Summary

Dyp vaskulær avbildning i øyet med strømningsforbedret ultralyd

Published: October 04, 2021
doi:

Summary

Vi presenterer en ikke-invasiv ultralydteknikk for å generere tredimensjonale angiografier i øyet uten bruk av kontrastmidler.

Abstract

Netthinnen i øyet er et av de mest energikrevende vevene i kroppen og krever dermed høye oksygentilførsel fra en rik blodtilførsel. Den kapillære lamina av choroid linjer den ytre overflaten av netthinnen og er den dominerende kilden til oksygen i de fleste virveldyr netthinner. Imidlertid er denne vaskulære sengen utfordrende å bilde med tradisjonelle optiske teknikker på grunn av sin posisjon bak den svært lysabsorberende netthinnen. Her beskriver vi en høyfrekvent ultralydteknikk med påfølgende strømningsforbedring til bildet dype vaskulære senger (0,5-3 cm) av øyet med høy romlig oppløsning. Denne ikke-invasive metoden fungerer bra i arter med nukleerte røde blodlegemer (ikke-pattedyr og fosterdyrmodeller). Det tillater generering av ikke-invasive tredimensjonale angiografier uten bruk av kontrastmidler, og det er uavhengig av blodstrømsvinkler med høyere følsomhet enn Doppler-baserte ultralydavbildningsteknikker.

Introduction

Den høye metabolismen på vertebrat netthinnen pålegger en iboende avveining mellom to kontrasterende behov; høye blodmengder og en lysvei blottet for blodårer. For å unngå synsforstyrrelser av perfusing røde blodlegemer, mottar netthinnen til alle vertebrater oksygen og næringsstoffer via et ark med kapillærer bak fotoreseptorene, choriocapillaris1,2,3. Imidlertid pålegger denne enkeltkilden av næringsstoffer og oksygen en diffusjonsbegrensning på tykkelsen på netthinnen4,5, så mange visuelt aktive arter har en rekke forseggjorte vaskulære nettverk for å gi ekstra blodtilførsel til dette metabolsk aktive organet6. Disse vaskulære sengene inkluderer blodkar som parfymerer de indre netthinnelagene i pattedyr og noen fisk4,7,8,9,10, blodkar på den indre (lysvendte) siden av netthinnen som finnes i mange fisk, reptiler og fugler4,11,12,13, og motstrøms vaskulære ordninger av fisken choroid, choroid rete mirabile, som gjør det mulig for generering av super-atmosfærisk oksygen delvis trykk14,15,16,17,18,19,20. Til tross for at disse ekstra ikke-koroidale banene for retinal næringsforsyning spiller en viktig rolle i å drive metabolske krav til overlegen visjon4, er den tredimensjonale anatomien til disse vaskulære strukturene dårlig forstått, noe som begrenser vår forståelse av den morfologiske utviklingen av virveldyrøyet.

Tradisjonelt har retinal blodtilførsel blitt studert ved hjelp av optiske teknikker, for eksempel fundus oftalmoskopi. Denne kategorien teknikker gir høy gjennomstrømning ikke-destruktiv informasjon om ikke-choroidal blodkar anatomi i høyoppløselig21 og er derfor lett brukt i klinisk diagnose av abnormiteter i retinal kar struktur22. Imidlertid absorberer netthinnepigmentepitelet det overførte lyset og begrenser synsdybden i disse optiske teknikkene, og gir redusert informasjon om koroidstruktur og funksjon uten bruk av kontrastmiddel21. Lignende dybdebegrensninger har erfaring med optisk koherenstomografi (OCT). Denne teknikken kan generere høyoppløselige fundus angiografier ved hjelp av lysbølger på den tekniske bekostning av dybdepenetrasjon23, mens den forbedrede dybdeavbildningen OCT kan visualisere choroiden på bekostning av retinal bildekvalitet24. Magnetisk resonansavbildning overvinner de optiske begrensningene ved oftalmoskopi og OCT og kan kartlegge vaskulære lag i netthinnen, om enn ved lav oppløsning25. Histologi og mikrocomputert tomografi (μCT) opprettholder den høye oppløsningen av de optiske teknikkene og gir informasjon om heløyet vaskulær morfologi4, men begge teknikkene krever okulær prøvetaking og er derfor ikke mulig i klinikken eller sjeldne eller truede arter. For å overvinne noen av begrensningene i disse etablerte retinal imaging teknikker, studien her presenterer en ultralyd protokoll på bedøvede dyr, hvor blodbevegelsen er kartlagt i silico på en rekke like-spaced todimensjonale ultralyd skanninger som spenner over et helt øye ved å bruke en sammenlignbar teknikk som beskrevet tidligere for embryonal og kardiovaskulær imaging26,27, 28 og i OCT angiografi29. Denne tilnærmingen gjør det mulig for generering av ikke-invasive tredimensjonale dype okulære angiografier uten å bruke kontrastmiddel og åpner opp nye veier for kartlegging av blodstrømsfordeling i øyet på tvers av arter.

Protocol

Protokollen nedenfor ble utført med tillatelse fra Det danske inspektør for dyreforsøk i det danske mat-, landbruks- og fiskeridepartementet, Dansk Veterinær- og Matforvaltning (Tillatelsesnummer 2016-15-0201-00835). 1. Anestesi og ultralyd medium Bedøv forskningsdyret.MERK: Type og dose passende anestesi er svært artsavhengig. Generelt er immersion-baserte bedøvelser som MS-222 (etyl 3-aminobenzoat metansulfonsyre), benzokain (etyl 4-aminobenzoat) og propofol (2,6-diisopr…

Representative Results

Den strømningsforbedrede ultralydteknikken for å avbilde vaskulære senger i øyet kan påføres i en rekke arter og har for tiden blitt brukt i 46 forskjellige virveldyrarter (figur 1, tabell 1). Tilstedeværelsen av nukleerte røde blodlegemer i ikke-voksne pattedyr vertebrater gir positiv kontrast av flytende blod sammenlignet med statisk vev i cine opptak (Supplementary File 2). Men når det analyseres på ramme-for-ramme-basis, er det klare skillet me…

Discussion

Vaskulær avbildning ved hjelp av strømningsforbedret ultralyd gir en ny metode for ikke-invasiv avbildning av øyets vaskulatur som gir flere fordeler i forhold til dagens teknikker, men har sine iboende begrensninger. Den viktigste fordelen med strømningsforbedret ultralyd er evnen til å generere okulære angiografier med en dybdeskarphet som overskrider retinal pigment epitel, noe som begrenser dybdeskarpheten i optiske teknikker. Ved ultralydavbildning bestemmes romlig oppløsning og dybdeskarphet til slutt av ult…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet har fått støtte fra Carlsbergstiftelsen (CF17-0778; CF18-0658), Lundbeck Foundation (R324-2019-1470; R346-2020-1210), Velux Foundations (00022458), A.P. Møller Foundation for the Advancement of Medical Science, EUs Forsknings- og innovasjonsprogram Horizon 2020 under Marie Skłodowska-Curie grant agreement (Nr. 754513) og Aarhus University Research Foundation.

Materials

MS-222 Sigma E10521-50G
Benzocaine Sigma E-1501
Propofol B Braun
12260470_0320
Alfaxalon Jurox NA
Isoflurane Zoetis 50019100
Ultrasound scanner VisualSonics Vevo 2100

References

  1. Yu, C. Q., Schwab, I. R., Dubielzig, R. R. Feeding the vertebrate retina from the Cambrian to the Tertiary. Journal of Zoology. 278 (4), 259-269 (2009).
  2. Yu, D. Y., Cringle, S. J. Oxygen distribution and consumption within the retina in vascularised and avascular retinas and in animal models of retinal disease. Progress in Retinal and Eye Research. 20 (2), 175-208 (2001).
  3. Country, M. W. Retinal metabolism: A comparative look at energetics in the retina. Brain Research. 1672, 50-57 (2017).
  4. Damsgaard, C., et al. Retinal oxygen supply shaped the functional evolution of the vertebrate eye. Elife. , 8 (2019).
  5. Buttery, R. G., Hinrichsen, C. F. L., Weller, W. L., Haight, J. R. How thick should a retina be? A comparative study of mammalian species with and without intraretinal vasculature. Vision Research. 31 (2), 169-187 (1991).
  6. Ames, A., Li, Y., Heher, E., Kimble, C. Energy metabolism of rabbit retina as related to function: high cost of Na+ transport. The Journal of Neuroscience. 12 (3), 840-853 (1992).
  7. Chase, J. The Evolution of retinal vascularization in mammals: A comparison of vascular and avascular retinae. Ophthalmology. 89 (12), 1518-1525 (1982).
  8. Johnson, G. L. Ophthalmoscopic studies on the eyes of mammals. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 254 (794), 207-220 (1968).
  9. Johnson, G. L. I. Contributions to the comparative anatomy of the mammalian eye, chiefly based on ophthalmoscopic examination. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 194 (194-206), 1-82 (1901).
  10. Rodriguez-Ramos Fernandez, J., Dubielzig, R. R. Ocular comparative anatomy of the family Rodentia. Veterinary Ophthalmology. 16, 94-99 (2013).
  11. Copeland, D. E. Functional vascularization of the teleost eye. Current Topics in Eye Research. 3, 219-280 (1980).
  12. Meyer, D. B., Crescitelli, F. . The Visual System in Vertebrates. Handbook of Sensory Physiology. 7, (1977).
  13. Potier, S., Mitkus, M., Kelber, A. Visual adaptations of diurnal and nocturnal raptors. Seminars in Cell & Developmental Biology. 106, 116-126 (2020).
  14. Wittenberg, J. B., Wittenberg, B. A. Active secretion of oxygen into the eye of fish. Nature. 194, 106-107 (1962).
  15. Damsgaard, C. Physiology and evolution of oxygen secreting mechanism in the fisheye. Comparative Biochemistry and Physiology. 252, 110840 (2021).
  16. Damsgaard, C., et al. A novel acidification mechanism for greatly enhanced oxygen supply to the fish retina. Elife. 9, (2020).
  17. Wittenberg, J. B., Haedrich, R. L. The choroid rete mirabile of the fish eye. II. Distribution and relation to the pseudobranch and to the swimbladder rete mirabile. Biological Bulletin. 146 (1), 137-156 (1974).
  18. Wittenberg, J. B., Wittenberg, B. A. The choroid rete mirabile of the fish eye. I. Oxygen secretion and structure: comparison with the swimbladder rete mirabile. Biological Bulletin. 146 (1), 116-136 (1974).
  19. Berenbrink, M. Historical reconstructions of evolving physiological complexity: O2 secretion in the eye and swimbladder of fishes. Journal of Experimental Biology. 210, 1641-1652 (2007).
  20. Berenbrink, M., Koldkjaer, P., Kepp, O., Cossins, A. R. Evolution of oxygen secretion in fishes and the emergence of a complex physiological system. Science. 307 (5716), 1752-1757 (2005).
  21. Keane, P. A., Sadda, S. R. Retinal imaging in the twenty-first century: State of the art and future directions. Ophthalmology. 121 (12), 2489-2500 (2014).
  22. Yung, M., Klufas, M. A., Sarraf, D. Clinical applications of fundus autofluorescence in retinal disease. International Journal of Retina and Vitreous. 2 (1), 12 (2016).
  23. Ang, M., et al. Optical coherence tomography angiography: a review of current and future clinical applications. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 256 (2), 237-245 (2018).
  24. Spaide, R. F., Koizumi, H., Pozonni, M. C. Enhanced depth imaging spectral-domain optical coherence tomography. American Journal of Ophthalmology. 146 (4), 496-500 (2008).
  25. Shen, Q., et al. Magnetic resonance imaging of tissue and vascular layers in the cat retina. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 23 (4), 465-472 (2006).
  26. Tan, G. X., Jamil, M., Tee, N. G., Zhong, L., Yap, C. H. 3D reconstruction of chick embryo vascular geometries using non-invasive high-frequency ultrasound for computational fluid dynamics studies. Annals of Biomedical Engineering. 43 (11), 2780-2793 (2015).
  27. Ho, S., Tan, G. X. Y., Foo, T. J., Phan-Thien, N., Yap, C. H. Organ dynamics and fluid dynamics of the HH25 chick embryonic cardiac ventricle as revealed by a novel 4D high-frequency ultrasound imaging technique and computational flow simulations. Annals of Biomedical Engineering. 45 (10), 2309-2323 (2017).
  28. Dittrich, A., Thygesen, M. M., Lauridsen, H. 2D and 3D echocardiography in the Axolotl (Ambystoma Mexicanum). Journal of Visualized Experiments: JoVE. (141), e57089 (2018).
  29. Jia, Y., et al. Split-spectrum amplitude-decorrelation angiography with optical coherence tomography. Optics Express. 20 (4), 4710-4725 (2012).
  30. Clarke, K. W., Trim, C. M., Trim, C. M. . Veterinary Anaesthesia E-Book. , (2013).
  31. Flecknell, P. . Laboratory Animal Anaesthesia. , (2015).
  32. West, G., Heard, D., Caulkett, N. . Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia. , (2014).
  33. Lauridsen, H., Hansen, K., Nørgård, M. &. #. 2. 1. 6. ;., Wang, T., Pedersen, M. From tissue to silicon to plastic: three-dimensional printing in comparative anatomy and physiology. Royal Society Open Science. 3 (3), 150643 (2016).
  34. Lauridsen, H., et al. Inside out: Modern imaging techniques to reveal animal anatomy. PLoS One. 6 (3), 17879 (2011).
  35. Ruthensteiner, B., Heß, M. Embedding 3D models of biological specimens in PDF publications. Microscopy Research and Technique. 71 (11), 778-786 (2008).
  36. Damsgaard, C., Lauridsen, H. Deep vascular imaging in the eye with flow-enhanced ultrasound. bioRxiv. , 447055 (2021).
  37. Mueller, R. L., Ryan Gregory, T., Gregory, S. M., Hsieh, A., Boore, J. L. Genome size, cell size, and the evolution of enucleated erythrocytes in attenuate salamanders. Zoology. 111 (3), 218-230 (2008).
  38. Greis, C. Quantitative evaluation of microvascular blood flow by contrast-enhanced ultrasound (CEUS). Clinical Hemorheology and Microcirculation. 49, 137-149 (2011).
  39. Urs, R., Ketterling, J. A., Tezel, G., Silverman, R. H. Contrast-enhanced plane-wave ultrasound imaging of the rat eye. Experimental Eye Research. 193, 107986 (2020).
  40. Walls, G. L. . The vertebrate eye and its adaptive radiation. , (1942).

Play Video

Cite This Article
Damsgaard, C., Lauridsen, H. Deep Vascular Imaging in the Eye with Flow-Enhanced Ultrasound. J. Vis. Exp. (176), e62986, doi:10.3791/62986 (2021).

View Video