Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Science Education
Lab Animal Research

A subscription to JoVE is required to view this content.
You will only be able to see the first 20 seconds.

אינדוקציה ותחזוקה של הרדמה
 
Click here for the English version

אינדוקציה ותחזוקה של הרדמה

Overview

מקור: קיי סטיוארט, RVT, RLATG, CMAR; ואלרי א. שרודר, אר.די.ג'י, אר-אל-ג'י. אוניברסיטת נוטרדאם, IN

המדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה ("המדריך") קובע כי הערכת כאב והקלה הן מרכיבים אינטגרליים בטיפול הווטרינרי בחיות מעבדה. 1 ההגדרה של הרדמה היא אובדן תחושה או תחושה. זהו אירוע דינמי הכולל שינויים בעומק ההרדמה ביחס לחילוף החומרים של בעל החיים, גירוי כירורגי או וריאציות בסביבה החיצונית.

Principles

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

ניטור מדויק וקבוע של הרדמה נדרש כדי לשמור בבטחה על העומק הדרוש להליך. הפרמטרים שיש לפקח עליהם כוללים קצב לב, קצב נשימה, טמפרטורת הגוף ורמות חמצן בדם. עבור עכברים וחולדות, אף אחד מהפרמטרים האלה לא מנוטר בקלות בשל גדלי הגוף הקטנים של בעלי חיים אלה. מכיוון שקצב הלב במכרסמים כל כך מהיר, הסטטוסקופ המשמש בדרך כלל לתפיסה אינו מספיק ללכידת קצב לב מדויק. הסטטוסקופ יכול לשמש רק כדי לזהות נוכחות או היעדר פעימות לב. קצב הלב הרגיל של עכבר הוא 328-780 פעימות לדקה, בעוד שהקצב הרגיל של חולדה הוא 250-600 פעימות לדקה. שיעורי הנשימה במכרסמים גבוהים גם מעל מה שניתן לספור במדויק בשיטות חזותיות או במהלך auscultation. קצב הנשימה הרגיל לעכבר הוא 90-220 נשימות לדקה, ולעכברוש ערך זה הוא 66-144 נושם לדקה. כדי לוודא במדויק את קצב הלב ואת קצב הנשימה, ציוד ניטור אלקטרוני מיוחד נדרש. החיישנים מושתלים בניתוח לתוך החיה, או ממוקמים חיצונית ומתקשרים עם פלטפורמת הניטור שעליה ממוקם בעל החיים. 3,4

הגורם הנפוץ ביותר של מקרי מוות הקשורים להרדמה מכרסמים הוא עקב היפותרמיה. מכרסמים יש שטח פנים גבוה ליחס מסת הגוף. בנוסף, בעל חיים מרדים מאבד את היכולת לרעוד כדי לשמור על טמפרטורת הגוף. לכן, ניטור טמפרטורת הגוף וחום נוסף, כגון כרית חימום, חיוניים במהלך הליכים כירורגיים הישרדות. טמפרטורת הגוף הרגילה עבור עכבר היא 96.6-99.7 ° F (35.8-37.4 מעלות צלזיוס)5 עבור חולדה היא 96.6-99.5 ° F (35.9-37.5 מעלות צלזיוס). 5 רוב מדי החום תוכננו לבעלי חיים גדולים יותר ועוצבו על פי אלה המשמשים לבני אדם. מדי חום מרקורי הוחלפו במידה רבה בגרסאות דיגיטליות ואלקטרוניות. למרות שמדחומי החום הדיגיטליים והאלקטרוניקה מתועדים כמדויקים כאשר משתמשים בהם באופן רקטלי, בעלי פה ובאוזן, גודלם אינו מתאים למכרסמים קטנים. בדיקות רקטליות שתוכננו במיוחד לעכברים וחולדות זמינות מסחרית, והשימוש בהן מעודד.

רמות חמצון הדם משמשות להערכת ספיגת חמצן נאותה מהריאות וכתוצאה מכך הריכוז המתאים של חמצן בדם העורקי של מכרסם. ניטור ספיגת החמצן גם בעקיפין מנטר נשימה ואוורור, כפי שהוא מגלה אם יש השראה נאותה של חמצן ופגיעה של גזי פסולת. קצב הלב מעורב גם חמצון של הדם, כמו ירידה בקצב הלב תגרום לירידה ברמות החמצן, אשר יכול לגרום זלוף לקוי של הדם. 6

מטרתו של המרדים היא לשתק כראוי ולהקל על כל תחושות הכאב עבור בעל חיים עם המינון הנמוך ביותר או ריכוז של הרדמה. הערכה נכונה של עומק ההרדמה נדרשת כדי להשיג מטרה זו. ישנם ארבעה שלבים של הרדמה וארבעה מטוסים בשלב הניתוחי של ההרדמה. בשלב הראשון, החיה הופכת מבולבלת. בשלב השני, יש שלב עירור עם קצב נשימה לא סדיר, כולל נשימה עוצרת בכמה זני עכברים וחולדות. רפלקס ההתאמה - שהוא היכולת להתהפך לאחור כאשר הוא ממוקם בתנוחת גב - הוא גם הולך לאיבוד.

שלב שלוש הוא השלב הכירורגי של ההרדמה. במטוס I, רפלקסי הפלפברל והבליעה נעדרים. רפלקסים קרדינליים וקורנית הולכים לאיבוד במישור II. עם מטוסים I ו- II, אין אמנזיה או אפקטים משכך משכך ים; לכן, החיה חייבת להגיע למישור III לפני תחילת הליך כירורגי. מישור III יוצר שיתוק של השרירים הבין-ציליים שגורמים לנשימה סרעפתית. למרות שבתחילה במישור III יש רק משכך משכך חלקית, הוא מתקדם כדי להשלים אמנזיה ומשרך כפי שרמת ההרדמה מעמיקה. זה ברמה זו כי החיה היא מרדים לחלוטין עבור הליך כירורגי. במטוס 4, החיה קיבלה מנת יתר ויכולה לעבור במהירות לשלב 4.

ככל שרמת ההרדמה מעמיקה עוד יותר, ישנם סיבוכים שיכולים לגרום למותו של בעל החיים. בשלב 4 יש שיתוק מוחלט של השרירים הבין-צילומיים והסרעפת, הגורמת לדום נשימה חמור. התוצאה היא דום נשימה, שיתוק מדאלי, התמוטטות וזומוטור, ולבסוף מוות. האישונים מתרחבים, נשארים קבועים בהרחבה בזמן שהשרירים נרגעים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Procedure

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

הבחירה הנכונה של הרדמה לניתוח והליכים אחרים שעלולים להיות כואבים חייבת להיקבע על ידי וטרינר. זה מבוסס על היבטים רבים, כולל היקף ומשך ההליך, המין והמתח, הגיל והמצב הפיזיולוגי של החיה.

הרדמה זמינה כמו ממסים במשאפים או הזרקה. הרדמה כירורגית יכולה להתבצע באמצעות שילוב של הרדמה להזרקה ותחנוך משאף. 2

1. אינדוקציה להרדמה נדינית

הרדמה משאיפה כוללת איזופלוראן, סבופלוראן, ו desflurane, עם איזופלוראן בשימוש הנפוץ ביותר. הרדמה אלה משמשים לעתים קרובות יותר כי, איתם, קל יותר לשלוט על עומק ההרדמה. אינדוקציה של הרדמה באמצעות הרדמה שאיפה יכול להתבצע עם צנצנת פעמון או תא אינדוקציה כי הוא מצויד מאדה מדויק.

  1. צנצנת פעמונים
    1. ציוד: צנצנת פעמון או צנצנת ייבוש עם משטח מחורר קרמי או פלסטיק, כדור כותנה, הרדמה נוזלית (איזופלוראן, סבופלוראן או desflurane), ומכסה אדים מאוורר בחוץ.
    2. הכנה
      1. השתמש בצנצנת הפעמון מתחת למכסה המנוע, ולא על הספסל, כדי למנוע חשיפה של כוח אדם לגזים הרדמה.
      2. להרכיב את צנצנת הפעמון עם הפלטפורמה בתחתית, יצירת רווח בין החלק התחתון של הצנצנת ואת הפלטפורמה. זה הכרחי כדי למנוע את החיה לבוא במגע עם הרדמה נוזלית.
      3. לובש כפפות ניטריל או כפפות אטום אחרות, להרוות את כדור הכותנה עם הרדמה.
      4. מניחים את כדור הכותנה מתחת לרציף בצנצנת הפעמון.
      5. אבטחו את המכסה לצנצנת הפעמון כדי למנוע בריחה של אדי ההרדמה.
    3. אינדוקציה
      1. מניחים את החיה לתוך צנצנת הפעמון על ידי הזזת המכסה לצד אחד.
      2. ברגע שהחיה נמצאת בצנצנת, יהיה צורך להתבונן בפעילותה ובנשימה שלה כדי לקבוע את עומק ההרדמה.
      3. החיה חשופה להרדמה, להשפעה.
      4. לאחר שהחיה היא מרדים לחלוטין, להחליק את המכסה לצד אחד, משאיר מקום מספיק כדי לאפשר את כניסת היד. תפסו את הזנב, הקשקוש או הגוף של החיה המרדמת, והסירו אותו בעדינות מצנצנת הפעמון.
  2. מאדים מדויקים
    ניתן להשתמש באידויים מדויקים עם תא אינדוקציה או מסכת פנים. יש לבדוק את מכונת ההרדמה לפני כל הליך. יש להוסיף את חומר ההרדמה הנכון אם הרמות נמוכות. יש לבדוק את מערכת ניקוי כדי להבטיח כי גזי הפסולת מוסרים במלואם. עבור מערכות הרדמה גז פסולת פסיבית, מיכל ניקוי צריך להיות שקל כדי לקבוע אם זה עדיין יעיל. בדרך כלל, עלייה במשקל של 50 גרם מעל המשקל ההתחלתי היא הנקודה שבה המיכל הוא בילה.
    1. ציוד
      1. תא אינדוקציה, מאדה מדויק, יחידת ניקוי גז פסולת (פסיבית או פעילה), והרדמה נוזלית (איזופלוראן, סבופלורן או desflurane, כפי שנקבע על ידי סוג של מאדה בשימוש).
    2. הכנה
      1. להרכיב את תא האינדוקציה כך שהקלט הוא מן האידוי ואת הפלט הוא למערכת ניקוי גז פסולת.
    3. אינדוקציה
      1. מניחים את החיה בתא האינדוקציה. בחלק מהתאים יש מכסה הזזה, ולאחרים יש מכסה צירים שנצמדים.
      2. ברגע שהחיה נמצאת בתא, זרימת החמצן מופעלת והאידוי המדויק מופעל ברמת אינדוקציה של 3-4 לאיזופלורן. רמות משלוח הרדמה נמוכות יותר יביאו לזמן אינדוקציה ארוך יותר.
      3. החיה חשופה להרדמה, להשפעה.
      4. לאחר החיה הוא מרדים לחלוטין, לשטוף את התא עם חמצן לפני הסרת החיה כדי למנוע חשיפה כוח אדם גזים הרדמה. אם תא האינדוקציה ממוקם במכסה המנוע של האדים, אין צורך בשטיפה עם חמצן כדי לטהר את ההרדמה מהתא לפני הפתיחה.
      5. תפס את הזנב, הקשקוש או הגוף של החיה המרדמת, והסר אותו בעדינות מהתא.
  3. מסיכת פנים
    1. הציוד כולל חרוט אף מכרסם או מסכה, מאדה מדויק, יחידת ניקוי גז פסולת (פסיבי או פעיל), והרדמה נוזלית (איזופלוריין, סבופלוראן או desflurane, כפי שנקבע על ידי סוג של מאדה בשימוש).
    2. הכנה
      1. להרכיב את חרוט האף או המסכה כך שהקלט הוא מן האידוי, ואת הפלט הוא למערכת ניקוי גז פסולת.
      2. מכונות הרדמה מכרסמים לעתים קרובות יש מתג כדי להעביר את משלוח אדי הרדמה מתא אינדוקציה אל חרוט האף מכרסם או מסכה. ודא שזה מוגדר כראוי עבור משלוח הרדמה חרוט האף.
    3. אינדוקציה
      1. כמו גזי הרדמה יש ריח לא נעים, בעלי חיים רבים יתנגדו להיות רעול פנים עבור אינדוקציה. השיטה המועדפת היא להשתמש בתיבת האינדוקציה ואחריה תחזוקה עם חרוט האף. ברגע שהאף או הפנים של החיה מאובטחים במסכה, זרימת החמצן מופעלת והאידוי המדויק מופעל ברמת אינדוקציה של 5 לאיזפלורן. רמות משלוח הרדמה נמוכות יותר יביאו לזמן אינדוקציה ארוך יותר ולעלייה במאבק של החיה.
      2. זה הכרחי כי החיה מנוטרת להנשימה, כמו אחיזה מוצקה מדי במהלך אינדוקציה יכול לגרום לחנק.
      3. ברגע שהחיה מתחילה להירגע, האף או הפנים יכולים להיות מותאמים בקונוס האף או במסכה, והלידה ההרדמה מצטמצמת לרמת תחזוקה של 1.5-0.5 עבור איזופלוראן ברגע שהרפיה מלאה מושגת.

2. אינדוקציה של הרדמה באמצעות הרדמה להזרקה

הרדמה להזרקה היא בעיקר תערובת של קטמין, תרופות הרגעה או מרפה שרירים.

השילובים הנפוצים הם: 1) קוקטייל מכרסמים, המורכב קטמין (100 מ"ג/ מ"ל), קסילאצין (20 מ"ג/מ"ל), אקרומאזין (10 מ"ג/מ"ל), ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl); 2) קטמין/קסילאזין 2:1, המורכב קטמין (100 מ"ג/מ"ל), קסילאסין (20 מ"ג/מ"ל), ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl); ו-3) תערובת עכבר קטמין/קסילאסין, המורכבת מקטמין (100 מ"ג/מ"ל), קסילאסין (20 מ"ג/מ"ל) ותמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl). בעת שימוש משולב קטמין/קסילן, לחיזוק צריך להיעשות רק עם קטמין בלבד, לא קסילאזין, בשל מחצית החיים של תרופות אלה.

השילוב של קטמין עם תרופות הרגעה ו/או מרפה שרירים צריך להיות מוכן כפתרון מלאי שממנו ניתן לצייר מינונים בודדים. הסוכנים חייבים להיות מדודים במדויק מדולל עם תמיסת מלח סטרילית כדי להבטיח כי מינונים נאותים מנוהלים לבעלי החיים. מכיוון שקטמין הוא חומר מבוקר, יש לציין את הכמות המשמשת את הבקבוקים ב"יומן סמים מבוקר", והתערובות חייבות להיות "יומני חומרים מבוקרים" בודדים. בעת הכנת תערובות, מוסיפים את הקטמין לאט לבקבוק, כפי שהוא נוטה קצף אם מוזרק עם כוח. בקבוק סטרילי 20 מ"ל משמש לתערובת. הבקבוקים חייבים להיות מסומנים כראוי עם שם התרכובות, התאריך מעורבב, תאריך התפוגה, מספר הרבה קטמין (כפי שהוא חומר מבוקר), ואת המינון המוצע. תאריך התפוגה עשוי להיקבע לפי תאריך התפוגה של המרכיב הקרוב ביותר (תלוי בכללים/הנחיות של המתקן/המדינה). לתיעוד מדויק של קטמין, יש לשקול הן את הבקבוק הריק והן את הבקבוק המלא. לאחר מכן, המשקולות חייבות להיות מוקלטות על התווית של התערובת ועל גיליון יומן החומרים המבוקרים הבודדים שמוכן לכל בקבוק. יש לאחסן תערובות קטמין באזור חשוך ומבוקר טמפרטורה כדי לשמור על העוצמה.

  1. הכנת קוקטייל מכרסמים
    1. הציוד להכנת פתרון ההרדמה כולל מזרקי 3 סמ"ק, מזרק 12 סמ"ק, 22 גרם x 1" מחטים, 1.8 סמ"ק של קטמין להזרקה 100 מ"ג/מ"ל, 1.8 סמ"ק של קסילאצין להזרקה 20 מ"ג/מ"ל, 0.6 סמ"ק של אקרומאזין להזרקה 10 מ"ג/מ"ל, 15.8 סמ"ק של תמיסת מלח סטרילית להזרקה, ותווית הרדמה.
    2. צייר 15.8 סמ"ק של תמיסת מלח סטרילית, ולהזריק אותו לתוך הבקבוק. השתמשו במזרק 12 סמ"ק ובמזרק 3 סמ"ק, ומנעו בועות אוויר למדידות מדויקות.
    3. מוסיפים את הקטמין, הקסילאזין והאקרומזין לבקבוק.
  2. אינדוקציה של קוקטייל מכרסמים
    1. באופן כללי, קוקטייל מכרסמים משמש להרדמה של עכבר. בשל שונות בתגובה קוקטייל מכרסמים בחולדות מבוגרות, הוא משמש הטוב ביותר בחולדות מתחת לגיל 5 שבועות. קוקטייל מכרסמים ניתן להשתמש בשילוב עם הרדמה שאיפה, במיוחד בחולדות.
    2. קוקטייל מכרסמים ניתן בדרך כלל לעכברים על פי משקל, באמצעות החישוב הבא: (BW x 10) - 50 = קוקטייל מכרסמים מיקרוליטרים להינתן. זה ישתנה בהתאם למתח, גיל ומצב בריאות.
    3. פתרון זה ניתן רק באופן תוך-פרטי. אם מוזרק תוך שרירית, יכולה להיות תגובה חמורה ברקמה.
  3. הכנת קטמין/קסילן 2:1
    1. הציוד להכנת הפתרון ההרדמה כולל מזרקי 3 סמ"ק, מחטים 22 גרם x 1", 10 סמ"ק של קטמין להזרקה 100 מ"ג/מ"ל, 5 סמ"ק של קסילאצין להזרקה 20 מ"ג/מ"ל, בקבוק סטרילי של 20 מ"ל, ותווית הרדמה.
    2. מוסיפים את הקטמין והקסילאזין לבקבוק.
  4. אינדוקציה
    1. קטמין/קסילסין 2:1 משמש להרדמה עבור חולדות, וניתן להשתמש בו בשילוב עם הרדמה בשאיפה.
    2. קטמין/קסילן 2:1 ניתנת בדרך כלל החל ממנה של 0.3 סמ"ק ועלתה ב-0.02 סמ"ק עם אירועי הרדמה לאחר מכן. זה ישתנה בהתאם למתח, גיל ומצב בריאות.
    3. קטמין/קסילן 2:1 ניתן רק תוך שרירית.
  5. הכנת תערובת עכבר קטמין/קסילן
    1. Ketamine/xylazine Mouse Mix הציוד הנדרש להכנת הפתרון ההרדמה כולל 3 מזרקי cc, 22 גרם x 1" מחטים, 3.6 סמ"ק של קטמין להזרקה 100 מ"ג/ מיליליטר, 0.4 סמ"ק של קסילאצין להזרקה 20 מ"ג/מ"ל, 16 תמיסת מלח סטרילית (0.9% NaCl), פקק סטרילי 20 מ"ל, תווית הרדמה.
    2. מוסיפים את הקטמין והקסילאזין לבקבוק, מה שהופך פתרון 9:1 של קטמין כדי קסילן.
    3. מוסיפים את תמיסת מלח לבקבוק, וכתוצאה מכך 1:4 תערובת של קטמין / קסילסין 9:1 מלוחים.
  6. אינדוקציה של תערובת עכבר קטמין/קסילאזין
    1. תערובת עכבר קטמין/קסילסין עשויה לשמש גם בשילוב עם הרדמה שאיפה.
    2. תערובת עכבר קטמין/קסילן ניתנת בדרך כלל לעכברים לפי משקל, באמצעות החישוב הבא: (BW x 10) - 50 = תערובת עכבר קטמין/קסילן מיקרוליטרים להינתן. זה ישתנה בהתאם למתח, גיל ומצב בריאות.
    3. תערובת עכבר קטמין/קסילן יכולה להינתן תוך-איפריטונית.

3. הערכת הרדמה

ניתן להעריך עומק הרדמה על ידי בדיקת התגובה לגירויים שונים. תנועה מרצון תיווצר מגירויים פיזיים של הגוף. ראה טבלה 1 לקבלת רשימה של שיטות פיזיות המשמשות להערכת עומק הרדמה.

שיטת פרוצדורה תגובה
צביטת בוהן להאריך את הרגל ולבודד את webbing בין בהונות. אזור זה הוא צבט בחוזקה באמצעות ציפורניים או מלקחיים אטראומטיים. רפלקס חיובי מסומן על ידי נסיגה של הרגל או משיכה של כף הרגל. החיה אינה נמצאת במישור כירורגי של הרדמה אם יש תנועת רגליים או גוף, ווקאליזציה, או עלייה ניכרת בנשימה.
צביטת זנב קצה הזנב צבט באמצעות האצבעות או מלקחיים אטראומטיים. תגובה חיובית מסומנת על ידי עוויתות או תנועה של הזנב. החיה אינה נמצאת במישור כירורגי של הרדמה אם יש תנועה של הזנב, ווקאליזציה, או עלייה ניכרת בנשימה.
צביטת אוזניים באמצעות האצבעות או מלקחיים אטראומטיים, לצבוט את קצה הפינה. תגובה חיובית היא לנער את הראש או את תנועת השפם קדימה. אם יש תנועה של הראש, השפם, הקול, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה במישור כירורגי של הרדמה.
רפלקס פלבריאלי באמצעות קצות האצבעות, לגעת הקנתוס המהודל (הפינה הפנימית) של העין. רפלקס חיובי מסומן על ידי מצמוץ בתגובה לנגיעה בעפעפיים. אם יש תנועה של העפעפיים, השפם, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה במישור כירורגי של הרדמה.
רפלקס קרנית בעזרת אפליקטור עם קצה כותנה, יש לגעת בעדינות בקרנית (גלגל העין). תגובה חיובית מסומנת על-ידי מצמוץ. אם יש תנועה של העפעפיים, השפם, או עלייה ניכרת בנשימה, החיה אינה נמצאת במישור עמוק מספיק של הרדמה כירורגית.

טבלה 1. שיטות גירוי פיזי להערכת עומק הרדמה. 2

אינדיקטורים פיזיולוגיים כגון קצב הלב, קצב הנשימה, לחץ דם, צבע רירי, וזמן מילוי נימי יש להשתמש גם. בעוד תצפיות כלליות יכולות להיות שימושיות כדי לזהות שינויים בקצב הנשימה של בעלי החיים, כדי לנצל את קצב הלב, או לחץ דם להערכת עומק, ציוד מיוחד נדרש. אם אלקטרוקרדיוגרפיה זמינה, ניתן למדוד את קצב פעימות הלב ואת חוזק פעימות הלב. למדידת לחץ הדם, ישנם מגוון מכשירים המותקנים על הזנב או אפילו על כל הגוף. גירויים פיזיים כמתואר בטבלה 1 יגרמו לעלייה בכל שלושת הפרמטרים הללו.

צבע הקרומים הריריים, העיניים, האוזניים, הפה, האף, פי הטבעת, ובמידה פחותה - כפות הרגליים והזנב נצפים לשינויים. האזורים צריכים להיות ורודים, מה שמצביע על נשימה נאותה ותפקוד לב. כאשר החיה עוברת להרדמה בשלב 4, הנשימה מפסיקה, וכתוצאה מכך ציאנוזיס - המצוין על ידי צבע כחול או אפור - אל הריריות והעור שמסביב.

זמן מילוי נימי מוגדר ככמות הזמן שנדרש לצבע לחזור למיטה נימית חיצונית לאחר שהוא כבר blanched על ידי היישום של לחץ על האזור. מקל אפליקטור או אצבע נלחצים על החניכיים, הפינה או מיטות הציפורן של בעלי החיים המרדימים. מספר השניות שלוקח לאזור הלוהט לחזור לצבע ורוד לא צריך להיות יותר מ 1-2 שניות. זמן מילוי מורחב מצביע על ירידה בקצב הלב או בכוח של התכווצויות לב, מה שמצביע על כך שבעל החיים עשוי להיות מרדים מדי וכמעט מוות.

חשוב לנצל מספר פרמטרים שונים להערכת עומק הרדמה. שימוש באותה בוהן או אוזן לצביטות חוזרות ונשנות יפחית את הרגישות של האזור, והתגובה תודחק ולא תיתן הערכה מדויקת של עומק ההרדמה. השתמש באתרים חלופיים להערכות צביטת בוהן ואוזן. יש להעריך מחדש את עומק ההרדמה כל 10-30 דקות לאורך כל הניתוח. 2

מחקרים הראו כי ישנם שינויים cardiorespiratory בחיה מרדים. בעוד מורדם עם תרופות להזרקה, בעלי החיים חווים שיעור נשימה יציב; עם זאת, הם מדגימים שונות בתפוקת הלב. התגובה להרדמה להזרקה דווחה להשתנות מאוד בין זנים שונים, ולכן קשה לתקנן את המינון. 7 סוכני משאף נוטים להפחית את קצב הנשימה אך יש להם השפעה פחותה על מערכת הלב וכלי הדם. כמו המינון של הרדמה משאף מותאם בקלות לאורך כל ההליך, זה לעתים קרובות השיטה המועדפת.

אינדוקציה ותחזוקה של הרדמה מהווה מרכיב אינטגרלי בטיפול וטרינרי בחיות מעבדה העוברות כל סוג של הליך כירורגי. מטרת ההרדמה היא לשתק כראוי את החיה ולהקל על כל תחושות הכאב. בנוסף אינדוקציה, ניטור מדויק וקבוע נדרש כדי לשמור בבטחה על העומק ההרדמה הנכון לאורך כל ההליך.

בסרטון זה, נדון תחילה בקצרה ברמות של הרדמה מכרסמים ואיזה שלב אחד צריך לשאוף להשיג. לאחר מכן, נסקור את שיטות האינדוקציה והתחזוקה השונות, דרכים שונות להבטיח כי החיה נמצאת תמיד בשלב ההרדמה הרצוי, ולבסוף כמה ניסויים בעולם האמיתי הכוללים שימוש בהרדמה שונה למטרות מגוונות.

בואו נתחיל על ידי דיון ברמות. ישנם ארבעה שלבים של הרדמה וארבעה מישורים בשלב שלוש או בשלב הניתוחי.

בשלב הראשון, החיה הופכת מבולבלת. שלב שני מסומן על ידי קצב נשימה לא סדיר ואובדן רפלקס הימין. במישור הראשון של שלב שלוש, רפלקסים palpebral ובליעה נעדרים. במהלך המטוס השני, רפלקסים רינג'יים וקורנית הולכים לאיבוד. עד לנקודה זו, ההרדמה לא גרמה אמנזיה או משכך משכך.

זה במטוס שלוש כי אמנזיה ומשרך משכך משכך מרפא מתקדם חלקית עד שלמה, ואת החיה הוא מרדים לחלוטין עבור הליך כירורגי. מישור שלוש מסומן גם על ידי שיתוק של השרירים הבין COSTAL, אשר גורם נשימה דיאפרגמטית כי הוא נשימה רדודה. במטוס 4, החיה כבר מנת יתר והוא יכול להמשיך במהירות לשלב ארבע, שבו יש שיתוק מוחלט של שרירים בין צילומיים וסרעפת, אשר יכול לגרום לדום נשימה, ובסופו של דבר להוביל למוות.

הרדמה זמינה כמו משאף או להזרקה, ווטרינר חייב להחליט מה להשתמש עבור ההליך להתבצע. בחירה זו מבוססת על היבטים רבים, ביניהם: היקף ומשך ההליך, המין והמתח, הגיל והמצב הפיזיולוגי של החיה.

המעמד של הרדמה במשאף נפוץ כולל תרכובות כמו Isoflurane, סבופלוראן, ו Desflurane. תרכובות אלה מאפשרות שליטה קלה על עומק ההרדמה. ישנן כמה אפשרויות בציוד שניתן לבחור ממנו כדי לנהל הרדמה משאיפה.

אחת האפשרויות היא צנצנת פעמונים, שיש להשתמש בה מתחת למכסה המנוע - ולא על הספסל - כדי למנוע חשיפת כוח אדם לגזים ההרדמה. להרכיב את הצנצנת עם פלטפורמה מחוררת קרמיקה או פלסטיק יצירת רווח בין החלק התחתון של הצנצנת ואת הפלטפורמה. לאחר מכן, תוך כדי לבישת כפפות אטום, הרווה כדור כותנה עם הרדמה והניח אותו מתחת לפלטפורמה, כך שהוא נח בתחתית הצנצנת. ואז מיד לאבטח את המכסה כדי למנוע בריחה של אדי הרדמה. כדי למקם את החיה, להחליק את המכסה לצד אחד, להציג את החיה ולאבטח אותו מיד. לאחר מכן, להתבונן בפעילות ובנשימה כדי לקבוע את עומק ההרדמה, ולחשוף את החיה לשאיפה להשפעה. שימו לב שהפלטפורמה משמשת כמחסום ומונעת מהבעלה לבוא במגע ישיר עם חומר ההרדמה הנוזלי.

חלופה לצנצנת הפעמון היא תא אינדוקציה המשמש בשילוב עם מכונת אידוי מדויקת המחוברת למיכל חמצן. הצעד הראשון הוא להבטיח כי מאדה מלא בכמות מתאימה של הרדמה נוזלית. לאחר מכן, בדוק את מערכת ניקוי גז הפסולת. אם זוהי המערכת הפסיבית הנפוצה, ואז לשקול את המיכל כדי לקבוע אם זה עדיין יעיל. בדרך כלל עלייה של חמישים גרם מעל המשקל ההתחלתי היא הנקודה שבה המיכל הוא בילה. השלב הבא הוא להרכיב את תא האינדוקציה. ודא כי הקלט הוא מן האידוי והתפוקה היא למערכת ניקוי גז פסולת.

כדי להתחיל, מניחים את החיה בתא האינדוקציה ומאבטחים את המכסה. ברגע שהחיה נמצאת בתא, תחילה התחל את זרימת החמצן בקצב של 1 ליטר לדקה, ולאחר מכן התאם את הגדרת האידוי המדויק לרמת אינדוקציה של 3-4 % עבור איזופלוראן. כמו צנצנת פעמונים, לחשוף את החיה להרדמה להשפעה. לאחר החיה הוא מרדים לחלוטין, לשטוף את התא עם חמצן על ידי כיבוי isoflurane לפני הסרת החיה בעדינות. זאת כדי למנוע חשיפה של כוח אדם לגזים מרדומים.

שיטה נוספת לאינדוקציה הרדמה היא באמצעות חרוט האף או מסכת הפנים המחוברת גם לאדייד המדויק. עם זאת, מכיוון שלגזים הרדמה יש ריח לא נעים, בעלי חיים עשויים להתנגד להיות רעולי פנים לגיוס. בנוסף, קיים גם סיכון לגרימת חנק בגלל אחיזה חזקה מדי. לכן, השיטה המועדפת היא להשתמש בתיבת האינדוקציה או בצנצנת הפעמון כדי לגרום להרדמה ואחריה תחזוקה עם חרוט האף. לעתים קרובות יותר מאשר לא, ההרכבה היא כזו כי חרוט ותא אינדוקציה שניהם מחוברים לאותו מאדה עם מעבר בין כדי להעביר את משלוח אדי הרדמה מתא האינדוקציה אל חרוט האף ולהיפך. לאחר מרדים את החיה בתא, לאבטח את פניו בקונוס, ולהחליף את הדו-מצבי על הצינורות כדי לנתב מחדש את זרימת הגז אל חרוט האף. לפקח על הנשימה ולאחר אישור כי החיה רגועה, להפחית את ההרדמה לרמת תחזוקה של 0.5 - 1.5 %. כמו כן, להחיל משחה עיניים על העיניים כדי למנוע ייבוש הקרנית.

עבור הרדמה להזרקה, תערובת של קטמין ו תרופות הרגעה אחרות או מרפה שרירים כולל קסילסין ו/או Acepromazine. שילובים שונים ניתן להכין באמצעות תרכובות אלה. ראה טקסט להלן לקבלת יחסים נפוצים. שים לב כי קטמין הוא חומר מבוקר ולכן הסכום המשמש יש לציין על יומן הסמים מבוקר ואת התערובות חייב להיות יומני החומרים מבוקרים בודדים שלהם. בהתאם למין, גיל ומצב בריאות של החיה, התערובת ואת המינון של ההרדמה נבחרים ואת הפתרון ניתן להזריק תוך איפריטונית או תוך שרירית. בדרך כלל, הזרקה ושאיפה הרדמה משמשים בשילוב כדי להשיג הרדמה כירורגית.

עכשיו שאתה יודע איך לגרום להרדמה, בואו ללמוד על הערכת עומק הרדמה, אשר חשוב לפקח כל 10-30 דקות כדי להבטיח כי החיה לא נפגעה במהלך ההליך. ישנן מספר שיטות לעשות זאת מכרסמים.

שיטה נפוצה היא צביטת בוהן. להאריך את רגל החיה ולבודד את webbing בין בהונות. לאחר מכן לצבוט בחוזקה את האזור באמצעות ציפורניים או מלקחיים אטראומטיים. רפלקס חיובי מסומן על ידי נסיגה של הרגל או משיכה של כף הרגל. שיטה נוספת היא צביטת הזנב המבוצעת בקצה הזנב. תגובה חיובית מודגמת על ידי עוויתות או תנועת זנב. אתה יכול גם לצבוט את קצה הפינה, ואם יש רועד של הראש או את התנועה של השפם קדימה, אז החיה אינה במישור הניתוחי של הרדמה.

כדי לבדוק את עומק ההרדמה, אפשר גם לגעת בקנתוס המהודל או בפינה הפנימית של העין כדי לעורר את רפלקס הפעמות - המצוין על ידי מצמוץ בתגובה לנגיעה בעפעפיים. גם אם יש תנועה של העפעפיים, השפם, או עלייה ניכרת בנשימה החיה אינה במישור הניתוחי של הרדמה.

לבסוף, ניתן לבדוק את רפלקס הקרנית על ידי נגיעה בקרנית עם אצבע בכפפה או אפליקטור עם קצה כותנה. תגובה חיובית מסומנת על-ידי מצמוץ.

חשוב להחליף בין אתרים כדי להעריך את עומק ההרדמה. שימוש באותה בוהן או אוזן לצביטות חוזרות ונשנות יפחית את הרגישות של האזור והתגובה תידחק ולא תיתן הערכה מדויקת של עומק ההרדמה.

בנוסף לשיטות הערכה אלה של גירויים פיזיים, יש גם לפקח על האינדיקטורים הפיזיולוגיים כולל קצב הלב, קצב הנשימה, לחץ הדם, צבע הקרום הרירי וזמן מילוי נימי. בעוד תצפיות כלליות יכול להיות שימושי כדי לזהות שינויים בקצב הנשימה, כדי לנצל את קצב הלב להערכת עומק, ציוד מיוחד כמו אלקטרוקרדיוגרפיה עשוי לשמש. למדידת לחץ הדם, ישנם מגוון מכשירים שניתן להתקין על הזנב או אפילו על כל הגוף. צבע הקרומים הריריים, העיניים, האוזניים, הפה, האף, פי הטבעת, כפות הרגליים והזנב יכול גם להצביע על עומק הרדמה. אזורים אלה צריכים להיות ורודים, מה שמרמז על נשימה נאותה וקצב לב.

כדי לבדוק את זמן המילוי הנימי, לחץ על הפינה של בעלי החיים המרדימים, וספור את מספר השניות שלוקח לאזור המפונק לחזור לצבע ורוד. זה לא צריך להיות יותר מ 1 עד 2 שניות. זמן מילוי מורחב מצביע על ירידה בקצב הלב או בכוח של התכווצות הלב, מה שמצביע על כך שבעל החיים עשוי להיות מרדים מדי וקרוב למוות. לאחר הסרת החיה מהרדמה, הם לא צריכים להיות מוחזרים למתקן הדיור עד התאוששות מהרדמה, אלא אם כן הם מנוטרים ברציפות באזור הדיור.

כעת, לאחר שלמדנו את העקרונות והנהלים של אינדוקציה ותחזוקה של הרדמה מכרסמת, בואו נבחן כמה מהיישומים התכופים של הרדמה במחקר הביו-רפואי כיום.

כנראה השימוש הנפוץ ביותר עבור הרדמה מכרסמים הוא לפני ובמהלך הניתוח. לדוגמה, כאן החוקרים רצו לפתח מודל של שבץ שנגרם על ידי היווצרות קריש במוח. על מנת להשיג זאת, הם גרמו להרדמה בעכברים ואז קדחו את הגולגולת כדי ליצור חלון דק. ובעוד החיה הייתה עדיין מסוממת, מדענים אלה הזריקו צבע רגיש למחזור הדם. לאחר מכן, הם גרמו פוטואקטיבציה בעזרת לייזר דרך הגולגולת שנקדחה כדי לגרום להיווצרות של קריש דם vasculature הגולגולת.

מקרה נוסף שבו נדרשת הרדמה מכרסמת הוא לביצוע ניתוח פיזיולוגי. לדוגמה, מדענים משתמשים לעתים קרובות אלקטרודות אק"ג על בעלי חיים מרדים כדי לפקח על פעילות הלב. או שהם משתמשים בבדיקות אולטרסאונד כדי לקבוע את קצב תנועת הסרעפת כדי לכמת בצורה מדויקת יותר את קצב הנשימה.

לבסוף, השימוש בהרדמה הוא חובה בעת preforming הישרדות בניסויים ברחם. לדוגמה, באלקטרופורציה ברחם -- שיטה שבה נקבה בהריון היא מרדימה, נעשה חנק כדי לחשוף את העוברים המתפתחים, ואלקטרודות משמשות כדי לגרום לספיגת תאי עוברי של החומר הגנטי המוזרק.

הרגע צפית בסרטון של JoVE על ניהול הרדמה ותחזוקה. מכיוון שהרדמה מכרסמת מקלה על ביצוע מגוון כה רחב של ניסויים ביולוגיים, חיוני שלכל מדען יהיה את המיומנות של גרימת ושמירה על עומק ההרדמה הנכון לאורך הניסוי. כמו תמיד, תודה שצפית!

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Applications and Summary

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

השימוש הנכון בהרדמה לניתוח, או בהליכים אחרים שעלולים להיות כואבים, חיוני לא רק לרווחת החיה, אלא גם לשלמות הנתונים המדעיים שנאספו במהלך ההליך. ישנם משתנים רבים הגורמים לבחירת גדוד ההרדמה המתאים. עומק ההרדמה חייב להיות במעקב צמוד, שכן כל בעל חיים בודד יכול להגיב באופן שונה לתרופה. עם השימוש בהרדמה נכונה וניטור זהיר, הליכים כואבים יכולים להתבצע ללא כאב ושינויים פיזיולוגיים מינימליים בבעלי החיים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

References

  1. Institute for the Laboratory Animal Research. 2011. Guide for the care and use of laboratory animals, 8th ed. Washington (DC): National Academies Press.
  2. Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., and Inomata, T. 2015. Vital signs during injectable and inhalant anesthesia in mice. Experimental Animals. 64(1). 57-64.
  3. Kent Scientific Corporation. Retrieved from https://www.kentscientific.com/products/productView.asp?productID=6468&Mouse_Rat=CODA+High+Throughput&products=MouseSTAT%AE+Pulse+Oximeter+%26+Heart+Rate+Monitor+Module (accessed 10/15/15)
  4. Szczepan B et al. Intraoperative Physiological Monitoring in Rodent Surgical Research. Retrievd from https://www.alnmag.com/article/2012/10/intraoperative-physiological-monitoring-rodent-surgical-research  (accessed 10/15/15)
  5. Preanesthesia, Anesthesia, Analgesia, and Euthanasia. Laboratory Animal Medicine, 2nd ed. Ed Fox, J. G., Anderson, L. C., Loew, F. M., and Quimby, F. W. 2002. Academic Press. San Diego, CA.
  6. Ho, David et al. 2011. Heart Rate and Electrocardiography Monitoring in Mice. Current protocols in mouse biology. 1: 123-139. PMC. Web. 15 Sept. 2016.
  7. Smith, W. 1993. Responses of laboratory animals to some injectable anaethetics. Laboratory Animals. 27. 30-39.

Transcript

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the English version.

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter