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Maintenance et l’Induction de l’anesthésie
 

Maintenance et l’Induction de l’anesthésie

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induction de l’anesthésie et l’entretien constitue une partie intégrante des vétérinaires aux soins des animaux de laboratoire soumis à toute forme d’intervention chirurgicale. Le but de l’anesthésie est à immobiliser l’animal et à soulager toutes les sensations de douleur. En plus de l’induction, contrôle précis et constant est nécessaire pour maintenir en toute sécurité la bonne profondeur anesthésique tout au long de la procédure.

Dans cette vidéo, nous allons discuter tout d’abord brièvement les niveaux d’anesthésie rongeur et quelle étape on devrait s’efforcer de réaliser. Ensuite, nous passerons en revue les différentes méthodes de l’induction et l’entretien, différentes manières de s’assurer que l’animal est toujours au stade anesthésique souhaité, et enfin quelques expériences concrètes impliquant une utilisation des différents anesthésiques à des fins variées.

let ' s début en discutant les niveaux. Il y a quatre étapes de l’anesthésie et les quatre avions au sein de la scène trois ou l’étape chirurgicale.

Au cours de la première étape, l’animal devient désorienté. Deuxième étape est marquée par un rythme respiratoire irrégulier et la perte du réflexe de redressement. En avion une de stade trois, les fentes palpébrales et avaler les réflexes sont absents. Au cours de l’avion deux, les réflexes laryngés et cornéens sont perdus. Jusqu'à ce point, l’anesthésie n’a pas induit amnésie ou analgésie.

C’est dans l’avion trois que l’amnésie et analgésie progresse de partielle à remplir et l’animal est complètement anesthésiés pour une intervention chirurgicale. Plan trois est aussi signifié par paralysie des muscles intercostaux, qui se traduit par la respiration diaphragmatique qui est respiration superficielle. Dans l’avion quatre, l’animal a été fait une overdose et procéder rapidement à l’étape 4, où il y a une paralysie complète des muscles intercostaux et le diaphragme, qui peut causer un arrêt respiratoire et finalement conduire à la mort.

anesthésiques sont disponibles tant qu’inhalant ou injectable, et un vétérinaire doit décider ce qu’il faut utiliser pour la procédure à effectuer. Ce choix est basé sur nombreux aspects dont : l’étendue et la durée de la procédure, les espèces et variétés, l’âge et l’état physiologique de l’animal.

La classe des anesthésiques inhalants couramment utilisés comprend des composés comme l’Isoflurane, Sevoflurane et Desflurane. Ces composés permettent un réglage facile de la profondeur de l’anesthésie. Il y a quelques options dans les équipements qu’on peut choisir d’administrer les anesthésiques inhalants.

Un des choix est une cloche de verre, qui doit être utilisé sous le capot--et pas sur le banc--pour éviter l’exposition du personnel aux gaz anesthésiques. Assembler le bocal avec une plateforme en céramique ou en plastique perforée, créant un espace entre le fond du bocal et la plate-forme. Ensuite, si vous portez des gants imperméables, saturer un tampon d’ouate avec un anesthésique et placez-la sous la plate-forme, afin qu’il repose au fond du bocal. Puis sécuriser immédiatement le couvercle afin d’éviter l’échappement de la vapeur anesthésique. Pour placer l’animal, en faisant glisser le couvercle d’un côté, introduire l’animal et le fixer immédiatement. Suite à cela, observer l’activité et les respirations pour déterminer la profondeur de l’anesthésie et exposer l’animal sur les substances inhalées à effet. Notez que la plate-forme sert de barrière et empêche l’animal de venir en contact direct avec le liquide anesthésique.

Une alternative à la cloche de verre est une chambre à induction utilisée en conjonction avec une précision vaporisateur machine reliée à un réservoir d’oxygène. La première étape consiste à faire en sorte que le vaporisateur est rempli d’une quantité adéquate de liquide anesthésique. Ensuite, vérifiez les gaz nettoyage système. Si c’est le système passif couramment utilisé, puis peser la cuve afin de déterminer si elle est toujours en vigueur. Généralement une augmentation de cinquante grammes au-dessus du poids de départ est le point où la cuve est passée. L’étape suivante consiste à assembler la chambre de l’induction. S’assurer que l’entrée n’est le vaporisateur et se font dans les gaz résiduaires nettoyage système.

Pour commencer, placer l’animal dans la chambre de l’induction et fixez le couvercle. Une fois que l’animal est dans la chambre, tout d’abord démarrer le débit d’oxygène à raison de 1 litre / min et ensuite ajuster le réglage de vaporisateur de précision à un niveau d’induction de 3-4 % pour l’isoflurane. Comme la cloche de verre, exposer l’animal à l’anesthésique effet. Une fois que l’animal est complètement anesthésié, rincer la chambre avec l’oxygène en désactivant l’isoflurane avant d’enlever délicatement l’animal. Ceci permet d’éviter l’exposition du personnel aux gaz anesthésiques.

Une autre méthode pour l’induction de l’anesthésie se fait par la coiffe ou masque facial est également reliée à l’évaporateur de précision. Cependant, parce que les gaz anesthésiques ont une odeur désagréable, animaux peut s’opposer à être masqué pour l’induction. En outre, il y a aussi un risque de causer l’asphyxie à cause de saisir trop fermement. Par conséquent, la méthode recommandée est d’utiliser la boîte de l’induction ou la cloche à vide pour induire l’anesthésie suivie d’entretien avec le cône de nez. Plus souvent qu’autrement, l’Assemblée est telle que le cône et la chambre de l’induction tous les deux sont connectés à la même vaporisateur avec une bascule entre les deux pour passer la livraison vapeur anesthésique de la chambre de l’induction de la coiffe et vice versa. Après anesthésier l’animal dans la chambre, garantir son visage dans le cône et basculer la bascule sur le tube pour rediriger le flux de gaz vers le cône de nez. Surveiller la respiration et après avoir confirmé que l’animal est détendue, réduire l’anesthésique à un niveau de maintenance de 0,5 - 1,5 %. S’appliquent également, pommade ophtalmique pour les yeux pour éviter le dessèchement cornéen.

Pour les anesthésiques injectables, un mélange de kétamine et autres sédatifs ou des relaxants musculaires, y compris la Xylazine et/ou acépromazine. Combinaisons différentes peuvent être préparés à l’aide de ces composés. Voir le texte ci-dessous pour les ratios couramment utilisés. Notez que la kétamine est une substance contrôlée et donc la quantité utilisée doit noter sur le journal des drogues contrôlées et les mélanges doivent avoir leurs registres Substance contrôlée. Selon les espèces, âge et état de santé de l’animal, le mélange et la dose de l’anesthésie sont sélectionnés et la solution peut être injectée par voie intrapéritonéale ou par voie intramusculaire. Habituellement, les anesthésiques par inhalation et de l’injection sont utilisés en combinaison pour réaliser l’anesthésie chirurgicale.

maintenant que vous savez comment induire anestheSIA, laissez ' s en savoir plus sur l’évaluation de profondeur anesthésique, ce qui est importante de surveiller toutes les 10-30 minutes pour s’assurer que l’animal n’est pas mal au cours de la procédure. Il existe plusieurs méthodes pour le faire chez les rongeurs.

est le pincement de l’orteil. Étendre l’animal ' jambe et isoler la sangle entre les orteils. Alors fermement pincer la zone en utilisant soit les ongles ou une pince atraumatique. Un réflexe positif est indiqué par la rétraction de la jambe ou le retrait du pied. Une autre méthode est le pincement de la queue joué l’extrémité de la queue. Une réaction positive se manifeste par des contractions ou queue de mouvement. Vous pouvez aussi pincer l’extrémité de la Penne, et s’il y a hochement de la tête ou le mouvement des moustaches vers l’avant, puis l’animal n’est pas dans le plan chirurgical de l’anesthésie.

Pour vérifier la profondeur de l’anesthésie, on peut aussi touche le canthus médial ou le coin interne de le œil pour déclencher le réflexe palpébral--indiquée par un clignotement en réponse à un attouchement de paupières. Même s’il y a mouvement des paupières, moustaches ou une augmentation marquée de la respiration l’animal n’est pas dans le plan chirurgical de l’anesthésie.

Enfin, on peut contrôler le réflexe cornéen par toucher la cornée avec un doigt ganté ou un coton-tige. Une réponse positive est indiquée par un clignotement.

Il est important d’alterner entre les sites afin d’évaluer la profondeur de l’anesthésie. En utilisant le même orteil ou oreille pour pincées répétées seront désensibiliser la zone ainsi que la réponse va être réprimée et ne donnent pas une évaluation précise de la profondeur anesthésique.

En plus de ces méthodes de stimuli physiques d’évaluation, on devrait également suivre les indicateurs physiologiques, y compris la fréquence cardiaque, fréquence respiratoire, la pression artérielle, couleur de la muqueuse et capillaire remplir à temps. Alors que les observations générales peuvent être utiles pour détecter des changements dans la fréquence respiratoire, afin d’utiliser la fréquence cardiaque pour l’évaluation de la profondeur, de matériel spécialisé like électrocardiographe peut-être être utilisé. Pour mesurer la tension artérielle, il existe une variété de dispositifs qui peuvent être montés sur la queue ou même sur tout le corps. La couleur des muqueuses, yeux, oreilles, bouche, nez, anus, pattes et queue peut également indiquer la profondeur de l’anesthésie. Ces zones devraient être roses, ce qui suggère la respiration adéquate et la fréquence cardiaque.

Vérifier le capillaire temps de remplissage, appuyez sur le pavillon des animaux anesthésiés et compte le nombre de secondes qu’il faut pour la zone blanchie revenir à une couleur rose. Cela ne devrait pas être plus de 1 à 2 secondes. Un temps de recharge prolongée suggère une réduction de la fréquence cardiaque ou la force de contraction cardiaque, indiquant que l’animal peut être trop profondément anesthésié et proche de la mort. Après avoir retiré l’animal de l’anesthésie, ils ne doivent pas être retournés à la facilité de logement jusqu'à guérison de l’anesthésie, à moins qu’ils sont surveillés en permanence dans le secteur du logement.

maintenant que nous ' ve appris les principes et procédures de l’induction de l’anesthésie rongeurs et entretien, permet de regarder certaines des applications fréquentes des anesthésiques en recherche biomédicale aujourd'hui.

Est sans doute le plus couramment utilisé pour l’anesthésie rongeur avant et Pendant la chirurgie. Par exemple, ici chercheurs ont voulu développer un modèle d’accident vasculaire cérébral causé par la formation de caillots dans le cerveau. Pour y parvenir, ils induite par l’anesthésie chez la souris et ensuite percé le crâne afin de créer une fenêtre mince. Et tandis que l’animal était encore sous sédation, ces scientifiques injecté un colorant photosensible dans la circulation. Ensuite, ils induisent photoactivation avec l’aide d’un laser à travers le crâne percé pour provoquer la formation d’un caillot dans les vaisseaux crânien.

Une autre instance dans laquelle anesthésie rongeur est nécessaire pour effectuer des analyses physiologiques. Par exemple, les scientifiques utilisent souvent électrodes ECG sur animaux anesthésiés pour surveiller l’activité du cœur. Ou ils utilisent des sondes d’échographie pour déterminer le taux de mouvement de diaphragme de quantifier plus précisément le taux respiratoire.

Enfin, utilisation de l’anesthésie est obligatoire lorsque le préformage des expériences de survie dans l’utérus. Par exemple, dans l’utérus électroporation--une méthode dans laquelle une femme enceinte est anesthésiée, une incision est faite pour exposer les embryons en développement, et électrodes sont utilisés pour induire la capture cellulaire embryonnaire du matériel génétique injecté.

vous avez regardé juste JoVE ' s-vidéo sur l’administration de l’anesthésie et l’entretien. Puisque l’anesthésie rongeur facilite l’exécution d’un éventail d’expériences biologiques, il est impératif que chaque scientifique possède l’habileté d’induire et de maintenir la bonne profondeur anesthésique pendant toute une expérience. Comme toujours, Merci de regarder !

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