यहां, हम कटे एक्सोन और उनके सिनेप्स के रूपात्मक और कार्यात्मक संरक्षण का मूल्यांकन करने के लिए ड्रोसोफिला मेलानोगास्टर में तीन सरल चोट-प्रेरित एक्सोन डिजनरेशन (एक्सोन डेथ) परख करने के लिए प्रोटोकॉल प्रदान करते हैं।
एक्सॉन डिजनरेशन न्यूरोडीजेनेरेटिव बीमारी में एक साझा विशेषता है और जब तंत्रिका तंत्र यांत्रिक या रासायनिक बलों द्वारा चुनौती दी जाती है। हालांकि, एक्सॉन पतन अंतर्निहित आणविक तंत्र के बारे में हमारी समझ सीमित रहती है । चोट से प्रेरित एक्सॉन डिजनरेशन एक सरल मॉडल के रूप में कार्य करता है अध्ययन करने के लिए कैसे कटे एक्सोन अपनी अविधानसभा (एक्सॉन मौत) को निष्पादित करते हैं। हाल के वर्षों में, एक विकासवादी संरक्षित एक्सॉन मौत संकेत झरना मक्खियों से स्तनधारियों के लिए पहचान की गई है, जो अलग एक्सन के लिए चोट के बाद पतित करने के लिए आवश्यक है । इसके विपरीत, तनु हुआ एक्सॉन डेथ सिग्नलिंग परिणामस्वरूप कटे हुए एक्सोन और उनके सिनेप्स के रूपात्मक और कार्यात्मक संरक्षण में परिणाम होता है। यहां, हम तीन सरल और हाल ही में विकसित प्रोटोकॉल पेश करते हैं जो एक्सोनल आकृति विज्ञान, या कटे हुए अक्षत के अक्षीय और सिनैप्टिक फ़ंक्शन के अवलोकन के लिए अनुमति देते हैं जिन्हें न्यूरोनल सेल शरीर से काट दिया गया है, फल फ्लाई ड्रोसोफिलामें। पंख में आकृति विज्ञान देखा जा सकता है, जहां एक आंशिक चोट के परिणामस्वरूप एक ही तंत्रिका बंडल के भीतर अघायल नियंत्रण अक्षों के साथ-साथ एक्सॉन मौत होती है। वैकल्पिक रूप से, मस्तिष्क में एक्सोनल आकृति विज्ञान भी देखा जा सकता है, जहां पूरे तंत्रिका बंडल एंटीनाल एब्लेशन से शुरू होने वाली एक्सॉन मौत से गुजरता है। कटे हुए एक्सोन और उनके सिनेप्स के कार्यात्मक संरक्षण का मूल्यांकन एक साधारण ऑप्टोजेनेटिक दृष्टिकोण द्वारा किया जा सकता है, जिसमें एक के बाद सिनैप्टिक ग्रूमिंग व्यवहार किया जाता है। हम एक हाईवायर लॉस-ऑफ-फंक्शन म्यूटेशन का उपयोग करके और अधिक व्यक्त करने वाले dnmnatद्वारा उदाहरण पेश करते हैं, दोनों सप्ताह से महीनों तक एक्सोन मौत में देरी करने में सक्षम हैं। महत्वपूर्ण बात, इन प्रोटोकॉल चोट से परे इस्तेमाल किया जा सकता है; वे न्यूरोनल रखरखाव कारकों, एक्सोनल परिवहन और एक्सोनल माइटोकॉन्ड्रिया के लक्षण वर्णन की सुविधा प्रदान करते हैं।
जीवन भर निरंतर तंत्रिका तंत्र कार्य के लिए न्यूरॉन्स की रूपात्मक अखंडता आवश्यक है। न्यूरोनल मात्रा का विशाल बहुमत एक्सॉन1,2द्वारा लिया जाता है । इस प्रकार विशेष रूप से लंबे अक्षों का जीवन भर का रखरखाव तंत्रिका तंत्र के लिए एक प्रमुख जैविक और जैव ऊर्जावान चुनौती है। कई एक्सोनल-इंट्रानसिक और ग्लियल-एक्सट्रिन सपोर्ट मैकेनिज्म की पहचान की गई है, जिससे जीवन भर अक्षीय अस्तित्व सुनिश्चित किया गया है । उनकी हानि के परिणामस्वरूप एक्सॉन डिजनरेशन3होता है, जो तंत्रिका तंत्र की एक आम विशेषता है जिसे रोग में चुनौती दी जा रही है, और यांत्रिक या रासायनिक बलों द्वारा4,5। हालांकि, एक्सॉन पतन के अंतर्निहित आणविक तंत्र किसी भी संदर्भ में खराब समझ में आते रहते हैं, जिससे एक्सॉन हानि को चुनौतीपूर्ण बनाने के लिए प्रभावोत्पादक उपचार का विकास हो ताहै। इन न्यूरोलॉजिकल स्थितियों के खिलाफ प्रभावी उपचारों का विकास महत्वपूर्ण है, क्योंकि वे हमारे समाज में एक भारी बोझ पैदाकरतेहैं ।
चोट से प्रेरित एक्सॉन डिजनरेशन एक सरल मॉडल के रूप में कार्य करता है अध्ययन करने के लिए कैसे कटे एक्सोन अपने स्वयं के अassemblyपरे । 1850 में ऑगस्टस वालर के नाम से खोजा गया और नाम दिया गया, वालरियन डिजनरेशन (WD) एक छाता शब्द है जिसमें दो अलग, आणविक रूप से विभाज्य प्रक्रियाएं7शामिल हैं। सबसे पहले, अक्षीय चोट के बाद, अपने सेल निकायों से अलग होने वाले एक्सोन सक्रिय रूप से चोट8के बाद एक दिन के भीतर एक विकासवादी संरक्षित एक्सोन डेथ सिग्नलिंग झरना के माध्यम से अपने स्वयं के आत्म-विनाश (एक्सोन डेथ) को निष्पादित करते हैं। दूसरा, आसपास के ग्लिया और विशेष phagocytes संलग्न है और तीन से पांच दिनों के भीतर जिसके परिणामस्वरूप अक्षीय मलबे स्पष्ट । एक्सोन डेथ सिग्नलिंग के क्षीण होने के परिणामस्वरूप कटे हुए अक्षों9,10,11,12को हफ्तों तक संरक्षित रखा जाता है , जबकि ग्लियल छाई के क्षीण होने से अक्षत का मलबा खत्म हो जाता है जो विवो13,14,,15में हफ्तों तक बना रहता है ।
मक्खियों, चूहों, चूहों और जेब्राफिश में अनुसंधान से पता चला कि कई विकासवादी संरक्षित और एक्सोन मौत के आवश्यकमध्यस्थ8संकेत । एक्सॉन डेथ म्यूटेंट में कटे हुए एक्सोन और सिनेप्स होते हैं जो एक्सॉन डेथ से गुजरने में नाकाम होते हैं; सेल बॉडी सपोर्ट,9,,,,,10,12,,13,16,17,18,19,20 ,122121,22,23 ,23. इन मध्यस्थों की खोज और लक्षण वर्णन ने एक आणविक मार्ग की परिभाषा का नेतृत्व किया जो एक्सॉन मौत को क्रियांवित करता था। महत्वपूर्ण बात यह है कि एक्सोन डेथ सिग्नलिंग न केवल तब सक्रिय होती है जब एक्सन को काटा जाता है, कुचल दिया जाता है या24,25फैला होता है । यह न्यूरोलॉजिकल स्थितियों के विशिष्ट पशु मॉडलों में भी योगदानकर्ता प्रतीत होता है (उदाहरण के लिए, जहां एक्सोन चोट-स्वतंत्रतरीकेसे पतित होते हैं, फिर भी लाभकारी परिणामों की एक श्रृंखला के साथ4,,8)। इसलिए, यह समझना कि चोट के बाद एक्सॉन डेथ कैसे एक्सॉन डिजनरेशन निष्पादित करता है, यह समझना एक साधारण चोट मॉडल से परे अंतर्दृष्टि प्रदान कर सकता है; यह भी चिकित्सकीय हस्तक्षेप के लिए लक्ष्य प्रदान कर सकता है ।
फल मक्खी ड्रोसोफिला मेलानोगास्टर (ड्रोसोफिला)एक्सॉन डेथ सिग्नलिंग के लिए एक अमूल्य प्रणाली साबित हुई है। मक्खी में शोध से चार आवश्यक विकासवादी रूप से संरक्षित एक्सॉन मृत्यु जीन: हाईवायर (हिव)11,,14, dnmnat12,,26, dsarm10 और axundead (axed)12से पता चला । इन मध्यस्थों का संशोधन – हिव, डीएसआर्म और सोनेके नुकसान-समारोह उत्परिवर्तन, और dnmnat की अधिक अभिव्यक्ति – शक्तिशाली मक्खी के जीवन काल के लिए कुल्हाड़ी मौत ब्लॉक। जबकि कटे जंगली प्रकार के एक्सोन 1 दिन के भीतर कुल्हाड़ी मौत से गुजरते हैं, कटे एक्सोन और उनके सिनेप्स की कमी हिव, डीएसआर्म या कुल्हाड़ी न केवल रूपात्मक रूप से बनी हुई है, बल्कि कार्यात्मक रूप से हफ्तों तक संरक्षित भी है। क्या कार्यात्मक संरक्षण भी dnmnat के उच्च स्तर के माध्यम से प्राप्त किया जा सकता है निर्धारित किया जाना बाकी है ।
यहां, हम कोशिका शरीर के समर्थन के अभाव में एक्सॉन मृत्यु (उदाहरण के लिए, कटे एक्सन और उनके सिनेप्स के आकृति विज्ञान और कार्य) का अध्ययन करने के लिए तीन सरल और हाल ही में विकसित प्रोटोकॉल पेश करेंगे। हम प्रदर्शित करते हैं कि कटे हुए अक्षों में मृत्यु मृत्यु के परिणाम कैसे कटे हुए एक्सोन होते हैं जो एक हिव हानि-कार्य उत्परिवर्तन(hiw‧N)के साथ संरक्षित होते हैं और कैसे तनु एक्सोन मृत्यु के परिणामस्वरूप कटे हुए एक्सोन और सिनेप्स होते हैं जो कम से कम 7 दिनों तक कार्यात्मक रूप से संरक्षित रहते हैं, जिसमें dnmnat (dnmnatOE)की अधिक अभिव्यक्ति होती है। ये प्रोटोकॉल केंद्रीय, या परिधीय तंत्रिका तंत्र (सीएनएस और पीएन, क्रमशः)13,,14में व्यक्तिगत एक्सोनल और सिनैप्टिक आकृति विज्ञान के अवलोकन के लिए अनुमति देते हैं, जबकि सीएनएस में कटे हुए एक्सोन और उनके सिनेप्स के कार्यात्मक संरक्षण को व्यवहारपठन-परखेके रूप में संवारने के साथ संयोजन के साथ एक सरल ऑप्टोजेनेटिक सेटअप के उपयोग से कल्पना की जा सकती है।
यहां वर्णित प्रोटोकॉल आकृति विज्ञान के मजबूत और प्रजनन योग्य अवलोकन के साथ -साथ एक्सोन के कार्य और उनके सिनेप्स को ड्रोसोफिलामें अपने कोशिका निकायों से अलग करने की अनुमति देते हैं। पंख परख पीएनएस14में अघायल नियंत्रण अक्षों के साथ-साथ एक्सोन डेथ के अवलोकन की सुविधा प्रदान करता है, जबकि एंटीनाल परख जीएफपी-लेबल वाले एक्सोन और उनके सिनेप्स के पूरे तंत्रिका बंडलों के अवलोकन की सुविधा प्रदान करता है, ताकि मस्तिष्क (सीएनएस)12में आकृति विज्ञान और कार्य दोनों का आकलन किया जा सके। रूपविज्ञान का अध्ययन करने के लिए प्रत्येक दृष्टिकोण के लिए महत्वपूर्ण कदम और कुछ फायदे हैं जिन्हें प्रयोगों को डिजाइन करते समय ध्यान में रखना होगा।
विंग में पीएनएस में एक्सॉन आकृति विज्ञान का निरीक्षण करने के लिए, विंग की पारदर्शिता के कारण प्रयोगों को आसानी से किया जा सकता है: यह विच्छेदन और इम्यूनोहिस्टोकेमिस्ट्री को बाईपास करने की अनुमति देता है। हालांकि, निर्धारण की कमी के कारण, पंखों को14बढ़ते के तुरंत बाद चित्रित करना होगा। वर्तमान में, दो अलग-अलग Gal4 ड्राइवरों का अक्सर उपयोग किया जाता है, या तो ok371Gal4 या dpr1Gal4,और दोनों संदर्भ14,,26को डिजनुन करने के लिए अलग दृष्टिकोण प्रदान करते हैं। कुछ न्यूरॉन्स की विरल लेबलिंग की सिफारिश की जाती है, “दमनकारी सेल मार्कर (मार्कम) के साथ मोज़ेक विश्लेषण”14,,31का उपयोग करके, क्योंकि एक्सोनल मॉर्फोलॉजी का संकल्प अभूतपूर्व है। इसके विपरीत, पंखों में सिनेप्स का अवलोकन संभव नहीं है, वे मक्खियों के छाती के अंदर वेंट्रल तंत्रिका कॉर्ड में स्थित हैं। इसके अलावा, अतिरिक्त एक्सोनल मार्कर इम्यूनोहिस्टोकेमिस्ट्री द्वारा कल्पना नहीं की जा सकती: मोमी छल्ली अंतर्निहित ऊतक में फिक्सेटिव और एंटीबॉडी के प्रसार के लिए असंभव बनाता है।
सीएनएस में एक्सॉन और सिनेप्स आकृति विज्ञान का निरीक्षण करने के लिए, मस्तिष्क विच्छेदन को किया जाना चाहिए। वे इम्यूनोहिस्टोकेमिस्ट्री के उपयोग से अतिरिक्त एक्सोनल और सिनैप्टिक मार्कर की कल्पना करने का लाभ प्रदान करते हैं, और दृश्य10,,13के समान क्षेत्र में एक्सोन के साथ सिनेप्स देखे जा सकते हैं। विशेषता घ्राण रिसेप्टर न्यूरॉन (ORN) Gal4 ड्राइवरों का एक बड़ा संग्रह आसानी से उपलब्धहै 32,और अक्सर, OR22aGal4 पसंद का चालक है। एंटीनाल एब्लेशन के लिए, OR22a न्यूरॉन्स के सेल निकायों 3खंड (चित्रा 2बी)में रखे जाते हैं । फ्लोरेसेंस तीव्रता आधारित क्वांटिफिकेशन का उपयोग एक्सॉन या सिनेप्स13के पतन की मात्रा निर्धारित करने के लिए किया जाता है। इसके विपरीत, प्रयोग मस्तिष्क विच्छेदन और एंटीबॉडी धुंधला के कारण समय लेने वाले होते हैं।
एक्सोटॉमी के बाद एक्सोनल और सिनैप्टिक फंक्शन की कल्पना करने के लिए, ऑप्टोजेनेटिक्स का उपयोग एंटीनाल ग्रूमिंग को ट्रिगर करने के लिए किया जाता है: यह कटे हुए एक्सोन और उनके सिनेप्स12के कार्यात्मक संरक्षण के लिए एक रीडआउट के रूप में कार्य करता है। ग्रूमिंग सर्किट और इसी संवेदी, अंतर और मोटरन्यूरॉन Gal4 ड्राइवरों को अच्छी तरह से29,,30वर्णित किया गया है । GMR60E02Gal4 जॉन्स्टन के अंग (JO) संवेदी न्यूरॉन्स का एक सबसेट लेबल है, जो आवश्यक है और29,,30को संवारने के लिए पर्याप्त है । एंटीनाल एब्लेशन के लिए, जो न्यूरॉन्स के सेल निकायों को 2एंटीनाल सेगमेंट(चित्रा 2बी)में स्थित किया जाता है। एक ऑप्टोजेनेटिक सेटअप आसानी से खरोंच से बनाया जा सकता है, या एक मौजूदा सेटअप समायोजित किया जा सकता है। महत्वपूर्ण बात, प्रयोगों को एक अंधेरे कमरे में किया जाना है, और मक्खियों इस प्रकार एक अवरक्त (आईआर) एलईडी स्पॉटलाइट के साथ कल्पना की जाती है। जब एक चैनल के रूप में CsChrimson का उपयोग कर, यह सभी ट्रांस रेटिना और एक लाल एलईडी स्पॉटलाइट के साथ भोजन की आपूर्ति के लिए जो न्यूरॉन्स29सक्रिय महत्वपूर्ण है । वैकल्पिक रूप से, नीली रोशनी के प्रति संवेदनशील चैनल और एक नीली एलईडी स्पॉटलाइट, या TrpA1 चैनल और तापमान का उपयोग न्यूरोनल एक्टिवेशन29,,33के लिए किया जा सकता है। सौंदर्य व्यवहार की मात्रा पहले ही12,29बताई जा चुकी है .
जब इन परखों का उपयोग विशेष रूप से एक्सॉन मृत्यु का अध्ययन करने के लिए किया जाता है, तो यह ध्यान रखना महत्वपूर्ण है कि समय के साथ रूपात्मक या कार्यात्मक संरक्षण का फेनोटाइप मजबूत होना चाहिए। ऐसे मामले हैं जहां एक्सोन मृत्यु34,,35में लगातार अभी तक कम स्पष्ट फेनोटाइप की ओर ले जाती है, और क्या इस तरह का फेनोटाइप कार्यात्मक संरक्षण में अनुवाद करता है, निर्धारित किया जाना बाकी है।
ड्रोसोफिला लार्वा के विकास के दौरान न्यूरॉन्स में एक्सोन डेथ फेनोटाइप भी देखा गया है, जहां11,,23घायल होने के बजाय नसों को कुचल दिया गया था। यहां, हमने विशेष रूप से वयस्क ड्रोसोफिला न्यूरॉन्स पर ध्यान केंद्रित किया जो विकास पूरा करते थे। इस संदर्भ में आरएनए हस्तक्षेप३६,या ऊतक-विशिष्ट CRISPR/Cas9३७ का उपयोग आसानी से लागू किया जा सकता है । महत्वपूर्ण बात यह है कि उपरोक्त तकनीकों का उपयोग एक एक्सॉन डेथ स्वतंत्र संदर्भ में किया जा सकता है: वे न्यूरोनल रखरखावकारकों 38,एक्सोनल परिवहन39,आयु-निर्भर एक्सोनल माइटोकॉन्ड्रिया के लक्षण वर्णन को सुविधाजनक बनाते हैं,40बदलते हैं, और एक्सोनल माइटोकॉन्ड्रिया41की आकृति विज्ञान।
The authors have nothing to disclose.
हम योगदान के लिए पूरे न्यूकोम लैब का शुक्रिया अदा करना चाहेंगे । इस काम को स्विस नेशनल साइंस फाउंडेशन (एसएनएसएफ) के असिस्टेंट प्रोफेसर अवार्ड (ग्रांट 176855), इंटरनेशनल फाउंडेशन फॉर रिसर्च इन पैराप्लेजिया (आईआरपी, ग्रांट पी180), एसएनएसएफ स्पार्क (ग्रांट 190919) और यूनिवर्सिटी ऑफ लुसाने से समर्थन देकर सपोर्ट किया गया था और एलजेएन को मौलिक तंत्रिका विज्ञान विभाग (एटडी वॉड) ।
Tweezers (high precision, ultra fine) | EMS | 78520-5 | Antennal ablation |
MicroPoint Scissors (5-mm cutting edge) | EMS | 72933-04 | Wing injury |
1.5 mL microcentrifuge tube | Eppendorf | 30120086.0000 | |
35mm tissue culture dish | Sarstedt | 83.3900 | |
Cover Slips, Thickness 1 | Thermo Scientific™ | BB02400600A113MNT0 | |
Superfrost Microscope Slides | Thermo Scientific™ | AA00008032E00MNT10 | |
High-Sensitivity USB 2.0 CMOS Camera, 1280 x 1024, Global Shutter | Thorlabs | DCC1240M | Camera setup |
SM1 Retaining Ring for Ø1" Lens Tubes and Mounts | Thorlabs | SM1RR | |
25mm 1/1.2" C mount Lens | Tamron | M112FM25 | |
Adapter with External M27 x 0.5 Threads and Internal SM1 Threads | Thorlabs | SM1A36 | |
Aspheric Condenser Lens, Ø25 mm, f=20.1 mm, NA=0.60, ARC: 650-1050 nm | Thorlabs | ACL2520U-B | |
Ø25.0 mm Premium Longpass Filter, Cut-On Wavelength: 700 nm | Thorlabs | FELH0700 | |
SM1 (1.035"-40) Coupler, External Threads, 0.5" Long | Thorlabs | SM1T2 | |
SM1 Lens Tube Without External Threads, 1" Long, Two Retaining Rings Included | Thorlabs | SM1M10 | |
850 nm, 900 mW (Min) Mounted LED, 1200 mA | Thorlabs | M850L3 | IR LED spotlight |
SM1 (1.035"-40) Coupler, External Threads, 0.5" Long | Thorlabs | SM1T2 | |
SM1 Lens Tube Without External Threads, 2" Long, Two Retaining Rings Included | Thorlabs | SM1M20 | |
Aspheric Condenser Lens, Ø25 mm, f=20.1 mm, NA=0.60, ARC: 650-1050 nm | Thorlabs | ACL2520U-B | |
Ø25.0 mm Premium Longpass Filter, Cut-On Wavelength: 850 nm | Thorlabs | FELH0850 | |
SM1 Retaining Ring for Ø1" Lens Tubes and Mounts | Thorlabs | SM1RR | |
660 nm, 940 mW (Min) Mounted LED, 1200 mA | Thorlabs | M660L4 | Red LED spotlight |
Aspheric Condenser Lens, Ø25 mm, f=20.1 mm, NA=0.60, ARC: 650-1050 nm | Thorlabs | ACL2520U-B | |
SM1 (1.035"-40) Coupler, External Threads, 0.5" Long | Thorlabs | SM1T2 | |
SM1 Lens Tube Without External Threads, 2" Long, Two Retaining Rings Included | Thorlabs | SM1M20 | |
15 V, 2.4 A Power Supply Unit with 3.5 mm Jack Connector for One K- or T-Cube | Thorlabs | KPS101 | LED control |
T-Cube LED Driver, 1200 mA Max Drive Current | Thorlabs | LEDD1B | |
150 mm x 300 mm x 12.7 mm Aluminum Breadboard, M6 Double-Density Taps | Thorlabs | MB1530/M | Mount base |
Ø12.7 mm Universal Post Holder, Spring-Loaded Locking Thumbscrew, L = 75 mm | Thorlabs | UPH75/M | Mount, 3x (IR LED, red LED, cam) |
Ø1.20" Slip Ring for SM1 Lens Tubes and C-Mount Extension Tubes, M4 Tap | Thorlabs | SM1RC/M | |
Ø12.7 mm Optical Post, SS, M4 Setscrew, M6 Tap, L = 150 mm | Thorlabs | TR150/M | |
Ø12.7 mm Optical Post, SS, M4 Setscrew, M6 Tap, L = 40 mm | Thorlabs | TR40/M | |
Right-Angle Clamp for Ø1/2" Posts, 5 mm Hex | Thorlabs | RA90/M | |
M6 x 1.0 Stainless Steel Cap Screw, 16 mm Long, Pack of 25 | Thorlabs | SH6MS16 | screws for mount onto base |
USB-6001 14-Bit 20 kS/s Multifunction I/O and NI-DAQmx | National Instruments | 782604-01 | Red LED spotlight controller |
20k Ohm 1 Gang Linear Panel Mount Potentiometer | TT Electronics/BI | P230-2EC22BR20K | fintuner for indicator |
IR (860nm) emitter, 100 mA radial | Osram | 475-1365-ND | Red light indicator |
cable | – | – | Misc |
All-trans retinal | Sigma | R2625 | |
Ethanol absolute | Vwr | 20821.296 | |
Halocarbon Oil 27 | Sigma | H8773 | |
Mowiol | Merk | 81381 | |
Paraformaldehyde | Sigma | F8775 | |
Phosphate buffered saline (PBS) | Sigma | P5493 | |
Sylgard 184 silicone elastomer base | Dow Corning Corp | 4019862 | |
Sylgard 184 silicone elastomer curing agent | Dow Corning Corp | 4019862 | |
Triton X-100 | Sigma | T8787 | |
Chicken anti-GFP antibodies | Rockland | 600-901-215 | Antibodies |
Goat Dylight anti-Chicken | Abcam | ab96947 | |
FM7a, B | BDSC | RRID:BDSC_785 | X chromosome |
FRT19A[hs-neo] | BDSC | RRID:BDSC_1709 | |
hiw[ΔN] | BDSC | RRID:BDSC_51637 | |
hs-FLP[12] | BDSC | RRID:BDSC_1929 | |
tub-Gal80[LL1] | BDSC | RRID:BDSC_5132 | |
w[1118] | BDSC | RRID:BDSC_3605 | |
20xUAS-IVS-CsChrimson::mVenus | BDSC | RRID:BDSC_55135 | 2nd chromosome |
5xUAS-Gal4[12B] | Kyoto | RRID:Kyoto_108492 | |
5xUAS-HA::dnmnat | BDSC | RRID:BDSC_39702 | |
5xUAS-mCD8::GFP[LL5] | BDSC | RRID:BDSC_5134 | |
ase-FLP[2d] | Freeman laboratory | Neukomm et al., 2014 (PNAS) | |
CyO | BDSC | RRID:BDSC_2555 | |
dpr1-Gal4 | BDSC | RRID:BDSC_25083 | |
OR22a-Gal4 | BDSC | RRID:BDSC_9952 | |
ey-FLP[6] | BDSC | RRID:BDSC_5577 | 3rd chromosome |
GMR60E02-Gal4 | BDSC | RRID:BDSC_39250 | |
TM3,Sb,e | BDSC | RRID:BDSC_3644 |