास से अधिक आंदोलन को कम करता है. एक सफल रिकॉर्डिंग एक रिकॉर्डिंग प्राप्त किया जाता है जब तक ताजा इलेक्ट्रोड के साथ पहला प्रयास, दोहराने पर हासिल की या tiss नहीं है, तोue अक्षतंतु अब नहीं दिख रहा है, जिस पर बात करने के लिए बाधित है. हालांकि, जल्दी विरंजन phototoxicity पैदा कर सकता है जो फ्लोरोसेंट जोखिम की राशि को कम करने के लिए और सेल 29-31 के शारीरिक गुणों को प्रभावित कर सकता अक्षतंतु के बगल में इलेक्ट्रोड जगह के लिए भी महत्वपूर्ण है.
अक्षतंतु के एक खंड को सफलतापूर्वक रिकॉर्डिंग इलेक्ट्रोड में suctioned है, एक बार रिकॉर्डिंग के कई घंटे के लिए प्राप्त किया जा सकता है. इकाइयों को लगातार कम से कम 1 घंटे में खो रहे हैं, बाहर होता जा रहा से अक्षतंतु को रोकने के लिए छोटे इलेक्ट्रोड युक्तियाँ बनाने पर विचार करें. दूसरी ओर, एक टिप का बहुत छोटा अक्षतंतु को clogging, कम संकेत करने वाली शोर, या नुकसान में परिणाम हो सकता है. कील आयाम और अतिरिक्त चूषण के साथ एक इकाई की 'वापसी' में लगातार कमी टिप बहुत बड़ी है कि एक संकेत है. बहुत ज्यादा मद्यपान अक्षतंतु को अपूरणीय क्षति हो सकती है. एक समाधान के लिए दबाव धीरे शून्य करने के लिए रिटर्न तो हवा लाइन में एक छोटी सी दरार की अनुमति है. तेजी वें equalizingई दबाव अक्षतंतु निष्कासित हो सकता है जो एक क्षणिक रिश्तेदार जावक 'पुश' में परिणाम होगा.
इस तकनीक की पहचान प्रक्षेपण न्यूरॉन्स से लक्षित रिकॉर्डिंग प्राप्त करने के लिए एक बड़ा लाभ का प्रतिनिधित्व करता है हालांकि डाई इंजेक्शन स्थल पर सभी प्रकार की कोशिकाओं द्वारा हाथ में लिया जाएगा, तब तक यह, स्थानीय interneurons भेद के लिए उपयोगी नहीं होगा. सैद्धांतिक रूप से, अलग इंजेक्शन साइटों के साथ कई fluorophores के उपयोग इस विधि का विस्तार करने की अनुमति दे सकता है. उदाहरण के लिए, एकल बनाम डबल लेबलिंग की तुलना सर्किट 32 में दो बिंदुओं पर दोहरी इंजेक्शन का पालन प्रक्षेपण न्यूरॉन्स से interneurons भेद करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है. इसी तरह, प्रतिगामी tracers ज़ेबरा चिड़िया उच्च गायन केंद्र (HVC) 32 में हाल ही में किया गया था के रूप में इस तरह के दो photon इमेजिंग के रूप में अन्य उन्नत इमेजिंग तकनीक के साथ जोड़ा जा सकता है. Epifluorescence सूक्ष्मदर्शी का प्रयोग करते समय भी, रिकॉर्डिंग क्षेत्रों हम केवल और 1 को हल करने में सक्षम थे, के रूप में सतह के पास उन लोगों के लिए सीमित कर रहे हैंम्यू, ऊतक के पहले 30 माइक्रोन के भीतर मीटर संरचनाओं. हालांकि, इस गहराई में इस तरह के दो photon माइक्रोस्कोपी 33 या उद्देश्य मिलकर तलीय रोशनी माइक्रोस्कोपी के रूप में 34 अन्य माइक्रोस्कोपी तकनीक के प्रयोग के माध्यम से बढ़ाया जा सकता है. अपेक्षाकृत दुर्गम हैं कि उन सहित – यह मॉडल प्रणालियों की एक किस्म में कई अलग अलग सर्किट में एकल न्यूरॉन्स से रिकॉर्ड करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है, क्योंकि कुल मिलाकर, इस तकनीक vivo में तंत्रिका सर्किट के अध्ययन में एक महत्वपूर्ण प्रगति का प्रतिनिधित्व करता है.
The authors have nothing to disclose.
टी के लिए G2205 (विज्ञान के संवर्धन के लिए राष्ट्रीय विज्ञान फाउंडेशन (बीएसी को आईओएस-1050701), राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान (एस.एम. NS54174 और एएमएल-W के लिए F30DC0111907.), Uehara मेमोरियल फाउंडेशन और जापान सोसाइटी द्वारा प्रदान की अनुदान ). हम बाह्य axonal रिकॉर्डिंग के विषय पर अपने समर्थन और मार्गदर्शन के लिए जूलियन Meeks धन्यवाद. हम एक प्रोटोटाइप रिकॉर्डिंग कक्ष उपलब्ध कराने के लिए कार्ल हॉपकिंस धन्यवाद.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments |
Tricaine Methanesulfonate | Sigma-Aldrich | E10521 | MS-222 |
Gallamine Triethiodide | Sigma-Aldrich | G8134 | Flaxedil |
Lidocaine Hydrochloride | Sigma-Aldrich | L5647 | |
Hickman’s Ringer Solution | NA | NA | NaCl (6.48 g/l), KCl (0.15 g/l), CaCl2•2H20 (0.29 g/l), MgSO4 (0.12 g/l), NaHCO3 (0.084 g/l), NaH2PO4 (0.06 g/l) |
Peristaltic Pump | Gilson or Rainin | Minipulse 3 Model 312; RP-1 | 10.0 ± 1.0 rpm, Alternatively, a gravity-fed line with a flow-meter |
Dissection Microscope | Nikon | SM2645 | |
Super Glue | Super Glue Corporation | SGH2 | 2g tube |
Omni Drill 35 | World Precision Instruments | 503-598 | |
Ball Mill Carbide Drill Bit #1/4 | World Precision Instruments | 501860 | 0.19 DIA (bit diameter = 0.48 mm) |
Low Temp Cautery Kit | World Precision Instruments | 500391 | |
Manual Micromanipulator | World Precision Instruments | M3301R | |
Dextran Conjugated Alexa Fluor 568 | Invitrogen | D-22912 | 2mM concentration; 10,000MW The choice of dye wavelength should be selected to match the microscope filter settings |
Epifluorescent Microscope | Nikon | E600 FN | A remote focus accessory is helpful for fine focus TRITC filter – or appropriate filter to match focal planes for different dye wavelengths |
Low Power Objective | Nikon | 93182 | CFI Plan Achromat Series, 4X N.A. 0.1, W.D. 30mm |
High Power Objective | Nikon | 93148 | CFI Fluor Series, 40X WI N.A. 0.8, W.D. 2.0 mm |
White Light Source | Dolan-Jenner | Model 190 | Fiber Optic Illuminator |
Fluorescent Light Source | Lumen Dynamics | X-Cite 120Q | |
Low-light Level Camera | Photometrics | CoolSnap ES | |
Digital Manometer | Omega Engineering | HHP-201 | |
Motorized Micromanipulator | Sutter Instruments | MP-285 | |
Headstage | Molecular Devices | CV-7B | Axon Instruments |
Amplifier | Molecular Devices | MultiClamp 700B | Axon Instruments |
Data Acquisition System | Molecular Devices | Digidata 1322A | Axon Instruments |
Isolated Pulse Stimulator | A-M Systems | 2100 | |
Flaming/Brown Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-97 | Program settings for our application: Heat: ramp + 1, Pull: ‘0’, Velocity: 60, Time: 90 Box filament |
Pipette Glass | World Precision Instruments | 1B100F-4 | Borosilicate capillary glass with filament (1 mm OD, 0.58 mm ID) |