Name: RNA Yapısı peroksidatif ve Oksidatif Hidroksil Radikal footprinting İzleme Denge Değişiklikler (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-10-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 41 s
Description: Öğrenin RNA üçüncül yapı oluşumunu hidroksil radikal footprinting ile nasıl nicelendireceğinizi. Bu yöntem Fenton reaktifleri ve jel elektroforezi kullanarak katlanma izotermleri oluşturur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Sağlık RO1-GM085130 Ulusal Enstitüsü ve Ulusal Bilim Vakfı MCB0929394 bağışları ile destek verdi. Dr. Marion Schmidt Biz onun misafirperverliği ve onun laboratuar film bize izin verdiği için teşekkür ediyorum.

1. Footprinting Reaktifler hazırlanması <ol><li> 100 mM sodyum cacodylate, 1 mM EDTA ve 1 M KCl içeren bir 10x reaksiyon tamponu hazırlayın. PH 7.4 'e ayarlayın. Filtre 0.2 mcM asetat filtre cihazı (Nalgene) kullanarak tampon. Not: 10x tampon doğrudan pipetlemeyin RNA yok. </li><li> Tablo 1'de gösterildiği gibi her bir reaksiyon için titrasyon reaksiyon karışımı hazırlayın. Titrasyon karışımı hacmi (1x istenilen konsantrasyonda tampon ve Mg (II)), 1x tampon RNA 10μl eklemeden önce, 90 ul olmalıdır. </li><li> 6.63M Üre, 20mm sodyum sitrat, 1mm EDTA, 0,25 mg / ml tRNA,% 0.025 ksilen cyanol,% 0.025 bromphenol mavi içeren bir RNAse T1 sindirim tampon hazırlayın. Bu tampon, 6 aya kadar 4 ° C saklanabilir. </li><li> Fenton reaksiyonu 250 mM Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2, 250 mM EDTA ve 500 mM sodyum L-askorbat taze olarak hazırlanan sulu çözeltiler gerektirir . Konsantrasyonları bölüm 1 not0,5 radikaller ve çeşitli kalsiyum iyon yoğunluğunun değil scavenge sodyum cacodylate gibi tampon denge deneyleri için en uygun olan. </li><li> Peroksidatif (1.5.1) ve oksidatif (1.5.2) footprinting reaksiyon için Reaktifler. <ol><li> Peroksidatif Fenton reaksiyonu 100 mM Fe-EDTA çözeltisi ve 50 mM sodyum L-askorbat ve% 1.5 H 2 O 2 taze olarak hazırlanan sulu çözeltiler gerektirir . Fe-EDTA çözeltisi, demir üzerinde EDTA 1.1 kat fazla karıştırma Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2 EDTA ile hazırlanmıştır . </li><li> Sadece oksidatif parçalanma reaksiyonu (3.4.2) başlamadan önce, 2 ul ul Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2 (250 mM), 2.2 EDTA ul (250 mM), 62.5 birleştirerek Fenton reaksiyon karışımı oluşturmak sodyum L-askorbat (500 mM), 22.5 ul 10x reaksiyon tamponu ve 0 footprinting reaksiyon karışımı (3.4.2) nihai konsantrasyonlarını ulaşmak için H 2 O 135,5 ul.10 mM 0.11 mM ve 6.61 mM, sırasıyla. </li></ol></li></ol> 2. RNA footprinting Denemeye Hazırlık <ol><li> 50 nükleotidler, daha kısa (Integrated DNA Teknolojileri, www.idtdna.com gibi) satın alınması, RNA, DNA şablonları 6 in vitro transkripsiyon standart tarafından üretilen ya da olabilir . Footprinting deneyler sırasında RNA örnek bütünlüğünü korumak için 7 tavsiye edilen laboratuvar temizlik prosedürlerini izleyin . </li><li> Defosforilasyon 8 in vitro transkripsiyonu RNA önce RNA'nın 5 'son 32 P etiketleme için gerekli. RNA 10 pmol kinasing tarafından uç-etiketlenmiş 9 çözüm fosfataz başarılı inaktivasyon sonra bulutlu olmalıdır. </li><li> Denatüre jel elektroforezi kullanılarak radyoaktif etiketli RNA arındırın. RNA 0.3 M sodyum asetat (pH 5.5) ile iki sonraki jel ekstraksiyon tarafından kurtarılır. RNA ile 0,5 ml 1 ml etanol ve sonraki sulu çözeltisi karıştırılarak çöktürülmüşkuru buz üzerinde 1 dakika inkübasyon. 4 ° C, 0,5 saat süreyle 12.500 rpm örnek Spin. Süpernatantı atın ve RNA pelet% 70 etanol ile yıkayın. Ek santrifüj sonra süpernatantı ve pelet kuru vakum. </li><li> 1x bir reaksiyon tüpünde RNA çözümü, etanol ve vakumlu kuru RNA ile çökelti Buffer.Pipet 30 ul 330 ul 32 P etiketli RNA örnekleri çözülür; referans merdiveni (adım 3.5) üretmek için bu tüp tutmak. 95 ısıtarak tamponlu RNA çözüm ° C 'de 2 dakika süreyle denatüre. Örnekleri 15 dakika oda sıcaklığında soğutun ve çözelti içinde tüplerin kapakları kondanseleri getirmek için hızlı bir spin vermek. </li></ol> 3. Footprinting Deney <ol><li> Elektroforez tarak, veri noktalarının analitik jel başına maksimum sayısını belirler. Biz 30 iyi bir tarak kullanın. Referans merdiven, 2 kuyu ve uncleaved kontrolü birini kaplar. 27 reaksiyon tüpleri hazırlayın. Son Mg (II) concentratititrasyon orta noktası etrafında büyüklük emirleri kapsayan bir logaritmik ölçekte ons eşit aralıklı olmalıdır. </li><li> Ayrı ayrı 50 RNA ve Mg (II) çözeltileri ° C, 5 dakika boyunca inkübe edin. 100 ul son bir hacme ulaşmak için 1x tampon karşılık gelen miktarda Mg (II) 90 ul ile 10 ul RNA çözüm karıştırın. 50 - 30 dakika çözümler inkübe ° C </li><li> Katlama oluşur sırasında çözümleri, 25 ° C'de 1 saat için muvazene edelim. </li><li> Peroksidatif (3.4.1) veya oksidatif (3.4.2) hidroksil radikal footprinting reaksiyon. <ol><li> 2 ul Fe-EDTA (100 mM) damlacıkları koyarak peroksidatif reaksiyonu başlatın, 2 ul sodyum L-askorbat (50 mM) ve 2 ul H 2 O 2 (% 1.5) reaksiyon üst içinde birbirinden ayrılmış tüp RNA çözüm içeren ve dinç karıştırılarak footprinting reaksiyon başlatabilir. 300 ul soğuk mutlak etanol ekleyerek 15 saniye sonra tepki durdurun. Tüpler 3-5 kez çevirin. Çökelme, yıkama veadım 2.4 olarak pelet kurulayın. </li><li> Oksidatif hidroksil radikal footprintingreaction taze hazırlanmış Fenton reaksiyon karışımı (1.6) 5 ul ekleyerek başlayın. 30 dakika boyunca inkübe 25 ° C Tüpler 3-5 kez çevirerek tepki ve karıştırın gidermek için soğuk mutlak etanol 300 ul ekleyin. Çökelme, yıkama ve kuru pelet gibi adım 2.4 'de belirtilen. </li></ol></li><li> Adım 1.3 'te hazırlanan çözüm kullanarak standart prosedürler 10 göre bir RNaz T1 sindirmek referans örnek oluşturun. </li><li> 8 ul jel yükleme boyası II (Ambion) ve onaylamak RNA RNA pelet çözülür Geiger sayacı kullanarak yeniden süspanse. </li><li> 11 Yük örnekleri iki referans ve kontrol dahil olmak üzere standart protokollere göre denatüre,% 8'lik poliakrilamid sıralama jel hazırlayın. 60 W Ayrı RNA parçaları - 2.5 saat için 75 W. Gecede bir depolama fosfor ekrana kurutulmuş jel Açığa. Tarama fosfor filmsiz otoradyografi, örneğin bir görüntüleme sistemi ile ekran. Fırtına 865 (GE Healthcare) veya Typhoon (GE Healthcare). Jel görüntü dosyası, bilgisayarınıza aktarın. </li></ol> 4. Veri Analizi <ol><li> Her bir nükleotid hidroksil radikal reaktivite analitik jel her bandın şiddeti nicel tarafından belirlenir. Karşıdan yükleyin, kurun ve açık SAFA, tek bant montaj ve ölçümü için açık kaynak kodlu yazılım kullanımı kolay bir 12, 13 kullanım kılavuzu yönergeleri izleyin. Kısaca, RNA dizisi olarak yükleyin. Txt dosyası. Jel dosyası olarak jel resmi izledi. Bant yoğunlukları ayarlayın, şerit tanımlamak, bir çapa şeritli seçin ve bir jel hizalama. Nükleotidleri Atama RNaz T1 sindirim merdiven referans gruplarından oluşur. Grubun integrallerin sayısal olarak ve potansiyel değişmez artıkları normalleştirmek ve atamak için normalleşme / colorplot özelliğini kullanabilirsiniz. Çıktı. Txt dosyası olarak kaydedin. </li><li> SAFA temsil jel üzerinde şerit ve satır temsil eden sütunlar içeren bir elektronik tablo çıktılarıRNA parçası karşılık gelen bireysel bantları bant yoğunluğu tegrated. İlk olarak, çözücü erişilebilirlik gözle görülür bir değişim profili ile bitiş noktası Mg (II) konsantrasyonu (bizim örneğimizde 50 mM) Mg (II) örnek türetilmiş koruma profilinin karşılaştırarak ekran koruma siteleri de belirleyebilir. Değer ne kadar düşükse, daha nükleotid hidroksil radikalleri ve tersi saldırıya karşı korunmaktadır. </li><li> Mg (II) konsantrasyonu karşı nükleotidler bireysel ya da gruplar normalize bant integraller katlanır izotermleri oluşturun. • - izotermleri fi = L + (L U) tarafından ayrı ayrı kesirli doygunluk ölçeklendirilir <img src="files/ftp_upload/3244/3244y.jpg" alt="Y"> f grup (lar) entegre yoğunluğu gösterir analiz edilen L ve U geçiş için alt ve üst sınırları temsil eden ve <img src="/files/ftp_upload/3244/3244y.jpg" alt="Y" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Y"> kesirli doygunluk 14 verilerin sığması non-lineer l kullanarakdoğu-Hill denklemi (1) kare analiz programı (ya Kökeni (OriginLab) veya GraphPad (GraphPad Software, Inc.) kullanın.) <img alt="Denklem 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244eq1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Denklem 1"> K d denge olduğu asitlik sabiti, [M] katlanır tepki aracılık değişken, bu örnekte Mg (II) konsantrasyonu gelir ve n H Hill katsayısı. Bu prosedür, kesirli doygunluk geçiş terazi, orta noktası belirler ve fenomenolojik bir geçiş sigmoidal olup olmadığını test sağlar. SAFA (Şekil 3B) tarafından analiz edilir ve yukarıda açıklandığı gibi uygun sıralama jeller (Şekil 3A) türetilen izotermleri Şekil 3C gösterilmiştir. Şekil 3'te gösterildiği gibi kesirli doygunluk izotermleri bir elektronik tablo ölçeklendirme tarafından oluşturulan denklem fraksiyonu kullanarak en uygun alt ve üst sınırları (U ve L) karşı SAFA tarafından oluşturulan değerleri = değer / (U-L) - L / (U - L). </li></ol> 5. Temsilcisi Sonuçlar: Şekil 3, P4-P6 RNA • OH footprinting deneyler temsilcisi sonuçlar gösterir. Jel görüntüsünde (solda) T1 şeritli (Her G RNaz T1 parçalayarak) iyi tanımlanmış bantları nedeniyle olası tek nükleotid atama)) arka plan bölünme, sağ şeritte (b) az olduğunu gösterir, ve c) hidroksil radikali RNA indüklenmiş parçalanma iyi bir arka plan üzerindedir. RNA üçüncül yapısının oluşumu gösteren bantları bireysel ve gruplar entegre bant yoğunluğu azalan düşük ve yüksek Mg (II) geçiş bağlanmıştır. Tek veya bölünme değişiklikler eş zamanlı olarak 'koruma' olarak adlandırılır bitişik nükleotid grupları. Mg (II) yakından kristal yapısında gözlenen molekülünün çözücü ulaşılmaz bölgelere karşılık gelen karakteristik • OH korumaları P4-P6 RNA katlama aracılı 15 Katlanmış RNA molekülleri c bir çok farklı açık, yapısal ya da dinamik bir fenomen ile ilişkili olmamıştır üçüncül kişi koruma kapsamlarını (yani, nasıl arka bant yoğunlukları yakın düşüş) var. Böylece, bazı RNA molekülleri Şekil 3'te gösterildiği gibi, iyi tanımlanmış yapısal geçişler göstermek, ve bazı olmayacaktır. Band şiddetleri SAFA 12 analizi (Şekil 3B) tarafından sayısal ve normalize edilir. Çıkış • OH karşı koruma göreceli derecesi görselleştirmek bir 'termal' komplo. Renk geçişi, Mg (II) Ayrıca üzerine erişilebilirlik değişikliği açıklamaktadır. Sırasıyla kırmızı veya mavi, daha erişilebilir ve daha korumalı nükleotidler, Beyaz. Gölgeleme her bir derece, bir koruma eğrisi (Şekil 3C) olarak çizilen ve Hill denklemi (1) gibi bağlayıcı bir model ile analiz edilebilir bir sayısal değeri ile bağlanmıştır. Sabit disosiasyon Koruma 153-155 bağlı denge Koruma 163-164 karşılık gelen değeri yaklaşık iki kat fazladır. ontent "&gt; <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1 Hidroksil radikal üretimi ve P4-P6 RNA katlanır. A) Fe (II), hidrojen peroksit, hidroksil radikalleri üretimi katalize eder. Askorbat demir demir Fe (III) geri azaltır. B) Mg (II) yokluğunda, hiçbir P4-P6 üçüncül yapısı, hidroksil radikalleri erişilebilir tüm omurga pozisyonları nüfuz ve tutunmaya izin oluşur. Mg (II) eklenmesi, sadece solvent erişilebilir omurga hidroksil radikalleri tarafından bölünmüş izin, P4-P6 katlayarak başlatır. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2 hidroksil radikal footprinting deney için Anahat. A) Dephophorylation ve RNA 32 P 5'-etiketleme. B) 32 Arıtma denatüre poliakrilamid jel RNA P-etiketli. C) RNA bant eksizyonu sonraki RNA ekstraksiyonu ve etanol yağış. D) Prefolding veRNA katlanır. E) taze hazırlanmış Fenton reaksiyon karışımının eklenmesi hidroksil radikalleri oluşturur. F) poliakrilamid jel elektroforezi denatüre RNA parçası ayırma. G) SAFA yazılımı ile RNA parçaları kantitasyonu. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3 peroksidatif Fenton footprinting reaksiyon sonra RNA parçaları Analizi. (A) RNA hidroksil radikalleri maruz kalmış ve parçalanma ürünleri denatüre poliakrilamid jel elektroforezi (PAGE) ile çözüldü. Resim, Mg (II) artan konsantrasyonu ile peroksidatif parçalanma ürünleri gösterir. Referans ve kontrol şeritleri etiketli. Bu görüntü dosyası, her bir band hacmi quantitates SAFA programı için girdi. (B) 'termal' komplo SAFA tarafından oluşturulur. (C) SAFA nükleotid sayısı çıkış entegre bant yoğunluğu ile ilgili bir tablo değerleri Hill equati olarak bağlayıcı bir model ile analiz(1). Koruma Bölgeleri, Mg (II) konsantrasyonunun bir fonksiyonu olarak bant ayrılmaz yoğunluğunda artışa göre seçilmiştir. K d RNA yarısı izlenmekte olan site katlanmış olduğu Mg (II) konsantrasyonu. Hill katsayısı, n H, bağlayıcı cooperativity hakkında bilgi verir ve bu özel site katlayarak yer alan magnezyum iyonlarının sayısı için daha düşük bir tahmin sağlar eğrisinin eğimi bir ölçüsüdür. <img alt="Tablo 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244table1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tablo 1"> Tablo 1. Temsilcisi hacimleri farklı Mg (II) konsantrasyonu içeren RNA örnekleri üretmek için.

<ol><li>Tullius, T. D., Dombroski, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydroxyl+radical+%22footprinting%22%3A+high-resolution+information+about+DNA-protein+contacts+and+application+to+lambda+repressor+and+Cro+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Hydroxyl radical "footprinting": high-resolution information about DNA-protein contacts and application to lambda repressor and Cro protein.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 83, 5469-5473 (1986).</li>
<li>Celander, D. W., Cech, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron%28II%29-ethylenediaminetetraacetic+acid+catalyzed+cleavage+of+RNA+and+DNA+oligonucleotides%3A+similar+reactivity+toward+single-+and+double-stranded+forms%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Iron(II)-ethylenediaminetetraacetic acid catalyzed cleavage of RNA and DNA oligonucleotides: similar reactivity toward single- and double-stranded forms.</a> Biochemistry. 29, 1355-1361 (1990).</li>
<li>Celander, D. W., Cech, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+the+higher+order+folding+of+a+catalytic+RNA+molecule%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Visualizing the higher order folding of a catalytic RNA molecule.</a> Science. 251, 401-407 (1991).</li>
<li>Sclavi, B., Sullivan, M., Chance, M. R., Brenowitz, M., Woodson, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+folding+at+millisecond+intervals+by+synchrotron+hydroxyl+radical+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">RNA folding at millisecond intervals by synchrotron hydroxyl radical footprinting.</a> Science. 279, 1940-1943 (1998).</li>
<li>Tullius, T. D., Dombroski, B. A., Churchill, M., Kam, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydroxyl+radical+footprinting%3A+a+high-resolution+method+for+mapping+protein-DNA+contacts%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Hydroxyl radical footprinting: a high-resolution method for mapping protein-DNA contacts.</a> Methods. Enzym. 155, 537-558 (1987).</li>
<li>Milligan, J. F., Groebe, D. R., Witherell, G. W., Uhlenbeck, O. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oligoribonucleotide+synthesis+using+T7+RNA+polymerase+and+synthetic+DNA+templates%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic.+Acids.+Res%22%5BJournal%5D)">Oligoribonucleotide synthesis using T7 RNA polymerase and synthetic DNA templates.</a> Nucleic. Acids. Res. 15, 8783-8798 (1987).</li>
<li>Schlatterer, J. C., Brenowitz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complementing+global+measures+of+RNA+folding+with+local+reports+of+backbone+solvent+accessibility+by+time+resolved+hydroxyl+radical+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Complementing global measures of RNA folding with local reports of backbone solvent accessibility by time resolved hydroxyl radical footprinting.</a> Methods. 49, 142-147 (2009).</li>
<li>Sambrook, J., Russell, D. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSambrook%2C+J+%22Molecular+Cloning%3A+A+Laboratory+Manual%22">Molecular Cloning: A Laboratory Manual</a>. , 3 ed, Cold Spring Harbor Laboratory Press: Cold Spring Harbor. New York. (2001).</li>
<li>Zaug, A. J., Grosshans, C. A., Cech, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence-specific+endoribonuclease+activity+of+the+Tetrahymena+ribozyme%3A+enhanced+cleavage+of+certain+oligonucleotide+substrates+that+form+mismatched+ribozyme-substrate+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Sequence-specific endoribonuclease activity of the Tetrahymena ribozyme: enhanced cleavage of certain oligonucleotide substrates that form mismatched ribozyme-substrate complexes.</a> Biochemistry. 27, 8924-8931 (1988).</li>
<li>Knapp, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+approaches+to+probing+of+RNA+secondary+and+tertiary+structure%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Enzymatic approaches to probing of RNA secondary and tertiary structure.</a> Methods. Enzym. 180, 192-212 (1989).</li>
<li>Slatko, B. E., Albright, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Denaturing+gel+electrophoresis+for+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Denaturing gel electrophoresis for sequencing.</a> Curr. Protoc. Mol. Biol. Chapter 7, Unit 7.6-Unit 7.6 (2001).</li>
<li>Das, R., Laederach, A., Pearlman, S. M., Herschlag, D., Altman, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SAFA%3A+semi-automated+footprinting+analysis+software+for+high-throughput+quantification+of+nucleic+acid+footprinting+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">SAFA: semi-automated footprinting analysis software for high-throughput quantification of nucleic acid footprinting experiments.</a> RNA. 11, 344-354 (2005).</li>
<li>Simmons, K., Martin, J. S., Shcherbakova, I., Laederach, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+quantification+and+analysis+of+kinetic+%2AOH+radical+footprinting+data+using+SAFA%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Rapid quantification and analysis of kinetic *OH radical footprinting data using SAFA.</a> Methods. Enzym. 468, 47-66 (2009).</li>
<li>Uchida, T., He, Q., Ralston, C. Y., Brenowitz, M., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linkage+of+monovalent+and+divalent+ion+binding+in+the+folding+of+the+P4-P6+domain+of+the+Tetrahymena+ribozyme%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Linkage of monovalent and divalent ion binding in the folding of the P4-P6 domain of the Tetrahymena ribozyme.</a> Biochemistry. 41, 5799-5806 (2002).</li>
<li>Cate, J. H., Gooding, A. R., Podell, E., Zhou, K., Golden, B. L., Kundrot, C. E., Cech, T. R., Doudna, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal+structure+of+a+group+I+ribozyme+domain%3A+principles+of+RNA+packing%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Crystal structure of a group I ribozyme domain: principles of RNA packing.</a> Science. 273, 1678-1685 (1996).</li>
<li>Petri, V., Brenowitz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+nucleic+acids+footprinting%3A+thermodynamic+and+kinetic+approaches%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Quantitative nucleic acids footprinting: thermodynamic and kinetic approaches.</a> Curr. Opin. Biotechnol. 8, 36-44 (1997).</li>
<li>Takamoto, K., Das, R., He, Q., Doniach, S., Brenowitz, M., Herschlag, D., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+RNA+compaction%3A+insights+from+the+equilibrium+folding+pathway+of+the+P4-P6+RNA+domain+in+monovalent+cations%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Principles of RNA compaction: insights from the equilibrium folding pathway of the P4-P6 RNA domain in monovalent cations.</a> J. Mol. Biol. 343, 1195-1206 (2004).</li>
<li>Brenowitz, M., Senear, D. F., Shea, M. A., Ackers, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+DNase+footprint+titration%3A+a+method+for+studying+protein-DNA+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Quantitative DNase footprint titration: a method for studying protein-DNA interactions.</a> Methods. Enzym. 130, 132-181 (1986).</li>
<li>Shcherbakova, I., Mitra, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydroxyl-radical+footprinting+to+probe+equilibrium+changes+in+RNA+tertiary+structure%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Hydroxyl-radical footprinting to probe equilibrium changes in RNA tertiary structure.</a> Methods. Enzym. 468, 31-46 (2009).</li>
<li>Howlett, G. J., Minton, A. P., Rivas, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analytical+ultracentrifugation+for+the+study+of+protein+association+and+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opinion.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Analytical ultracentrifugation for the study of protein association and assembly.</a> Curr. Opinion. Chem. Biol. 10, 430-436 (2006).</li>
<li>McGinnis, J. L., Duncan, C. D., Weeks, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+SHAPE+and+hydroxyl+radical+analysis+of+RNA+structure+and+ribonucleoprotein+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">High-throughput SHAPE and hydroxyl radical analysis of RNA structure and ribonucleoprotein assembly.</a> Methods. Enzym. 468, 67-89 (2009).</li>
<li>Jonikas, M. A., Radmer, R. J., Laederach, A., Das, R., Pearlman, S., Herschlag, D., Altman, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coarse-grained+modeling+of+large+RNA+molecules+with+knowledge-based+potentials+and+structural+filters%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">Coarse-grained modeling of large RNA molecules with knowledge-based potentials and structural filters.</a> RNA. 15, 189-199 (2009).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Hidroksil radikal footprinting nükleik asitlerin çözücü erişilebilir yüzey alanı değerlendirmek için değerli bir araçtır. Üçüncül yapısı 14 Kalitatif ve kantitatif oluşumu, iyon tipi ve konsantrasyonu, pH, sıcaklık, bağlayıcı proteinler veya katlama ko-faktörler gibi parametrelerin bir fonksiyonu olarak takip edilebilir . Yalındır ve ucuz bir protokol ve çıkan solvent erişilebilirlik ve tek nükleotid düzeyde katlanır bilgi zorlayıcı bir kombinasyon bu yöntem çok cazip hale getirmektedir. Geleneksel • OH footp...

<table><tbody><tr><td>Ad</td><td>Şirket</td><td>Kat#</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Kakodilat (Dikkat! Toksik) </td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C4945-25g</td><td></td></tr><tr><td>EDTA (0.5 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9260G</td><td></td></tr><tr><td>DEPC ile işlem görmüş su</td><td>Ambion</td><td>AM9915G</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Asetat (3 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9740</td><td></td></tr><tr><td>MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; (1 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9530G</td><td></td></tr><tr><td>Üre</td><td>Ambion</td><td>AM9902</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Sitrat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>W302600</td><td></td></tr><tr><td>tRNA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R-7876</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum-L-askorbat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7631-25g</td><td></td></tr><tr><td>Fe(NH&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;(SO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; . 6 H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F1543-500g</td><td></td></tr><tr><td>RNaz T1</td><td>Fermentas</td><td>EN0541</td><td></td></tr><tr><td>Hidrojen Peroksit (%30)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>349887</td><td></td></tr></tbody></table>

rna yapısı &#39;peroksidatif&#39; ve &#39;oksidatif&#39; hidroksil radikal footprinting İzleme denge değişiklikler

Monitoring Equilibrium Changes in RNA Structure by 'Peroxidative' and 'Oxidative' Hydroxyl Radical Footprinting

RNA molekülleri, biyolojide önemli bir rol oynamaktadır. , RNA genetik bilginin iletilmesi için ek olarak, regülatör, bağlayıcı veya katalizör olarak belirli bir biyolojik rolünü yerine getiren benzersiz üçüncül yapıları içine katlayabilirsiniz. Üçüncül temas oluşumu hakkında bilgi RNA molekülleri işlevini anlamak için önemlidir. Hidroksil radikalleri (• OH), yüksek reaktivite ve küçük boyutları nedeniyle nükleik asitlerin yapısını benzersiz probları 1 footprinting prob olarak kullanıldığında, hidroksil radikalleri DNA 1 ve RNA&#39;nın 2 fosfodiester omurgası solvent erişilebilir yüzey haritası tek nükleotid çözünürlük gibi ince. Hidroksil radikal footprinting moleküller arası bir temas yüzeyi içerisinde nükleotidler, DNA-protein 1 ve RNA-protein komplekslerinin örneğin tanımlamak için kullanılır. Denge 3 ve 4 geçişler kinetik bir soluti bir fonksiyonu olarak hidroksil radikal footprinting yaparak tespit edilebilirdeğişken veya sırasıyla. Footprinting bir anahtar özelliği probu bu sınırlı maruz kalma (örneğin, &#39;tek-hit kinetiği), polimerin her bir nükleotid üniforması örnekleme sonuçları 5 Bu video makalede, RNA numune hazırlama ve Mg (II)-aracılı bir katlama izotermleri belirlenmesi göstermek için Tetrahymena ribozim P4-P6 etki alanı kullanın . H 2 O 2 (bu &#39;peroksidatif&#39; protokolünün diyoruz) ve doğal olarak çözünmüş O 2 kullanan bir değerli, ancak yaygın olarak bilinen, alternatif (biz bu &#39;gerektiren bilinen bir hidroksil radikal footprinting protokolü kullanımını tanımlamak oksidatif &#39;protokolü). Veri azaltma, dönüşüm ve analiz işlemleri genel bir bakış sunulmuştur.

Bu protokol, Mg (II) bağlı hidroksil radikal footprinting iki yöntem RNA üçüncül yapısının oluşumu ölçmek için nasıl kullanılacağını açıklar.

RNA Yapısı &#39;peroksidatif&#39; ve &#39;Oksidatif&#39; Hidroksil Radikal footprinting İzleme Denge Değişiklikler

RNA molekülleri biyolojide temel bir rol oynar. Genetik bilgiyi iletmenin yanı sıra RNA, ... işlevlerini yerine getiren özgün tersiyer yapılara katlanabilir.

Aşağıdaki deneyin genel amacı, hidroksil radikali ayak izi yöntemiyle RNA moleküllerinin nasıl katlandığını belirlemektir. Bu işlem; RNA'nın uç etiketlemesi, jel saflaştırması ve ön katlamasıyla gerçekleştirilir; bu adımlar, sonraki aşama olan magnezyum aracılı katlanma öncesinde RNA'nın konformasyonel bütünlüğünü sağlar. Ardından, çözücüye erişilebilirliğine göre RNA omurgasını kesebilen hidroksil radikalleri üretmek için Fenton reaktifleri karıştırılır. Son olarak, RNA kesilme ürünleri denatüre poliakrilamid jel elektroforezi ile ayrılır ve otoradyografi ile görüntülenir.Bant integralleri, yarı otomatik ayak izi analiz yazılımı ile nicelendirilir. Nihai hedef, RNA'nın tersiyer yapı oluşumunu yansıtan katlanma izotermleri oluşturmaktır. Bu, normalize edilmiş bant integrallerinin kısmi doygunluğa ölçeklendirilmesiyle gerçekleştirilir.İzotermler daha sonra hill denklemine uydurulabilir. Hidroksi ayak izi yönteminin temel avantajı, küçük boyutları nedeniyle yüksek aktiviteye sahip olan hidroksil radikallerinin, solvente açık ve gömülü nükleotidleri ayırt etmek için mükemmel problar olması sayesinde, uygun maliyetli kimyasallar kullanarak RNA'nın tersiyer yapı bilgilerini elde edebilmenizdir. Bu yöntem, RNA yapısal biyolojisi alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.Örneğin, ribozomlar aktif konformasyonlarına ulaşmak için metal iyonlarını nasıl kullanırlar? Hidroksil radikali ayak izi yöntemi, RNA özgüllüğünün ve tanınmasının temellerini anlamak için kullanılabilir. Bu yöntem, RNA tersiyer yapısı hakkında bilgi vermenin yanı sıra, RNA veya DNA moleküllerindeki kesin protein bağlanma bölgelerinin belirlenmesinde de kullanılabilir.Bu yöntemin başlıca zorlukları, örneğin ribonükleaz tarafından yıkıma uğramasını önlemek ve doğru miktarda RNA kesimi elde etmek için demir konsantrasyonunu optimize etmektir. Ayrıca, bant aralıklarının ayrıntılı analizi oldukça karmaşık olabilir. Bu videonun temel amacı, izleyicilerin hidroksil radikali ayak izi deneyinin planlama aşamalarını ve başarılı bir şekilde yürütülmesini anlamalarına yardımcı olmaktır. Bu protokole başlamadan önce, yazılı protokolde açıklandığı şekilde tüm ayak izi reaktiflerini hazırlayın.Bu videonun eşliğinde, RNA'lar orada belirtildiği üzere dört ilgili DFO ile üretilebilir ve uçları işaretlenebilir. Radyoaktif olarak işaretlenmiş RNA'yı denatüre eden jel elektroforezi kullanarak saflaştırın. Saflaştırılmış RNA'yı, 0,3 molar sodyum asetat kullanarak birbirini izleyen iki jel ekstraksiyonu ile geri kazanın.Ardından, 0,5 mililitre sulu çözeltiyi bir mililitre etanolle karıştırarak RNA'yı çöktürün. Karışımı kuru buz üzerinde bir dakika boyunca inkübe edin. Numuneyi santrifüjledikten sonra süpernatantı atın. RNA peletini %70 etanol ile yıkayın.Ek santrifüjasyon sonrası süpernatantı uzaklaştırın ve peleti vakumda kurutun. Ardından, saflaştırılmış P 32 işaretli RNA örneklerini çözün. Yeni bir reaksiyon tüpüne, bir kat reaksiyon tamponunun 330 mikrolitresi içinde 30 mikrolitre RNA çözeltisi pipetleyin.RNA'yı etanol ile çöktürün ve ardından peleti vakumda kurutun; kurutulduğunda bu pelet, yazılı prosedürde açıklandığı üzere referans merdiveni oluşturmak için kullanılabilir; geri kalan tamponlu RNA çözeltisini 95 °C'de iki dakika ısıtarak denatüre edin. Örnekları 15 dakika boyunca oda sıcaklığına getirin ve kondensatı tekrar çözeltiye döndürmek için hızlı bir santrifüj işlemi uygulayın. Ayak izi (footprint) deneyine başlamak için, 30 kuyucuklu bir elektroforez jelini doldurmaya yetecek kadar örnekle 27 reaksiyon tüpü hazırlayın.Merdivenler ve kesilmiş kontrol dahil edildikten sonra, titrasyon orta noktası etrafındaki birkaç büyüklük sırasına logaritmik ölçekte eşit aralıklarla dağılacak şekilde nihai magnezyum iyon konsantrasyonlarını belirleyin; bir katlık reaksiyon tamponu içindeki magnezyum iyonlarının hazırlanışı metinde ayrıca açıklanmıştır. RNA ve magnezyum iyon çözeltilerini 50 °C'de beş dakika boyunca inkübe edin. Ardından, 10 µL RNA çözeltisini, ilgili miktardaki 90 µL magnezyum iyon çözeltisi ile karıştırın.Toplam 100 µL hacme ulaşmak için, her karışımı 50 °C'de 30 dakika inkübe edin. Ardından, RNA katlanmasının gerçekleşmesi için solüsyonların 25 °C'de bir saat boyunca dengelenmesini sağlayın. Bu sırada, hidroksil radikali ayak izi reaksiyonunu başlatmadan hemen önce, yazılı protokolde açıklandığı şekilde kontrol reaksiyon karışımını hazırlayın.RNA solüsyonu içeren reaksiyon tüpünün üst iç kısmına, birbirine temas etmeyecek şekilde ikişer mikrolitre demir EDTA, sodyum askorbat ve hidrojen peroksit damlacıkları pipetleyerek peroksidasyon reaksiyonunu hazırlayın. Şiddetli bir şekilde karıştırarak footprinting reaksiyonunu başlatın. 15 saniye sonra, 300 mikrolitre saf soğuk etanol ekleyerek reaksiyonu durdurun.Tüpleri üç ila beş kez altüst edin. Son olarak, peleti daha önce gerçekleştirildiği gibi çöktürün, yıkayın ve kurutun; peroksidatif reaksiyona alternatif olarak, örneklere taze hazırlanmış beş mikrolitre Fenton reaksiyon karışımı ekleyerek oksidatif hidroksil reaksiyonu gerçekleştirilecektir. Oksidatif reaksiyonu 25 °C'de 30 dakika boyunca inkübe edin.Ardından, reaksiyonu durdurmak için 300 µL saf soğuk etanol ekleyin ve tüpleri çevirerek karıştırın. Tekrar çöktürün. Peroksidatif veya oksidatif reaksiyon tamamlandığında pelleti yıkayın ve kurutun.Kurutulmuş RNA peletlerini sekiz µL jel yükleme boyası iki içerisinde çözün. P 32 işaretli RNA'nın yeniden süspande edildiğini bir geiger sayacı kullanarak doğrulayın; standart protokollere uygun olarak denatüre edici %8 poliakrilamid sekanslama jeli hazırlayın. 30 kuyucuklu bir tarak kullanarak, iki referans ve bir kesilmiş kontrol dahil olmak üzere örnekleri yükleyin.RNA fragmanlarını 60 ila 75 watt'ta iki buçuk saat boyunca ayırın. Kurutulmuş jeli gece boyunca bir saklama fosfor ekranına maruz bırakın. Filmsız otoradyografi için fosfor ekranını bir görüntüleme sistemiyle tarayın.Ardından, analiz için jel görüntü dosyasını bilgisayara aktarın. Veri analizine başlamak için, tek bant uydurma ve miktar tayini için kullanılan açık kaynaklı yazılım olan Safa'yı açın. Önce RNA dizisini .txt dosyası olarak, ardından jel görüntüsünü .gel dosyası olarak yükleyin.Şeritleri tanımlayın ve bant yoğunluklarını ayarlayın. Ardından bir çapa şeridi seçin ve RNA T-1 sindirim merdivenine referansla bantların nükleotidlere jel hizalama atamasını gerçekleştirin. Bant yoğunluklarını nicelleştirin; potansiyel olarak değişmez kalıntıları normalize etmek ve atamak için normalizasyon/renk grafiği özelliğini kullanın.Çıktıyı bir txt dosyası olarak kaydedin. SFA, jel üzerindeki şeritleri temsil eden sütunlar ve RNA fragmanına karşılık gelen bireysel bant integrallerini temsil eden satırlar içeren bir hesap çizelgesi verir. İlk olarak, magnezyum iyonu içermeyen örnekten elde edilen koruma profili ile uç nokta magnezyum iyonu konsantrasyonu profilinin karşılaştırılmasıyla, solvent erişilebilirliğinde belirgin bir değişiklik gösteren koruma bölgeleri belirlenmelidir.Değer ne kadar düşükse, nükleotid hidroksil radikallerinin saldırısına karşı o kadar korunaklıdır ve bunun tersi de geçerlidir. Ardından, bir hesap çizelgesi formatı kullanarak, tekil veya grup halindeki nükleotidlerin bant yoğunluklarına karşı magnezyum demir konsantrasyonunu gösteren geçiş eğrileri oluşturun; bu geçişleri, bu protokolün metin kısmında açıklandığı şekilde fraksiyonel doygunluk fonksiyonuna göre ayrı ayrı ölçeklendirin. Son adım olarak, verileri Hill denklemine uydurun.Bu analiz, geçişi kısmi doygunluğa ölçeklendirir, geçiş orta noktasını belirler ve gösterilen geçişin sigmoid yapıda olup olmadığına dair fenomenolojik bir test sağlar. Burada, P dört P altı RRNA hidroksil radikali ayak izi deneylerinden elde edilen temsili sonuçlar yer almaktadır. İzotermler, Safa tarafından analiz edilen sekanslama jellerinden türetilmiş ve ardından analiz bölümünde açıklandığı şekilde sığdırılmıştır.Jel görüntüsü, arka plan cleavage düzeyinin minimumda olduğunu ve T şeridindeki belirgin bantlar sayesinde tek nükleotid atamasının mümkün olduğunu göstermektedir. Hidroksil radikali tarafından tetiklenen RNA fragmantasyonu, arka plan düzeyinin oldukça üzerindedir. Düşükten yükseğe magnezyum iyonlarına geçiş, RNA oluşumuna işaret eden münferit bantların ve bant gruplarının yoğunluğundaki azalma ile seçici olarak ilişkilidir.Tersiyer yapı koruması, kesilmeleri eş zamanlı olarak bant yoğunluklarını değiştiren tekil nükleotidleri veya ardışık nükleotid gruplarını ifade eder; bu yoğunluklar saffer analizi ile nicelendirilir ve normalize edilir. Çıktı, hidroksil radikallerine karşı koruma derecesini görselleştiren termal bir grafiktir. Renk geçişi, magnezyum demir eklemesi üzerine meydana gelen erişilebilirlik değişimini tanımlar; beyazdan kırmızıya geçiş daha erişilebilir nükleotidleri, beyazdan maviye geçiş ise daha korunaklı nükleotidleri gösterir.Her bir gölgelendirme derecesi, bir koruma eğrisi olarak çizilebilen ve Hill denklemi gibi bir bağlanma modeliyle analiz edilebilen sayısal bir değerle ilişkilendirilmiştir. Bu örnekte, protection 1 5 3 ile 1 5 5 arasındaki koruma ile ilişkili denge disosiyasyon sabiti, protection 1 6 3 ile 1 6 4 arasındaki karşılık gelen değerin yaklaşık iki katıdır. Bu hidroksil radikali ayak izi deneyi, uygun şekilde gerçekleştirilirse bir buçuk günde tamamlanabilir.Bu prosedürü uygularken, herhangi bir RNA kontaminasyonunu önlemek için eldiven ve laboratuvar önlüğü giymeyi unutmamak önemlidir. Ayrıca, nihai demir konsantrasyonu deneysel sisteme bağlıdır. Bu nedenle, bu prosedürü takip eden footprinting işlemi öncesinde bir doz yanıt deneyi gerçekleştirmenizi öneririz.Ek soruları yanıtlamak için zaman çözünürlüklü hidroksil radikal ayak izi gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Örneğin, RNA molekülleri gelişimlerini takiben hangi kritik zaman noktasında yanlış katlanmış veya aktif bir konformasyona ulaşır? Bu teknik, yapısal biyoloji alanındaki araştırmacıların nükleik asitlerin hem ara hem de geçici moleküler tersiyer etkileşimlerini keşfetmelerinin yolunu açmıştır.Bu videoyu izledikten sonra, RNA moleküllerinin tersiyer yapı oluşumunun nasıl belirleneceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Eldiven ve koruyucu gözlük takmak gibi tehlikeli maddelere karşı önlemlerin yanı sıra, bu prosedürü gerçekleştirirken pleksiglas koruyucu kullanmanız önerilmektedir.

monitoring-equilibrium-changes-rna-structure-peroxidative-oxidative

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Astar uzantısı (SHAPE) tarafından analiz yüksek verimli seçici 2 'hidroksil asilleme tek nükleotid çözünürlükte binlerce nükleotid birkaç yüz ile RNA'lar yapılarını belirlemek için bir teknoloji sondalama yeni kimyasal, ters transkripsiyon, kapiler elektroforez ve ikincil yapı tahmini yazılımı kullanır.

Yüksek verim SHAPE kullanarak RNA İkincil Yapısı Tahmin

Radikal tabanlı biomimetic kimya biyolojik gelişimi için gerekli bina-up kütüphaneler uygulanmıştır.

Kimyasal Biyoloji Serbest Radikaller: Kimyasal Davranış den Biyomarker Kalkınma

Burada RNA DNAzyme bağımlı dekolte için bir protokol salıyoruz. Bu, RNA 2'-O-metilasyonun hızlı ve yere bağlı analizini sağlar. Bu yaklaşım, snoRNA aktivitesinin ön veya önemli değerlendirilmesi için kullanılabilir.

RRNA 2'-O-Metilasyonun DNAzyme bağımlı analizi

Burada 8-OXO-7, 8-dihydro-2'-deoknguanozin (8-oxodGuo), 1,n6-etheno-2'-deoxyadenosine (1, n6-dAdo) ve 1,n2-lezyonların hassas ve doğru ölçülmesini yöntemleri açıklanmaktadır etheno-2'-deoxyguanosine (1,N2-dguo) DNA 'da. Yöntemler, ortam ince partikül maddenin (PM2,5) dokularda (akciğer, karaciğer ve böbrek) maruz kalan A/J fareler üzerindeki etkilerinin değerlendirilmesi için uygulanmıştır.

Kütle spektrometresi ile üç DNA lezyonlarının ölçülmesi ve ortam Ince partikül madde maruz fareler dokularda düzeylerinin değerlendirilmesi

Proteinlerin in vivo hızlı fotokimyasal oksidasyonu (IV-FPOP) kendi doğal ortamında protein yapısının haritalanması için izin veren bir hidroksil radikal protein ayak izi tekniğidir. Bu protokol, IV-FPOP mikroakışkan akış sisteminin montajını ve kurulumünü açıklar.

In Vivo Hidroksil Radikal Protein Ayak İzi Caenorhabditis elegans Protein Etkileşimleri Çalışması için

Burada, canlı hücrelerdeki protein yapısını ve etkileşim alanlarını, proteinlerin hücre içi hızlı fotokimyasal oksidasyonu (IC-FPOP) olarak adlandırılan bir protein ayak izi tekniği ile karakterize ediyoruz.

Hücre İçi Hızlı Fotokimyasal Oksidasyon ile Hücresel Proteinlerin Karakterizasyonu

cDNA'nın kinetik çapraz bağlanması ve analizi, canlı hücrelerdeki protein-RNA etkileşimlerinin dinamiklerinin yüksek zamansal çözünürlükte araştırılmasını sağlayan bir yöntemdir. Burada protokol, maya hücrelerinin büyümesi, UV çapraz bağlama, hasat, protein saflaştırma ve yeni nesil dizileme kütüphanesi hazırlama adımları dahil olmak üzere ayrıntılı olarak açıklanmaktadır.

χCRAC Kullanarak Yüksek Zamansal Çözünürlükte Protein-RNA Etkileşim Dinamiğinin İn Vivo İzlenmesi

Proteinlerin hızlı fotokimyasal oksidasyonu proteinlerin yapısal karakterizasyonu için ortaya çıkan bir tekniktir. Farklı solvent katkı maddeleri ve ligandlar çeşitli hidroksil radikal atma özelliklerine sahiptir. Farklı koşullarda protein yapısını karşılaştırmak için reaksiyonda oluşan hidroksil radikallerinin gerçek zamanlı telafisi reaksiyon koşullarını normalleştirmek için gereklidir.

Protein Topografya Değişikliklerinin Belirlenmesinde Proteinlerin Hızlı Fotokimyasal Oksidasyonlarında Gerçek Zamanlı Telafinin Sağlanması

Bu protokol, sıralı radikal dozimetri ve flaş oksidasyon proteini ayak izi gerçekleştirmek için bir plazma ışık kaynağı kullanmak için bir yöntem sunar. Bu yöntem, protein çalışmalarının hızlı fotokimyasal oksidasyonunun tekrarlanabilirliğini basitleştirmek ve iyileştirmek için tehlikeli UV lazerin yerini alır.

Proteinlerin Daha Yüksek Sıralı Yapısal Analizini Gerçekleştirmek için Lazersiz Hidroksil Radikal Protein Ayak İzi

MALDI-TOF, oksitlenmiş RNA ve eksoribonükleaz Xrn-1 arasındaki reaktiviteden elde edilen fragmanları karakterize etmek için kullanıldı. Mevcut protokol, RNA ve / veya DNA içeren diğer işlemlere uygulanabilecek bir metodolojiyi açıklamaktadır.

MALDI-TOF Kütle Spektrometrisi Kullanılarak Enzimatik Bozunmadan Kaynaklanan RNA Fragmanlarının Tanımlanması

Protokol, mutasyonel profilleme deneyleri için RNA'nın dimetil sülfat ile modifiye edilmesi için talimat sağlar. İki alternatif kütüphane hazırlama yöntemi ile in vitro ve in vivo problama içerir.

RNA Yapısının Dimetil Sülfat Mutasyonel Profillemesi ile İn Vitro ve İn Hücre Dizilimi ile İncelenmesi

Öğrenin RNA üçüncül yapı oluşumunu hidroksil radikal footprinting ile nasıl nicelendireceğinizi. Bu yöntem Fenton reaktifleri ve jel elektroforezi kullanarak katlanma izotermleri oluşturur.

RNA Yapısı 'peroksidatif' ve 'Oksidatif' Hidroksil Radikal footprinting İzleme Denge Değişiklikler

Daha fazla video keşfet