Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Science Education Library
Lab Animal Research

A subscription to JoVE is required to view this content.
You will only be able to see the first 20 seconds.

 

Mantenimiento e inducción de la anestesia

Article

Transcript

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the English version.

anestesia inducción y mantenimiento forma parte integral de la veterinaria, cuidado de animales de laboratorio sometidos a cualquier forma de procedimiento quirúrgico. El objetivo de la anestesia es inmovilizar el animal y aliviar todas las sensaciones de dolor adecuadamente. Además de la inducción, seguimiento exacto y constante es necesaria para mantener con seguridad la profundidad anestésica adecuada durante todo el procedimiento.

En este video, primero discutiremos brevemente los niveles de anestesia de roedor y qué etapa uno debe proponerse alcanzar. A continuación, vamos a revisar los diferentes métodos de inducción y mantenimiento, varias formas para que el animal está siempre en el escenario anestésico deseado, y finalmente algunos experimentos reales que implican usan de anestésicos diferentes para diversos fines.

let ' s inicio con un análisis de los niveles. Hay cuatro etapas de la anestesia y cuatro planos dentro de la fase tres o fase quirúrgica.

Durante la primera etapa, el animal se vuelve desorientado. Fase dos se caracteriza por un ritmo respiratorio irregular y pérdida del reflejo del adrizamiento. En el plano de fase tres, la palpebral y reflejos de deglución están ausentes. Durante el avión dos, desaparecen los reflejos laríngeos y córneos. Hasta este punto, la anestesia no ha inducido amnesia o analgesia.

Es en plano tres que amnesia y analgesia progresa de parcial a completa y el animal está completamente anestesiado para un procedimiento quirúrgico. Plano tres está representado también por la parálisis de los músculos intercostales, que se traduce en la respiración diafragmática que es la respiración superficial. En plano de cuatro, el animal ha sido una sobredosis y puede proceder rápidamente en la etapa cuatro, donde hay parálisis completa de músculos intercostales y diafragma, que puede causar detención respiratoria y en última instancia conducir a la muerte.

anestésicos están disponibles como un inhalante o inyectables, y un veterinario debe decidir qué usar para el procedimiento a realizar. Esta elección se basa en numerosos aspectos como: la extensión y duración del procedimiento, la especie y cepa, la edad y el estado fisiológico del animal.

La clase de anestésicos inhalantes comúnmente utilizados incluye compuestos como el isoflurano, sevoflurano y desflurano. Estos compuestos permiten el fácil control de la profundidad de la anestesia. Hay algunas opciones en el equipo que uno puede elegir administrar anestésicos inhalantes.

Una de las opciones es una campana de cristal, que se debe utilizar bajo el capó y no en el Banco, para evitar la exposición personal a los gases anestésicos. Monten la jarra con una plataforma perforada de cerámica o plástico, creando un espacio entre la parte inferior de la jarra y la plataforma. Luego, usando guantes impermeables, saturar una bola de algodón con anestésico y colóquelo debajo de la plataforma que descansa en el fondo de la jarra. Luego fijar inmediatamente la tapa para evitar el escape del vapor anestésico. Para colocar el animal, deslice la tapa hacia un lado, introducir al animal y garantizar inmediatamente. A continuación, observar la actividad y respiración para determinar la profundidad de la anestesia y exponer al animal a inhalantes a efecto. Tenga en cuenta que la plataforma sirve como barrera y evita que el animal entre en contacto directo con el líquido anestésico.

Una alternativa a la campana de cristal es una cámara de inducción utilizada en combinación con una máquina de vaporizador de precisión conectada a un tanque de oxígeno. El primer paso es asegurar que el vaporizador está lleno con una cantidad adecuada del líquido anestésico. A continuación, compruebe el gas inútil sistema de barrido. Si es el sistema comúnmente utilizado pasivo, luego pesar el frasco para determinar si es aún eficaz. Generalmente un aumento de cincuenta gramos sobre el peso inicial es el punto en que se gasta el cartucho. El siguiente paso es montar la cámara de inducción. Asegurar que la entrada es desde la torre de evaporación y salida es el gas inútil rebuscar sistema.

Para empezar, coloque el animal en la cámara de inducción y la tapa. Una vez que el animal está en la cámara, primero empieza el flujo de oxígeno a razón de 1 litro por minuto y luego ajustar la precisión vaporizador a un nivel de inducción de 3-4% de isoflurano. Como campana, exponer al animal a la anestesia efecto. Una vez que el animal está completamente anestesiado, lavar la cámara con oxígeno apagando el isoflurano antes de retirar con cuidado el animal. Esto es para evitar la exposición a gases anestésicos personal.

Otro método para la inducción de la anestesia es mediante cono de nariz o mascarilla conectado con el vaporizador de precisión. Sin embargo, debido a gases anestésicos tienen un olor desagradable, los animales pueden oponerse a ser enmascarado para la inducción. Además, también hay un riesgo de provocar asfixia por agarrar demasiado firmemente. Por lo tanto, el método preferido es utilizar el cuadro de la inducción o la campana de cristal para inducir anestesia seguida de mantenimiento con el cono de nariz. Más a menudo que no, el montaje es tal que el cono y la cámara de inducción están conectados al misma vaporizador con un palanca en el medio para cambiar la entrega de vapor anestésico de la cámara de inducción en el cono de la nariz y viceversa. Después de anestesiar el animal en la cámara, asegure su cara en el cono y la palanca del interruptor en el tubo para redirigir el flujo de gas en el cono de nariz. Controlar la respiración y después de confirmar que el animal está relajado, reducir el anestésico a un nivel de mantenimiento de 0.5 - 1.5%. También, aplicar pomada oftálmica en los ojos para prevenir la resequedad corneal.

De anestésicos inyectables, una mezcla de ketamina y otros sedantes o relajantes musculares como xilacina o acepromacina. Diferentes combinaciones pueden ser preparados usando estos compuestos. Vea el texto abajo para los cocientes utilizados. Tenga en cuenta que la ketamina es una sustancia controlada y por lo tanto debe señalarse la cantidad utilizada en el registro de medicamentos controlados y las mezclas deben tener sus registros individuales de la sustancia controlada. Dependiendo de la especie, estado de salud y edad del animal, la mezcla y la dosis del anestésico son seleccionados y la solución se puede inyectar por vía intraperitoneal o intramuscular. Normalmente la inyección e inhalación de anestésicos se utilizan en combinación para lograr anestesia quirúrgica.

ahora que sabes cómo inducir EPISIA, dejó ' s aprender sobre la evaluación de la profundidad anestésica, que es importante vigilar cada 10-30 minutos para asegurarse de que el animal no es dañado durante el procedimiento. Existen varios métodos para hacerlo en roedores.

es el pellizco del dedo del pie. Extender el animal ' pierna s y aislamiento entre los dedos del pie. Luego apriete firmemente la zona usando uñas o pinzas atraumáticas. Un reflejo positivo es indicado por la retracción de la pierna o retirarse de los pies. Otro método es la pizca de cola en la punta de la cola. Movimiento que crispa o cola demuestra una reacción positiva. También puede pellizcar la punta de la oreja, y si hay temblores de la cabeza o el movimiento de los bigotes hacia adelante, entonces el animal no está en el plano quirúrgico de anestesia.

Para comprobar la profundidad de la anestesia, se puede también toca el ángulo del ojo intermedio o el ángulo interno del ojo para obtener el reflejo palpebral: indicado por un parpadeo en respuesta a tocar de los párpados. Incluso si hay movimiento de los párpados, bigotes o aumento marcado en respiraciones el animal no está en el plano quirúrgico de anestesia.

Por último, uno puede chequear el reflejo corneal al tocar la córnea con un dedo enguantado o un aplicador con punta de algodón. Una respuesta positiva se indica con un parpadeo.

Es importante alternar entre sitios para evaluar la profundidad anestésica. Usando el mismo dedo o la oreja para pinches repetidas insensibilizan la zona y la respuesta será reprimida y no dar una evaluación precisa de la profundidad anestésica.

Además de estos métodos de estímulos físicos de evaluación, uno también debe supervisar los indicadores fisiológicos como la frecuencia cardiaca, frecuencia respiratoria, presión arterial, color de mucosas y capilar del repuesio tiempo. Mientras que observaciones generales pueden ser útiles para detectar cambios en la frecuencia respiratoria utilizar la frecuencia cardíaca para la evaluación de la profundidad, equipos especializados como electrocardiógrafo puede usarse. Para la medición de la presión arterial, hay una gran variedad de dispositivos que pueden montarse sobre la cola o incluso por todo el cuerpo. El color de las membranas mucosas, ojos, oídos, boca, nariz, ano, patas y cola también puede indicar la profundidad anestésica. Estas áreas deben ser color de rosa, sugiriendo la adecuada respiración y frecuencia cardíaca.

Comprobar el capilar rellenar tiempo, pulse en el pabellón de la oreja de los animales anestesiados y contar el número de segundos que tarda la zona blanqueada volver a un color rosado. Esto no debe ser más de 1 a 2 segundos. Un tiempo de recarga prolongado sugiere una reducción en la frecuencia cardíaca o la fuerza de contracción cardiaca, indicando que el animal puede ser también profundamente anestesiado y cerca de la muerte. Después de quitar el animal de la anestesia, no deben ser devueltos a la planta de la vivienda hasta que se recuperó de la anestesia, si no son observados en el área de vivienda.

ahora que ' he aprendido los principios y procedimientos de inducción de la anestesia de roedores y el mantenimiento, Veamos algunas de las aplicaciones frecuentes de anestésicos en la investigación biomédica hoy.

Probablemente el uso más común de anestesia de roedor es antes y durante la cirugía. Por ejemplo, aquí los investigadores querían desarrollar un modelo de movimiento causado por la formación de coágulos en el cerebro. Para ello, se indujo anestesia en ratones y luego perforar el cráneo para crear una ventana delgada. Y mientras que el animal fue sedado todavía, estos científicos inyectan un tinte fotosensible en la circulación. A continuación, inducido por fotoactivación con la ayuda de un láser a través del cráneo perforado para causar la formación de un coágulo en la vasculatura craneal.

Otro ejemplo en que anestesia de roedor se requiere es para la realización de análisis fisiológico. Por ejemplo, los científicos suelen utilizan electrodos de electrocardiograma en animales anestesiados para supervisar la actividad del corazón. O utilizar sondas de ultrasonido para determinar la tasa de movimiento del diafragma para cuantificar con mayor precisión la frecuencia respiratoria.

Por último, uso de la anestesia es obligatoria preformado experimentos de supervivencia en el útero. Por ejemplo, en el útero electroporación--un método en el que una mujer embarazada está anestesiada, se hace una incisión para exponer los embriones en desarrollo, y los electrodos se utilizan para inducir la absorción celular embrionaria del material genético inyectado.

acabo de ver JoVE ' s video en mantenimiento y administración de la anestesia. Anestesia de roedor facilita la ejecución de una amplia gama de experimentos biológicos, es imperativo que todo científico posee la habilidad de inducir y mantener la correcta profundidad anestésica durante un experimento. Como siempre, gracias por ver!

Read Article

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter