25 Mayıs 2017
Bu protokol, vaskülatürü görselleştirmek ve Xenopus tropicalis'deki karmaşıklığını niceleştirmek için flüorüre dayalı bir yöntemi göstermektedir . İn vivo kardiyovasküler gelişimi incelemek için genetik ve / veya farmakolojik manipülasyonlardan sonra bir embriyonun kalp atımına floresan bir boya enjekte edildikten birkaç dakika sonra kan damarları görüntülenebilir.
Bu prosedürün genel amacı, Xenopus tropicalis kurbağa yavrularının damar sistemini görselleştirmektir. Bu yöntem, anjiyogenezin nasıl düzenlendiği gibi kardiyovasküler biyoloji alanındaki temel soruları yanıtlamaya yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, sağlam bir kuyu tipi embriyodaki kan damarlarının basit bir floresan boya enjeksiyonu ile görüntülenebilmesidir.
Konik bir cam mikro pipeti yaklaşık beş mikrolitre şeffaf diI asetillenmiş LDL çözeltisiyle doldurmak için bir mikro yükleyici kullanarak başlayın ve çökelmiş parçacıkların yüklenmemesine dikkat edin. Bir diseksiyon mikroskobu altında, yüklenen kompleksin hacmini ayarlamak için pipetin ucunu kırpmak için ince bir çift 55 forseps kullanın ve basınç kontrollü enjeksiyon sistemini enjeksiyon başına yaklaşık beş nano litre çözelti çıkaracak şekilde ayarlayın. Daha sonra pipet ucunu %0,04 MS-222'ye, 0,1X modifiye Barth'ın tuzlu suyuna veya MBS'ye özel yapım bir Sylgard kalıbına daldırın.
Daha sonra Xenopus tropicalis embriyosunu Sylgard kalıbına aktarın ve sırt yüzgeci stimülasyonuna yanıt eksikliği ile tam sedasyonu onaylayın. Diseksiyon mikroskobu altında, embriyo ventral tarafını hafif eğik bir pozisyonda kalıbın V şeklindeki girintisine yükleyin. İki adet 0.1 milimetrelik küçük pimi bir pim tutucuya sıkıca takın ve gözle görülür şekilde nabız atması gereken kalbin üzerindeki cildi delmek için bir pim kullanın.
Pimi kalbi delmeden kalp ile cilt arasındaki boşlukta bulunan delikten sokun ve takılan ucu kesi yapılacak bölgenin içine yerleştirin. Ardından, doğrusal bir kesi yapmak için ikinci pimi takılan pime sürtün ve kesiyi nazikçe genişletmek için her iki pimi birlikte kullanarak kalbi açığa çıkarın. DiI asetillenmiş LDL çözeltisini enjekte etmek için, cam pipet ucunu kalbe yerleştirin ve yaklaşık 10 ejeksiyon darbesinde 50 ila 60 nano litre DiI asetillenmiş LDL enjekte edin.
Boya çözeltisinin tamamı verildiğinde, kalbin hala attığını onaylayın ve embriyoyu 0.1X MBS içeren yeni bir Petri kabına aktarın. Beş ila 10 dakika sonra, kurbağa yavrusu anesteziden kurtulmalı ve hareket etmeye başlamalıdır. Uygun sayıda embriyo enjekte edildikten sonra, doğru şekilde etiketlenmiş anestezi uygulanmış embriyoları, diğer organları etiketlenmiş hayvanları atarak bir floresan mikroskobu altında görsel olarak tarayın.
Yeterince etiketlenmemiş embriyolar tekrar enjekte edilebilir. Daha sonra doğru şekilde etiketlenmiş embriyoların görüntülerini yakalayın. Kan damarlarının daha kapsamlı bir şekilde görüntülenmesi için, yeniden anestezi altına alınmış embriyoları, konfokal mikroskopi ile görselleştirme için ışıktan korunan oda sıcaklığında bir saat boyunca% 4 paraformaldehit içinde sabitleyin.
Kalbe yeterli miktarda diI asetillenmiş LDL enjekte edilirse, arka kardinal ven veya PCV, bir floresan mikroskobu altında hemen görünür olmalıdır. İntersomitik venler veya ISV'ler, evre 36'da başlayan ve evre 40 ila 41 civarında sona eren ve evre 43 civarında hafifçe dallanan anterior ila posterior dalgada PCV'den dorsal olarak çıkar. PCV ve ISV'ler, sıkı gelişimsel kontrol altında olan stereotipik bir anjiyojenik paternde büyür.
İlginç bir şekilde, TIE-2 sinyallemesinin antisens morfalinonlar tarafından yıkılması, ISV'lerin uzunluğunu ve karmaşıklığını azaltırken, TIE-2'nin yapısal olarak aktif formunun ekspresyonu aşırı ISV dallanmasına neden olur. ISV'lerin karmaşıklığını değerlendirmek için bir Damar Karmaşıklık İndeksi hesaplanabilir ve embriyonik Xenopus tropicalis vaskülatürünün genel mimarisini görselleştirmek için işlenmiş yollar oluşturulabilir. Orijinal protokol, Levin ve Colics tarafından Xenopus laevis kullanımı için tanımlandı ve biz de onu Xenopus tropicalis için uyarladık.
Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik uygun şekilde uygulanırsa bir saat içinde tamamlanabilir. Bu işlemden önce, hangi genlerin ve sinyal yolaklarının vasküler gelişimi düzenlediği gibi ek soruları yanıtlamak için genetik ve farmakolojik manipülasyonlar yapılabilir. Bu prosedür kullanılarak, etiketlenmiş damar sistemi sağlam bir hayvanda gerçek zamanlı olarak görüntülenebilir ve vasküler gelişimin dinamiklerini araştırmak için güçlü bir araç sağlar.
Bu videoyu izledikten sonra, damar sistemini görselleştirmek için bir Xenopus tropicalis kurbağa yavrusunun kalbine diI asetillenmiş LDL'nin nasıl enjekte edileceğini iyi anlamış olmalısınız.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu protokol, Xenopus tropicalis'te damar sistemini görselleştirmek ve karmaşıklığını nicelendirmek için floresan tabanlı bir yöntemi göstermektedir. Bu teknik, embriyonun kalbine floresan bir boya enjekte edildikten kısa bir süre sonra kan damarlarının görüntülenmesine olanak tanıyarak, in vivo kardiyovasküler gelişim çalışmalarını kolaylaştırmaktadır.
Bu yöntem, bir omurgalı modelinde vasküler kompleksitenin doğrudan görselleştirilmesini ve nicelendirilmesini sağlayarak, anjiyogenez yolaklarındaki erken aşama hedef doğrulamasını destekler. Damar filizlenmesi ve dallanmasına ilişkin kantitatif veriler sunarak, öncü bileşik belirleme çalışmalarına başlanmadan önce vasküler hedeflerin mekanistik risklerinin azaltılmasını kolaylaştırır. Xenopus tropicalis sistemi, preklinik kardiyovasküler araştırmalarda anjiyojenik fenotiplerin öngörülebilir bir güvenle değerlendirilmesi için hastalıkla ilişkili bir platform sunar.
Bu yöntem, hedef hipotez testinden öncü bileşik tanımlamaya kadar uzanan keşif sürekliliğine uyum sağlayarak, anjiyogenez odaklı programlarda git/gitme kararlarına ışık tutan vasküler fenotip verileri sunar.