Summary

在三维生物打印中使用多层水凝胶生物油墨,实现均匀细胞分布

Published: May 02, 2020
doi:

Summary

在这里,我们开发了一种新的多层改性策略,用于液体样生物油墨(低粘度的明胶甲酰胺),以防止封装细胞的沉淀。

Abstract

在基于挤出的三维生物打印过程中,粘度低的液体样生物油墨可以保护细胞免受剪切应力引起的膜损伤,提高封装细胞的存活率。然而,储层中快速重力驱动的细胞沉降可能导致生物印刷结构中不均匀的细胞分布,从而阻碍液体样生物油墨的应用。在这里,我们开发了一种新的多层改性策略,用于液体样生物油墨(例如,低粘度的明胶甲酰胺醇),以防止封装细胞的沉淀。多层生物油墨中操纵了多个液体界面,以提供界面间保留。因此,在生物油墨储层中,跨多层系统中相邻层的细胞沉降作用被阻滞。结果发现,界面保留率远远高于细胞的沉积拉力,表明界面保留在防止细胞沉淀和促进细胞在多层生物油墨中更均匀地分散的作用。

Introduction

三维(3D)生物印刷是生物制造和再生医学11、2、32,3中原生组织复杂建筑和功能复制品的一种有前途的方法。生物印刷的常见策略,包括喷墨、挤出和立体光刻印刷,从不同角度有优缺点在这些技术中,挤出过程因其成本效益而最为常见。生物油墨在挤出生物印刷的工艺稳定性中起着关键作用。理想的细胞载生物油墨不仅应具有生物相容性,而且应适用于机械特性5。粘度低的生物油墨通常呈现为液体状状态。这些生物油墨易于快速沉积,避免在挤出过程中因高剪切应力引起的细胞膜损伤。然而,在需要长期印刷期的复杂情况下,低粘度往往导致生物油墨储液罐中封装细胞不可避免的沉淀,通常由重力驱动,导致生物油墨66、77中的不均匀细胞分散。因此,具有不均匀细胞分散的生物油墨阻碍了功能组织结构的体外生物打印。

最近几项以生物油墨为重点的研究都报道了封装细胞的同质分散性。一种基于双级交联的改性藻酸盐生物油墨用于挤出生物印刷8。在这项研究中,一种藻酸盐聚合物被用肽和蛋白质进行了改性。由于肽和蛋白质提供的附着位点,细胞在这种改良的藻酸盐中呈现比常用的藻酸盐更均匀分布。另外,混合生物油墨也被用来解决生物油墨中细胞的沉淀问题。另一项研究9中使用了含有聚乙烯乙二醇(PEG)和明胶或明胶二甲酰胺醇(GelMA)的混合生物油墨,具有更好的机械鲁棒性。封装的细胞呈现均匀分布,主要是因为混合生物油墨的粘度得到了提高。一般来说,影响生物油墨中封装细胞分散性的因素有若干,如生物油墨的粘度、细胞的重力、细胞的密度和工作周期。在这些因素中,细胞的引力在促进沉积中起着至关重要的作用。粘稠生物油墨提供的浮力和摩擦力已作为对抗重力的主要力量,迄今已于10日调查。

在这里,我们开发了一种新的策略,通过操纵生物油墨储液罐中的多个液体接口,促进生物油墨中封装细胞的均匀分散。生物油墨的多层修饰产生的这些液体界面不仅可以提供界面保留,延缓细胞的沉淀,还能保持生物油墨适宜的生物相容性和流变行为。在实践中,我们用多层方式修改了与丝纤维素(SF)的水性GelMA溶液(5%,w/v),纵向产生四个界面,在混合生物油墨中提供界面张力。因此,由于相邻细胞层的沉淀较少,细胞上的重力负荷被人为的界面张力所抵消,生物油墨中封装的细胞几乎均匀地分散。迄今为止,还没有类似的协议通过操纵液体生物油墨中的界面保留来减缓封装细胞的沉淀。我们在这里介绍我们的协议,以演示一种解决生物印刷中细胞沉淀的新方法。

Protocol

1. 制备装有细胞的SF-GelMA 使用 0.22 μm 注射器过滤器单元对所有材料进行消毒。在生物安全柜中执行所有步骤。 将 1x PBS 加热到 50°C,并在加热的 1x PBS 中搅拌溶解明胶。PBS 中明胶的最终浓度应为 10%(v/ v)。 在明胶溶液中加入甲基苯丙胺(甲基苯丙胺氢化物的重量比为0.6比1)缓慢搅拌,并将复合体混合至少1小时(50°C)。通常,用12克的甲基苯丙胺丙胺制备200 mL的10%明胶溶…

Representative Results

图1显示了细胞载生物墨水制备的原理图。制备不同的生物油墨后,进行了装载、再加热和生物打印(图2)。为了评估生物墨水储层中封装细胞的分布,使用三个不同的载细胞生物油墨在三个96孔板中进行了生物打印过程(图3A)。两个对照组(原始凝胶和SF-1-GelMA生物油墨)和实验组(SF-M-层-凝胶瘤生物油墨)用于研究封装细胞的…

Discussion

多层系统的稳定性是成功执行此协议的关键点。我们根据瑙曼的研究13,从理论上计算出了凝胶MA溶液中SF分子的扩散。研究发现,溶液中蛋白质的扩散与其分子量有关。牛血清白蛋白(BSA)的平均分子量(MW)为66.5千达,其扩散系数为64-72μm2/s。2纤维蛋白原平均MW为339.7千达,其扩散系数为23-34μm2 /s。2在我们的研究中,SF分子的平均MW约为100 kDa。根据Nauman的研究?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

作者承认中国国家自然科学基金(81771971、81970442、81703470和81570422)、中国国家重点研发项目(2018YFC1005002)、上海市科委(17JC1400200)、上海市科技重大项目(授予号) 2017SHZDZX01),上海市教委(创新计划2017-01-07-00-07-E00027)。

Materials

2-Hydroxy-4′-(2-hydroxyethoxy)-2-methylpropiophenone (PI2959) TCI M64BK-QD
4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES) Gibco 15630080
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) Gibco 10569044
fetal bovine serum (FBS) Gibco 10091
Gelatin Sigma-Aldrich V900863MSDS
Methacrylic anhydride (MA) Sigma-Aldrich 276685MSDS
Penicillin–streptomycin antibiotics Gibco 15140163
Phosphate-buffered saline (PBS) Gibco 10010049
Silk fibroin Advanced BioMatrix 5154

References

  1. Khademhosseini, A., Langer, R. A decade of progress in tissue engineering. Nature Protocol. 11 (10), 1775-1781 (2016).
  2. Heinrich, M. A., et al. 3D bioprinting: from benches to translational applications. Small. , 1805510 (2019).
  3. Daniela, L., et al. Functionalization, preparation and use of cell-laden gelatin methacryloyl-based hydrogels as modular tissue culture platforms. Nature Protocols. 11 (4), 727-746 (2016).
  4. Pedde, R. D., et al. Emerging biofabrication strategies for engineering complex tissue constructs. Advanced Materials. 29 (19), (2017).
  5. Holzl, K., Lin, S., Tytgat, L., Van Vlierberghe, S., Gu, L., Ovsianikov, A. Bioink properties before, during and after 3D bioprinting. Biofabrication. 8 (3), 032002 (2016).
  6. Guillotin, B., Guillemot, F. Cell patterning technologies for organotypic tissue fabrication. Trends in Biotechnology. 29 (4), 183-190 (2011).
  7. Murphy, S. V., Atala, A. 3D bioprinting of tissues and organs. Nature Biotechnology. 32, 773-785 (2014).
  8. Dubbin, K., Hori, Y., Lewis, K. K., Heilshorn, S. C. Dual-stage crosslinking of a gel-phase bioink improves cell viability and homogeneity for 3D bioprinting. Advanced Healthcare Materials. 5 (19), 2488-2492 (2016).
  9. Rutz, A. L., Hyland, K. E., Jakus, A. E., Burghardt, W. R., Shah, R. N. A multimaterial bioink method for 3D printing tunable, cell-compatible hydrogels. Advanced Materials. 27 (9), 1607-1614 (2015).
  10. Chahal, D., Ahmadi, A., Cheung, K. C. Improving piezoelectric cell printing accuracy and reliability through neutral buoyancy of suspensions. Biotechnology and Bioengineering. 109 (11), 2932-2940 (2012).
  11. Chen, N., et al. Hydrogel bioink with multilayered interfaces improves dispersibility of encapsulated cells in extrusion bioprinting. ACS Applied Materials & Interfaces. 11, 30585-30595 (2019).
  12. Zhu, K., et al. A general strategy for extrusion bioprinting of bio-macromolecular bioinks through alginate-templated dual-stage crosslinking. Macromolecular Bioscience. 18 (9), 1800127 (2018).
  13. Nauman, J. V., Campbell, P. G., Lanni, F., Anderson, J. L. Diffusion of insulin-like growth factor-I and ribonuclease through fibrin gels. Biophysical Journal. 92 (12), 4444-4450 (2007).

Play Video

Cite This Article
Chen, N., Zhu, K., Yan, S., Li, J., Pan, T., Abudupataer, M., Alam, F., Sun, X., Wang, L., Wang, C. Using Multilayered Hydrogel Bioink in Three-Dimensional Bioprinting for Homogeneous Cell Distribution. J. Vis. Exp. (159), e60920, doi:10.3791/60920 (2020).

View Video