Name: Tek molekül Floresan Mikroskopi Reseptör Dinamiği Yüksek çözünürlüklü Spatiotemporal Analizi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 13 s
Description: Öğrenin, tek molekül floresan mikroskopisi ile canlı hücre yüzeyindeki reseptörlerin hareketini ve dinamik ilişkilerini analiz etmeyi. Bu yöntem, reseptör organizasyonunu ve hücre sinyalleşmesini anlamak için güçlü bir araç sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu protokolün geliştirilmesi, Avrupa Araştırma Konseyi (İleri Hibe TOPAS'tan M.J.L.'ye) ve Deutsche Forschungsgemeinschaft'tan (CA 1014/1-1'i D.C.'ye ve SFB487'yi M.J.L.'ye hibeler) alan hibelerle desteklenmiştir. T.S., Alexander von Humboldt Vakfı tarafından desteklendi.

1.. Numune Hazırlama <ol><li> Lamel temizleme NOT: Bir davlumbaz altında çalışın. <ol><li> Bireysel lamelleri ayıran bir lamel tutucu içine cam lamelleri (24 mm çap) yerleştirmek için temiz cımbız kullanın. </li><li> Bir beher içine lamelleri ile tutucu koyun ve lamelleri kaplıdır kadar kloroform ekleyin. Oda sıcaklığında 1 saat boyunca bir banyo sonikatörü içinde buharlaştırma ve sonikasyon azaltmak için alüminyum folyo ile beher örtün. Beher dışına lamel tutucu alın ve lamelleri kurumaya bırakın. </li><li> Yerine kloroform içinde 5 M NaOH çözeltisi ile adımı 1.1.2 tekrarlayın. </li><li> Yeni bir behere lamel tutucu alın ve damıtılmış su ile üç kez yıkayın. % 100 etanol ile dolu bir cam hücre kültürü plakasında lamelleri temizlenmiş koyun. </li></ol></li><li> Kalibrasyon örneklerinin hazırlanması <ol><li> Uygun bir çözücü içinde floresan boya çözülür. </li><li> Arasında değişen floresan bir boya 01:10 seri seyreltme hazırlanması13:00 1 nM'ye filtre (0.22 um) steril su. </li><li> % 100 etanol içinde saklanan temizlenmiş lamelleri ayırın ve filtre ile sterilize edilmiş su ile yıkayın. Ayrı bir temizlenmiş lamel floresan için seyreltme Noktası 20 ul. Lamelleri steril bir başlık altında kurumaya bırakın. Kullanıma kadar ışık ve tozdan lamelleri koruyun. Tek flüoresan moleküllerinin yoğunluğunu (adım 3) tahmin etmek için, bu örnekler kullanın. </li></ol></li><li> Transfection <ol><li> 1:01 Dulbecco tadil edilmiş Eagle ortamı / besleyici karışımı içinde kültür CHO hücreleri, F-12,% 10 fetal sığır serumu (FBS), 100 U / ml penisilin ve 37 ° C'de 100 ug / ml streptomisin, in takviye (DMEM/F12) .% 5 CO2 Not: otoflüoresanı en aza indirmek için deney boyunca fenol kırmızısız ortamını kullanın. </li><li> ,% 100 etanol çözeltisi temizlenmiş lamelleri al steril fosfat-tamponlu tuzlu su (PBS) ile yıkayın ve bir 6 yuvalı hücre kültürü pl her oyuğuna bir lamelyedik. </li><li> Trypsinize, sayısı ve 3 x 10 5 hücre / göz lamelleri içeren 6 oyuklu hücre kültürü plakasının içindeki bir yoğunlukta tohum CHO hücreleri. Hücrelerin yaklaşık elde etmek için 24 saat boyunca (37 ° C,% 5 CO2), bir kuluçka makinesi içinde büyümesine izin. Transfeksiyon için en uygun hücre yoğunluğu% 80 kaynaşma. </li><li> Her bir için, (örneğin,., 2-adrenerjik reseptörü β SNAP-etiketli) Arzu edilen plazmid DNA 2 ug seyreltilmiş ve 500 ul Optimem ortamı ihtiva eden iki ayrı tüplerde 6 ul Lipofektamin 2000. 5 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> Tek bir tüp içine adım 1.3.4 arasındaki çözüm birleştirin ve bir transfeksiyon karışım elde etmek için karıştırılır. 20 dakika boyunca, oda sıcaklığında, transfeksiyon karışımı inkübe edin. </li><li> İnkübasyonun (1.3.5) 'sırasında, CHO hücreleri almak ve önceden ısıtılmış (37 ° C) iki kez PBS ile yıkayın. 1 ml /% 10 FBS ile desteklenmiş fenol kırmızısı içermeyen DMEM/F12 ortamında oyuk ama hiçbir antibiyotik ile PBS değiştirin. </li><li> Tüm transfekte eklemeKarışım, yavaşça iyon de her adım 1.3.5 damla damla dan (1 mi), ve tam karışmasını sağlamak için ileri ve geri plakayı sallayın. </li><li> % 5 CO2 içinde, 37 ° C'de 2-4 saat süreyle inkübe edin ve bir sonraki adım için daha sonra hemen devam Not:. Transfeksiyon Bu koşullar için uygun olan tek reseptör yoğunlukları &lt;0.45 partikül / 2 um, elde etmek için optimize edilmiş molekül görüntüleme. Farklı hücreler, yapıları veya reaktifler kullanırken ayarlamaları gerekli olabilir. </li></ol></li><li> Protein etiketleme <ol><li> 1 uM'lik nihai konsantrasyon elde etmek üzere,% 10 FBS ile takviye edilmiş 1 ml DMEM/F12 ortamı içinde fluorofor BG stok çözeltisinden 1 ul seyreltin. Inkübatör transfekte edilmiş hücrelerin almak ve önceden ısıtılmış (37 ° C) iki kez PBS ile yıkayın. 1 uM fluorofor BG çözeltisi, 1 ml PBS ile değiştirin ve bir kuluçka makinesi içinde 37 ° C,% 5 CO2 'de 20 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> İnkübasyondan sonra, hücreler üç yıkama% 10 FBS ile desteklenmiş DMEM/F12 ortamı ile, bir kez, her seferinde 37 ° C de 5 dakika inkübasyon ile takip Cımbız ile (etiketli hücreler) bir lamel alın ve bir görüntüleme odasına yerleştirin. </li><li> 300 ul görüntüleme tamponu ile iki kere yıkayın. Taze görüntüleme tampon 300 ul ekleyin ve görüntüleme (Part 2) hemen geçin. </li></ol></li></ol> 2.. Image Acquisition NOT: toplam iç yansıma floresan bir yağ daldırma yüksek sayısal açıklık objektif (. Örneğin, 100x magnification/1.46 sayısal diyafram), uygun lazerler (örn., 405 nm, 488 nm, 561 nm ve 645 ile donatılmış (TIRF) mikroskop kullanın nm diyod lazerleri), bir elektron çarparak şarj akuplaj düzenli (EMCCD) kamera, bir kuluçka makinesi ve bir floresan moleküller görselleştirmek için bir sıcaklık kontrolü. <ol><li> İstenilen mikroskop parametreleri, yani ayarlayın., Lazer çizgi, TIRF açısı (bu parametre İçeri nüfuz kontrolfani alan tion derinliği), pozlama süresi, kare hızı ve film başına 10 görüntü sayısı. Sıcaklık sürükleniyor ve nem yoğunlaşmasını önlemek için her zaman ısıtıcı / inkübatör ve sıcaklık kontrol altında tutun. </li><li> Mikroskop 100X objektif daldırma bir damla yağ koyun. Mikroskop numune tutucu üzerine etiketli hücreleri ile görüntüleme odasına yerleştirin ve aydınlık aydınlatma kullanarak odak hücreleri getirmek. </li><li> TIRF aydınlatma geçin. Ama aynı zamanda da arzu edilen bir hücre için aramaya photobleaching en aza indirmek izin vermek için mümkün olduğu kadar düşük bir lazer gücü tutun. </li><li> İstediğiniz hücreyi seçin ve ince odak ayarı. Tek Flüoroforlann görselleştirme sağlayan bir seviyeye lazer gücünü ayarlayın. Görüntü dizisi kazanmak ve. Tiff gibi ham görüntü sırası dosyasını kaydedin. </li></ol> 3.. Kalibrasyon (Cam ve moleküllü / dimerik Reseptör Kontroller Tek Flüoroforlar) <ol><li> Her kalibrasyon sampl birleştirinGörüntüleme odası içinde 1.2 'de tarif edildiği gibi hazırlanmıştır e. Mikroskop her örnek koyun ve tek aşamalı bir NOT ağartma iyi ayrılmış kırınım sınırlı noktalar içeren örnek tercih:. Bu lekeler flüoresan boya tek moleküller temsil eder. </li><li> Adım 2 de tarif edildiği gibi TIRF görüntü dizilerini elde edin Önemli:. Aynı görüntüleme parametreleri kalibrasyon için olanlar dahil olmak üzere tüm deneyler için kullanılmalıdır. </li><li> 4.2 - algılama ve 4.1 ayrıntılı olarak izleme analizi yapın. 4.2.6 tarif edildiği gibi her bir parçacık yoğunluğunu ekstrakte edin. Bu verilerden, ortalama (μ) ve tek florofor yoğunluğunun standart sapması (σ) hesaplar. </li><li> İsteğe bağlı: tek moleküllü bir hücre yüzeyi reseptörüne (. Örneğin, CD86) ile transfekte edilmiş hücreler üzerinde aynı analizi, N-terminal olarak SNAP 10 arasında bir ya da iki kopya ile etiketlendi ve fluorofor BG türevi ile etiketlenir. FolloCam üzerinde tek bir florofor için yukarıda tarif edilen prosedüre w. Calebiro, D. ve diğerleri de tarif edildiği gibi etiketleme verimliliği tahmin. 10 </li></ol> 4.. Görüntü Analizi <ol><li> Görüntü dizisi hazırlama <ol><li> Görüntü kırpma bir görüntü işleme yazılımı (örneğin., ImageJ) kullanın. </li><li> Ayrı olarak tek kare kaydedin. Tiff görüntüleri yeni bir klasöre, her görüntünün kare sayısı üzerinde göstermektedir. </li><li> Bir hücrenin konturu boyunca ilgi (ROI) bir bölge çizim ve ImageJ ölçü aleti veya başka bir yazılıma benzer bir aracı kullanarak hücre yüzey alanını ölçün. Hücre yüzeyi alanı ile filmin başında parçacıkların toplam sayısına bölünmesiyle parçacık yoğunluğunu hesaplamak için bu değeri kullanın. </li></ol></li><li> Parçacık algılama ve izleme NOT: Matlab çalışma, bu tür u-track 13 gibi ticari olmayan yazılımı kullanınotomatik olarak algılar ve tek reseptör partikülleri izlemek için ortam. NOT: U-track algoritması çoklu hipotez izleme yaklaşıma dayanmaktadır. Bu yaklaşım, bir çerçeve içinde verilen bir parçacık, bir sonraki çerçeve içinde verilen bir parçacığa karşılık görünür, kaybolur ya da / diğer parçacıklardan / ile böler birleşir bireysel olasılıklar atanır maliyet matrisleri, bina çerçeveler arasında parçacıkları bağlar. Global olarak masrafları en aza indirir Çözelti, yani. En yüksek olasılık ile bir, son olarak seçilir. Bu aynı zamanda bir geçici yok parçacık, florofor yanıp sönen neden olduğu tipik fenomen izleme sağlar. U-track (2.1.0) en son sürümü bu analizlerin yürütülmesini kolaylaştırmak grafik kullanıcı arayüzü vardır. <ol><li> Film seçimi arayüzünü açmak için Matlab komut isteminden "movieSelectorGUI". Bir oluşturmak için yönergeleri izleyinÖnceden kaydedilen görüntülerin ayrı itibaren yeni bir film veritabanı (4.1.2 bakınız). </li><li> Parçacık tespiti ve takibi için gerekli piksel boyutunu nm, saniye zaman aralığı, sayısal açıklık, kamera bit derinliği ve floroforun emisyon dalga boyu, sağlayın. Film veritabanına kaydetmek. </li><li> Film seçimi arayüzü, nesnelerin türü olarak "tek-parçacıklar" seçerek, analizi çalıştırın. Parçacık algılama ve izleme için kullanılan parametreler tanımlanabilir yeni bir pencere açılacaktır. Varsayılan parametreleri ile başlayın. . Algılama ve / veya izleme kalitesi İsteğe bağlı (örneğin, bazı parçacıklar tespit veya parça parçalanmış olan değildir) tatmin edici değilse, daha sonra, bu parametreleri ayarlamak: izleme ayarları altında, saklamak "matris formatında İhracat izleme sonuçlarını" kontrol "trackedFeaturedInfo adlı tek bir matris (alanına koordinatlar ve tüm parçacıkların genlikleri"). Bu parametrelerin ayrıntılı bilgi için, u-parça belgelerine bakın. </li><li> Algılama algoritması çalıştırın. Bu algoritma otomatik olarak her kırınım-sınırlı yerinde yerel yoğunluk maksimanın etrafında mikroskop nokta dağılım fonksiyonu eşit standart sapma ile iki boyutlu bir Gauss fonksiyonu takarak (yani., Tek reseptörler / reseptör kompleksleri) arka planı üzerinde yerini ve yoğunluğunu belirlemek . Daha sonra, izleme algoritması çalıştırın. A. Mat dosyası analizlerin sonuçlarını saklayın. </li><li> Parçaları görselleştirmek ve algılama ve izleme kalitesini kontrol etmek için u-parça paketin içerdiği "movieViewer" rutin, veya benzer özel olanları kullanın. </li><li> Her karede izlenen parçacıkların konumunu ve genliği (yani., Yoğunluk) görmek için. Mat dosyasını açın. Adım 4.2.4 üretilen veriler tracksFinal AR'nin tracksCoordAmpCG alan içinde bulundurulurray ve / veya trackedFeaturedInfo içinde. Parçacıkların toplam sayısından 4.1.3 ölçülen hücre yüzey alanı ile bu değer ikiye bölen parçacık yoğunluğunu hesaplamak tespit edildi. </li><li> İsteğe bağlı: parçacık reseptör parçacıkların hareketini analiz etmek için (4.2.6 bakınız) zamanla koordinatları kullanın. Matlab ve benzer yazılımı kullanarak ortalama kare yer değiştirmeleri (MSD) ve difüzyon katsayıları (D) hesaplayın. Her parçacık ve her zaman aralığı (Δ t) için düşünülen, aşağıdaki formül kullanılarak ortalama kare yer değiştirmesini (MSD) hesaplamak: <img align="middle" alt="Denklem 1" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/51784/51784eq1.jpg"> Δ t dilimlerinde zaman aralığı olduğu yerde, N analiz adımların sayısını, x ve y, parçacığın x ve y indeksi ile gösterilen karede koordinatları bulunmaktadır. Doğrusal ilişkileri: belirli bir parçacığın hareket türünü değerlendirmek için zaman alanı üzerinde MSD kullanınserbest difüzyon (yani., Brown hareketi), olumlu bir eğrilik gösterir (yani., eğri bir parabol gibi görünüyor) yönettiği hareketi göstermektedir, negatif eğrilik sınırlı hareket 14 göstergesidir. Serbestçe difüzyon parçacık halinde, aşağıdaki denklemle elde edilen MSD verileri uydurularak her parçacığın difüzyon katsayısı (D) hesaplayınız: <img align="middle" alt="Denklem 2" src="/files/ftp_upload/51784/51784eq2.jpg"></li></ol></li><li> Gaussian montaj yöntemi ile partikül boyutunun hesaplanması Not: kalibrasyon numuneleri (cam ve / veya floresan etiketli monomerik reseptörleri üzerinde bir flüorofor) yoğunluğu dağılımı bilindiği zaman, reseptör komplekslerinin boyutunu belirlemek için bir görüntü dizisinin başında tanecik yoğunluklarının dağılımı üzerinde karışık bir Gauss uyum gerçekleştirmek (yani., parçacık başına reseptörlerin sayısı) 10. Matlab veya s kullanarak bu analizleri yapmakimilar yazılım. <ol><li> Yoğunluğundaki ilk değişiklik (nedeniyle, ışıkla ağartma çoğu durumda bir düşüş) oluşmadan önce üst kısmın çerçeveye göre birinci çerçeveden parçacığın yoğunluğu ortalaması alınarak her bir parçacık yoğunluğunu hesaplar. </li><li> Aşağıdaki denkleme göre karma Gauss montaj yapın: <img align="middle" alt="Denklem 3" fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/51784/51784eq3.jpg"> φ (i) parçacıkları i yoğunluğu olan frekans, n bileşen sayısını, n α bileşen n yüksekliğine katkıda bulunan bir parametre olduğu, μ ve σ ortalama ve referans bir florofor yoğunluğunun standart sapma . (Adım 3'te tarif edildiği gibi hesaplanmıştır) Not: t belirlemebir F-testi ile değerlendirildiği gibi o kademeli bir bileşenin ilave edilmesine kadar n maksimum arttırarak her bir görüntü dizisi için bileşenler (n max) en yüksek sayısı artık, istatistiksel olarak daha iyi uygun üretir. </li><li> İsteğe bağlı: (. Örneğin, 400 çerçeve dizisinin son 60 kare) filmin son kare elde yoğunluk dağılımı üzerinde bir karma Gauss uyum gerçekleştirin. Bu parametreler için rafine tahminleri sağlamak bu uydurma sonra elde edilen değerler, ve tekrar adım 4.3.2 ile μ ve σ değiştirin. </li><li> Karışık Gauss uyum her bir bileşeninin, eğri (AUC) altındaki alanı hesaplanır. Farklı boyut tüm dağıtım EAA ile her bir bileşenin AUC değerine bölünmesiyle (örneğin, monomer, dimer, trimer, vb) reseptör parçacıkların görece bolluk hesaplayın. </li><li>İsteğe bağlı: farklı hücreler ve farklı partikül büyüklüğü dağılımı parçacık yoğunluğu 10 ile ilişkilidir araziler oluşturmak için (4.2.6 açıklandığı gibi hesaplanan) karşılık gelen tanecik yoğunluklarının ikinci kullanımlar verileri. </li></ol></li><li> Aşaması uygun bir yöntem ile partikül boyutunun hesaplanması NOT: reseptör komplekslerinin 10 boyutunu belirlemek için alternatif bir yöntem olarak bir adım oturan analizini kullanın. N florofor içeren, böylece parçacıklar kademeli ağartıcı n adımlarla bir yoğunluk profili üreten beklenmektedir - Bu analiz için temel olan anlık kaybolması tek bir florofor sonuç ışık kaynaklı yıkımı (ışıkla ağartma) olmasıdır. <ol><li> U-parça veya benzer algılama / izleme yazılımı (4.2.6 bakınız) tarafından oluşturulan. Mat dosyasından her parçacığın yoğunluğu profillerini ayıklayın. </li><li> Bu tür bir yer olarak, adım uydurma algoritması kullanarakref. 10, her bir parçacık için ağartma basamaklarının sayısını saymak için. </li><li> İsteğe bağlı (4.3 'e bakınız), farklı boyutta reseptör parçacıkların görece bolluğu gösteren dağılımları oluşturmak ve daha önce karışık Gauss fitingin sonuçları için tarif edildiği gibi parçacık yoğunluğu ile ilişkili sonuçları kullanın. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Pierce, K. L., Premont, R. T., Lefkowitz, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seven-transmembrane+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Seven-transmembrane receptors.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 3, 639-650 (2002).</li>
<li>Angers, S., Salahpour, A., Bouvier, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dimerization%3A+an+emerging+concept+for+G+protein-coupled+receptor+ontogeny+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Pharmacol+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Dimerization: an emerging concept for G protein-coupled receptor ontogeny and function.</a> Annu Rev Pharmacol Toxicol. 42, 409-435 (2002).</li>
<li>Ferré, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Building+a+new+conceptual+framework+for+receptor+heteromers%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Building a new conceptual framework for receptor heteromers.</a> Nat Chem Biol. 5, 131-134 (2009).</li>
<li>Milligan, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((protein-coupled+receptor+hetero-dimerization%3A+contribution+to+pharmacology+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">protein-coupled receptor hetero-dimerization: contribution to pharmacology and function.</a> Br J Pharmacol. 158, 5-14 (2009).</li>
<li>Lohse, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dimerization+in+GPCR+mobility+and+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Dimerization in GPCR mobility and signaling.</a> Curr Opin Pharmacol. 10, 53-58 (2010).</li>
<li>Ulbrich, M. H., Isacoff, E. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subunit+counting+in+membrane-bound+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Subunit counting in membrane-bound proteins.</a> Nat Methods. 4, 319-321 (2007).</li>
<li>Triller, A., Choquet, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+concepts+in+synaptic+biology+derived+from+single-molecule+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">New concepts in synaptic biology derived from single-molecule imaging.</a> Neuron. 59, 359-374 (2008).</li>
<li>Hern, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+and+dissociation+of+M1+muscarinic+receptor+dimers+seen+by+total+internal+reflection+fluorescence+imaging+of+single+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Formation and dissociation of M1 muscarinic receptor dimers seen by total internal reflection fluorescence imaging of single molecules.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 2693-2698 (2010).</li>
<li>Kasai, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Full+characterization+of+GPCR+monomer-dimer+dynamic+equilibrium+by+single+molecule+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Full characterization of GPCR monomer-dimer dynamic equilibrium by single molecule imaging.</a> J Cell Biol. 192, 463-480 (2011).</li>
<li>Calebiro, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+analysis+of+fluorescently+labeled+G-protein-coupled+receptors+reveals+complexes+with+distinct+dynamics+and+organization%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Single-molecule analysis of fluorescently labeled G-protein-coupled receptors reveals complexes with distinct dynamics and organization.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 743-748 (2013).</li>
<li>Keppler, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+general+method+for+the+covalent+labeling+of+fusion+proteins+with+small+molecules+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">A general method for the covalent labeling of fusion proteins with small molecules in vivo.</a> Nat Biotechnol. 21, 86-89 (2003).</li>
<li>Gautier, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+engineered+protein+tag+for+multiprotein+labeling+in+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">An engineered protein tag for multiprotein labeling in living cells.</a> Chem Biol. 15, 128-136 (2008).</li>
<li>Jaqaman, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+single-particle+tracking+in+live-cell+time-lapse+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Robust single-particle tracking in live-cell time-lapse sequences.</a> Nat Methods. 5, 695-702 (2008).</li>
<li>Saxton, M. J., Jacobson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-particle+tracking%3A+applications+to+membrane+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Biophys+Biomol+Struct%22%5BJournal%5D)">Single-particle tracking: applications to membrane dynamics.</a> Annu Rev Biophys Biomol Struct. 26, 373-399 (1997).</li>
</ol>

Yazarlar, rekabet eden hiçbir finansal çıkarları olmadığını beyan ederler.

Açıklanan protokol, tek molekül düzeyinde mekansal, hareket ve hücre yüzeyi reseptör komplekslerinin boyut analizi sağlar. Floresan proteinlerin kullanımı ile karşılaştırıldığında, daha parlak ve daha ışığa karşı olan küçük organik florofor ile etiketleme, tek reseptör parçacıkların genişletilmiş görselleştirme işlemini ifa etmesi avantajına sahiptir. Son derece düşük ekspresyon düzeyi elde edildiği (&lt;0.45 reseptör parçacıkları / um 2), reseptörler ve diğer zar proteinlerinin fizyolojik özellikleri olanlar...

Hücre yüzeyi üzerinde bulunan reseptörler hücre dışı ortamı algılar ve bu tür koku maddeleri, iyonlar küçük, nörotransmiterler ve büyük protein hormonları olarak uyaranlara, çeşitli yanıt. Hücresel zarların akışkan doğası, reseptörler ve diğer membran proteinleri hareketlerini sağlar. Bu protein kompleksleri ve bu gibi fonksiyonel birimleri içine monte ve hücre içine sinyalleri nakletmek için reseptörler tarafından kullanılan gibi geçici protein-protein etkileşimleri, oluşumu oluşumu için gereklidir. Örneğin, hücre yüzey reseptörlerinin 1 en büyük ailesini oluşturan G-protein bağlı reseptörler (GPCR&#39;ler), sinyal transdüksiyon ince ayarlı düzenleme dahil olmak üzere görünür ve di-/oligomers oluşturmak üzere önerilmiştir önemli fizyolojik ve farmakolojik sonucu 2-5 olabilir. Tek molekül mikroskopi doğrudan yüksek spatiotemp ile görselleştirme büyük bir potansiyele sahipOral çözünürlük ilişkisi de dahil olmak üzere canlı hücrelerin yüzeyinde yer alan ayrı ayrı reseptörler dinamik davranışı dimerler ve yüksek dereceli moleküler kompleksleri oluşturmak için 6-10. Bu genellikle moleküllerin binlerce veya milyonlarca ortalama davranışını rapor standart biyokimyasal ve mikroskopi yöntemleri ile karşılaştırıldığında çeşitli avantajlar sunmaktadır. Yeterince parlak ve ışığa floroforuyla Protein etiketleme tek-molekül mikroskopi için esastır. Bu protokol, kovalent olarak hücre yüzeyi reseptörlerine küçük ve parlak bir organik florofor takmak için son zamanlarda ortaya SNAP etiketi 11 yararlanır. SNAP dönüşümsüz flüoroforla konjuge benzilguanin (flüoroforla-BG) türevleri ile etiketlenmiş olabilir insan DNA onarım enzimi O 6-alkylguanine-DNA alkyltransferase, türetilen bir 20 kD protein etikettir. CLIP, SNAP türetilen bir başka mühendislik etiket yerine, florofor-c ile etiketlenebilironjugated benzylcytosine türevleri 12. Bu yazıda bildirilen protokol transfect ve etiket küçük organik floroforlar ile 11 reseptörlerini SNAP-etiketli ve canlı hücrelerin 10 yüzeyinde tek reseptörler veya reseptör kompleksleri görselleştirmek için toplam iç yansıma floresan (TIRF) mikroskopi için nasıl kullanılacağı açıklanır. Bir hücre dışında SNAP-etiketli hücre yüzey proteininin 10&gt;% 90 verim, en etiketleme bildirilen protokol ile sonuçlanır. Reseptör komplekslerinin boyut ve hareketlilik analiz etmek için, hem de geçici reseptör-reseptör etkileşimlerinin yakalamak için tek molekül verilerin kullanımı ile ilgili daha fazla bilgi sağlanır. Tüm protokolünün şematik bir iş akışı, Şekil 1 &#39;de verilmiştir. Bir örnek olarak, Çin Hamsteri Yumurtalık SNAP-etiketli G-protein-bağlanmış reseptörler (GPCR&#39;ler) ile (CHO) hücrelerinin transfeksiyonu gibi bir florofor BG türevi ile etiketleme ve ardından iyi uygulama quantif olaraky ve monitör reseptör di-/oligomerization açıklanmıştır. Bu protokol, diğer hücre yüzey proteinleri ve floresan etiketler (örneğin,., CLIP), hem de diğer transfeksiyon ve etiketleme yöntemleri için uzatılabilir.

<table><tbody><tr><td>Chloroform</td><td>AppliChem GmbH</td><td>A1585</td><td>DİKKAT: toksik ve tahriş edici maddenin yanı sıra olası bir kanserojen</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8045</td><td>DİKKAT: güçlü baz ve yüksek korozif reaktif</td></tr><tr><td>Mutlak etanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>32205</td><td></td></tr><tr><td>Cam lamel&nbsp;</td><td>Marienfeld-Superior</td><td>111640</td><td>24 mm çap, 0.13-0.16 mm kalınlık</td></tr><tr><td>0.2 mm steril filtre</td><td>Sarstedt</td><td>83.1826.001</td><td></td></tr><tr><td>CHO hücreleri</td><td>ATCC, ABD</td><td>ATCC CCL-61</td><td>Çin hamster yumurtalık hücre hattı</td></tr><tr><td>6 oyuklu hücre kültürü plakası</td><td>Nunc</td><td>140675</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F-12 ortamı</td><td>GIBCO, Yaşam Teknolojileri</td><td>11039-021</td><td>Fenol-kırmızı içermeyen ortam</td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu&nbsp;</td><td>Biochrom</td><td>S 0115</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin - streptomisin&nbsp;</td><td>Pan Biotech GmbH</td><td>P06-07 100</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin-EDTA</td><td>Pan Biotech GmbH</td><td>P10-23100</td><td></td></tr><tr><td>Lipofektamin 2000</td><td>Invitrogen, Yaşam Teknolojileri</td><td>11668-019</td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM I Azaltılmış Serum Ortamı</td><td>İnvitrojen, Yaşam Teknolojileri</td><td>31985-047</td><td></td></tr><tr><td>Florofor konjuge benzilguanin&nbsp;</td><td>New England BioLabs</td><td>S9136S</td><td>SNAP-Yüzey Alexa Fluor 647. DMSO'da 1 mM'lik bir stok çözeltisi yapın. -20 ° C'de saklayın.</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>AppliChem GmbH</td><td>A1584</td><td></td></tr><tr><td>Görüntüleme tamponu:</td><td></td><td></td> <td>137 mM NaCl, 5.4 mM KCl, 2 mM CaCl2, 1 mM MgCl2, 10 mM HEPES, pH 7.3, steril filtreli</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; NaCl</td><td>AppliChem GmbH</td><td>A1371</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; KCl</td><td>AppliChem GmbH</td><td>A3582</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; CaCl2</td><td>AppliChem GmbH</td><td>A2303</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; MgCl2</td><td>AppliChem GmbH</td><td>A3618</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; HEPES</td><td>AppliChem GmbH</td><td>A3724</td><td></td></tr><tr><td>Görüntüleme odası</td><td>Moleküler Problar, Yaşam Teknolojileri</td><td>A-7816</td><td>Attofluor Hücre Odası, mikroskopi</td></tr><tr><td>için TIRF-M</td><td>Leica</td><td></td><td>Model: DMI6000B</td></tr><tr><td>TIRF objektif</td><td>Leica</td><td>11 506 249&nbsp;</td><td>HCX PL Apo 100x/1.46 Yağ CORR&nbsp;</td></tr><tr><td>EM-CCD kamera&nbsp;</td><td>Roper Scientific Photometrics</td><td></td><td>Cascade 512B</td></tr><tr><td>Sıcaklık kontrolörü</td><td>Pecon</td><td></td><td>Tempcontrol 37-2 dijital</td></tr><tr><td>ImageJ yazılımı</td><td>NIH, ABD</td><td></td><td>http://rsbweb.nih.gov/ij</td></tr><tr><td>U-Track yazılımı</td><td>Hesaplamalı hücre biyolojisi laboratuvarı, Hücre Biyolojisi Bölümü, Harvard Tıp Fakültesi, ABD</td><td></td><td>http://lccb.hms.harvard.edu/software.html</td></tr><tr><td>Matlab yazılım</td><td>MathWorks, ABD</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

tek molekül floresan mikroskopi reseptör dinamiği yüksek çözünürlüklü spatiotemporal analizi

High-resolution Spatiotemporal Analysis of Receptor Dynamics by Single-molecule Fluorescence Microscopy

Tek molekül mikroskopi bu yönünü (örneğin., Kinetik, farklı devletler ve toplumlarda, geçici etkileşimler birlikteliği), genellikle topluluk ölçümleri gizlidir, gibi ilgili özellikle, sinyal molekülleri davranışını analiz etmek için güçlü bir yaklaşım olarak ortaya çıkmaktadır standart biyokimyasal veya mikroskopi yöntemleri ile elde edilen. Bu nedenle, böyle bir reseptör-reseptör etkileşimleri gibi dinamik olaylar, yüksek uzaysal çözünürlüklü bir canlı hücrede gerçek zamanlı olarak takip edilebilir. Bu protokol küçük ve parlak bir organik florofor ve doğrudan canlı hücre yüzeyi üzerinde bir reseptörleri görselleştirmek için toplam iç yansıma flüoresans (TIRF) mikroskopisi ile etiketleme göre bir yöntem tarif edilir. Bu yaklaşım, bir tam, reseptörleri lokalize reseptör komplekslerinin boyutunu ölçmek ve bu geçici reseptör-reseptör etkileşimleri gibi dinamik olayları yakalamak için izin verir. Protokol pe nasıl ayrıntılı bir açıklamasını sağlarnumune hazırlama, görüntü elde etme ve görüntü analizi de dahil olmak üzere, tek bir molekül deney, rform. Bir örnek olarak, bu yöntemin uygulanması, iki G-proteinine kenetlenmiş reseptörlerin analiz etmek için, yani., 2-adrenerjik ve γ-aminobütirik asit tipi B (GABA B) reseptörü β, bildirilir. Protokol başka zar proteinleri ve farklı hücre modellerinde, transfeksiyon yöntemleri ve etiketleme stratejileri adapte edilebilir.

Açıklanan protokol, farklı zar proteinlerinin çeşitli uygulanabilir. Bir örnek olarak, β-2 adrenerjik ve GABA B reseptörleri ile elde edilen sonuçlar Örnek 10, rapor edilmiştir. Tek moleküllerin floresan sinyaller zayıf olduğu için, eşiğe minimizasyonu başarılı sonuçlar için ilk önemli adımdır. Bu nedenle, geniş bir temizlenmiş lamelleri (Şekil 2A) kullanımı yanı sıra örnek otoflüoresanı (örn.., Fenol kırmızısız ortamını kullanarak) en aza indirmek için önemlidi...

Bu protokol, canlı hücrelerin yüzeyindeki tek reseptörleri görselleştirmek ve izlemek ve böylece reseptör yanal hareketliliğini, reseptör komplekslerinin boyutunu analiz etmek ve ayrıca geçici reseptör-reseptör etkileşimlerini görselleştirmek için toplam iç yansıma floresan mikroskobunun nasıl kullanılacağını açıklar. Bu protokol diğer zar proteinlerine genişletilebilir.

Tek molekül Floresan Mikroskopi Reseptör Dinamiği Yüksek çözünürlüklü Spatiotemporal Analizi

Single-molecule microscopy is emerging as a powerful approach to analyze the behavior of signaling molecules, in particular concerning those aspect (e.g., ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, canlı hücrelerin yüzeyindeki tek reseptörleri görselleştirmek ve konumlarını, hareketlerini ve supramoleküler kompleksler halinde dinamik ilişkilerini analiz etmektir. Bu, canlı hücrelerin yüzeyinde çok düşük seviyelerde snap etiketli reseptörlerin eksprese edilmesi ve tek molekül tespitine izin vermek için bunların parlak organik floroforlarla etiketlenmesiyle elde edilir. İkinci adım olarak, hücreler, hücre yüzeyinde hareket eden bireysel reseptör parçacıklarının hızlı bir görüntü dizisinin elde edilmesini sağlayan toplam iç yansıma floresan mikroskobu ile görselleştirilir.Daha sonra, her bir reseptör parçacığının zaman içindeki konumunu ve yoğunluğunu elde etmek için görüntü dizisine otomatik algılama ve izleme algoritmaları uygulanır. Bu örnekte reseptör komplekslerinin boyutunun kesin bir analizini gösteren sonuçlar elde edilir, beta iki adrenerjik reseptör, görüntü dizisinin başlangıcında parçacıkların yoğunluk dağılımının karışık bir Gauss uyumuna dayanır. Bu yöntem, reseptörlerimizin canlı hücrelerin yüzeyinin od alanlarında nasıl organize olduğu gibi hücre biyolojisi alanındaki temel soruları yanıtlamaya yardımcı olabilir.Dimerler ve oligomerler oluşturmak için birbirleriyle nasıl etkileşime girerler ve reseptör sinyallemesinin temelindeki dinamik olaylar gerçekte nasıl gerçekleşir. Bu tekniğin standart biyokimyasal ve mikroskopi yöntemlerine göre en büyük avantajı, doğal ortamdaki tek reseptörlerin davranışını araştırması ve böylece tipik olarak topluluk ölçümlerinde gizlenen önemli yönleri incelememize izin vermesidir. Arka plan floresansını en aza indirmek için numuneler için lameller kapsamlı bir şekilde temizlenmelidir Görüntüleme sırasında, 24 milimetre çapında yerleştirmek için temiz cımbız kullanın.Cam kapak, tek tek kapak fişlerini ayıran bir kapak fişi tutucusuna kayar. Kapak fişli tutucuyu bir behere koyun ve kapak fişleri kapanana kadar kloroform ekleyin. Banyoda buharlaşmayı azaltmak ve sonikat yapmak için beheri alüminyum folyo ile örtün.Oda sıcaklığında bir saat boyunca sonikate. Bir saat sonra, kapak kayma tutucusunu beherden çıkarın ve kapak kızaklarının kurumasını bekleyin. Ardından, tutucuyu kapak kızaklarıyla birlikte başka bir behere yerleştirin ve kapak kızakları kaplanana kadar beş molar sodyum hidroksit çözeltisi ekleyin.Daha önce olduğu gibi, kabı folyo ile örtün ve oda sıcaklığında bir saat boyunca sonikat yapın, kapak kayma tutucusunu yeni bir behere aktarın ve üç kez damıtılmış su ile yıkayın. Son olarak, temizlenmiş lamel fişlerini %100 etanol ile doldurulmuş bir cam hücre kültürü kabına koyun. Burada, toplam iç yansıma floresansı veya çim mikroskobu ile görüntülenen, temizlikten önce ve sonra gösterilen kapak fişleri gösterilmektedir.Cal kalibrasyon numuneleri, çim mikroskobu sırasında tek floresan moleküllerinin yoğunluğunu tahmin etmek için kullanılır. Numuneleri hazırlamak için floresan boyayı uygun çözücü içinde çözün. Floresan boyanın bir pikaMolar ile bir ano molar arasında değişen bir ila 10 seri seyreltmesini hazırlayın.Filtrede sterilize edilmiş su. Önceden temizlenmiş kapak fişlerini, filtreyle sterilize edilmiş su ile doldurulmuş bir hücre kültürü kabına aktararak yıkayın. Bundan sonra, her bir kapak fişini altı kuyulu bir hücre kültürü plakasının bir kuyusuna yerleştirin ve her bir floresan boya seyreltmesinden 20 mikrolitre kuruyana kadar bekleyin, ayrı bir temizlenmiş kapak fişi üzerinde.Kapağın steril bir başlık altında kurumasını bekleyin. Transfeksiyondan önce kullanana kadar kapak kızaklarını ışıktan ve tozdan koruyun. Altı kuyucuklu bir hücre kültürü plakası hazırlayın: Temizlenmiş örtü fişlerini steril PBS ile yıkayın ve altı kuyucuklu hücre kültürü plakasının her bir oyuğuna bir örtü fişi yerleştirin.Bu çalışma için transfekte edilecek CHO hücreleri, tripsin sonrası %10 fetal sığır serumu, penisilin ve streptomisin ile desteklenmiş, bire bir, ECCO'lar modifiye kartal besiyeri besin karışımı F 12'de %5 CO2'de 37 santigrat derecede kültürlenir ve standart yöntemler izlenerek hücrelerin sayımı, oyuk başına üç kez 10 ila beşinci hücre yoğunluğunda tohumlanır. Örtü kaymalarını içeren altıncı kuyucuklu hücre kültürü plakasında, optimum hücre yoğunluğu olan yaklaşık% 80 co akıcılığı elde etmek için hücrelerin 24 saat boyunca bir inkübatörde büyümesine izin verin. Transfeksiyon için.Bu protokolün en zor yönü, başarıyı sağlamak için hücre yüzeyinde zar reseptörlerinin son derece düşük ekspresyon seviyesine ulaşmaktır. Transfeksiyon durumu. Örneğin, artı ortam NA miktarı ve transfeksiyondan sonraki süre transfeksiyon gününde optimize edilmelidir.Transfeksiyon reaktiflerini, her biri için hazırlayın, istenen ekose DNA'nın iki mikrogramını başka bir tüpte 500 mikrolitre optimum ortamda seyreltecektir. Her kuyucuk için altı mikrolitre Lipectomy 2000'i 500 mikrolitre Optum ortamında seyreltin. Her iki tüpü de oda sıcaklığında beş dakika inkübe edin.Beş dakika sonra, her iki çözeltiyi de bir tüpte birleştirin ve bir transfeksiyon karışımı elde etmek için karıştırın. Transfeksiyon karışımını oda sıcaklığında 20 dakika inkübe edin. Bu arada, CHO hücrelerini hazırlayın.Hücreleri önceden uyarılmış PBS ile iki kez yıkayın İkinci yıkamadan sonra, PBS'yi% 10 FBS ile desteklenmiş, ancak antibiyotik içermeyen% 12 fenol kırmızısı içermeyen D-M-E-M-F 12 ortamı başına bir mililitre ile değiştirin. Transfeksiyon karışımından bir mililitre ekleyin, her bir oyuğa damla damla ekleyin ve tam karışımı sağlamak için plakayı hafifçe ileri geri sallayın. Hemen protein etiketlemesine geçmeden önce 37 santigrat derecede% 5 CO2'de iki ila dört saat inkübe edin.Bu prosedüre başlamak için, bir mikrolitre floro dört konjuge benzo guine türevi veya floro dört BG stok çözeltisinin bir mililitresinde seyreltin% 10 FBS ile desteklenmiş bir mililitre DMMMF 12 ortamında bir mikromolar nihai konsantrasyon elde etmek için. Transfekte edilmiş hücreleri inkübatörden alın ve ön ısıtma PBS ile iki kez yıkayın. PBS'yi bir mililitre bir mikromolar floro dört BG çözeltisi ile değiştirin ve 37 santigrat derecede% 5 CO2'de 20 dakika inkübe edin.Daha sonra, hücreleri her seferinde% 10 FBS ile desteklenmiş D-M-E-M-F 12 ortamı ile üç kez yıkayın, ardından 37 santigrat derecede beş dakikalık bir inkübasyon yapın. Etiketli hücrelere sahip kapak fişlerini bir görüntüleme odasına aktarmak için cımbız kullanıldı. 300 mikrolitre görüntüleme tamponu ile iki kez yıkayın.300 mikrolitre taze görüntüleme tamponu ekleyin ve hemen görüntüleme görüntüleri elde edilir. Yağa daldırma, yüksek sayısal açıklık objektifi, uygun lazerler, elektron çarpımı yük bağlantılı cihaz, kamera ve inkübatör ve bir sıcaklık kontrolü ile donatılmış bir çim mikroskobu kullanma. Lazer çizgisi, çim açısı, pozlama süresi, kare hızı ve film başına görüntü sayısı gibi istenen mikroskop parametrelerini ayarlayın.Mikroskobun 100 x hedefine bir damla daldırma yağı koyun. Etiketli hücrelerin bulunduğu görüntüleme odasını mikroskobun örnek tutucusuna yerleştirin ve hücreleri odak noktasına getirin. Parlak alan aydınlatması kullanma.Çim aydınlatmasına geçin. İstenen hücreyi aramaya izin vermek için lazer gücünü mümkün olduğunca düşük tutun, ancak aynı zamanda foto ağartmayı en aza indirin. İstediğiniz hücreyi seçin ve ince yapın.Odağı ayarlayın. Lazer gücünü, tek flora dörtlüsünün görüntülenmesine izin verecek bir seviyeye yükseltin. Bir görüntü dizisi alın ve ham görüntü dizisini kalibrasyon için bir tiff dosyası olarak kaydedin.Her kalibrasyon örneğini görüntüleme odasına monte edin ve mikroskobun üzerine yerleştirin. İyi ayrılmış kırınım içeren bir numune seçin. Tek bir adımda ağartıcı olan sınırlı noktalar.Çim görüntü dizileri daha sonra etiketli hücreler için gösterildiği gibi elde edilir. Bir görüntü dizisi hazırlamak için, görüntüleri kırpmak üzere Image J gibi bir görüntü işleme yazılımı kullanın. Tek tek kareleri, her görüntüdeki kare numarasını belirten yeni bir klasöre ayrı TIFF görüntüleri olarak kaydedin.Partikül tespiti ve takibi, MATLAB ortamında U Track gibi ticari olmayan bir yazılım ile gerçekleştirilir. MATLAB komut isteminden film seçici, GUI yazın. Film seçimi arayüzünü açmak için, önceden kaydedilmiş ayrı görüntülerden başlayarak yeni bir film veritabanı oluşturmak için talimatları izleyin.Parçacık algılama ve izleme için gerekli olan nanometre cinsinden piksel boyutunu, saniye cinsinden zaman aralığını, sayısal diyafram açıklığını, kamera bit derinliğini ve floroforun emisyon dalga boyunu sağlayın. Film veritabanını film seçim arayüzünden kaydedin. Nesne türü olarak tek parçacıkları seçerek analizi çalıştırın.Algılama algoritmasını çalıştırın, ardından izleme algoritmasını çalıştırın. Parçaları görselleştirmek ve algılama ve izlemenin kalitesini kontrol etmek için URAC paketinde bulunan film görüntüleyici rutinini kullanın. Her karede izlenen parçacıkların konumunu ve genliğini görmek için nokta MAT dosyasını açın.Parçacıkların boyutu, elde edilen verilerden de hesaplanabilir. Burada gösterilen, çıtçıt etiketli beta iki adrenerjik reseptör ile transfekte edilmiş ve bir floro dört konjuge benzil guine türevi ile etiketlenmiş bir hücrenin tipik bir çim görüntü dizisinin ilk karesidir. Noktalar, tek reseptörleri veya reseptör komplekslerini temsil eder.Aynı görüntü dizisine bir algılama algoritması uygulanır ve algılanan her parçacık, bir izleme algoritmasının mavi daire uygulamasıyla gösterilir. Aynı görüntü dizisine, mavi ile gösterilen tek tek parçacıkların yörüngeleri ile sonuçlanır. Yeşil segmentler birleştirme olaylarını, kırmızı segmentler ise bölme olaylarını temsil eder.Bu yöntem aynı zamanda dinamik olayları da yakalar. Bu örnekte, iki parçacık geçici bir etkileşime girer, birkaç kare için birlikte hareket eder ve tekrar bölünür. Tek tek parçacıkların yörüngeleri, difüzyon katsayılarını hesaplamak için kullanılır.Bu temsili sonuç, beta iki adrenerjik reseptörün yüksek hareketliliğe sahip olduğunu göstermektedir. Gaba B reseptörü sınırlı hareketliliğe sahipken, reseptör komplekslerinin boyutu, parçacık yoğunluklarının dağılımlarının karışık bir Gauss modeli ile uydurulmasıyla kesin olarak tahmin edilebilir. Bu analiz aynı zamanda monomerlerin ve dimerlerin bir arada bulunmasını da ortaya çıkarabilir.Burada, bir adımda bir monomerik reseptör partikülü ağartma ve iki adımda bir çap reseptör partikülü ağartma örnekleri gösterilmiştir. Bu prosedürler, diğer hücre yüzey proteinleri, seviyelendirme yöntemleri ve hücre modelleri ile çalışmak üzere genişletilebilir ve uyarlanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, temiz örtü uykusunun nasıl üretileceğini, parlak organik floros ile düşük ekspresyon seviyelerinin ve verimli etiketlemenin nasıl elde edileceğini ve ayrıca başarılı tek molekül için tüm önemli adımları temsil eden çim görüntülerinin nasıl elde edileceğini ve analiz edileceğini iyi anlamış olmalısınız.

high-resolution-spatiotemporal-analysis-receptor-dynamics-single

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Çoklu Hedef İzleme canlı hücrelerinin plazma membranı içinde ayrı ayrı işaretli moleküllerin izlenmesi için geliştirilen ev yapımı bir algoritma. Verimli, tespit nano ölçekli membran dinamiğini incelemek için kullanıcı dostu, kapsamlı bir araç sağlamak, yüksek yoğunluklu zaman içinde moleküller tahmin ve izleme.

Çoklu Hedef İzleme (MTT) tarafından Plazma Membran Moleküler Difüzyon Haritalama

Etiketleme tarafından superecliptic pHluorin membran reseptörlerinin ekstraselüler domain ve görüntüleme kültürlü fare nöronları bu füzyon reseptörleri, biz doğrudan plazma membran reseptörlerinin bireysel veziküler ekleme olayları oluşturulabiliyor. Bu teknik, plazma membran reseptör ekleme düzenleyen moleküler mekanizmalarının aydınlatılmasına vesile olacaktır.

Görüntüleme İlköğretim Kültürlü Fare Nöronlar içinde Plazma Membran Reseptör Yerleştirme pHluorin etiketli

Plazma zarı proteinlerinin ve lipitlerinin mekansal dağılımı ve zamansal dinamikleri biyolojide sıcak bir konudur. Burada bu sorun, kavramsal olarak tek parçacık izlemenin aynı fiziksel miktarlarını sağlayan bir uzaysal-zamansal görüntü dalgalanma analizi ile ele alınmaktadır, ancak küçük moleküler etiketler ve standart mikroskopi kurulumları kullanır.

Ticari Mikroskop Canlı Hücre Zarları Moleküler Difüzyon Kanunu Hızlı Floresans Görüntüleme Gönderen

Tek bir T lenfositinde kuvvet regülasyonlu tek reseptör-ligand bağlanma kinetiğini ve kalsiyum sinyalinin gerçek zamanlı görüntülemesini aynı anda ölçmek için bir teknik açıklıyoruz.

Floresan biyomembran Kuvvet Probe: Tek Hücre üzerinde Reseptör-ligand Kinetiklerinin Eşzamanlı kantitasyonu ve Bağlama kaynaklı Hücre içi Sinyal

pH'ya duyarlı bir florofor ile bir membran proteinin hücre dışı alanını Etiketleme, superecliptic pHluorin (SEP), hücre içi lokalizasyonu, sentezleme ve trafik saptanmasına olanak sağlamaktadır. Görüntüleme toplam iç yansıma floresan mikroskobu (TIRFM) proteinleri Eylül-etiketli periferal ER ve plazma membranı protein seviyelerinin ölçümü sağlar.

pHluorin etiketli Reseptör kullanarak Subselüler Yerelleşme ve Ticareti Monitör

Burada geleneksel epi-floresan görüntüleme, tek molekül algılama tabanlı süper kararlılık düşsel ve çok renkli tek molekül algılama birleştiren, bir tümleşik mikroskobu sistem inşaat pratik bir rehber mevcut de dahil olmak üzere tek molekül floresans rezonans enerji görüntüleme, maliyet-etkin bir şekilde bir set-up içine aktarın.

Çoklu görüntüleme modları bir floresan mikroskop ile iletken

Burada, tek parçacık kantitatif değerlendirilmesi Difüzyon katsayıları, Floresans mikroskobu tarafından algılanan tek parçacıkların hareket ve küme boyutları türleri sağlar görüntü analizi izleme için bir iletişim kuralı mevcut.

Görüntü membran reseptörleri Floresans mikroskobu tarafından küme boyutunu ve Difüzyon analizi için protokol işleme

3D tek moleküllü lokalizasyon mikroskopisi, yaşayan bakteri hücrelerinde floresan olarak etiketlenmiş proteinlerin mekansal konumlarını ve hareket yörüngelerini araştırmak için kullanılır. Burada açıklanan deneysel ve veri analizi protokolü, sitosolik proteinlerin havuzhalinde ki tek moleküllü yörüngelere dayalı yaygın diffüzif davranışlarını belirler.

Tek Moleküllü İzleme Mikroskobu - Sitosolik Moleküllerin Diffüz Durumlarını Belirlemede Bir Araç

Bu makalede, geniş alan floresan mikroskopisi kullanılarak mobil, tek moleküllü Förster rezonans enerji transferi (smFRET) tabanlı probların mekansal analizi için bir yöntem sunulmaktadır. Yeni geliştirilen yazılım araç seti, doğru FRET verimliliği ve moleküler konumlar da dahil olmak üzere hareketli probların smFRET zaman izlerinin zamanın işlevleri olarak belirlenmesini sağlar.

Mobil Tek Moleküllü FRET Problarının Otomatik İki Boyutlu Mekansal Analizi

Bu çalışma, doğal olmayan amino asit (UAA) dahil etme yoluyla bölgeye özgü etiketleme kullanarak G proteinine bağlı reseptörler (GPCR'ler) üzerinde tek moleküllü floresan rezonans enerji transferi (smFRET) deneyleri gerçekleştirmek için ayrıntılı bir prosedür sunmaktadır. Protokol, smFRET numune hazırlama, deneyler ve veri analizi için adım adım bir kılavuz sağlar.

Tek Moleküllü FRET Kullanarak Membran Reseptörlerinin Konformasyonel Dinamiğinin Görselleştirilmesi

Bu makale, katı destekli lipid çift katmanlarında tek protein izleme için örnekler nasıl oluşturulacağına dair ayrıntılı bir açıklama sunmaktadır. Ayrıca, tek molekül hassasiyeti ve hızlı kare hızına sahip basit bir floresan mikroskobu da açıklar. Son olarak, tek protein yörüngelerinin çıkarılması prosedürünü özetliyoruz.

Lipid çift katmanlarında tek proteinlerin floresan mikroskopisi kullanılarak takibi

Öğrenin, tek molekül floresan mikroskopisi ile canlı hücre yüzeyindeki reseptörlerin hareketini ve dinamik ilişkilerini analiz etmeyi. Bu yöntem, reseptör organizasyonunu ve hücre sinyalleşmesini anlamak için güçlü bir araç sunar.

Tek molekül Floresan Mikroskopi Reseptör Dinamiği Yüksek çözünürlüklü Spatiotemporal Analizi

Daha fazla video keşfet