Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

En modell av gratis Tissue Transfer: The Rat Epigastrisk Free Flap

doi: 10.3791/55281 Published: January 15, 2017

Introduction

Fri vävnad överföring har blivit allt vanligare i klinisk praxis för att rekonstruera saknade vävnader sedan 1970-talet 1-5. Detta har möjliggjort rekonstruktion av komplexa och i övrigt icke behandlingsbara defekter till följd av tumör extirpation, trauma, infektioner, missbildningar eller brännskador 1-7. Fria flikar av detta slag är särskilt användbara för att rekonstruera mycket komplexa anatomiska regioner, liksom de av huvud och hals, handen, foten, och perineum 1,4.

Men även i dag kirurgiska praktikanter ofta avskräcks av komplexiteten i flera steg för att höja, överföring och insetting en fri flik med hjälp av mikrokirurgisk teknik och instrument 8,9. Dessutom är det allmänt accepterat att bli en skicklig microsurgeon, är omfattande experimentell praxis i en djurmodell obligatorisk 4,8-13.

Dessutom grundläggande och translationell forskningi området fri vävnad överföringen är av stor klinisk potential 8,14-16. Trots, forskare ofta avskräcks från att använda mikro modeller av vävnad överföring på grund av bristande information om de tekniska aspekterna i de operativa rutiner 4,8-14. Råttan är en bra djurmodell för mikro forskning och utbildning, eftersom det är relativt billigt, lätt att hålla, och mottaglig för frekventa manipulation 8,11,13,14,17,18.

Trots att flera gratis ben, muskler och hud flikar har beskrivits i råtta 18-24, är den fria epigastrisk fasciocutaneous flik den mest använda i undervisningssyfte 9,12,13,18,25. Detta fria flik beskrevs första gången 1967 av Strauch och Murray och har fått allt större popularitet sedan dess, på grund av flera faktorer, nämligen konstant kärlanatomi, relativt enkel dissektion betydande närings fartyg och redundans av huden i donatorområdet, WHich tillåter primär förslutning av defekten följd av luckans höjd 4,9-11,13,17,18,25-28.

Flap anatomi och histologi
Epigastrisk flik tillhandahålls av den ytliga epigastrisk artär och ven (figur 1). Dessa kärl har sitt ursprung i och tappa i lårbensartären och venen, respektive. I genomsnitt kaliber av ytliga epigastrisk ven är 0,6 till 0,8 mm, som kontrasterar mot de 0,3 till 0,5 mm i den ytliga epigastrisk artär (Figur 2) 17,18. Den ytliga epigastrisk artär avger två huvudgrenar: en lateral och en medial gren som i sin tur delar flera gånger ursprungskapillära nätverk som förser större delen av integument av epigastrisk regionen. Dessa kapillärer rinna in bifloder de ytliga epigastrisk vener som har en parallell kurs till artärträdet (Figur 2) 13,17,18. Diagrammet i figur 3 representerar regionen av ventrolaterala bukväggen som tillhandahålls av de ytliga epigastrisk fartyg som kan mobiliseras i epigastrisk flik. Denna flik kan vara upp till 5 cm i längd och 3 cm i bredd 13,17,18.

Histologiskt är klaffen sammansatt av integument som täcker de ventrolaterala bukväggen muskler (figur 4) 13,17,18. Den innehåller ett ytligt lager av hud, som bildas av dermis och epidermis. Under huden finns ett lager av fettvävnad som heter panniculus adiposus. Under detta skikt finns ett annat skikt av tvärstrimmig muskulatur kallas panniculus carnosus 18,28,29. Nedanför panniculus carnosus finns lös areolar vävnad som är ytliga till det djupa fascia som täcker större magmusklerna. Därför är klaffen ett sammansatt block av vävnader, som innehåller alla dessa lager, med undantag för djupmuskel fascia (Figur 5) 13,17,18,27-31.

Protocol

Alla förfaranden som rör djurpatienter har godkänts av Institutional Animal Care och användning kommittén och etiska kommittén vid Nova University Medical School, Lissabon, Portugal (08/2012 / CEFCM).

1. kirurgiska ingrepp set-up Notes

  1. Använd vuxna Wistar-råttor som vägde 250 till 350 g.
  2. Håll råttorna med mat och vatten efter behag med 12 timmar ljus-mörker cykler 7 dagar före operation.
  3. Väg råttan för att bestämma mängden bedövningsmedel som krävs.
  4. Autoklav alla kirurgiska instrument före operationen.
  5. Layout alla kirurgiska förnödenheter och instrument som behövs för förfarandet (se tabell of Materials).
  6. Utför operationen under en operationsmikroskop med hjälp av konventionella och mikro instrument.
  7. Positionera homeothermic filt, rektal sond och värmelampa.
  8. Placera en 20 ml steriliserad flaska innehållande 0,9% saltlösning i ett vattenbad värmas till37 ° C.
  9. Bära steriliserade handskar för att desinficera alla ytor av den operativa miljö med en alkohollösning. Ta bort handskarna.
  10. Placera en skrubb mössa och mask.
  11. Desinficera händerna med tvål och vatten och slitage ett annat par av steriliserade handskar.
  12. Använd en steril operationsrock.

2. Anestesi och hudpreparat

OBS: Låt en medhjälpare hjälp med följande fyra steg, som en steril klänning och handskar är slitna.

  1. Söva råttan med en blandning av ketamin och Diazepam gavs intraperitonealt. Dosen är 5 mg / kg ketamin och 0,25 mg / kg diazepam. Bedöma djupet av anestesi genom tå nypa och iakttagande av andningsfrekvens under hela förfarandet 8,14,15,32.
  2. Applicera en ögon gel över den främre ytan av ögonen för att undvika kornealabrasion.
  3. Ta bort hår över den ventrala ytan av buken med en hårborttagningskräm. Efter hår Avtagbaral bort hårborttagningskräm med varm koksaltlösning.
  4. Spray en stor mängd alkohollösning över operationsstället. Låt produkten på operationsstället och inte torka bort det. Vänta minst 15 sekunder. Upprepa appliceringen 3 gånger. Lämna en kontakttid av åtminstone två minuter innan du fortsätter med operationen. Andra forskningsenheterna använda andra protokoll för att förhindra infektioner i operationsområdet.
  5. Bär steriliserade handskar, placera 2 operationslakan på båda sidor av råtta.

3. Donor Site Kirurgisk procedur

  1. Ställ in gränserna för en epigastrisk flik som sträcker sig ca 5 cm i längd och cm bredd 3.
    1. Med hjälp av en kirurgisk hud markör, dra en linje från xiphoid process av bröstbenet till blygdbenssammanfogningen, för att markera mittlinjen över den ventrala ytan av råttans buk.
    2. På den vänstra sidan av råttan, med hjälp av en kirurgisk hud markör, dra två vinkelräta linjer till första raden: ome passerar omedelbart kaudalt mot bröstkorgen, och en annan en, parallellt med den senare och bara kraniala till ljumsken vecket (figurerna 3 och 6).
    3. Markera den laterala snitt med en kirurgisk hud markör med en linje parallell med mittlinjen och omkring 3 cm bortsett från det.
  2. klaff skörd
    1. Incisionsfilm huden med ett antal 15 skalpellblad, tills den når panniculus carnosus skiktet.
    2. Djupare till panniculus carnosus planet, gör snittet med en elektrisk diatermi fram till att muskel fascia.
    3. Lyft klaffen från medial till lateral och från kraniala till stjärtfenan, utsätta luckans BLOMSTJÄLK.
    4. Noggrant ligera och dela perforerings fartyg som kommer upp från den djupa muskellagret och gå in i klaffen djupa yta.
    5. Placera en indragare i den bakre aspekten av klaffen och dissekera luckans BLOMSTJÄLK försiktigt genom att försiktigt retasbort lös omgivande vävnader (Figur 7).
    6. Ligera och dela den laterala lårbens cirkumflex artär och ven att använda 9/0 Nylon för ligaturer.
    7. Isolera den femorala artären och venen. När de är närvarande, ligera (med 9/0 Nylon) och dela grenar av dessa fartyg till angränsande muskler.
    8. För det första, använd en dubbel kärlklämma för att klämma den proximala aspekten av lårvenen. Därefter klämma dess distala aspekten. Då, klämma fast den distalt vettande änden av lårbensartären och slutligen dess proximala aspekten.
    9. Kläm fast distala aspekten av lårbensartären och slutligen dess proximala aspekten.
    10. Placera en enda vaskulär klämma i den ytliga epigastrisk ven och en annan i den ytliga epigastrisk artär. Använd ett par raka mikrokirurgi sax för att klippa den ytliga epigastrisk artär och ven på deras ursprung och uppsägning, respektive.
    11. Rikligt spola lumen av dessa fartyg med hepariniserad normal saltlösning 10 IU / mlTills inget blod eller skräp ses i fartygens lumen 33.
    12. Dra och trimma en manschett av adventitia nära kärlsektionsplatser.
    13. Överför epigastrisk klaffen till halsen med hjälp av Addisons pincett (Figur 8).
    14. Stäng tagstället med subkutikulär avbryts 5/0 absorberbara stygn.
    15. Stäng huden med avbrutna 5/0 Nylon stygn.

4. Mottagare Site kirurgisk procedur

  1. Exponering av Mottagarens Site Fartyg
    1. Med hjälp av en kirurgisk hud markör, dra en linje över den mediala kanten av vänster sternocleidomastoideus (SCM) muskel.
    2. Med hjälp av en kirurgisk hud markör, dra en annan linje omedelbart skall och parallellt med den vänstra nyckelbenet. Dessa två linjer måste konvergera till vänster sternoclavicular leden.
    3. Incisionsfilm huden med användning av ett antal 15 skalpellblad.
    4. Använd en elektrisk diatermi att skära igenom subcutaneous vävnad.
    5. Använda ett par dissekera sax för att skeletonize den externa halsvenen lateralt till SCM muskeln.
    6. Isolera och ligera bifloder till yttre halsvenen i detta (figur 9).
    7. Ligera yttre halsvenen strax under underkäken med en 9/0 nylon sutur.
    8. Placera en enda venös klämma under senare ligering och skär den yttre halsvenen hjälp av ett par raka mikrokirurgiska saxar.
    9. Tvätta lumen av venen med hepariniserad normal saltlösning i en koncentration av 10 lU / ml.
    10. Isolera den mediala marginalen av SCM muskler och dra tillbaka denna muskel i sidled och exponerar därmed karotisartären och vagusnerven (Figur 10).
    11. Göra en tvärgående snitt i mittre tredjedelen av SCM muskeln med användning av den elektriska diatermi.
    12. Placera en indragare mellan den djupa ytan av SCM muskler och bandet muskler.
    13. Retas bort vagusnerven från halsartär, noga med att inte skada dessa strukturer.
  2. vaskulära anastomoser
    1. Placera en dubbel arteriell klämma i halspulsådern.
    2. Placera en 9/0 Nylon stygn i laterala delen av halspulsådern, och använda den här sömmen för att dra denna del av kärlväggen.
    3. Använd ett par raka mikrokirurgi sax för att producera en öppning i denna region av kärlväggen.
    4. Använda avbruten 10/0 Nylon suturer utför en termino-lateral anastomos mellan den ytliga epigastrisk artär i klaffen och karotidartären på samma nivå som den nyligen skapade halsöppningen.
    5. Närma sig proximala stump av den yttre halsvenen och ytliga epigastrisk ven och inspektera kaliber av dessa två ådror.
      1. Om avvikelsen i storlek är lätt till måttlig, vidga lumen av den skurna änden av den ytliga epigastrisk ven med hjälp av dilatation pincett.
      2. Om kaliber skillnaden mycket pronounced, förutom pincett dilation, fasa av änden av den ytliga epigastriska venen i en 30 till 45 ° vinkel.
      3. Utföra den venösa anastomos, med användning av avbrutna 11/0 Nylon suturer.
    6. Ta bort de enskilda klämmorna placeras på klaffen fartyg.
    7. Ta bort den dubbla klämman placeras i lårvenen.
    8. Ta bort den dubbla klämman placeras i lårbensartären.
  3. Utvärdera öppenhet och kompetens anastomoser
    1. Kontrollera om klaffen artär och ven är helt öppen och ingen signifikant blödning observeras efter tre minuter för att ta bort de vaskulära klämmorna (Figur 11).
      1. Om det blöder under denna period placera en fuktig saltlösning gasväv över anastomosen och tryck lätt.
      2. Om blödning från anastomoser inte slutar efter tre minuter, lägga till ytterligare 11/0 Nylon avbryts suturer, efter vaskulär klämma placering, om det behövs.
    2. Vänta 10 min med klaffen ansluten till halskärlen och omges av en gasbinda fuktad med varm saltlösning.
    3. Bedöm luckans perfusion och hals sår hemostas. Inspektera anastomoser för tecken på blödning, trombos eller överdriven dragkraft.
    4. Fäst flik i mottagarens sida börjar med 5/0 subkutikulär avbrutna suturer.
    5. Stäng huden med 5/0 Nylon avbrutna suturer (Figur 12).

5. Postoperativ vård

  1. Låt råttan att återhämta sig i sin individuella bur i rätt sidoläge trycksår. Håll buren varm genom att placera en elektrisk värmedyna inställd på låg under. Placera en lätt duk mellan buren och den elektriska värmedyna för att undvika hypertermi.
  2. Titta djuret kontinuerligt vrida den till den motsatta sido decubitus varje 5 min, tills den återupptar sternala VILA och det kan pendla.
  3. Hus råttorna individuellt tills avlägsna tHan kirurgiska stygn två veckor efter det kirurgiska ingreppet.
  4. Ge en antiinflammatorisk substans 1 mg / kg subkutant en gång per dag under 3 dagar efter operation, för postoperativ smärtlindring.

6. Flap Bedömning

  1. Presentera en godsak över huvudet på råttan och bedöma flik lönsamhet genom visuell inspektion.
  2. Om exponeringen är otillräcklig hjälp av föregående steg, har en assistent ett lätt tryck över interscapular regionen av råtta, när man läser klaffen.
  3. Använda digital fotografering och ImageJ programvara för att kvantitativt utvärdera områdena sårruptur, flik epidermolysis, hyperemi, trafikstockningar och / eller nekros, vilket förklaras i detalj av Trujillo et al. 15.

Representative Results

Enligt författarnas erfarenhet av mer än tio år med hjälp av epigastrisk fri flik som en modell för fri vävnadsöverföring både inom ramen för mikrokirurgi kurser och för forskningsändamål, beror graden av klaffen överlevnad något på skicklighet och erfarenhet av kirurgen . Generellt sett, om de tekniska aspekterna som beskrivs ovan beaktas, (<10% av klaff nekros) på omkring 70% av flikama är en nästan fullständig överlevnad kan förväntas. Omkring 10% av flikar presentera partiell nekros (10-50%). Cirka 20% av flikar lider fullständig nekros. En 80% nästan fullständig överlevnad erhölls under de senaste 20 förfaranden som genomförts av den första författaren (DC) (Figur 13).

Under de två första dagarna efter operationen, är den fria epigastrisk klaffen ofta ödematös och presenterar en viss grad av venös trängsel. Dessa brukar both avtar gradvis mellan 3 och 5 dagar efter operationen. Typiskt, under den första veckan, avlägsnar råtta flesta externa sömmar och en del av subkutikulär suturer, vilket ofta resulterar i spridda områden av lätt sprickbildning i såret (Figur 14). Efter dag 10, börjar håret sakta att växa på klaffen yta. Vid slutet av den första månaden efter operationen, är klaffen vanligtvis täckt med något kortare hår än den intilliggande huden. Två månader efter operationen, är närvaron av klaffen bådas av en liten klump, och av en relativt obemärkt ärr runt klaff marginaler (Figur 14). Auto kannibalism av klaffen är en ovanlig slutsats som i författarnas erfarenhet sker nästan uteslutande i fall av total klaff nekros.

Figur 1
Figur 1: Kärl anatomi epigastrisk fri flas.
Detta fotografi visar den vänstra epigastrisk regionen av en råtta som tidigare injicerats med en röd latex lösning i det arteriella systemet och med en blå latexlösning i vensystemet. Det är möjligt att konstatera att epigastrisk regionen får en axiell blodtillförsel från ytliga epigastrisk artär och ven. Dessa kärl har sitt ursprung i och tappa i lårbensartären och venen, respektive. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

figur 2
Figur 2: Svepelektronmikroskopi bild av en korrosions avgjutning av de ytliga epigastrisk fartyg visar den mikroskopiska vaskulära blodtillförseln till epigastrisk fri flik.
Denna svepelektronmikroskopbild av en korrosions avgjutning av SuperFisiella epigastrisk fartyg från råtta visar att venen har en större kaliber att artären. I genomsnitt kaliber av den ytliga epigastriska venen är 0,6 till 0,8 mm, jämfört med de 0,3 till 0,5 mm av den ytliga epigastriska artären. Denna bild visar också att den ytliga epigastrisk artär härstammar två huvudgrenar: en lateral och en medial gren som i sin tur delar flera gånger ursprungskapillära nätverk som förser större delen av epigastrisk regionen. Dessa kapillärer rinna in i bifloder till ytlig epigastrisk ven som har en parallell kurs till artärträdet. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figur 3
Figur 3: Potentiell område i en vänster epigastrisk fri klaff i råtta.
Detta diagram representerar regionen bukväggen tillhandahålls av ytliga epigastrisk fartyg och som kan mobiliseras i epigastrisk flik. Denna flik kan vara upp till 5 cm i längd och 3 cm i bredd. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

figur 4
Figur 4: Fotografi av en hematoxilin-eosin färgade delen av epigastrisk flik.
Denna hematoxilin-eosin färgade sektionen av epigastrisk regionen visar att epigastrisk klaffen är sammansatt av integument av denna region som täcker buken väggen muskler. Klicka här för att se en större version av denna siffra.


Figur 5: Histologisk sammansättning epigastrisk flik.
Fotografiet på vänster sida betecknar en hematoxilin-eosin färgade snitt av en epigastrisk klaff, medan fotografiet på den högra sidan erhölls från en Massons trikrom avsnitt i denna flik. Dessa två bilder visar att epigastrisk flik av råttan är ett sammansatt block av vävnader. Den innehåller ett ytligt lager av hud, som bildas av dermis och epidermis. Under huden finns ett lager av fettvävnad som heter panniculus adiposus. Under detta skikt finns lager av tvärstrimmig muskulatur kallas panniculus carnosus. Nedanför panniculus carnosus finns en djup fascia som täcker de större och djupare magmusklerna. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

figur 6
Figur 6. Preoperativa hud markeringar på den ventrala ytan av råtta före operation.
Detta fotografi illustrerar markeringarna hud för snitten som används för att höja den vänstra epigastrisk klaffen och därefter till infällda denna klaff i ventrala aspekten av den vänstra halsregionen.

figur 7
Figur 7. Kirurgisk anatomi epigastrisk klaff s närings fartyg under operationsmikroskop (10x förstoring).
Detta fotografi visar den ytliga epigastrisk artär och ven som härrör från och dränering i lårbensartären och venen, respektive. Den laterala lårbens cirkumflex artären uppkommer vanligtvis från svans aspekten av ytliga epigastric artär. Den laterala lårbens cirkumflex ven har en liknande väg och oftast slutar i den ytliga epigastrisk ven. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figur 8
Figur 8. epigastrisk flik ex vivo pedicled på sina närings fartyg (den ytliga epigastrisk artär och ven - A, V, respektive). Klicka här för att se en större version av denna siffra.

figur 9
Figur 9. Rörelse vy avdissektion av mottagaren ven, det vill säga den yttre halsvenen, på vänster sida av halsen (6x förstoring).
Det är möjligt att observera den subkutana loppet av den yttre halsvenen lateralt till sternocleidomastoideus. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figur 10
Figur 10. Rörelse vy av dissekering av donatorartären, dvs., den gemensamma hals, på vänster sida av halsen (10x förstoring).
Artären och åtföljande vagusnerven exponeras efter tillbakadragning av sternocleidomastoideus och infrahyoid muskler, såsom visas. Klicka här för att se en större version av thans gestalt.

Figur 11
Figur 11. Fotografera av vaskulära anastomoser mellan klaffen fartyg och mottagande fartyg i halsen, vilket kan ses under operationsmikroskop (10x förstoring).
Detta fotografi visar termino-lateral anastomos mellan den gemensamma hals och ytliga epigastrisk artärer. Det är även möjligt att observera termino-terminala anastomos mellan den ytliga epigastrisk och de externa jugularvenerna. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figur 12
Figur 12. Foto av ventrala aspekten av rått omedel bart efter operationen.
Lägg märke till att givaren zonen är lätt stängd i första hand. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figur 13
Figur 13. Epigastrisk fri flik överlevnad i 20 råttor i följd drivs på av den första författare (DC).
Fem råttor (20%) presenterade komplett klaff nekros (fall 1, 4, 8, 13 och 15, som representeras av de röda prickarna). Områden av klaff nekros bestämdes med hjälp av fri programvara ImageJ, som förklaras i detalj av Trujillo et al. 15. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

14 "src =" / filer / ftp_upload / 55281 / 55281fig14.jpg "/>
Figur 14. Fotografier av epigastrisk flik placerad på den ventrala aspekten av halsen 4, 14 och 60 dagar efter operationen.
Fyra dagar efter operationen, det finns oftast någon sprickbildning i såret, som råttan bort stygnen. Förblir emellertid klaffen vanligtvis på plats. Det är möjligt att undersöka fliken dagligen genom enkel visuell inspektion. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Acknowledgments

En av författarna (Diogo Casal) fått ett bidrag från Programmet för avancerad medicinsk utbildning, som sponsras av Fundação Calouste Gulbenkian, Fundação Champalimaud, Ministério da Saúde e Fundação para a Ciência e Tecnologia, Portugal.

Författarna vill tacka teknisk hjälp av Mr Alberto Severino i filma och redigera video. Författarna är också tacksamma för Mr Octávio Chaveiro, Mr. Marco Costa och Carlos Lopes för deras hjälp vid framställning av djurprover som presenteras i detta dokument.

Slutligen skulle författarna tacka Ms Gracinda Menezes för hennes hjälp i alla de logistiska aspekter som hänför sig till djur förvärv och underhåll.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Skin Skribe Surgical Skin Marker Moore Medical 31456 https://www.mooremedical.com/index.cfm?/Skin-Skribe-Surgical-Skin-Marker/
&PG=CTL&CS=
HOM&FN=ProductDetail&
PID=1740&spx=1
Micro retractor Fine Science Tools RS-6540 http://www.finescience.de
Graeffe forceps 0.8 mm tips curved Fine Science Tools 11052-10 http://www.finescience.de
Acland clamps Fine Science Tools 00398 V http://www.merciansurgical.com/aclandclamps.pdf
Clamp applicator Fine Science Tools CAF-4 http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
High-Temperature Cautery Fine Science Tools AA03 http://www.boviemedical.com/products_aaroncauteries_high.asp
Micro-vessel dilators 11 cm 0.3 mm tips 00124 Fine Science Tools D-5a.2 http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Forceps 11cm angulated 00109 Fine Science Tools JFA-5b http://www.merciansurgical.com
Micro Jewellers Forceps 11 cm straight 00108 Fine Science Tools JF-5 http://www.merciansurgical.com
Acland Single Clamps B-1V (Pair) Fine Science Tools 396  http://www.merciansurgical.com
Micro Scissors Round Handles 15 cm Straight Fine Science Tools 67  http://www.merciansurgical.com
Iris Scissors 11.5 cm Curves EASY-CUT Fine Science Tools EA7613-11  http://www.merciansurgical.com
Mayo Scissors 14 cm Straight Chamfered Blades EASY-CUT Fine Science Tools EA7652-14  http://www.merciansurgical.com
Derf Needle Holders 12 cm TC Fine Science Tools 703DE12  http://www.merciansurgical.com
Monosyn 5-0 B.Braun 15423BR http://www.mcfarlanemedical.com.au/
15423BR/
SUTURE-MONOSYN-5_or_0-16MM-70CM-(C0023423)-BOX_or_36/pd.php
Ethilon 5-0 Ethicon W1618 http://www.farlamedical.co.uk/category_Ethilon-Suture-1917/Ethilon-Sutures/
Dafilon 10-0 B.Braun G1118099 http://www.bbraun.com/cps/rde/xchg/bbraun-com/hs.xsl/products.html?prid=PRID00000816
Veet Sensitive Skin Hair Removal Cream Aloe Vera and Vitamin E 100 ml Veet http://www.veet.co.uk/products/creams/creams/veet-hair-removal-cream-sensitive-skin/
Instrapac - Adson Toothed Forceps (Extra Fine) Fine Science Tools 7973 http://www.millermedicalsupplies.com
Castroviejo needle holders Fine Science Tools 12565-14 http://s-and-t.ne
Straight mosquito forcep Fine Science Tools 91308-12 http://www.finescience.de
Cutasept F skin disinfectant Bode Chemie http://www.productcatalogue.bode-chemie.com/products/skin/cutasept_f.php
Lacri-lube Eye Ointment 5g Express Chemist LAC101F http://www.expresschemist.co.uk/lacri-lube-eye-ointment-5g.html
Normal saline for irrigation Hospira, Inc. 0409-6138-22 http://www.hospira.com/en/search?q=sodium+chloride+irrigation%2C+usp&fq=contentType%3AProducts
Heparin Sodium Solution (5,000 IU/ml) B.Braun http://www.bbraunusa.com/products.html?prid=PRID00006982
Meloxicam Metacam Boehringer Ingelheim http://www.bi-vetmedica.com/species/pet/products.html
Heat Lamp HL-1 Harvard Apparatus 727562 https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/
haisku3_10001_11051_39108_-1_
HAI_ProductDetail_N_
37610_37611_37613
Homeothermic Blanket System with Flexible Probe Harvard Apparatus 507220F https://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/
haisku3_10001_11051_39108_-1_
HAI_ProductDetail_N_
37610_37611_37613
Dry heat sterilizer Quirumed 2432 http://www.quirumed.com/pt/material-de-esterilizac-o/esterilizadores
Surgical drapes Barrier 800430 http://www.molnlycke.com/surgical-drapes/
Biogel Surgical Gloves Medex Supply 30465 https://www.medexsupply.com
Operating microscope Leica Surgical Microsystems 10445319 http://www.leica-microsystems.com/products/surgical-microscopes/

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Morain, W. D. Plastic Surgery. Mathes, S. J. 1, Saunders. 27-34 (2006).
  2. Christoforou, D., Alaia, M., Craig-Scott, S. Microsurgical management of acute traumatic injuries of the hand and fingers. Bull Hosp Jt Dis. 71, (1), 6-16 (2013).
  3. Santoni-Rugiu, P., Sykes, P. J. A History of Plastic Surgery. Santoni-Rugiu, P., Sykes, P. J. Springer. 3 79-119 (2007).
  4. Tamai, S. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Springer-Verlag. Ch. 1 3-24 (2003).
  5. Bettencourt-Pires, M. A., et al. Anatomy and grafts - From Ancient Myths, to Modern Reality. Arch Anat. 2, (1), 88-107 (2014).
  6. Casal, D., Gomez, M. M., Antunes, P., Candeias, H., Almeida, M. A. Defying standard criteria for digital replantation: A case series. Int J Surg Case Rep. 4, (7), 597-602 (2013).
  7. Gomez, M. M., Casal, D. Reconstruction of large defect of foot with extensive bone loss exclusively using a latissimus dorsi muscle free flap: a potential new indication for this flap. J Foot Ankle Surg. 51, (2), 215-217 (2012).
  8. Plenter, R. J., Grazia, T. J. Murine heterotopic heart transplant technique. J Vis Exp. (89), (2014).
  9. Pichierri, A., et al. How to set up a microsurgical laboratory on small animal models: organization, techniques, and impact on residency training. Neurosurg Rev. 32, (1), 101-110 (2009).
  10. Klein, I., Steger, U., Timmermann, W., Thiede, A., Gassel, H. J. Microsurgical training course for clinicians and scientists at a German University hospital: a 10-year experience. Microsurgery. 23, (5), 461-465 (2003).
  11. Fukui, A. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Springer-Verlag. Ch. 1 35-43 (2004).
  12. Ad-El, D. D., Harper, A., Hoffman, L. A. Digital replantation teaching model in rats. Microsurgery. 20, (1), 42-44 (2000).
  13. Ruby, L. K., Greene, M., Risitano, G., Torrejon, R., Belsky, M. R. Experience with epigastric free flap transfer in the rat: technique and results. Microsurgery. 5, (2), 102-104 (1984).
  14. Edmunds, M. C., Wigmore, S., Kluth, D. In situ transverse rectus abdominis myocutaneous flap: a rat model of myocutaneous ischemia reperfusion injury. J Vis Exp. (76), (2013).
  15. Trujillo, A. N., Kesl, S. L., Sherwood, J., Wu, M., Gould, L. J. Demonstration of the rat ischemic skin wound model. J Vis Exp. (98), (2015).
  16. Siemionow, M. Z. Plastic and Reconstructive Surgery: Experimental models and research designs. Siemionow, M. Z. Springer - Verlag. Ch. 1-7 3-67 (2015).
  17. Petry, J. J., Wortham, K. A. The anatomy of the epigastric flap in the experimental rat. Plast Reconstr Surg. 74, (3), 410-413 (1984).
  18. Tamai, S., Usui, M., Yoshizu, T. Experimental and Clinical Reconstructive Microsurgery. 6, Springer-Verlag. Ch. 6 111-114 (2004).
  19. Zhang, F., et al. Microvascular transfer of the rectus abdominis muscle and myocutaneous flap in rats. Microsurgery. 14, (6), 420-423 (1993).
  20. Tonken, H. P., et al. Microvascular transplant of the gastrocnemius muscle in rats. Microsurgery. 14, (2), 120-124 (1993).
  21. Miyamoto, S., et al. Free pectoral skin flap in the rat based on the long thoracic vessels: a new flap model for experimental study and microsurgical training. Ann Plast Surg. 61, (2), 209-214 (2008).
  22. Nasir, S., Aydin, A., Kayikcioglu, A., Sokmensuer, C., Cobaner, A. New experimental composite flap model in rats: gluteus maximus-tensor fascia lata osteomuscle flap. Microsurgery. 23, (6), 582-588 (2003).
  23. Coskunfirat, O. K., Islamoglu, K., Ozgentas, H. E. Posterior thigh perforator-based flap: a new experimental model in rats. Ann Plast Surg. 48, (3), 286-291 (2002).
  24. Ozkan, O., et al. A new flap model in rats: iliac osteomusculocutaneous flap. Ann Plast Surg. 47, (2), 161-167 (2001).
  25. Padubidri, A. N., Browne, E. Modification in flap design of the epigastric artery flap in rats--a new experimental flap model. Ann Plast Surg. 39, (5), 500-504 (1997).
  26. Strauch, B., Murray, D. E. Transfer of composite graft with immediate suture anastomosis of its vascular pedicle measuring less than 1 mm. in external diameter using microsurgical techniques. Plast Reconstr Surg. 40, (4), 325-329 (1967).
  27. Green, C. E. Anatomy of the Rat. First edn. Hafner Publishing Company. 124-153 (1968).
  28. Greene, E. C. Anatomy of the rat. Hafner. New York. (1959).
  29. Langworthy, O. R. A morphological study of the panniculus carnosus and its genetical relationship to the pectoral musculature in rodents. Am J Anat. 35, (2), 283-302 (1925).
  30. Popesko, P., Ratjová, V., Horák, J. A Colour Atlas of the Anatomy of Small Laboratory Animals. 2, Saunders. 13-104 (1992).
  31. Brown, S. H., Banuelos, K., Ward, S. R., Lieber, R. L. Architectural and morphological assessment of rat abdominal wall muscles: comparison for use as a human model. J Anat. 217, (3), 196-202 (2010).
  32. Harder, Y., et al. Ischemic tissue injury in the dorsal skinfold chamber of the mouse: a skin flap model to investigate acute persistent ischemia. J Vis Exp. (93), e51900 (2014).
  33. Cox, G. W., Runnels, S., Hsu, H. S., Das, S. K. A comparison of heparinised saline irrigation solutions in a model of microvascular thrombosis. Br J Plast Surg. 45, (5), 345-348 (1992).
  34. Gurunluoglu, R., Siemionow, M. Z. Plastic and Reconstructive Surgery: Experimental models and research designs. Siemionow, M. Z. Spronger. Ch. 6 53-62 (2015).
  35. Nasir, S. Plast Reconstr Surg. Springer. 227-236 (2015).
  36. Parsa, F. D., Spira, M. Evaluation of anastomotic techniques in the experimental transfer of free skin flaps. Plast Reconstr Surg. 63, (5), 696-699 (1979).
  37. Dunn, R. M., Huff, W., Mancoll, J. The Rat Rectus Abdominis Myocutaneous Flap: A True Myocutaneous Flap Model. Ann Plast Surg. 31, (4), 352-357 (1993).
  38. Özkan, Ö, et al. A new flap model in rats: iliac osteomusculocutaneous flap. Ann Plast Surg. 47, (2), 161-167 (2001).
  39. Ozkan, O., Koshima, I., Gonda, K. A supermicrosurgical flap model in the rat: a free true abdominal perforator flap with a short pedicle. Plast Reconstr Surg. 117, (2), 479-485 (2006).
  40. Dorsett-Martin, W. A. Rat models of skin wound healing: a review. Wound Repair Regen. 12, (6), 591-599 (2004).
  41. Ghali, S., et al. Treating chronic wound infections with genetically modified free flaps. Plast Reconstr Surg. 123, (4), 1157-1168 (2009).
En modell av gratis Tissue Transfer: The Rat Epigastrisk Free Flap
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Casal, D., Pais, D., Iria, I., Mota-Silva, E., Almeida, M. A., Alves, S., Pen, C., Farinho, A., Mascarenhas-Lemos, L., Ferreira-Silva, J., Ferraz-Oliveira, M., Vassilenko, V., Videira, P. A., Gory O'Neill, J. A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap. J. Vis. Exp. (119), e55281, doi:10.3791/55281 (2017).More

Casal, D., Pais, D., Iria, I., Mota-Silva, E., Almeida, M. A., Alves, S., Pen, C., Farinho, A., Mascarenhas-Lemos, L., Ferreira-Silva, J., Ferraz-Oliveira, M., Vassilenko, V., Videira, P. A., Gory O'Neill, J. A Model of Free Tissue Transfer: The Rat Epigastric Free Flap. J. Vis. Exp. (119), e55281, doi:10.3791/55281 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter