Summary

Påvisning af lungetumorprogression hos mus ved ultralydsscanning

Published: February 27, 2020
doi:

Summary

Denne protokol beskriver de skridt, der er taget for at fremkalde KRAS lungetumorer i mus samt kvantificering af dannede tumorer ved ultralydsscanning. Små tumorer visualiseres i tidlige tidspunkter som B-linjer. På senere tidspunkter, relative tumor volumen målinger opnås ved måleværktøjet i ultralyd software.

Abstract

Med ~ 1,6 millioner ofre om året, lungekræft bidrager enormt til den verdensomspændende byrde af kræft. Lungekræft er til dels drevet af genetiske ændringer i onkogener som KRAS oncogene, som udgør ~ 25% af lungekræft tilfælde. Vanskeligheden ved terapeutisk målretning KRAS-drevet lungekræft skyldes til dels at have dårlige modeller, der kan efterligne udviklingen af sygdommen i laboratoriet. Vi beskriver en metode, der tillader relativ kvantificering af primære KRAS lungetumorer i en Cre-inducible LSL-KRAS G12D musemodel via ultralydsscanning. Denne metode er afhængig af lysstyrke (B)-mode erhvervelse af lunge parenkym. Tumorer, der oprindeligt er dannet i denne model er visualiseret som B-linjer og kan kvantificeres ved at tælle antallet af B-linjer til stede i de erhvervede billeder. Disse ville repræsentere den relative tumor nummer dannet på overfladen af musen lunge. Som de dannede tumorer udvikle sig med tiden, de opfattes som dybe kløfter i lungerne parenkym. Da omkredsen af den dannede tumor er veldefineret, beregning af den relative tumor volumen opnås ved at måle længden og bredden af tumoren og anvende dem i formlen anvendes til tumor kaliper målinger. Ultralydsscanning er en ikke-invasiv, hurtig og brugervenlig teknik, der ofte bruges til tumorkvantificeringer i mus. Selv om artefakter kan forekomme, når de opnår ultralydbilleder, har det vist sig, at denne billeddannelsesteknik er mere fordelagtig for tumorkvantificeringer i mus sammenlignet med andre billeddannelsesteknikker såsom computertomografi (CT) billeddannelse og bioluminescensscanning (BLI). Forskere kan undersøge nye terapeutiske mål ved hjælp af denne teknik ved at sammenligne lungetumor indledning og progression mellem forskellige grupper af mus.

Introduction

Som den hyppigste årsag til kræft-relaterede dødsfald på verdensplan, lungekræft forbliver ildfaste til behandlinger, primært på grund af mangel på relevante prækliniske modeller, der kan opsummere sygdommen i laboratoriet1. Omkring 25% af lungekræft tilfælde skyldes mutationer i KRAS oncogene2. KRAS-drevet lungekræft er ofte forbundet med dårlig prognose og lav respons på behandling, fremhæver betydningen af yderligere undersøgelser i denne sygdom2.

Vi optimerede en metode, der gør det muligt at evaluere lungetumorvæksten i realtid i KRAS lungekræft-induceret immun-kompetente mus. Vi bruger Lox-Stop-Lox KRAS G12D (LSL-KRAS G12D) mus, hvor KRAS G12D oncogene kan udtrykkes ved Cre lentivirale vektorer3,4. Disse vektorer er drevet af carbonic anhydrase 2, så virusinfektion en der skal finde sted specifikt i alveolær epitelceller5. Hertil kommer, at fremskynde indledningen og progression af lungetumorer, den lentivirale konstruktion udtrykker også P53 shRNA fra en U6/H1 promotor (den lentivirale konstruktion heri vil blive omtalt som Ca2Cre-shp53)6. Den biologiske relevans af denne metode ligger i det naturlige forløb af lungetumor udvikling hos mus i modsætning til xenografts af ikke-ortotopiske tumorer i mus. En hindring ved hjælp af ortotopisk metode overvåger lungetumor vækst uden at ofre musen. For at overvinde denne begrænsning optimerede vi ultralydsscanning en e-scanning for at muliggøre analyse af lungetumorprogression i todimensionel (2D) tilstand i denne musemodel. Påbegyndelse af tumorer på 7 uger efter infektion afspejles som B-linjer i ultralyd billeder, som kan tælles, men vil ikke afspejle det nøjagtige antal tumorer til stede på lungerne. B-linjer er karakteriseret ved laser-lignende lodrette hvide linjer som følge af pleural linje i lungeparenkym7,8. Store tumorer kan visualiseres efter 18 ugers infektion. Den relative mængde af disse tumorer er kvantificeret ved 2D målinger udført på ultralyd.

Denne metode er optimal for forskere, der undersøger effekten af farmakologiske lægemidler på lungetumorvækst i LSL-KRAS G12D musemodellen. Desuden kan lungetumor progression sammenlignes mellem mus med forskellige genetiske slægter, at undersøge betydningen af tilstedeværelsen eller fraværet af visse gener / proteiner på udviklingen af lungetumor volumen.

Protocol

Dyreforsøg blev udført i overensstemmelse med CGill Universitys institutionelle dyrepleje- og anvendelseskomité (IACUC), og procedurerne blev godkendt af McGill Universitys dyrevelfærdskomité (protokol om anvendelse af dyr # 2009-5754). 1. Generation af CA2Cre-shp53 Lentiviral Titre BEMÆRK: Følgende protokol er den samme som den, der er beskrevet i Xia et al.6, med mindre ændringer. Fremstilling af lentivirus (for 15 cm x 10…

Representative Results

Efter at have opnået en lentiviral infektiøs titer på ~ 2 x 106 TU/ml (figur 1) blev Ca2Cre-shp53 lentivirus intratrachealt injiceret, da LSL-KRAS G12D-mus nåede en passende alder (6−8 uger)9. Ultralydsscanning blev udført efter 7 ugers infektion ved indledning af tumorer (Figur 3B). Billeddannelse blev udført på 7 uger for at inkludere de forskellige typer af prækursorlæsioner, der forekommer i LSL-…

Discussion

Vi demonstrerer en metode, der kan vurdere lungetumorvækst i Cre-inducible LSL-KRAS G12D musemodel ved ultralyd. Denne metode kan bruges til at vurdere effekten af farmakologiske hæmmere på lungetumor vækst. Det kan også bruges til at sammenligne lungetumor vækst mellem mus med forskellige genetiske baggrunde. Ved hjælp af denne teknik kræver ikke specialiserede beregningsmæssige færdigheder, men det er vigtigt at være systematisk i antallet af rammer, der anvendes til analyse for at give mulighed for en korre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. I. Verma for den lentivirale Ca2Cre-shp53 vektor. Arbejdet blev støttet af midler fra canadian Institutes of Health Research (CIHR MOP 137113) til AEK.

Materials

0.45 μm Acrodisc Syringe Filters Pall Corporation PN 4614
100-mm Cell Cultre Plate CELLSTAR 664 160
6-well Cell Culture Plate CELLSTAR 657 160
Amicon Ultra – 15 Centrifugal Filter Units Merck Millipore Ltd. UFC910024
BD LSR-Fortessa BD Biosciences 649225B 3024
CA2Cre-shp53 lentiviral vector From Dr. I Verma Laboratory
DMEM Multicell 319-005-CL
FBS Multicell 80450
LSL-KRASG12D mouse JAX Mice 8179
MX550S; Centre Transmit: 40 MHz FUJIFILM VisualSonics 51070
OptiMEM gibco 11058-021
Pen/strep Multicell 450-201-EL
pMD2.G Addgene 12259
PsPAX2 Addgene 12260
VEVO-3100 FUJIFILM VisualSonics 51072-50

References

  1. Eisenstein, M. Personalized medicine: Special treatment. Nature. 513, 8 (2014).
  2. Karachaliou, N., et al. KRAS mutations in lung cancer. Clinical Lung Cancer. 14 (3), 205-214 (2013).
  3. Jackson, E. L., et al. Analysis of lung tumor initiation and progression using conditional expression of oncogenic K-ras. Genes & Development. 15 (24), 3243-3248 (2001).
  4. DuPage, M., Dooley, A. L., Jacks, T. Conditional mouse lung cancer models using adenoviral or lentiviral delivery of Cre recombinase. Nature Protocol. 4 (7), 1064-1072 (2009).
  5. Chen, J., Lecuona, E., Briva, A., Welch, L. C., Sznajder, J. I. Carbonic anhydrase II and alveolar fluid reabsorption during hypercapnia. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 38 (1), 32-37 (2008).
  6. Xia, Y., et al. Reduced cell proliferation by IKK2 depletion in a mouse lung-cancer model. Nature Cell Biology. 17 (4), 532 (2015).
  7. Demi, L., et al. Determination of a potential quantitative measure of the state of the lung using lung ultrasound spectroscopy. Scientific Reports. 7, 12746 (2017).
  8. Mohanty, K., et al. Characterization of the Lung Parenchyma Using Ultrasound Multiple Scattering. Ultrasound in Medicine and Biology. 43, 993-1003 (2017).
  9. Vandivort, T. C., An, D., Parks, W. C. An Improved Method for Rapid Intubation of the Trachea in Mice. Journal of Visualized Experiments. (108), e53771 (2016).
  10. Saraogi, A. Lung ultrasound: Present and future. Lung India. 32 (3), 250-257 (2015).
  11. Gargani, L., Volpicelli, G. How I do it: lung ultrasound. Cardiovascular Ultrasound. 12, 25 (2014).
  12. Soldati, G., et al. On the Physical Basis of Pulmonary Sonographic Interstitial Syndrome. Journal of Ultrasound in Medicine. 35 (10), 2975 (2016).
  13. Raes, F., et al. High-Resolution Ultrasound and Photoacoustic Imaging of Orthotopic Lung Cancer in Mice: New Perspectives for Onco-Pharmacology. PLoS One. 11 (4), 15 (2016).
  14. Lakshman, M., Needles, A. Screening and quantification of the tumor microenvironment with micro-ultrasound and photoacoustic imaging. Nature Methods. 12 (4), 372 (2015).
  15. Chichra, A., Makaryus, M., Chaudhri, P., Narasimhan, M. Ultrasound for the Pulmonary Consultant. Clinical Medicine Insights: Circulatory Respiratory and Pulmonary Medicine. 10, 9 (2016).

Play Video

Cite This Article
Ghaddar, N., Wang, S., Michaud, V., Kazimierczak, U., Ah-son, N., Koromilas, A. E. Detection of Lung Tumor Progression in Mice by Ultrasound Imaging. J. Vis. Exp. (156), e60565, doi:10.3791/60565 (2020).

View Video